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AGRADECIMIENTOS

A:

Dios que me dio la vida, la sabiduría y la bendición

de superarme.

La Universidad Rafael Landívar, Facultad de

Ciencias Ambientales y Agrícolas por ser parte de

mi formación.

Ing. Adán Obispo Rodas Cifuentes, por su asesoría,

revisión y corrección de la presente investigación.

Ing. Rafael Eduardo Dávila Padilla, por brindarme el

apoyo incondicional para culminar mi carrera.

Empresa Agricisa por brindarme el apoyo para

desarrollar la presente investigación.

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DEDICATORIA

A:

Dios: Quién siempre me da su infinito amor, fortaleza para superar las diferentes etapas de la vida y me bendice con las personas que me rodean.

Mis padres: Humberto Nuñez López y Aura Barillas a

quienes quiero mucho, por su inmenso amor,

por su tiempo, sus consejos oportunos y por

su ejemplo a seguir.

Mi esposa: Dana Rivera Velásquez que la amo mucho,

por ser la razón de mi esfuerzo, mi alegría y la

motivación constante de superación.

Mi familia: Hermanas, tíos, primos, sobrinos y cuñados

que de una u otra forma han contribuido en mi

formación.

Mis amigos: Por su apoyo, compañía y formar parte de mi

desarrollo integral, con mucho aprecio.

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INDICE

CONTENIDO Página

I. INTRODUCCION

II. MARCO TEORICO

2.1 Cultivo de la sandia (C. lanatus, Cucurbitaceae)

2.1.1 Generalidades del cultivo de sandía

2.1.2 Morfología de la sandía

2.1.2.1 Planta

2.1.2.2 Sistema radicular

2.1.2.3 Tallos

2.1.2.4 Hojas

2.1.2.5 Flores

2.1.2.6 Fruto

2.1.3 Variedades de sandía

2.1.4 Ecología del cultivo

2.1.4.1 Requerimientos climáticos

2.1.4.2 Requerimiento edáfico

2.1.4.3 Requerimiento nutricional del cultivo

2.1.5 Labores culturales para el cultivo de sandía

2.1.6 Plagas en el cultivo de sandía

2.1.7 Enfermedades en el cultivo de sandía

2.1.8 Comercialización de la sandía

2.2 Algas marinas

2.2.1 Origen de las algas marinas

2.2.2 Características de las algas marinas

2.2.3 El rendimiento y las algas marinas

2.2.4 Beneficios de las algas marinas

2.2.5 Beneficios de las Algas marinas como fuentes de enzimas

2.2.6 Efectos de las algas marinas

2.2.7 Composición química del extracto de algas marinas

2.2.8 Mecanismos de acción de las algas marinas

III. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

3.1 Definición del problema y justificación de la investigación

IV. OBJETIVOS

4.1 General

4.2 Específicos

V. HIPOTESIS

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VI. MATERIALES Y METODOS

6.1 Localización

6.2 Material experimental

6.3 Factores a estudiar

6.4 Descripción de los Tratamientos

6.5 Diseño experimental

6.6 Modelo Estadístico

6.7 Unidad Experimental

6.8 Croquis de campo

6.9 Manejo del Experimento

6.10 Variables de respuesta

6.11 Análisis de la información

6.11.1 Análisis estadístico

6.11.2 Análisis económico

VII. RESULTADOS Y DISCUSION

7.1 Análisis estadístico

7.1.1 Días a floración

7.1.2 Días a cosecha

7.1.3 Sobrevivencia de plantas

7.1.4 Rendimiento de fruto (kg/ha)

7.1.5 Número de frutos por planta

7.1.6 Contenido total de sólidos solubles (grados brix)

7.1.7 Peso medio de fruto (kg)

7.1.8 Color de la pulpa

7.2 Análisis económico

VIII. CONCLUSIONES

IX. RECOMENDACIONES

X. BIBLIOGRAFIA

XI. ANEXOS

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INDICE DE CUADROS

Página

Cuadro 1. Cuadro 2. Cuadro 3.

Cuadro 4.

Cuadro 5.

Cuadro 6.

Cuadro 7.

Cuadro 8.

Cuadro 9.

Cuadro 10.

Cuadro 11.

Cuadro 12.

Cuadro 13.

Cuadro 14.

Cuadro 15.

Abonado tipo medio para el cultivo de sandía.

Composición química de un extracto de algas marinas.

Características físicas y químicas del suelo utilizado en el experimento.

Tratamientos de extractos de algas marinas evaluados.

Análisis de varianza para la variable días a floración, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Prueba de medias Duncan (5%) para la variable días a floración, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Análisis de varianza para la variable días a cosecha, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Prueba de medias Duncan (5%) para la variable días a cosecha, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Análisis de varianza para la variable sobrevivencia de plantas, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Análisis de varianza para la variable rendimiento de fruto (kg/ha), en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Análisis de varianza para la variable número de frutos por planta, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Análisis de varianza para la variable contenido de sólidos solubles (brix), en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Análisis de varianza para la variable peso medio de fruto (kg), en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Prueba de medias Duncan (5%) para la variable peso medio de fruto, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Análisis económico para diferentes tratamientos en sandía aplicados con extracto de algas marinas. La Gomera, Escuintla, 2012.

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Cuadro 16. Cuadro 17. Cuadro 18. Cuadro 19. Cuadro 20. Cuadro 21. Cuadro 22. Cuadro 23. Cuadro 24. Cuadro 25.

Programa tradicional de fertilización para sandía. Días de floración en diferentes tratamientos en sandia, aplicados con extractos de algas marinas. Días a cosecha en diferentes tratamientos en sandia, aplicados con extractos de algas marinas. Porcentaje de sobrevivencia en diferentes tratamientos de sandía, aplicados con extractos de algas marinas. Rendimiento de fruto comercial (kh/ha) en diferentes tratamientos en sandia, aplicados con extractos de algas marinas. Numero de frutos por planta en diferentes tratamientos en sandia, aplicados con extractos de algas marinas. Contenido total de solidos solubles (brix) en diferentes tratamientos en sandia, aplicados con extractos de algas marinas Peso medio de fruto (kg) en diferentes tratamientos en sandia, aplicados con extractos de algas marinas. Programa tradicional de fertilización para sandia. Composición química del extracto de algas marinas Activador Plus.

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INDICE DE FIGURAS

Página

Figura 1. Figura 2. Figura 3. Figura 4. Figura 5. Figura 6.

Distribución de los tratamientos en el campo. Sobrevivencia de plantas, en tratamientos de aplicación de extractos de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla. 2012. Rendimiento de fruto en tratamientos de aplicación de extractos de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012. Número de frutos por planta en tratamientos de aplicación de extractos de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012. Contenido de sólidos solubles (grados Brix) en frutos provenientes de tratamientos de aplicación de extractos de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012. Resultados del análisis de suelo, muestras tomadas en la finca El Jardín.

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RESUMEN

Efecto de un extracto de algas marinas sobre el rendimiento y calidad de sandía (Citrullus lannatus Thunb) variedad Mickey Lee. La

Gomera, Escuintla

El estudio evaluó el efecto de la aplicación de cinco dosis (2, 4, 6, 8 y 10 L/ha) de un

extracto de algas marinas, sobre el rendimiento y calidad de sandía. Las dosis se

dividieron en cinco aplicaciones (5, 10, 15, 20 y 25 días después del trasplante). Se

utilizó un diseño de Bloques completos al azar con cuatro repeticiones. Las variables

respuesta fueron: días a floración, días a cosecha, sobrevivencia de plantas,

rendimiento de fruto, número de frutos por planta, contenido total de sólidos solubles,

peso medio de fruto, color de la pulpa, costos e ingresos. De acuerdo con los

resultados, la aplicación de algas marinas aumentó el ciclo del cultivo, pero en términos

prácticos esta diferencia (dos días) puede desestimarse; se observó tendencia a que la

sobrevivencia de plantas disminuyera al aumentar la dosis de extracto de algas

aplicada; la aplicación de extracto de algas marinas afectó significativamente el peso

medio de los frutos, sin embargo, esto no repercutió en el rendimiento total de frutos

comercializables; el número de frutos por planta y la calidad de los mismos no fueron

afectados por los tratamientos evaluados. Desde el punto de vista económico, el mejor

tratamiento fue el testigo absoluto. Se recomienda hacer más investigaciones utilizando

dosis menores a cuatro litros por hectárea; así mismo, ampliar el período de

investigación, considerando más de un ciclo del cultivo, para permitir que los ácidos

fúlvicos contenidos en el extracto de algas marinas ejerzan su papel de mejorador de

las propiedades del suelo.

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Effect of a seaweed extract on the yield and quality of watermelon (Citrullus lannatus Thunb), Mickey Lee variety, La Gomera, Escuintla

SUMMARY

The study evaluated the effect of the application of five doses (2, 4, 6, 8 and 10 L/ha) of

seaweed extract on the yield and quality of watermelon. The doses were divided into

five applications (5, 10, 15, 20 and 25 days after the transplant). A complete

randomized block design with four replicates was used. The response variables were:

days to flowering, days to harvest, survival of plants, fruit yield, number of fruits per

plant, total content of soluble solids, fruit average weight, pulp color, costs, and income.

According to the results, the application of seaweed increased the crop’s cycle, but in

reality this difference (two days) might be dismissed. A tendency to reduce the plants’

survival when increasing the seaweed extract dose was observed. The application of

seaweed extract significantly affected the average weight of the fruits; however, this did

not affect the total yield of fruits that can be traded. The number of fruits per plant and

quality were not affected by the evaluated treatments. Economically, the best treatment

was the absolute check. It is recommended to carry out further research using doses

lower than four liters per hectare, as well as to extend the research period, taking into

account more than one crop cycle to allow the fulvic acids contained in the seaweed

extract to act as an improving agent of the soil’s properties.

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I. INTRODUCCIÓN

La sandía (Citrullus lanatus Thunb) es una planta oriunda del centro y sur de Africa.

Pertenece a la familia Cucurbitaceae; es una planta herbácea de ciclo anual. Se

encuentra distribuida en las zonas tropicales, en toda América y en otras regiones del

mundo, donde las condiciones climáticas hacen favorable su cultivo (MAGA, 1989). Se

considera como alternativa de diversificación para las empresas exportadoras de la

zona.

En Guatemala el cultivo de la sandía se ha ido ampliando a gran escala, siendo una de

las limitantes en la producción, la época lluviosa. Dicha limitante es determinada por la

distribución de las precipitaciones y la retención de humedad en el suelo, ya que

afectan la calidad del fruto en función del peso y la concentración de sólidos solubles.

En los sistemas agrícolas que se practican en la aldea Sipacate, La Gomera, Escuintla,

el cultivo de sandía es un componente importante, dado a que el producto cosechado

se comercializa en su totalidad, constituyendo así una fuente de ingreso a las familias

del lugar. Gran parte de la producción es exportado a El Salvador y otra se distribuye

en el mercado nacional.

