aktifitas ekstrak daun jambu biji psidium guajava l
TRANSCRIPT
AKTIFITAS EKSTRAK DAUN JAMBU BIJI
(Psidium guajava L.) TERHADAP PERTUMBUHAN
Streptococcus mutans DAN Staphylococcus aureus
PENYEBAB KARIES GIGI
THE ACTIVITY OF GUAVA LEAF EXTRACT
(Psidium guajava L.) ON THE GROWTH OF Streptococcus
mutans AND Staphylococcus aureus AS THE CAUSES OF
DENTAL CARIES
ST. RATNAH
PROGRAM PASCASARJANA
UNIVERSITAS HASANUDDIN
MAKASSAR
2012
AKTIFITAS EKSTRAK DAUN JAMBU BIJI
(Psidium guajava L.) TERHADAP PERTUMBUHAN
Streptococcus mutans DAN Staphylococcus aureus
PENYEBAB KARIES GIGI
Tesis
Sebagai Salah Satu Syarat Untuk Mencapai Gelar Magister
Program Studi
Biomedik
Disusun dan diajukan oleh
ST. RATNAH
Kepada
PROGRAM PASCASARJANA
UNIVERSITAS HASANUDDIN
MAKASSAR
2012
TESIS
AKTIFITAS EKSTRAK DAUN JAMBU BIJI (Psidium guajava L.)
TERHADAP PERTUMBUHAN Streptococcus mutans DAN
Staphylococcus aureus PENYEBAB KARIES GIGI
Disusun dan diajukan oleh
ST. RATNAH
Nomor Pokok P1506210017
Telah dipertahankan di depan Panitia Ujian Tesis
Pada tanggal 26 November 2012
dan dinyatakan telah memenuhi syarat
Menyetujui
Komisi Penasihat,
Prof. dr. Mochammad Hatta, PhD.,Sp.MK Prof. Dr. Gemini Alam, MS, Apt
Ketua Anggota
Ketua Program Studi Direktur Program Pascasarjana
Biomedik, Universitas Hasanuddin,
Prof. dr. Rosdiana Natzir, PhD Prof. Dr. Ir. Mursalim
PERNYATAAN KEASLIAN TESIS
Yang bertanda tangan di bawah ini
Nama : St. Ratnah
Nomor mahasiswa : P1506210017
Program studi : Biomedik
Menyatakan dengan sebenarnya bahwa tesis yang saya tulis ini
benar-benar merupakan hasil karya saya sendiri, bukan merupakan
pengambilalihan tulisan atau pemikiran orang lain. Apabila di kemudian
hari terbukti atau dapat dibuktikan bahwa sebagian atau keseluruhan tesis
ini hasil karya orang lain, saya bersedia menerima sanksi atas perbuatan
tersebut.
Makassar, 26 November 2012
Yang menyatakan,
St. Ratnah
PRAKATA
Puji syukur kehadirat Allah SWT, karena atas rahmat dan
karunia-Nyalah sehingga penulis memperoleh kekuatan, semangat dan
kemampuan untuk menyelesaikan tesis ini yang merupakan salah satu
syarat untuk meraih gelar Magister pada Program Studi Biomedik
Mikrobiologi Pascasarjana Universitas Hasanuddin.
Pada kesempatan ini penulis mengucapkan terimakasih kepada
Ayahanda Mansjur (Alm) dan Ibunda St. Halminah serta suamiku tercinta
Suprianto dan putraku Yudha Setyo Nugroho dan Lanang Teguh Nugroho
dan Ade Ilmi Nugroho untuk seluruh cinta, kasih sayang, doa, pengertian
dan dorongan semangat yang tak pernah berhenti.
Penyusunan tesis ini telah berjalan lancer berkat adanya
bimbingan, petunjuk, pengarahan dan partisipasi dari berbagai pihak.
Untuk itu penulis menghaturkan rasa terima kasih dan penghargaan yang
sebesar-besarnya kepada Bapak Prof. dr. Mochammad Hatta, PhD,Sp.MK
selaku Penasihat Utama dan Penguji Tesis dan Bapak Prof. Dr. Gemini
Alam, MS, Apt selaku Penasihat Pendamping dan Penguji Tesis atas
segala bantuan dan bimbingannya serta waktu yang telah diberikan
sehingga penulis dapat menyelesaikan tesis ini.