Para lograr mayor eficiencia en la producción se propuso evaluar la aplicación de

productos que puedan actuar como estimuladores de la absorción de nutrientes. Por lo

tanto, en la presente investigación, se evaluó el efecto de un extracto de algas marinas

(Ascophyllum nodosum) sobre el rendimiento y calidad de sandía, tomando en cuenta el

interés de personas individuales y/o empresas que se dedican a la producción de éste

cultivo y que están interesadas en mejorar su rentabilidad. El trabajo se realizó en la

finca El Jardín, ubicada en la aldea Sipacate, municipio de La Gomera, Escuintla.

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II. MARCO TEORICO

2.1 Cultivo de la sandia (C. lanatus, Cucurbitaceae)

2.1.1 Generalidades del cultivo de sandía

La sandía (C. lanatus., Cucurbitaceae), es una planta hortícola perteneciente a la

familia de las cucurbitáceas. Son plantas anuales, con periodos vegetativos de 75 a 90

días, de abundante ramificación y de buen vigor. Su hábito de crecimiento es de guías

rastreras con zarcillos en los extremos, que a su vez se encuentran cubiertos de

pubescencia. Sus frutos adquieren diferentes formas y colores dependiendo de la

variedad a cultivar. Estos pueden ser, esféricos, elipsoidales o cilíndricos, de pulpa roja,

amarilla o blanca (Bolaños, 1998).

La familia de las cucurbitáceas ha creado cierta confusión acerca de su origen, pero

Casseres (1976), afirma que el centro de origen de la sandía (C.

lanatus.,Cucurbitaceae), pertenece al sur de Africa.

Dentro del género Citrullus, se reconocen cuatro especies principales cultivadas: C.

lanatus, C. colocynthis, C. ecirrhosus y C. naudinianus. Según Bolaños (1998), las

últimas tres especies son de poco valor comercial, porque sus frutos son pequeños, y

las especies C. colocynthis y C. ecirrhosus, son de sabor muy amargo, por lo que se

descarta su cultivo debido a estas características no deseadas.

2.1.2 Morfología de la sandía

2.1.2.1 Planta

La sandía es una planta anual, herbácea, de porte rastrero o trepador de la cual se

aprovechan sus frutos (MAGA, 1989).

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2.1.2.2 Sistema radicular

El sistema radicular es muy ramificado. La raíz principal profunda y raíces secundarias

distribuidas superficialmente. Actualmente este órgano carece de importancia, ya que

alrededor del 95 % de la sandía se cultiva injertada sobre patrón de C. máxima x C.

moschata, totalmente afín con la sandía. Este híbrido interespecífico se introdujo en la

provincia de Almería a mediados de los 80 para resolver los problemas de fusariosis

(agente causal Fusarium oxysporum f. sp. niveum), tras comprobar que la introducción

de genes de resistencia a esta enfermedad en algunas variedades comerciales no

aseguraba una producción normal en suelos muy contaminados. Adicionalmente, dicho

patrón ofrece resistencia a Verticillium y tolerancia a Pythium y nematodos, confiriendo

gran vigor a la planta y un potente sistema radicular con raíces suberificadas de gran

tamaño (MAGA, 1989).

2.1.2.3 Tallos

De desarrollo rastrero. En estado de 5 a 8 hojas bien desarrolladas, el tallo principal

emite las brotaciones de segundo orden a partir de las axilas de las hojas. En las

brotaciones secundarias se inician las terciarias y así sucesivamente, de forma que la

planta llega a cubrir 4 a 5 metros cuadrados. Se trata de tallos herbáceos de color

verde, recubiertos de pilosidad que se desarrollan de forma rastrera, pudiendo trepar

debido a la presencia de zarcillos bífidos o trífidos, y alcanzan una longitud de 4 a 6

metros (Reche, 1998).

2.1.2.4 Hojas

Pecioladas, pinnado-partidas, divididas en 3 a 5 lóbulos, que a su vez se dividen en

segmentos redondeados, presentando profundas hendiduras que no llegan al nervio

principal. El haz es suave al tacto y el envés muy áspero y con nervaciones muy

pronunciadas. El nervio principal se ramifica en nervios secundarios que se subdividen

para dirigirse a los últimos segmentos de la hoja, imitando la palma de la mano (Reche,

1998).

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2.1.2.5 Flores

De color amarillo, solitarias, pedunculadas y axilares, atrayendo a los insectos por su

color, aroma y néctar (flores entomógamas), de forma que la polinización es entomófila.

La corola, de simetría regular o actinomorfa, está formada por 5 pétalos unidos en su

base. El cáliz está constituido por sépalos libres (dialisépalo o corisépalo) de color

verde. Existen dos tipos de flores: masculinas o estaminadas y femeninas o pistiladas,

coexistiendo los dos sexos en una misma planta, pero en flores distintas (flores

unisexuales). Las flores masculinas disponen de 8 estambres que forman 4 grupos

soldados por sus filamentos (Reche, 1998).

Las flores femeninas poseen estambres rudimentarios y un ovario ínfero velloso y

ovoide que se asemeja en su primer estadio a una sandía del tamaño de un hueso de

aceituna (fruto incipiente), por lo que resulta fácil diferenciar entre flores masculinas y

femeninas. Estas últimas aparecen tanto en el brote principal como en los secundarios

y terciarios, con la primera flor en la axila de la séptima a la décimo primera hoja del

brote principal. Existe una correlación entre el número de tubos polínicos germinados y

el tamaño del fruto (Reche, 1998).

2.1.2.6 Fruto

Corresponde a una baya globosa u oblonga en pepónide, formada por 3 carpelos

fusionados con receptáculo adherido, que dan origen al pericarpo. El ovario presenta

placentación central, con numerosos óvulos que darán origen a las semillas. Su peso

oscila entre los 2 y los 20 kilogramos. El color de la corteza es variable, pudiendo

aparecer uniforme (verde oscuro, verde claro o amarillo) o con franjas de color

amarillento, grisáceo o verde claro sobre fondos de diversas tonalidades verdes. La

pulpa también presenta diferentes colores (rojo, rosado o amarillo) o mostrar tamaños y

colores variables (negro, marrón o blanco), dependiendo del cultivar (Reche, 1998).

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2.1.3 Variedades de sandía

Según Bolaños (1998), se reconocen dos tipos de sandía: las americanas, de frutos

largos, grandes y con cáscara gruesa y las variedades japonesas de frutos redondos,

pequeños y de cáscara delgada. En el grupo de las variedades americanas destaca la

‘Charlestón Gray’, que se cultivó mucho en Costa Rica y las variedades

japonesas,‘Crismón Sweet’, ’Sugar Baby’ y ‘Myckylee’, que es la variedad que se cultiva

actualmente.

2.1.4 Ecología del cultivo

El cultivo de la sandía se adapta muy bien a alturas comprendidas entre los 0 y 900

msnm, aunque su desarrollo se obtiene mejor cuando se cultiva entre los 25 a 150

msnm. La mejor época de siembra se sitúa en los meses cuando hay menos humedad

relativa, siendo estos fuera de la estación lluviosa, Octubre a Enero, ya que el cultivo no

tolera los encharcamientos, por ser susceptible a enfermedades fungosas (Pérez,

1990).

2.1.4.1 Requerimientos climáticos

El cultivo de sandía a diferencia del melón, es menos exigente en temperatura. Siendo

los cultivares más exigentes que los normales. La temperatura óptima que requiere el

cultivo está comprendida entre los 25º a 28º C para su etapa de desarrollo, y para su

floración requiere una temperatura óptima de 18º a 20º C. Durante la formación y

madurez del fruto requiere de 23º a 28º C. Cuando las temperaturas diferencian entre el

día y la noche en un rango de 20º a 30º C, causan trastornos fisiológicos a las plantas.

En algunos casos, se abre el cuello, los tallos y el polen producido no es viable, la

sandía es de clima cálido y no tolera las heladas, la humedad relativa óptima para la

sandía se sitúa entre el 60% y el 80% (Infoagro, 2003).

2.1.4.2 Requerimiento edáfico

El cultivo de la sandía no es muy exigente en calidad de suelos, aunque es mejor

plantarla en suelos planos, profundos, drenados, ricos en materia orgánica (Infoagro,

2003). Se adapta muy bien a suelos de textura franco-arcillosa pero prefiere suelos con

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textura franco-arenosa, con un pH comprendido entre 6 a 7, no soporta la salinidad

(Ruano y Trescastro, 1990).

2.1.4.3 Requerimiento nutricional del cultivo

Bolaños (1998), recomienda aplicar 100 kg N/ha, 20 kg/ha de P2O5 y 30 kg/ha de K2O.

Por supuesto que el volumen de fertilizante depende de la densidad de siembra y el

grado de fertilidad del suelo. Miguel (1997), sugiere para obtener frutas de buena

calidad y con un buen porcentaje de grados brix, un abonado como el descrito en el

cuadro 1.

Cuadro 1. Abonado tipo medio para el cultivo de sandía.

Fertilizante Dosis

De fondo: Gallinaza Químico 15-15-15

6 t/ha 500 kg/ha

Sulfato de amonio 200 kg/ha

Con los primeros frutos cuajados: Nitrato de potasio Nitrato de magnesio

100-150 kg/ha 50-100 kg/ha

Después de la primera recolección: Fosfato biamonico

100-150 kg/ha

Después de la tercera recolección: Nitrato de potasio

100-150 kg/ha

Fuente: Miguel, 1997.

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Bertsch-Hernández y Ramírez Castrillo (1997), evaluaron las curvas de absorción de

nutrimentos en melón (Cucumis melo) y sandía (Citrullus lanatus), encontrando que

para obtener una producción de 44 toneladas métricas de sandía por hectárea se

consumen del suelo 108 kg Ca, 89 kg K, 57 kg N, 23 kg Mg y 8 kg P; sin embargo, los

elementos que más se consumen en el fruto son: potasio 56% y fósforo 50%. En

sandía, los momentos de máxima absorción coinciden con la emisión de guías e inicio

de floración, 33-40 días después de la siembra (dds) y después de la máxima floración

e inicio de llenado de frutos (45-50 dds). El 60% del N se consume antes de los 40 dds;

el P sufre una absorción más gradual y el K se consume más tardíamente que en melón

(a los 45 dds sólo se ha consumido el 35%).

2.1.5 Labores culturales para el cultivo de sandía

Preparación del terreno

El terreno se prepara con anticipación a la siembra utilizando una aradura profunda y

seguidamente dos pasadas de rastra en forma cruzada. Dependiendo del tipo de suelo,

la densidad de siembra va a diferenciar, pero regularmente se siembra de 1.8 a 2.0 m

entre surcos y 0.90 a 1.25 m entre posturas, colocando de 2 a 3 plantas, se utilizan de

0.45 a 0.5 kg/ha de semilla (Pérez, 1990).

Temporada de cultivo

La semilla de sandía germina mejor cuando la temperatura del suelo se encuentra en

15º C mínima y la óptima de 25º C. Para la fase vegetativa la humedad relativa óptima

se sitúa entre 60% y el 80%, siendo un factor muy determinante para su floración

(Infoagro, 2003).

Las actividades para sembrar sandía son variables, dependiendo de la ubicación del

lugar, existen algunas áreas que se pueden sembrar con humedad residual en los

meses de noviembre a diciembre, luego áreas de riego, el cual puede ser por gravedad

o por goteo, que se realiza durante los meses de época seca, que comprende de

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diciembre a abril y la sandía que se siembra durante la época lluviosa que va de los

meses de mayo a septiembre (MAGA, 1989).

Poda

Esta operación se realiza de modo optativo, según el marco elegido, ya que se han

apreciado mejores rendimientos en la producción de sandías podadas. Tiene como

finalidad controlar la forma en que se desarrolla la planta, eliminando brotes principales,

para adelantar la brotación y el crecimiento de los secundarios. Consiste en eliminar el

brote principal cuando presenta entre 5 a 6 hojas, dejando desarrollar de 4 a 5 brotes

secundarios que parten de las axilas de las mismas, confiriendo una formación más

redonda a la planta (Reche, 1998).

Polinización

Normalmente si las condiciones ambientales son favorables es aconsejable el empleo

de abejas (Aphis melífera) como insectos polinizadores, ya que con el empleo de

hormonas los resultados son imprevisibles (p. ej. malformación de frutos, etc), debido a

que son muchos los factores de cultivo y ambientales que influyen en la acción

hormonal. El número de colmenas puede variar de 2 a 4 por hectárea, e incluso puede

ser superior, dependiendo del marco de plantación, del estado vegetativo del cultivo y

de la climatología del lugar de plantación. Cuando se cultiva sandía apirena (triploide)

se necesaria la utilización de sandía diploide como polinizadora, ya que el polen de la

primera es estéril. Se buscan asociaciones en las que coincidan las floraciones de la

polinizadora y polinizada en relación de 30 – 40% de polinizadora + 60 – 70% de

polinizada o 25 – 33% de polinizadora + 67 – 75% de polinizada (Reche, 1998).

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Recolección

Generalmente esta operación es llevada a cabo por especialistas, guiándose por las

siguientes características externas (Reche, 1998):

a. El zarcillo del pedúnculo del fruto debe estar completamente seco, o la primera

hoja situada por encima del fruto estar marchita.

b. Al golpear el fruto con los dedos debe producir un sonido sordo.

c. Al oprimir el fruto entre las manos se oye un sonido claro como si se

resquebrajase interiormente.

d. Al rayar la piel con las uñas, esta se separa fácilmente.

e. La cama del fruto toma un color amarillo marfil.

f. La capa cerosa (pruína) que hay sobre la piel del fruto ha desaparecido.

g. Pérdida del fruto de 35 – 40% de su peso máximo.

2.1.6 Plagas en el cultivo de sandía

Según Casseres (1976), un grupo numeroso de insectos causan daños considerables al

cultivo de la sandía. Los de importancia económica son: mosca blanca (Bemissia

tabaci), los pulgones de los géneros Aphis y Myzus, nemátodos del género

Meloidogyne. Para su control es necesario implementar un programa fitosanitario con

métodos preventivos y técnicas culturales apropiadas para no crear resistencia a los

pesticidas.

Araña roja: Tetranychus urticae, (Acarina: Tetranychidae).

Esta plaga causa daños de consideración al cultivo; generalmente se desarrolla en el

envés de las hojas causando decoloraciones, como manchas amarillentas que se

pueden apreciar en sus primeros síntomas. Cuando se incrementa su población es

notoria la desecación y defoliación del cultivo, sus ataques más graves se producen en

los primeros estados fenológicos, las temperaturas elevadas y la escasa humedad

relativa favorecen el desarrollo de la plaga (Infoagro, 2003).

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Mosca blanca: Bemisia tabaci, (Homóptera: Aleyrodidae) y Trialeurodes vaporariorun,

(Homóptera: Aleyrodidae).

Las partes jóvenes de las plantas son sensibles para ser colonizadas por los adultos,

estos a su vez ovipositan en el envés de las hojas, de esta manera emergen las

primeras larvas, las cuales pasan por tres estadios larvarios y uno de pupa. Los daños

directos los causan los adultos y las larvas alimentarse, absorbiendo la savia de las

hojas, produciendo un color amarillamiento y debilitamiento en la planta. Otro daño de

consideración es la transmisión de virus del amarillamiento en cucurbitáceas producidá

por la especie Trialeurodes vaporariorun, mientras tanto Bemisia tabaci, es

potencialmente transmisora de un mayor número de virus en cultivos hortícolas y en la

actualidad actúa como transmisora del virus del rizado amarillo de tomate (TYLCV),

conocido como el “virus de la cuchara” (Infoagro, 2003).

Pulgón: Aphis gossypii, (Sulzer) (Homóptera: Aphidae) y Myzus persicae (Glover)

(Homóptera: Aphidae).

Estas especies de pulgón son las más comunes y abundantes. Presentan polimorfismo,

con hembras aladas y ápteras de reproducción vivípara. Las formas áptera del primero

presentan sifones negros en el cuerpo verde o amarillento, mientras que las de Myzus

spp. son completamente de color verde, aunque en ocasiones se encuentran pardas o

rosadas. Estos insectos forman colonias y se distribuyen en focos, los cuales se

dispersan generalmente en el verano mediante sus hembras aladas (Infoagro, 2003).

Minadores de hojas: Liriomyza spp., (Burgess) (Díptera: Agromyzidae).

Las hembras adultas ovipositan dentro del tejido de las hojas más jóvenes,

generalmente en el haz, donde eclosionan las larvas y estas a su vez se alimentan del

tejido parenquimatoso, ocasionando galerías en casos visibles y estas en ocasiones

son diferentes, aunque no siempre distinguible. Finalizado el desarrollo larvario, estas

salen de las hojas para pupar, en el suelo o en las hojas para darle lugar

posteriormente a los adultos (Infoagro, 2003).

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Trips: Frankliniella occidentales, (pergande) (Thysanoptera: Thripidae)

Los adultos colonizan los cultivos depositando sus huevos dentro de los tejidos

vegetales, en las hojas, frutos, pero principalmente en las flores, ya que son (florícolas),

donde se pueden encontrar los niveles más altos de población de adultos y larvas. Los

daños directos que producen en el cultivo de sandía, principalmente porque se

alimentan sobre todo en el envés de las hojas, dejando un aspecto plateado en los

órganos que luego se necrosan. Los síntomas que provocan estos insectos son más

visibles en los frutos, sobre todo en pimientos y éstos cuando son más extensos en

hojas. El daño indirecto es el que acusa mayor importancia y básicamente se debe a la

transmisión del Virus del bronceado del tomate (TSWV), este afecta a varios cultivos

pero principalmente a pimiento, tomate, berenjena y sandia (Infoagro, 2006).

Orugas: Spodoptera spp. (Lepidoptera: Noctuidae), Heliothis spp. (Lepidoptera:

Noctuidae), Autographa gamma (L.) (Lepidoptera: Noctuidae), Chrysodeixis chalsites

(Esper) (Lepidoptera: Noctuidae).

Estas especies se diferencian en sus estados larvarios, se puede apreciar el número de

falsas patas abdominales (5 en Spodoptera spp. y Heliothis spp. y 2 en Autographa y

Chrysodeixis), o en la forma de desplazarse en Autographa y Chrysodeixis arquean el

cuerpo. La presencia de setas “pelos” también es notorio en la superficie del cuerpo de

la larva de Heliothis spp. o la coloración marrón oscuro. La biología de estas especies

es bastante similar, pasando por estados de huevo, 5-6 estadios larvarios y pupa. Los

huevos son depositados en las hojas, preferiblemente en el envés, los daños son

causados por las larvas al alimentarse. En Spodoptera y Heliothis la pupa se realiza en

el suelo y en Chysodeixis spp. y Autographa spp. en las hojas. Los adultos son polillas

de hábitos nocturnos y crepusculares, en la vegetación los daños son más frecuentes

por las especies de Spodoptera spp. y Chrysodixis spp. y los daños ocasionados a los

frutos Spodoptera spp. y Heliothis spp, también ocasionan daños a los tallos,

provocándoles cegaduras a las plantas (Infoagro, 2003).

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Nematodos (C. lanatus.,Cucurbitáceae). Meloidogyne spp. (Tylenchida: Heteroderidae)

Nematodos, es el nombre común de cualquier miembro de un filo de gusanos no

segmentados, pueden ser terrestres, de agua dulce o marinos. Los gusanos cilíndricos

están distribuidos por casi todo el mundo y son muy numerosos en las capas

superficiales del suelo. Muchos son dañinos para la economía y para la salud, ya que

viven como parásitos de plantas y animales, incluidos los seres humanos. Las

infecciones por gusanos cilíndricos son frecuentes y normalmente pasan inadvertidas;

sin embargo, algunas especies causan enfermedades graves. Los nematodos afectan a

una gran gama de cultivos hortícolas, especialmente al cultivo de sandía lo ataca el

género Meloidogyne spp. Producen los típicos nódulos en las raíces que se le dan el

nombre de “papitas” penetran en las raíces desde el suelo. Las hembras al ser

fecundadas se llenan de huevos tomando un aspecto globoso dentro de las raices

(Infoagro, 2003).

Estos organismos atrofian el sistema radicular de la planta dando lugar a la formación

de nódulos tipo “rosario”, estos daños producen la obstrucción de vasos e impiden la

absorción de agua y nutrientes a consecuencia de los daños producidos, aunando a

estos, decoloración en la planta, merma en su crecimiento y además los nematodos

interaccionan con otros organismos patógenos, facilitando la penetración de bacterias y

hongos por las heridas que ocasionan (Miguel, 1997).

2.1.7 Enfermedades en el cultivo de sandía

Las cucurbitáceas se ven afectadas por una diversidad de enfermedades producidas

por hongos fitopatógenos como Fusarium sp., mildius, enfermedades vasculares y no

vasculares, que causan daños de consideración económica. Para evitarlas se debe

hacer una rotación de cultivos, sembrar variedades resistentes y utilizar fungicidas

preventivos y curativos (Infoagro, 2003).

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“Ceniza” u oidio de las cucurbitáceas

Esta enfermedad es producida por el hongo Sphaerotheca fuliginea, se manifiesta por

medio de manchas polvorientas de color blanco en la superficie de las hojas (haz y

envés),afecta a los tallos y pecíolos e incluso a frutos en ataques muy fuertes. Las

hojas y los tallos afectados presentan un color amarillento y se secan totalmente

(Infagro 2003).