Pada kesempatan ini pula tak lupa penulis menyampaikan rasa
terima kasih kepada :
1. Direktur Program Pascasarjana Bapak Prof. Dr. Ir. Mursalim
2. Ketua Program Studi Biomedik Ibu Prof. dr. Rosdiana Natzir, PhD dan
Ketua Konsentrasi Mikrobiologi Bapak Prof. dr. Nasrum Massi, PhD
3. Bapak Prof. dr. M. Asaad Maidin, MSc,Sp.Mk, Bapak Prof. Dr. Akhyar
Ahmad,PhD dan Dr.dr. Burhanuddin Bahar, MSi selaku Penguji Tesis
4. Rekan-rekan seperjuangan mahasiswa Program Pascasarjana
Program Studi Biomedik Konsentrasi Mikrobiologi terkhusus kepada
sahabatku Dwi Rachmawaty Daswi dan Alfrida Monica Salasa atas
kebersamaan kita selama ini.
Semoga Allah SWT membalas segala bantuan tersebut dengan
pahala yang setimpal. Amin.
Makassar, November 2012
St. Ratnah
ABSTRAK
ST. RATNAH, Aktifitas Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.)
Terhadap Pertumbuhan Streptococcus mutans dan Staphylococcus
aureus Penyebab Karies Gigi (Dibimbing oleh Mochammad Hatta dan
Gemini Alam)
Penelitian ini bertujuan untuk menentukan aktifitas dari ekstrak
daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap pertumbuhan
Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus penyebab karies gigi.
Metode yang digunakan adalah metode disc diffusion, dimana
sampel yang digunakan adalah daun jambu biji yang dipetik secara acak,
dibuat simplisia kemudian diekstraksi dengan metode seduhan, infusa,
dekokta dan maserasi (menggunakan pelarut etanol 50 % dan etanol 96
%). Masing-masing ekstrak ditentukan profil senyawanya dengan
densitometri analisis TLC Scanner, selanjutnya dilakukan uji aktifitas.
Hasil dari penelitian ini menunjukkan bahwa ekstrak daun jambu biji
memiliki aktifitas menghambat pertumbuhan Streptococcus mutans dan
Staphylococcus aureus penyebab karies gigi dan metode ekstraksi yang
paling aktif adalah metode maserasi dengan pelarut etanol 96 % pada
konsentrasi 30 % dan hasil ini didukung dengan hasil TLC-Scanner.
Kata Kunci : Karies gigi, Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus,
ekstrak daun jambu biji, densitometri, Disc Difusion.
ABSTRACT
ST. RATNAH, The Activity of Guava Leaf Extract (Psidium guajava L.) on
the Growth of Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus as the
Causes of Dental Caries (Supervised by Mochammad Hatta and
Gemini Alam)
The aim of the study is to determine the activity of guava leaf
extract (Psidium guajava L.) on the growth of Streptococcus mutans and
Staphylococcus aureus as the causes of dental caries.
The research used disc diffusion method in which the sample used
were guava leaves picked up randomly, made crude, and extracted by the
methods of steeping, infusa, decocta, and maceration using 50 % ethanol
solvent and 96 % ethanol. Each extract compound profile was determined
by densitometry analysis of TLC Scanner continued by activity test.
The result of the research reveal that guava leaf extract has an
activity to inhibit of Streptococcus mutans and Staphylococcus aureus as
the causes of dental caries. Meanwhile, the most activity extraction
method is maceration method using ethanol solvent 96 % at the
concentration of 30 %. This is supported by the result of TLC-Scanner
Key words : dental caries, Streptococcus mutans and Staphylococcus
aureus , guava leaf extract, densitometry, disc diffusion.