Marchitamiento por fusarium

Como en el melón, el Fusarium spp. en la sandía produce una enfermedad vascular,

que penetra al suelo a través las raíces el cual se extiende rápidamente a través del

xilema, produciendo un color marrón en los vasos conductores desde las raíces hasta el

área foliar. El crecimiento de la planta se paraliza, los frutos maduran prematuramente y

la planta puede llegar a morir (Miguel, 1997).

Monera y Olmos (2003), citan que los daños de Fusariun spp., son aún más

problemáticas cuando las condiciones ambientales le favorecen (temperaturas

comprendidas entre 19 y 28 °C). La presencia de nematodos en el suelo agrava la

enfermedad, por el debilitamiento primario que producen.

Estudios recientes según U.S.D.A. (2005), en la región agrícola de la ciudad de

Oklahoma se realizaron injertos de calabaza con sandía obteniendo magníficos

resultados de resistencia genética a tres razas de Fusarium spp., así mismo también,

en la región de Choluteca, Honduras, según La Secretaria de Recurso Natural y

Ambiente (2005), de ese país por medio de la empresa SURAGRO, realizó estudios de

Injertos de sandía Híbrido Triple con el porta injertos RS888, como alternativa al uso de

bromuro de metilo, obteniendo magníficos resultados para el control de (Fusariun

oxisporun niveum), de esa misma manera reduciendo el uso de bromuro de metilo.

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Verticillium dahliae Kleb

Produce también marchitamiento en la planta como el Fusarium spp. Esta enfermedad

se encuentra más frecuente a temperaturas bajas. Tanto el Fusarium spp, como el

Verticillium son las que más se encuentran distribuidas geográficamente. Este hongo es

extraordinariamente polífago, pudiendo desarrollarse sobre centenares de huéspedes.

Ocasiona a la planta un marchitamiento y reblandecimiento a las hojas, produce

además necrosis internerviales en las hojas, este progresa de abajo hacia arriba sobre

la planta (Miguel, 1997).

Una alternativa tecnológica para el control de este patógeno es la técnica de injertación

de sandía a través de híbridos de cucúrbitas (C. maxima x C. moschata) de distintas

clases comerciales, resistentes a Verticillium, tolerantes a Phytium y nematodos

(Monera y Olmos, 2003).

Pseudomonas solanacearum

Esta es una enfermedad bacteriana importante, sobre todo en los países tropicales.

Pseudomonas es también vascular y se evoluciona en la planta muy rápido. Al principio

se manifiestan marchitamientos unilaterales de las hojas y aparición sobre el tallo,

raíces y afecta grandemente a los frutos dándoles un aspecto de pecas (Monera y

Olmos, 2003).

2.1.8 Comercialización de la sandía

La comercialización de las variedades de tamaño pequeño-mediano se realiza en cajas

con 4 a 8 frutos. En las variedades de tamaño grande la comercialización se realiza a

granel en palets. Las perspectivas de futuro en cuanto a la comercialización radica en el

tamaño del fruto, ya que éste tiene el problema de ser demasiado grande para los

tamaños familiares de la sociedad europea, los cuales se están reduciendo

considerablemente. Es por ello que en el futuro la tendencia probablemente sea hacia

frutos de tamaño pequeño (inferior a 2 kg). Probablemente también aumente la cuota

de mercado para los cultivares sin semillas, y se tienda a la diversificación de tipos y al

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desarrollo de cultivares más uniformes en cuanto a las características organolépticas

(Reche, 1998).

2.2 Algas marinas

Las algas marinas constituyen una fuente importante en la nutrición de las plantas ya

que éstas aportan una gran cantidad de nutrientes (elementos mayores y menores),

que son fundamentales para el desarrollo de raíces y crecimiento vegetativo en las

plantas (Canales, 1997).

2.2.1 Origen de las algas marinas

Se estima que las algas marinas aparecieron en este planeta Tierra, unos mil millones

de años antes que las plantas terrestres. Las algas y otros microorganismos que con

ellas viven asociados aparecieron antes. Tanto las macro como las micro algas, son

antecesoras de las plantas terrestres; se ha logrado que los productos derivados de las

primeras, con sus acciones y efectos ayuden a las segundas en su supervivencia,

cuando se aplican al suelo. Hoy en día el término alga comprende un grupo muy

heterogéneo de organismos vegetales marinos (50,000 aproximadamente) que se

caracterizan por realizar fotosíntesis (Canales, 1997).

2.2.2 Características de las algas marinas

Las algas marinas son plantas no vasculares, que se caracterizan por realizar

fotosíntesis, es decir el proceso que convierte la energía lumínica en energía química

necesaria para la síntesis de moléculas orgánicas. Los ficólogos definen a las algas

como organismos fotosintéticos con clorofila A y que tienen estructuras reproductoras

simples. Son organismos pluricelulares que viven a lo largo de los litorales marinos, y

se diferencian de las plantas superiores en que no poseen raíces, tallos, hojas, ni

sistemas vasculares verdaderos. La forma de anclaje a los objetos sólidos es mediante

el órgano llamado hapterio o háptero, y lo hacen sobre distintos substratos como rocas

(epilíticas), sobre otras plantas (epífitas), e incluso sobre el cuerpo de animales

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(epizoicas). Su alimentación la realiza mediante la fotosíntesis, absorbiendo los

nutrientes directamente del agua, y muchas de ellas deben resignarse a vivir en

profundidades a donde llegue la luz solar. Las algas marinas se aplican en la

agricultura; en forma de harina, de extractos de polvos solubles, y últimamente como

polvo coloidal. Las algas marinas y/o sus derivados mejoran el suelo y vigorizan las

plantas, incrementando los rendimientos y mejorando la calidad de las cosechas

(Canales, 1998).

2.2.3 El rendimiento y las algas marinas

Martínez (2005), evaluó la aplicación de extractos de algas marinas (algas-enzimas) en

banano, utilizando dosis de 2 L/ha aplicados al suelo y 0.05 L/ha aplicados vía foliar. El

autor encontró mejores resultados en rendimiento de fruta de primera y de segunda

con aplicaciones al suelo. En relación a las dosis, el tratamiento con 2 L/ha de alga-

enzimas al suelo produjo mayores diámetros subasal y apical que con el tratamiento

aplicado foliarmente. Concluyó que la aplicación al suelo proporcionó gran cantidad de

elementos nutricionales y oligoelementos importantes para el desarrollo del tallo, hojas

y de un buen sistema de raíces, lo que favoreció el anclaje de las plantas y una mejor

absorción y asimilación de los elementos disponibles en el suelo.

Norrie (2002), realizó investigaciones en Canadá, en campos abiertos y en

invernaderos con diferentes cultivos, obteniendo resultados exitosos con la aplicación

de extractos de algas marinas. Cultivos de tomates en campo y en invernadero

mostraron consistentemente mejor rendimiento en comparación con los terrenos

control no tratados con extracto. Los resultados positivos en tomates, combinados con

los informes de cultivadores, han confirmado un incremento dramático en el uso de

productos de algas marinas por cultivadores mayores de tomates, usando aplicaciones

foliares y en el suelo (fertirrigación).

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Las pruebas con sandías demostraron un incremento significativo en el número y el

peso de las frutas. También fue de interés encontrar que los extractos de algas

marinas favorecen el establecimiento de los trasplantes tempranos de las variedades

juveniles de melón (Norrie, 2002).

Similares resultados fueron encontrados en otros cultivos como papas, donde el

rendimiento se incrementó en 20% respecto a áreas de control. En uvas para vino, se

encontraran incrementos en la acidez total y también en los azúcares totales, así como

incrementos en el rendimiento que variaron entre el 25 al 60%, y un mejoramiento

significante en la calidad del mosto (el zumo de las uvas sin fermentar). Como con los

tomates y papas, los pimientos también reaccionaron bien a los tratamientos con el

extracto de algas marinas. Las pruebas replicadas con pimientos verdes mostraron un

incremento en el número de frutas y en el tonelaje total. Por supuesto, este incremento

en el rendimiento comercial resultó en un incremento promedio del 37% en los

beneficios económicos para el cultivador. En las zanahorias, Bolero, Nanda y Maestro

se obtuvo un incremento del 1.9, 7.2, y 20% respectivamente en el largo y el diámetro

de las mismas (Norrie, 2002).

2.2.4 Beneficios de las algas marinas

Mayor eficiencia de nutrientes: Maximiza la asimilación de la planta y la utilización de

los insumos en el manejo del cultivo. Mejor nutrición foliar. Aumenta la síntesis proteica

y las enzimas de la planta para una óptima producción fotosintética y respiración.

Promueve la salud de las hojas al aumentar la resistencia a la tensión. Promueve un

parénquima foliar saludable, lo que sustenta un desarrollo radicular sano (Canales,

1998).

Mayor calidad de la planta: Facilita la producción de los azúcares necesarios,

proteínas y ácidos orgánicos creando las condiciones para el crecimiento y desarrollo

saludable de la planta. Ayuda a estabilizar las membranas celulares, proteínas y

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clorofila en la planta retardando de ese modo el envejecimiento o la senescencia. Mayor

desarrollo radicular: Promueve el desarrollo de raíces laterales. Aumenta el crecimiento

radicular, creando un sistema radicular bien desarrollado, lo que conduce a un

parénquima foliar saludable (Canales, 1998).

Mayor resistencia a la tensión: Aumenta la habilidad de la planta para producir

proteínas defensoras. Estimula la producción de fitoalexinas, compuestos conocidos

para combatir las infecciones fungosas. Ayuda a generar compuestos de peroxidasa,

conocidos por fortificar a las plantas contra plagas y enfermedades. Aumenta la

habilidad de la planta para tolerar y recuperarse de la tensión ambiental (Canales,

1998).

2.2.5 Beneficios de las Algas marinas como fuentes de enzimas

Canales (2001), en la producción de tomate, papa, chile y tomatillo, en México, utilizó

productos derivados de algas marinas. El diseño de proceso y búsqueda de dosis tanto

al suelo como foliar de éstos productos, se llevaron a prueba y error, teniendo como

base los conocimientos fisiológicos en el aspecto de nutrición de cultivos y

comportamiento de los nutrientes en diferentes tipos de suelo y diferentes condiciones

de humedad.

Aitken y Senn (1965), Blaine, William, Ian y Johannes (1990), Blunden (1973) y Burns

(1978), mencionan que los derivados de algas mejoran el suelo. Nicolás (1995), reporta

incremento en la materia orgánica. Tinajero (1993), encontró que en cilantro los

rendimientos fueron iguales al aplicar al suelo 2 L/ha de extracto de algas marinas

(Algaenzims MR) ó 20 t/ha de estiércol bovino.

En chile pimiento el enrojecimiento se tardó 59 días en lugar de 26, fue significativo

(Blunden, Jones y Passan, 1978). Se incrementó la utilización de B, Cu, Fe, Mn y Zn

(Lynn, 1972). En tomate se incrementó la resistencia a las heladas (Senn, 1987). Se

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incrementó el contenido de N, P, K, Mg y Fe (Blunden y Wildgoose, 1977 y Booth,

1966).

Blunden (1973), menciona que en tomate obtuvo un incremento en cosecha del 20%.

En chile pimiento el incremento fue del 26.6%; los chiles del área tratada tuvieron más

vida de anaquel que los del testigo. En papa el incremento en cosecha fue del 36% y

dio más papas de primera.

Alvarez (2000), estudió una formulación (Rootinn), producto que es a base de un

extracto de algas marinas (Algaenzims) en la producción de tomate (Lycopersicon

esculentum), var. Río Grande, bajo un diseño experimental de bloques al azar y dos

sistemas de producción: acolchado con plástico (A) y convencional (C); con diez

tratamientos y dos repeticiones. Duración del experimento: abril a agosto del 2000. El

mejor tratamiento fue el de acolchado más Algaenzims MR con 21 t/ha más que el

testigo; o sea 70% más, con el 70% de fruta de primera. Los tratamientos acolchado y

convencional con Algaenzims MR fueron sensiblemente iguales.

Martínez (1995), reporta que en un estudio hecho en el Instituto Tecnológico y de

Estudios Superiores de Monterrey, las papas del cultivo tratado con ALGA ENZIMS MR,

resultaron en su análisis con el 9.3% de proteínas y, las papas del testigo, con el 6.1%.

En Guatemala la empresa AGRICISA ha realizado pruebas preliminares sobre el uso

del producto Activador Plus en el cultivo de la sandía. Los trabajos fueron ejecutados

en la finca Flor de Palma, del municipio de Guazacapán, Santa Rosa. En lotes

comerciales se aplicaron dosis de 4 y 6 litros por 7000 m2. Las áreas con aplicación del

Activador Plus mostraron tendencia a incrementar el calibre de los frutos.

Económicamente presentó mayor ventaja la dosis de 4 litros (Comunicación personal

con el Ingeniero Daniel Rivera).

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2.2.6 Efectos de las algas marinas

Entre los principales efectos de las algas marinas, Canales (2000), menciona:

a) Fijan el nitrógeno del aire aun en las no leguminosas sin parasitar.

b) Incrementan la materia orgánica y la vida microbiana, hace suelos porosos,

descompacta, baja los carbonatos, da cuerpo a los suelos livianos y los hace más

trabajables.

c) Mejora la estructura, ajusta el pH, propicia la desalinización, desmineraliza los

suelos degradados, los desintoxica.

d) Moviliza los nutrimentos (iones). Ayuda en la absorción de nutrimentos por las

plantas, en sus funciones metabólicas y refuerza su sistema alimentario e

inmunitario. Unas 20 sustancias cuyo efecto son similares a los reguladores de

crecimiento de las plantas (fitohormonas naturales), algunos en más de 1000 ppm.

Ayuda al desarrollo de las plantas, las vigoriza. Incrementa las proteínas, así como

los grados brix y aceites.

e) Ahorra agroquímicos y nutrimentos; todos los elementos mayores y menores y todos

los elementos traza que ocurren en forma metabólica tal, que son fácilmente

tomados por las plantas. Complejo donde cada elemento tiene gran importancia en

el desarrollo de las plantas, conforme a la ley del mínimo.

f) Ahorra fertilizantes: Mucílagos, polisacáridos, saponinas, azúcares, compuestos de

ácidos orgánicos y quelatantes. actúan como agentes, coadyuvantes, adherentes,

dispersantes, surfactantes y penetrantes.

2.2.7 Composición química del extracto de algas marinas:

En el cuadro 2. Se presenta la composición química promedio de las algas marinas

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Cuadro 2. Composición química de un extracto de algas marinas.

Elementos mg/l (ppm)

Potasio (K) Estroncio (Sr) Nitrógeno(N) Silicio (Si) Sodio (Na) Cobalto (Co) Magnesio (Mg) Bario (Ba) Fósforo (P) Antimonio (Sb) Calcio (Ca) Estaño (Sn) Zinc (Zn) Plata (Ag) Hierro (Fe) Talio (Ta) Cobre (Cu) Plomo (Pb) Manganeso (Mn) Níquel (Ni) Aluminio (Al) Cadmio (Cd) Molibdeno (Mo)

14800 22.70 14500 4 13660 20.75 1320 0.20 750 < 0.10 620 < 0.10 505 < 0.10 440 < 0.10 174 < 0.05 72 < 0.05 23.50 < 0.01 < 0.01

Fuente: Canales, 1998.

2.2.8 Mecanismos de acción de las algas marinas

Los mecanismos de acción de las algas pueden ser observados y estudiados, tanto a

nivel de suelo como a nivel de las plantas (Norrie, 2002).

a) Suelo: da equilibrio textural (suelo franco) y mejora la estructura. Al aplicarse el

extracto de algas marinas al suelo, las enzimas que emiten los microorganismos actúan

sobre sus componentes físicos (arcilla, arena y limo), llevándolos a un equilibrio

textural, descompactando los suelos y dándole cuerpo a los suelos livianos y mejorando

su estructura. Al hacerlos porosos facilita la penetración de las raíces y la difusión del

agua para las plantas. Las enzimas de referencia actúan sobre los componentes

químicos del suelo, solubilizándolos y al actuar sobre las arcillas silíceas, desbloquean

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los elementos; en ambos casos, pone los nutrimentos del suelo a disposición de las

plantas. Igualmente, hace más aprovechables los fertilizantes (Canales, 2000).

b) Planta: Al aplicar foliarmente el extracto de algas marinas, las enzimas que conlleva

son absorbidas por las plantas como un escopetazo de unas 50,000 enzimas. La

naturaleza de la planta, con su infinita sabiduría, trasloca cada enzima especifica a la

parte de su morfología donde hace falta su acción, reforzando así, su sistema

enzimático, su sistema alimentario y su sistema inmunitario; en general su metabolismo

(Norrie, 2002).

c) Acciones complementarias. La mejor formuladora es la naturaleza. Las algas

marinas contienen todos los elementos mayores, todos los elementos menores y todos

los elementos traza que ocurren en las plantas, no falta ni uno y están en balance, que

si bien, como fertilizantes, por la dosis tan pequeñas no son suficientes como tales, si

actúan eficientemente como cofactores que activan la acción de las enzimas (Canales,

1997).

En los derivados de algas marinas se han encontrado hasta 27 reguladores de

crecimiento de las plantas, algunos en más de 1,000 ppm. Es un complejo más rico que

cualquier producto sintético. Son fitohormonas naturales que aumentan, por su número

y cantidad, las posibilidades para que, como es su función, actúen como mensajeros de

la orden que los genes dan a la célula para que ésta sintetice la enzima específica que

con su acción, la planta resuelva un problema dado, mejor aunque las plantas en sí,

porque son más y tienen mil millones de años mas de entrenamiento para la

supervivencia (Canales, 1998).

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III. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

3.1 Definición del problema y justificación

Para Guatemala el cultivo de las cucurbitáceas, especialmente el cultivo de la sandía

(Citrullus lanatus), es cada vez más importante. En los departamentos de Santa Rosa,

Escuintla, El Progreso, Jutiapa, Zacapa y Chiquimula, cada año se destinan más áreas

a la siembra de éste cultivo debido a su demanda en el mercado nacional e

internacional. Es por ello que los agricultores buscan obtener los mayores rendimientos

por unidad de área.

Un factor importante que contribuye en el rendimiento de la sandía, es la disponibilidad

de nutrientes en el suelo; sin embargo, muchas veces los elementos nutritivos se

encuentran presentes en el suelo pero lejos de la zona de absorción de la rizósfera, a

través del manto fino radicular o aunque se encuentren en la zona de absorción de la

rizósfera, no están en las formas disponibles y/o se encuentran químicamente fijados a

las partículas del suelo; en otras ocasiones la no disponibilidad para las plantas se debe

a problemas en las propiedades físicas del suelo, desequilibrios en los componentes

químicos, así como baja actividad microbiológica. La absorción de los nutrientes

también se ve afectada negativamente cuando la planta experimenta algún tipo de

estrés. Todo lo anterior limita el potencial de producción que los materiales genéticos

puedan tener y también afectan negativamente la calidad del fruto producido.

En Guatemala la sandía es un cultivo en constante crecimiento. La producción se

destina para mercados externo e interno. No existe un ente que genere tecnología para

dicha especie, por lo que los rendimientos y calidad del fruto producido no alcanzan los

rendimientos que se obtienen en otros países.

En la actualidad, además de los fertilizantes tradicionales, también se dispone de

numerosos correctores y suplementos de carencias tanto de macro como de

micronutrientes que se pueden aplicar vía foliar o vía goteo, aminoácidos de uso

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preventivo y curativo, que ayudan a la planta en momentos críticos de su desarrollo o

bajo condiciones ambientales desfavorables, así como otros productos (ácidos

húmicos, fúlvicos, correctores salinos, etc.), que mejoran las condiciones del medio y

facilitan la asimilación de nutrientes por la planta (Reche, 1998).

Las algas marinas se promocionan como un producto bioactivador, cuyo mecanismo de

acción permite mejorar las propiedades físicas, químicas y biológicas del suelo,

contribuyendo así a una mejor y mayor disponibilidad de nutrientes, así como a un

mejor aprovechamiento de los fertilizantes aplicados. Lo anterior, aunado a un mejor

crecimiento y penetración de las raíces, mejora la absorción de nutrientes por la planta.

También las algas marinas han sido utilizadas para aplicaciones foliares, las cuales se

dice que permiten la absorción de una variedad de enzimas que contribuyen en el

proceso de la nutrición, así como en la resistencia a estrés causado por agentes

biológicos o climáticos.

En Guatemala, especialmente en los cultivos hortícolas, generalmente se carece de

información generada localmente en cuanto a las bondades de éstos productos, por lo

que la aplicación de tecnologías se basa en la información de trabajos realizados en

lugares con condiciones edafoclimáticas muy diferentes a las del país, en algunos

casos los resultados no son los proyectados.

Por lo anterior, surge la necesidad de hacer evaluaciones que permitan generar y/o

validar tecnología para tener la certeza de que la misma será de beneficio para los

productores que la adopten. Como una contribución en el proceso de generación de

tecnología local, en la presente investigación se evaluó el efecto de la aplicación de

extracto de algas marinas, sobre el rendimiento y calidad de sandía.