DAFTAR ISI
Halaman
HALAMAN JUDUL ............................................................................ i
HALAMAN PENGAJUAN ................................................................. ii
HALAMAN PENGESAHAN ............................................................... iii
PERNYATAAN KEASLIAN TESIS .................................................... iv
PRAKATA ......................................................................................... v
ABSTRAK ......................................................................................... vii
ABSTRACT ....................................................................................... viii
DAFTAR ISI ...................................................................................... ix
DAFTAR TABEL ............................................................................... xi
DAFTAR GAMBAR ........................................................................... xii
DAFTAR LAMPIRAN ........................................................................ xiv
BAB I. PENDAHULUAN ................................................................... 1
A. Latar Belakang ................................................................. 1
B. Rumusan Masalah ........................................................... 3
C. Tujuan Penelitian ............................................................. 4
D. Manfaat Penelitian ........................................................... 5
BAB II. TINJAUAN PUSTAKA ........................................................... 6
A. Karies Gigi......................................................................... 6
1. Defenisi ....................................................................... 6
2. Etiologi karies gigi ........................................................ 7
3. Gejala karies gigi ......................................................... 10
4. Klasifikasi karies gigi ................................................... 10
5. Pencegahan karies gigi .............................................. 11
B. Streptococcus mutans ...................................................... 13
1. Klasifikasi .................................................................... 14
2. Morfologi dan Identifikasi ............................................ 14
3. Uji diagnostik laboratorium .......................................... 16
C. Staphylococcus aureus .................................................... 18
1. Klasifikasi .................................................................... 19
2. Morfologi dan identifikasi ............................................ 19
3. Uji diagnostik laboratorium .......................................... 20
D. Daun Jambu Biji ( Psidium guajava L.) ............................. 23
1. Klasifikasi .................................................................... 23
2. Uraian tumbuhan ......................................................... 24
3. Nama lain .................................................................... 24
4. Kandungan kimia ........................................................ 24
5. Khasiat ........................................................................ 25
E. Metode ekstraksi .............................................................. 25
1. Seduhan ..................................................................... 26
2. Infusa ........................................................................... 26
3. Dekokta........................................................................ 27
4. Maserasi ..................................................................... 27
F. Kromatografi Lapis Tipis (KLT).......................................... 28
G. Densitometri ...................................................................... 28
H. Pengujian Aktifitas Tanaman............................................. 29
I. Kerangka Konsep .............................................................. 31
J. Hipotesa ............................................................................ 32
K. Definisi Dan Istilah ............................................................ 32
BAB III. METODE PENELITIAN ........................................................ 34
A. Jenis penelitian ................................................................ 34
B. Waktu dan lokasi penelitian .............................................. 34
C. Variabel penelitian ............................................................ 35
D. Populasi dan sampel ........................................................ 35
E. Bahan dan alat penelitian ................................................. 35
F. Cara pengumpulan data ................................................... 36
G. Cara kerja ......................................................................... 37
1. Uji pendahuluan ........................................................... 37
2. Isolasi dan identifikasi .................................................. 38
3. Pengolahan daun jambu biji......................................... 39
4. Pembuatan ekstrak daun jambu biji ............................. 39
5. Analisis densitometri dengan TLC scanner................ 41
6. Uji aktifitas ................................................................... 41
H. Analisis Data ..................................................................... 43
BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN ................................................. 44
A. Hasil .................................................................................. 44
B. Pembahasan ..................................................................... 49
BAB V. PENUTUP ............................................................................. 57
A. Kesimpulan ....................................................................... 57
B. Saran ................................................................................ 57
DAFTAR PUSTAKA
DAFTAR TABEL
Nomor
Halaman
1 Hasil uji pendahuluan ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) .................................................... 44
2 Hasil uji aktifitas ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap pertumbuhan Streptococcus mutans ............ 45
3 Hasil uji aktifitas ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap pertumbuhan Staphylococcus aureus .......... 46
4 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak seduhan daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 254 nm ................................................................................ 46
5 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak seduhan daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 366 nm ................................................................................ 47
6 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak infus daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 254 nm 47
7 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak infus daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 366 nm 47
8 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak dekokta daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 254 nm ............................................................................... 47
9 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak dekokta daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 366 nm ............................................................................... 48
10 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak maserasi pelarut etanol 50% daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 254 nm ........................................................ 48
11 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak maserasi pelarut etanol 50% daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 366 nm ........................................................ 48
12 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak maserasi pelarut etanol 96% daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 254 nm ........................................................ 49
13 Hasil analisis TLC scanner Ekstrak maserasi pelarut etanol 96% daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan menggunakan lampu UV 366 nm ........................................................ 49
DAFTAR GAMBAR
Nomor
Halaman
1 Karies gigi ............................................................................. 5
2 Faktor penyebab karies gigi .................................................. 8
3 Pewarnaan gram Streptococcus mutans .............................. 14
4 Pewarnaan gram Staphylococcus aureus ............................ 19
5 Daun jambu biji...................................................................... 23
6 Tes difusi (Disc diffusion) ..................................................... 30
7 Staphylococcus aureus sebelum dan sesudah perlakuan ..... 55
8 Streptococcus mutans sebelum dan sesudah perlakuan ...... 56
DAFTAR LAMPIRAN
Nomor
Halaman
1 Alur kerja .............................................................................. 61
2 Skema isolasi dan identifikasi Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus .............................................. 62
3 Skema pengujian Disc diffusion ........................................... 63
4 Gambar hasil uji pendahuluan ............................................... 64
5 Profil KLT ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan lampu UV 366 nm ........................................... 65
6 Profil KLT ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) dengan lampu UV 254 nm ........................................... 66
7 Hasil uji disc diffusion ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap Streptococcus mutans 67
8 Hasil uji disc diffusion ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap Staphylococcus mutans
.................................................................................... 68
BAB I
PENDAHULUAN
A. Latar Belakang
Seiring dengan perkembangan jaman, konsumsi makanan pada
masyarakat mengalami perubahan. Hal ini menyebabkan meningkatnya
angka kejadian penyakit mulut pada manusia, dengan prevalensi tertinggi
adalah karies gigi. Adanya flora bakterial mulut dalam bentuk plak
merupakan syarat utama bagi terbentuknya karies. Oleh karena itu
pencegahan karies didasarkan pada pengendalian bakteri pada plak
(Darby and Walsh, 1995; Schuurs, 1992).