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IV. OBJETIVOS

4.1 General

Evaluar el efecto de la aplicación de diferentes dosis de un extracto de algas

marinas, sobre el rendimiento y calidad de sandía, variedad Mickey Lee, en las

condiciones de Sipacate, La Gomera, Escuintla.

4.2 Específicos

Determinar el efecto de la aplicación de seis dosis de extracto de algas marinas

sobre los componentes de rendimiento y producción comercial de sandía.

Determinar el efecto de seis dosis de extracto de algas marinas, sobre los

principales atributos de calidad de los frutos de sandía.

Determinar el costo de producción de sandía, al utilizar diferentes dosis de un

producto formulado a base de algas marinas.

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V. HIPOTESIS

Al menos una de las seis dosis de extracto de algas marinas, aumentará el

rendimiento y producción comercial de sandía.

Al menos una de las seis dosis de extracto de algas marinas, incrementará los

principales atributos de calidad del fruto de sandía.

Al menos una de las seis dosis de extracto de algas marinas, mejorará la

rentabilidad en la producción de sandía.

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VI. MATERIALES Y METODOS

6.1 Localización

La investigación se realizó en la Finca El Jardín, ubicada en aldea Sipacate, La

Gomera, Escuintla. La finca se encuentra a una altura que abarca el intervalo de 0

hasta 40 msnm; dista 32 kilómetros de la cabecera municipal. Geográficamente se

encuentra a 13º 55´ 50´´ latitud norte y 91º 7´ 30´´ longitud oeste. Los suelos del área

presentan una textura arenosa y topografía plana (Municipalidad de La Gomera,

Escuintla, 2003).

Según el Instituto Nacional de Sismología, Vulcanología, Meteorología e Hidrología,

- INSIVUMEH- la precipitación anual del área se encuentra entre 1,000 y 1,100 mm. El

clima se clasifica como cálido húmedo y se marcan perfectamente las dos estaciones

del año, invierno (época lluviosa) y verano (época ceca). La época de invierno inicia

generalmente en el mes de mayo y termina en el mes de octubre y la de verano

comienza en noviembre y termina a finales del mes de abril. La temperatura varía entre

31° y 33°C.

Según los resultados del análisis de laboratorio, el suelo presentaba las características

físicas y químicas que se muestran en el cuadro 3:

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Cuadro 3. Características químicas del suelo utilizado en el experimento. Características Unidades Valor Niveles adecuados

pH 6.69 5.50 -7.20

Concentración de Sales (C.S.) dS/m 0.05 0.2 - 0.8

Materia Orgánica (M.O.) % 3.81 2.0 - 4.0

C.I.C.e meq/100ml 9.3 5.0 - 15.0

Saturación K % 6.83 4% - 6%

Saturación Ca % 84.76 60% - 80%

Saturación Mg % 8.41 10% - 20%

Saturación Al+H % 0.00 <20%

P ppm 39.0 30 - 75

K ppm 248.0 150 - 300

Ca ppm 1579.0 1000 - 2000

Mg ppm 94.0 100 - 250

S ppm 5.0 10 - 100

Cu ppm 1.9 1 - 7

Fe ppm 56.0 40 - 250

Mn ppm 7.0 10 - 250

Zn ppm 3.2 2 - 25

Al ppm <8.0 <100

Fuente: Soluciones Analíticas, S.A.

De manera general puede comentarse que el pH estaba cerca de la neutralidad; el

contenido de materia orgánica estaba en el rango apropiado; se tenía deficiencia de

magnesio, probablemente por el alto contenido de calcio; el azufre estaba ligeramente

deficiente, lo que se explica por la textura arenosa del suelo; situación similar se tuvo

con el magnesio.

6.2 Material experimental

Para la realización del experimento se utilizó un extracto de algas marinas (Activador

Plus al 50% de concentración) y semilla de sandía híbrido Mickey Lee, que actualmente

es la que más se cultiva en el área.

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Entre otras características del extracto de algas marinas utilizado se tienen:

Nombre comercial Algamar Plus

Presentación Solución acuosa concentrada

Composición química Porcentaje peso/peso

Algas marinas 19 – 20%

Ácidos fúlvicos 10.9%

Vehículo inerte 69.4%

Propiedades físicas

Estado físico líquido

Color café oscuro

Clase sustancia afín a fertilizantes

Densidad 1.2 +/- 0.2

Olor característica marino

Solubilidad en agua 100%

Propiedades químicas

pH 7 +/- 0.5

Corrosividad ninguna

6.3 Factores a estudiar

En el presente experimento se evaluó un solo factor:

Dosis de algas marinas (producto Activador Plus al 50% de concentración).

6.4 Descripción de los Tratamientos

Se evaluaron seis tratamientos, los cuales se describen en el cuadro 4.

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Cuadro 4. Tratamientos de extractos de algas marinas evaluados.

Tratamiento Dosis del extracto de algas marinas (L/ha)

1 2

2 4

3 6

4 8

5 10

6 Testigo (sin aplicación)

En todos los tratamientos se utilizó la fertilización tradicional del área, la cual se

describe en el cuadro 1 del anexo.

6.5 Diseño experimental

Se utilizó un diseño experimental de bloques completos al azar con 6 tratamientos y

cuatro repeticiones (5 dosis de aplicación del producto comercial Activador Plus al 50%

de concentración, como complemento de la fertilización modal, y 1 tratamiento testigo,

consistente en la fertilización modal del área).

6.6 Modelo Estadístico

El modelo estadístico en la investigación fué el siguiente

Yij = u + Ti + Bj + Eij

Donde:

Yij = Variable de respuesta

u = Efecto de la media general

Ti = Efecto de los tratamientos

Bj = Efecto de las repeticiones

Eij = Efecto del error experimental

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6.7 Unidad Experimental

La unidad experimental fue tres surcos de 8 m de largo y 1.80 m entre surcos. Las

plantas distanciadas a 1 m sobre el surco. Como parcela neta se tomó el surco central.

6.8 Croquis de campo

En la figura 1 se muestra la distribución de los tratamientos en el campo.

Figura 1. Distribución de los tratamientos en el campo.

6.9 Manejo del Experimento

Preparación del terreno

La preparación del terreno se realizó en forma mecánica. Consistiendo en una pasada

de arado y dos de rastra previo al trasplante.

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Siembra

Se realizó el trasplante directamente al campo definitivo, sembrando un pilón por

postura, previo al trasplante se hicieron hoyos con una estaca a una profundidad de 5

cm, distanciados a 1.00 m y 1.80 m entre surcos.

Fertilización

La primera se efectuó dos días previos al trasplante de los pilones y luego se

efectuaron aplicaciones de acuerdo al programa tradicional utilizado en la finca, según

cuadro 16.

El extracto de algas marinas se aplicó directamente al suelo, a través de bombas

manuales de aspersión, fraccionando la dosis total en cinco aplicaciones de 20% cada

una 5, 10, 15, 20 y 25 días después del trasplante.

Riegos

Estos se efectuaron previos al trasplante de los pilones para llegar a la capacidad de

campo. Según Doorenbos y Kassam (1986), la sandia requiere de acuerdo a sus

necesidades de agua (ETm), de 400 a 600 mm en el período comprendido desde el

trasplante a la cosecha varia de 80 a 110 días.

Para cumplir con estas necesidades el riego se realizó tomando como base la

evapotranspiración del cultivo de referencia (Eto) y por una constante del cultivo (Kc)

para cada una de sus etapas fenológicas, ya que el lugar cuenta con riego localizado

“por goteo” (Vega, 2001).

6.10 Variables de respuesta

Días a floración

Se llevó registro para cada tratamiento del número de días transcurridos desde el

trasplante hasta la primera floración.

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Días a cosecha

Se llevó registros para cada tratamiento, del número de días transcurridos desde el

trasplante hasta el corte del primer fruto.

Sobrevivencia de plantas

En cada unidad experimental, 30 días después del trasplante se procedió a contar el

total de plantas vivas, refiriendo las lecturas a porcentaje en relación al total de plantas

trasplantadas.

Rendimiento de fruto comercial (kg/ha)

Se sumó el peso de los frutos de todos los cortes, para obtener el total de rendimiento

por cada tratamiento y repetición.

Número de frutos por planta

Se promedió el número de frutos total con respecto al número de plantas.

Contenido total de sólidos solubles (grados brix)

Se midieron los grados Brix con un refractómetro. Se tomó el jugo de cuatro frutos por

unidad experimental, extrayéndolo de la parte media de los mismos.

Peso medio de fruto

El peso total de frutos de cada unidad experimental se dividió entre el número de frutos

cosechados, obteniendo así el peso medios del fruto. Esta variable se cuantificó en kg.

Color de la pulpa

A los frutos mencionados en el inciso anterior se les observó el color de la pulpa,

calificándola en roja y roja pálida, de acuerdo a la tonalidad que presenten.

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Costos e Ingresos

Durante la ejecución del experimento se llevó registros económicos de finca, con la

finalidad de tener un historial del cultivo que incluyó las actividades realizadas y los

costos de las mismas, insumos utilizados y costo, rendimientos e ingresos obtenidos.

6.11 Análisis de la información

6.11.1 Análisis estadístico

A las variables rendimiento de fruto, número de frutos por planta, peso medio de fruto, y

contenido de sólidos solubles se les hizo un Análisis de varianza (ANDEVA). En el caso

de encontrarse diferencias significativas entre los tratamientos se procedió a realizar

una Prueba de Medias, utilizando para el efecto Duncan (5%). Las variables

sobrevivencia de plantas y distribución porcentual de rendimiento por calibre de frutos,

fueron analizadas por medio de gráficas. Para el resto de variables se hizo un análisis

descriptivo.

6.11.2 Análisis económico

Con la información proveniente de los registros de finca se determinaron los costos

totales de producción y los ingresos para cada tratamiento. Con los datos anteriores se

procedió a calcular la rentabilidad.

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VII. RESULTADOS Y DISCUSION

7.1 Análisis estadístico

7.1.1 Días a floración

Esta variable se cuantificó cuando por lo menos un 50% de las plantas de la parcela

neta de cada tratamiento mostraba su primera flor. Se anotaron los días transcurridos

desde la fecha de trasplante hasta el momento de la floración (cuadros 15 y 17).

Los datos fueron evaluados por medio de un análisis de varianza, cuyos resultados se

muestran en el cuadro 5.

Cuadro 5. Análisis de varianza para la variable días a floración, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio

Valor F Probabilidad

Repeticiones 3 1.04125 0.34708 0.90 0.4654 NS Tratamientos 5 9.89708 1.97942 5.12 0.0062 ** Error 15 5.80125 0.38675 Total 23 16.73958

C.V. 2.0% NS = No significativo al 5% de probabilidad de error ** = Diferencia altamente significativa al 5% de probabilidad de error

De acuerdo a los resultados, existe diferencia estadística altamente significativa entre

los tratamientos evaluados, por lo que fue necesario realizar la prueba de medias,

cuyos resultados se muestran en cuadro 6. Por el valor del coeficiente de variación se

infiere que esta variable fue determinada correctamente.