Karies dan penyakit periodensium merupakan penyakit gigi dengan
prevalensi tinggi, bahkan di negara-negara maju sampai mencapai 50%.
Di Indonesia penyakit gigi dan mulut yang bersumber dari karies gigi
menjadi urutan tertinggi yaitu sebesar 45,68%, dan termasuk dalam 10
besar penyakit yang diderita oleh masyarakat (Sugito, 2000). Berdasarkan
Riset Kesehatan Dasar (RISKESDA) 2007, indeks DMF-T (Delayed
Missing, Filled-Teeth) secara nasional sebesar 4,85. Ini berarti bahwa
rata-rata kerusakan gigi pada penduduk Indonesia lima gigi per orang.
Prevalensi karies aktif di Sulawesi Selatan sebesar 50,4%
Karies merupakan penyakit infeksi hasil interaksi bakteri kariogenik,
hospes dan makanan tinggi karbohidrat (Nishikawara et al, 2006). Karies
gigi (gigi berlubang) merupakan masalah utama dalam penyakit gigi yang
dapat mengganggu aktivitas sehari-hari. Penyebab utama dari karies gigi
adalah penumpukan plak gigi yang banyak mengandung bakteri (Dirks
and Helderman, 1993). Bakteri yang berperan penting dalam
pembentukan plak adalah bakteri yang memfermentasi polisakarida
(karbohidrat) dan menghasilkan asam organik sehingga mengubah pH
rongga mulut menjadi asam. Streptococcus mutans dan Staphylococcus
aureus adalah bakteri yang dapat memfermentasi karbohidrat (Brooks et
al, 2005)
Upaya pencegahan karies gigi dapat dilakukan secara mekanis dan
kimiawi. Cara mekanis dapat dilakukan dengan cara pembersihan plak
secara teratur. Menyikat gigi membantu kontrol plak dan merupakan
langkah awal untuk mengontrol karies dan penyakit periodontal baik
individu maupun populasi (Kidd and Joyston, 1992). Cara kimiawi salah
satunya dengan mengkonsumsi makanan yang mengandung fitokemikal
(Dirks and Helderman, 1993). Fitokemikal dapat diperoleh dalam
tumbuhan, diantaranya yaitu daun jambu biji (Psidium guajava L.).
Fitokemikal yang terdapat dalam daun jambu biji diantaranya adalah
plavonoid, tannin, minyak atsiri, alkaloid, dan asam malat (Pangkalan,
2011).
Menurut Jebashere et al (2011), ekstrak ethyl acetat Psidii Folium
mempunyai aktifitas terhadap Streptococcus mutans yang diisolasi dari
pasien karies gigi di India dengan nilai MIC < 0,076 mg/ml.
Berdasarkan uraian di atas maka akan dilakukan penelitian tentang
aktifitas ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap
pertumbuhan Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus
penyebab karies gigi.
B. Rumusan Masalah
Berdasarkan latar belakang di atas maka permasalahan yang akan
dikaji dalam penelitian ini adalah :
1. Apakah ekstrak daun jambu biji ( Psidium guajava L. ) memiliki
aktifitas menghambat pertumbuhan Streptococcus mutans dan
Staphylococcus aureus penyebab karies gigi ?