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Cuadro 6. Prueba de medias Duncan (5%) para la variable días a floración, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

(L/ha algas marinas) Media (días) Duncan *

6 31.9 A 4 31.7 B 10 30.8 C

Testigo absoluto 30.5 D 8 30.4 D 2 30.3 D

* = Medias con la misma letra son estadísticamente iguales

Según la prueba de medias se formaron cuatro grupos estadísticos. Se observó mayor

precocidad en los tratamientos donde se aplicaron 2 y 8 L/ha de extracto de algas

marinas, además del testigo absoluto; por el contrario, el tratamiento más tardío fue

aquel donde se aplicaron 6 L/ha. Sin embargo, a pesar de los resultados descritos, en

términos prácticos las diferencias observadas pueden desestimarse, puesto que se

trata solamente de dos días.

7.1.2 Días a cosecha

Para esta variable se cuantificaron los días transcurridos desde el trasplante hasta el

momento de realizar la primera cosecha (cuadros 15 y 18). El análisis de varianza

respectivo se muestra en el cuadro 7.

Cuadro 7. Análisis de varianza para la variable días a cosecha, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio

Valor F Probabilidad

Repeticiones 3 0.29500 0.09833 0.21 0.8857 NS Tratamientos 5 9.72333 1.94467 4.22 0.0136 * Error 15 6.92000 0.46133 Total 23 16.93833

C.V. 1.1 % NS = No significativo al 5% de probabilidad de error * = Diferencia significativa al 5% de probabilidad de error

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Los resultados indican que existieron diferencias significativas entre los tratamientos

evaluados, por lo que fue necesario realizar una prueba de medias, la cual se presenta

en el cuadro 8. Por el valor del coeficiente de variación (1.1%), se deduce que la

determinación de esta variable se hizo de manera adecuada.

Cuadro 8. Prueba de medias Duncan (5%) para la variable días a cosecha, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

(L/ha algas marinas) Media (días) Duncan *

6 64.5 A 4 64.2 B 10 63.4 C

Testigo absoluto 63.2 C 2 63.0 D 8 62.8 D

* = Medias con la misma letra son estadísticamente iguales

Por los resultados obtenidos en la prueba de medias, se infiere que como era de

esperarse, la variable días a cosecha estuvo directamente relacionada con la variable

días a floración. A pesar de que se observaron dos días de diferencia entre los

tratamientos más precoces (2 y 8 L/ha de extracto de algas marinas) y el más tardío (6

L/ha de extracto de algas marinas); al igual que lo ya discutido para la variable días a

floración, en términos prácticos estas diferencias pueden desestimarse.

7.1.3 Sobrevivencia de plantas

Esta variable se determinó 30 días después del trasplante. Para ello se contaron las

plantas vivas y se relacionó (porcentaje) al total de plantas trasplantadas (cuadros 15 y

19). Los datos obtenidos se analizaron por medio de un análisis de varianza (cuadro 9).

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38

Previo a realizar el mismo, los datos fueron transformados para buscar su

normalización.

Cuadro 9. Análisis de varianza para la variable sobrevivencia de plantas, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio

Valor F Probabilidad

Repeticiones 3 67.79667 22.59889 0.19 0.9043 NS Tratamientos 5 920.98333 184.19667 1.52 0.2435 NS Error 15 1822.97333 121.53156 Total 23 2811.75333

C.V. 16.8 % NS = No significativo al 5% de probabilidad de error

Por los resultados obtenidos se infiere que los tratamientos tuvieron un comportamiento

similar al testigo para esta variable, pues las diferencias entre ellos no fueron

significativas. Por el valor del coeficiente de variación (16.8%), el registro de la variable

se considera aceptable.

Las medias de sobrevivencia para cada tratamiento se muestran en la figura 2.

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Figura 2. Sobrevivencia de plantas, en tratamientos de aplicación de extractos de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla. 2012.

De acuerdo a los valores de sobrevivencia, a pesar de que como ya se mencionó, no

existió diferencia significativa entre los tratamientos, se observó una tendencia a que

esta disminuyó cuando la aplicación de extractos de algas marinas fue superior a 6

L/ha, y que el efecto de la aplicación de 2 o 4 L/ha fue similar al testigo absoluto.

7.1.4 Rendimiento de fruto (kg/ha)

Esta variable se determinó pesando la totalidad de frutos comerciales de cada

tratamiento (por corte, por parcela y por repetición). Los datos fueron proyectados a

kg/ha (cuadros 15 y 20) y sometidos a un análisis de varianza, cuyos resultados se

muestran en el cuadro 10.

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Cuadro 10. Análisis de varianza para la variable rendimiento de fruto (kg/ha), en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio

Valor F Probabilidad

Repeticiones 3 18376128 6125376 2.06 0.1487 NS Tratamientos 5 25601178 5120236 1.72 0.1903 NS Error 15 44612152 2974143 Total 23 88589458

C.V. 6.8 % NS = No significativo al 5% de probabilidad de error

Por los resultados anteriores, se infiere que no existió diferencia significativa entre los

tratamientos evaluados. Con base en el coeficiente de variación (6.8%) se concluye

que la cuantificación de esta variable fue confiable. El comportamiento anterior se

atribuye a la relativa buena fertilidad (mayoría de nutrientes y materia orgánica), que

según el análisis de laboratorio (cuadro 3), tenía el suelo en donde se condujo la

investigación, y a que el tiempo en que se condujo la misma fue muy corto

(aproximadamente 75 días), por lo que probablemente las bondades del producto

aplicado no pudieron ser observadas plenamente.

Los rendimientos registrados en cada tratamiento se muestran en la figura 3.

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41

Figura 3. Rendimiento de fruto en tratamientos de aplicación de extractos de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012. La figura anterior muestra tendencia generalizada a que los rendimientos disminuyeran

conforme se aumentaba la dosis aplicada de extractos de algas marinas; sin embargo,

debe considerarse que en los tratamientos donde se aplicaron 6, 8 y 10 L/ha

(tratamientos 3, 4 y 5), la sobrevivencia fue menor. Con respecto al testigo absoluto se

observó tendencia a que los rendimientos mejoraron con las dosis de 2 y 4 L/ha de

extractos de algas marinas (tratamientos 1 y 2).

7.1.5 Número de frutos por planta

Con base en los números de plantas y de frutos cosechados en cada parcela neta, se

estableció el promedio de frutos por planta para cada tratamiento (cuadros 15 y 21).

Estos datos se analizaron por medio de un análisis de varianza (cuadro 11)

Cuadro 11. Análisis de varianza para la variable número de frutos por planta, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

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42

Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio

Valor F Probabilidad

Repeticiones 3 0.69458 0.23153 2.39 0.1095 NS Tratamientos 5 0.39208 0.07842 0.81 0.5607 NS Error 15 1.45292 0.09686 Total 23 2.53958

C.V. 6.6 % NS = No significativo al 5% de probabilidad de error

Los resultados del análisis de varianza indican que las diferencias entre tratamientos no

fueron estadísticamente significativas. Con base en el valor del coeficiente de

variación (6.6%) se estima que los datos eran confiables.

Los valores obtenidos en cada tratamiento se muestran en la figura 4, en la cual se

observa que fueron homogéneos.

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Figura 4. Número de frutos por planta en tratamientos de aplicación de extractos de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

7.1.6 Contenido total de sólidos solubles (grados brix)

Los valores de contenido total de sólidos solubles (grados brix) en el fruto se obtuvieron

al momento de la cosecha (cuadros 15 y 22). Estos se analizaron por medio de un

análisis de varianza (cuadro 12).

Cuadro 12. Análisis de varianza para la variable contenido de sólidos solubles (brix), en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio

Valor F Probabilidad

Repeticiones 3 0.03792 0.01264 0.46 0.7161 NS Tratamientos 5 0.14708 0.02942 1.06 0.4180 NS Error 15 0.41458 0.02764 Total 23 0.59958

C.V. 1.6 % NS = No significativo al 5% de probabilidad de error

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Los resultados del análisis indican que no existieron diferencias estadísticas entre los

tratamientos evaluados. Por el valor del coeficiente de variación (1.6%) se infiere que

los datos cuantificados fueron confiables.

En la figura 5 se muestran los valores obtenidos en cada uno de los tratamientos.

Figura 5. Contenido de sólidos solubles (grados Brix) en frutos provenientes de tratamientos de aplicación de extractos de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

De acuerdo a los valores, los tratamientos fueron homogéneos, no se observa ninguna

tendencia definida. Es oportuno aclarar que todos los tratamientos superaron el mínimo

de brix que se pide para su comercialización (9.0).

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7.1.7 Peso medio de fruto (kg)

Con base en los datos de número de frutos cosechados y peso de los mismos, se

obtuvo el peso promedio por fruto (cuadros 15 y 23). Los datos fueron trabajados en un

análisis de varianza, cuyos resultados se muestran en el cuadro 13.

Cuadro 13. Análisis de varianza para la variable peso medio de fruto (kg), en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio

Valor F Probabilidad

Repeticiones 3 0.09575 0.03192 0.43 0.7353 NS Tratamientos 5 3.32055 0.66411 8.92 0.0004 ** Error 15 1.11618 0.07441 Total 23 4.53248

C.V. 3.6 % NS = No significativo al 5% de probabilidad de error ** = Diferencia altamente significativa al 5% de probabilidad de error

Por los resultados anteriores se infiere que existió diferencia estadísticamente

significativa entre los tratamientos evaluados, por lo que fue necesario realizar la

respectiva prueba de medias (cuadro 14). Por el valor del coeficiente de variación

(3.6%) se deduce que la cuantificación de la variable fue confiable.

Cuadro 14. Prueba de medias Duncan (5%) para la variable peso medio de fruto, en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

(L/ha algas marinas) Media (kg) Duncan *

2 8.308 A 8 7.863 B 4 7.672 C 6 7.453 D

Testigo absoluto 7.307 E 10 7.208 F

* = Medias con la misma letra son estadísticamente iguales

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Los resultados indican que cada tratamiento forma un grupo estadístico diferente. La

aplicación de 2 L/ha de extracto de algas marinas provocó el mayor peso promedio de

fruto. El menor peso de fruto se obtuvo con la aplicación de 10 L/ha. Es de hacer notar

que esta variación entre tratamientos no se reflejó significativamente en el rendimiento

total, probablemente por las pequeñas variaciones que se dieron en el número de frutos

por planta, pero si permitió visualizar que la tendencia es a disminuir los rendimientos

conforme se incrementó la cantidad de extracto de algas marinas aplicada.

Cuadro 15. Resumen de variables evaluadas en tratamientos de aplicación de extracto de algas marinas en sandía. La Gomera, Escuintla, 2012.

Trat.

Días a

floración

Días a

cosecha

Sobrevivencia de plantas (%)

Rendimiento de fruto (kg/ha)

Frutos por

planta

Total de sólidos solubles

Peso de fruto (kg)

1 30.3 62.96 84.38 26643 4.6 10.36 8.308 2 31.7 64.19 87.5 26264 4.9 10.32 7.672 3 31.9 64.52 71.88 25016 4.8 10.48 7.453 4 30.4 62.84 78.12 24932 4.6 10.52 7.863 5 30.8 63.41 71.88 23581 4.7 10.32 7.208 6 30.5 63.13 87.5 24515 4.8 10.30 7.307

7.1.8 Color de la pulpa

Esta variable fue determinada cualitativamente. No se observó ninguna variación entre

los tratamientos evaluados. En todos los casos, el color de la pulpa se calificó como

tonalidad roja.

7.2 Análisis económico

Con base en los resultados obtenidos del análisis de varianza para la variable

rendimiento de fruto, se determinó que no existió diferencia significativa entre los

tratamientos evaluados; por lo que se infiere que la aplicación de algas marinas, bajo

las condiciones en que se llevó a cabo la investigación, no contribuyó a mejorar los

rendimientos.

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Con relación a ello, Reyes (s.a.), indica lo siguiente: El uso de los presupuestos

parciales se ha generalizado en los institutos nacionales de investigación; sin embargo,

en su manejo se han heredado vicios que es necesario disipar. Por ejemplo, es usual

escuchar que todavía muchos investigadores digan en las presentaciones de

resultados: “que si bien es cierto que estadísticamente no se encontraron diferencias

entre las medias de tratamientos, estas diferencias si pueden serlo en términos

económicos”. Este argumento conduce a una selección equivocada del tratamiento más

rentable, pues el hecho de expresar en valor estas diferencias aparentes entre medias,

no es más que una capitalización del error, pues sus valores esperados de rendimiento

e ingresos brutos, son los mismos promedios. En este caso, el tratamiento más

rentable no es el que tiene la media más alta, pues todas las medias en sentido estricto

son las mismas, sino aquel que tenga los costos más bajos.

Tomando en cuenta lo expresado anteriormente y para el presente trabajo, desde el

punto de vista económico, el mejor tratamiento fue el testigo absoluto; esto se confirma

con lo mostrado en el cuadro 15, en el cual por lo expresado antes, no deben

considerarse estrictamente los valores de rentabilidad obtenidos en los tratamientos

donde se aplicaron extractos de algas marinas.

Cuadro 16. Análisis económico para diferentes tratamientos en sandía aplicados con extractos de algas marinas. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento Rendimiento

(kg ha-1)

Costo de Producción

(Q ha-1)

Ingreso Bruto (Q ha-1)

Ingreso Neto (Q ha-1)

Rentabilidad (%)

1 25109.8 20,055.00 33,539.52 13,484.52 67.2

2 25043.59 20,305.00 33,451.08 13,146.08 64.7

3 24938.15 20,555.00 33,310.24 12,755.24 62.1

4 25049.56 20,805.00 33,459.06 12,654.06 60.8

5 24963.43 21,055.00 33,344.01 12,289.01 58.4

6 24989.25 19,805.00 33,378.50 13,573.50 68.5

Precio promedio de sandía en el mercado = Q 1.34 por kilogramo

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VIII. CONCLUSIONES

El componente número de frutos por planta, no fue afectado por la aplicación de extracto de algas marinas.

La calidad de los frutos de sandía (grados brix y color de la pulpa), no fue afectada por la aplicación de extracto de algas marinas.

Para las condiciones edafoclimáticas prevalecientes durante la investigación, se

observó tendencia a que al incrementar la cantidad aplicada de extracto de algas

marinas la sobrevivencia de plantas fuera menor.

La aplicación de extracto de algas marinas en sandía, afectó el ciclo del cultivo;

sin embargo en términos prácticos esta diferencia (2 días) puede desestimarse.

La aplicación de extracto de algas marinas afectó significativamente el peso

medio de los frutos; sin embargo, esto no repercutió en el rendimiento total de

frutos comercializables; variable que fue estadísticamente igual en todos los

tratamientos.

Desde el punto de vista económico, el mejor tratamiento fue el testigo absoluto,

con base en que el análisis estadístico mostró que todos los tratamientos eran

iguales en rendimiento.

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IX. RECOMENDACIONES

Se recomienda efectuar más investigaciones utilizando dosis menores a cuatro

litros por hectárea, las cuales podrían tener efecto positivo sobre la sobrevivencia

de plantas.

Para futuras investigaciones, ampliar el período de las mismas, considerando

más de un ciclo del cultivo, para dar un espacio de tiempo a los ácidos fúlvicos

contenidos en el extracto de algas marinas, a que ejerzan su papel de mejorador

de las propiedades del suelo.

Evaluar extractos de algas marinas en otros suelos con distintas características

físicas y químicas; considerar la inclusión de fuentes de materia orgánica.

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XI. ANEXOS

Cuadro 17. Días a floración en diferentes tratamientos en sandía, aplicados con extractos de algas marinas. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

Repetición Promedio I II III IV

1 29.68 30.73 30.21 30.64 30.32 2 31.33 32.61 31.85 31.11 31.72 3 32.61 31.48 31.66 31.93 31.92 4 30.76 30.12 30.18 30.61 30.42 5 29.73 31.52 31.37 30.63 30.81 6 30.04 31.11 29.65 31.18 30.50

Cuadro 18. Días a cosecha en diferentes tratamientos en sandía, aplicados con extractos de algas marinas. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

Repetición Promedio I II III IV

1 62.36 63.13 62.93 63.44 62.96 2 64.01 64.93 64.05 63.78 64.19 3 65.28 64.11 64.26 64.43 64.52 4 63.44 61.82 62.89 63.21 62.84 5 62.33 64.18 64.01 63.13 63.41 6 62.75 63.61 62.38 63.78 63.13

Cuadro 19. Porcentaje de sobrevivencia en diferentes tratamientos en sandía, aplicados con extractos de algas marinas. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

Repetición Promedio I II III IV

1 75.0 100.0 87.5 75.0 84.38 2 100.0 87.5 87.5 75.0 87.5

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3 75.0 62.5 87.5 62.5 71.88 4 87.5 75.0 75.0 75.0 78.12 5 75.0 62.5 75.0 75.0 71.88 6 87.5 87.5 75.0 100.0 87.5

Cuadro 20. Rendimiento de fruto comercial (kg/ha) en diferentes tratamientos en sandía, aplicados con extractos de algas marinas. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

Repetición Promedio I II III IV

1 26618.67 25702.13 25199.79 29050.54 26642.78 2 25200.38 26057.50 24675.77 29122.08 26263.93 3 25188.11 27016.18 23812.34 24046.75 25015.84 4 25652.11 25625.64 23567.19 24883.29 24932.06 5 20795.25 25122.33 24407.51 23998.10 23580.80 6 25735.50 27688.68 21661.03 22976.33 24515.38

Cuadro 21. Número de frutos por planta en diferentes tratamientos en sandía, aplicados con extractos de algas marinas. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

Repetición Promedio I II III IV

1 4.81 4.49 4.35 4.82 4.62 2 4.73 4.81 4.64 5.55 4.93 3 4.64 5.41 4.64 4.68 4.84 4 4.64 4.69 4.42 4.51 4.56 5 4.59 4.85 4.68 4.71 4.71 6 5.13 5.41 4.21 4.58 4.83

Cuadro 22. Contenido total de sólidos solubles (brix) en diferentes tratamientos en sandía, aplicados con extractos de algas marinas. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

Repetición Promedio I II III IV

1 10.44 10.48 10.33 10.21 10.36 2 10.11 10.16 10.54 10.48 10.32 3 10.31 10.48 10.63 10.49 10.48 4 10.53 10.38 10.63 10.54 10.52

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5 10.26 10.48 10.34 10.19 10.32 6 10.46 10.52 10.11 10.13 10.30

Cuadro 23. Peso medio de fruto (kg) en diferentes tratamientos en sandía, aplicados con extractos de algas marinas. La Gomera, Escuintla, 2012.

Tratamiento

Repetición Promedio I II III IV

1 7.969 8.243 8.342 8.679 8.308 2 7.672 7.801 7.658 7.556 7.672 3 7.817 7.191 7.406 7.399 7.453 4 7.961 7.868 7.678 7.945 7.863 5 6.524 7.459 7.510 7.337 7.208 6 7.224 7.370 7.409 7.224 7.307

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Cuadro 24. Programa tradicional de fertilización para sandía.

Epoca de aplicación

(días después del trasplante)

Cantidad aplicada

(kg/ha)

Fórmula de fertilizante

2 días antes de siembra 97.3 46-0-0 (Urea)

10– 15 31.74 46-0-0 (Urea)

15– 20 15.87 46-0-0 (Urea)

22 6.34 46-0-0 (Urea)

24 6.34 46-0-0 (Urea)

25 5.77 15.5-0-0 + 19 (Nitrato de Calcio)

26 5.77 13.5-0-45.2 y 46-0-0 (Nitrato de

Potasio)

28 6.34 15.5-0-0 + 19y46-0-0 (Nitrato de

Calcio y Urea)

28 5.77 20-18-20 (aplicación foliar)

29 6.34 46-0-0 (Urea)

30 5.77 13.5-0-45.2 (Nitrato de Potasio)

30 6.34 46-0-0 (Urea)

32 5.77 15.5-0-0 + 19 (Nitrato de Calcio)

32 429 cc Byozime

34 5.77 13.5-0-45.2 (Nitrato de Potasio)

36 5.77 15.5-0-0+19 (Nitrato de Calcio)

38 5.77 13.5-0-45.2 (Nitrato de Potasio)

38 429 cc Byozime

40 5.77 15.5-0-0+19 (Nitrato de Calcio)

41 65 20.5-00-00+24 (Sulfato de Amonio)

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Cuadro 25. Composición química del extracto de algas marinas Activador Plus.

Elementos %

Nitrógeno(N) Àcido fosfórico (P2O5) Potasio (K2O) Azufre (S) Magnesio (Mg) Calcio (Ca) Sodio (Na) Boro (B) Manganeso (Mn) Cobre (Cu) Zinc (Zn) Hierro (Fe) Materia Orgánica

0.8 – 1.5 1.0 – 2.0 17.0 – 22.0 1.0 – 2.0 0.2 – 0.5 0.3 – 0.6 3.0 – 5.0 75 – 150 ppm 5 – 20 ppm 1 – 5 ppm 25 – 50 ppm 75 – 250 ppm 45 – 55%

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Figura 6. Resultados del análisis de suelo, muestras tomadas en la finca El Jardín.