2. Apakah metode ekstraksi berpengaruh terhadap kemampuan ekstrak
daun jambu biji (Psidium guajava L.) dalam menghambat pertumbuhan
Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus penyebab karies
gigi?
C. Tujuan Penelitian
Penelitian ini bertujuan untuk :
1. Untuk menentukan aktifitas dari ekstrak daun jambu biji (Psidium
guajava L.) terhadap pertumbuhan Streptococcus mutans dan
Staphylococcus aureus penyebab karies gigi.
2. Untuk menentukan sediaan ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava
L.) yang paling aktif dalam menghambat pertumbuhan Streptococcus
mutans dan Staphylococcus aureus penyebab karies gigi.
3. Untuk melihat profil senyawa kimia yang terkandung dalam masing-
masing ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.).
D. Manfaat Penelitian
Manfaat yang diharapkan dari penelitian ini adalah :
1. Sebagai upaya alternatif terhadap pemberantasan penyakit gigi dan
mulut di masa mendatang.
2. Untuk pengembangan ilmu pengetahuan terutama dalam pengobatan
penyakit gigi dan mulut dengan menggunakan obat tradisional
3. Sebagai sumber informasi bagi peneliti selanjutnya yang berminat
dalam pengujian aktifitas bahan alam terhadap pertumbuhan
mikroorganisme penyebab karies gigi.
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
A. Karies Gigi
1. Definisi karies
Karies merupakan suatu penyakit jaringan keras gigi, yaitu email,
dentil dan sementum, yang disebabkan oleh aktivitas suatu jasad renik
dalam suatu karbohidrat yang dapat diragikan. Tandanya adalah adanya
demineralisasi jaringan keras gigi yang kemudian diikuti oleh kerusakan
bahan organiknya. Akibatnya, terjadi invasi bakteri dan kematian pulpa
serta penyebaran infeksinya ke jaringan periapeks yang dapat
menyebabkan nyeri. Walaupun demikian, mengingat mungkinnya
remineralisasi terjadi, pada stadium yang sangat dini penyakit ini dapat
dihentikan (Kidd and Joyston, 1992)
Gambar 1. Karies gigi (http://www. dental-caries-treatment-and-prevention)
2. Etiologi karies gigi
Karies gigi adalah suatu proses kronis, regresif yang dimulai
dengan larutnya mineral email, sebagai akibat terganggunya
keseimbangan antara email dan sekelilingnya yang disebabkan oleh
pembentukan asam microbial dari substrat (medium makanan dari
bakteri), kemudian timbul destruksi komponen-komponen organik dan
akhirnya terjadi kavitasi (pembentukan lubang). Karies gigi merupakan
penyakit menahun dan tidak dapat sembuh dengan sendirinya. Dengan
demikian apabila tidak dirawat dapat merusak keseluruhan gigi dan
jaringan pulpa serta dapat menimbulkan infeksi pada jaringan sekitarnya
(Pickard, 2002).
Etiologi karies gigi adalah multifaktor. Karies gigi hanya akan
terbentuk apabila terjadi interaksi antara keempat faktor berikut (Losso
et al, 2009) :
a. Mikroorganisme kariogenik.
Bakteri yang membentuk plak pada gigi memegang peranan
penting dalam terjadinya karies gigi. Bakteri yang berperan penting dalam
pembentukan plak adalah bakteri yang mampu memfermentasi
polisakarida (karbohidrat) secara ekstraseluler, yaitu bakteri dari genus
Streptococcus, Staphylococcus dan Lactobacillus. Gula monosakarida dan
disakarida akan dimetabolisasi oleh bakteri tersebut menghasilkan asam
yang dapat menyebabkan demineralisasi pada gigi sehingga terjadinya
kavitas. Proses demineralisasi ini adalah reversible. Tetapi, kehilangan
mineral semasa proses tersebut yang menyebabkan terjadinya kavitas
adalah karena serangan asam yang panjang dan melampaui ketahanan
host.
b. Substrat yang bisa difermentasi.
Dibutuhkan waktu minimum tertentu bagi plak dan karbohidrat yang
menempel pada gigi untuk membentuk asam dan mampu mengakibatkan
demineralisasi email. Karbohidrat ini menyediakan substrat untuk
pembuatan asam bagi bakteri dan sintesa polisakarida ekstra sel.
Walaupun demikian, tidak semua karbohidrat sama derajat kariogeniknya.
Karbohidrat yang kompleks misalnya pati relatif tidak berbahaya karena
tidak dicerna secara sempurna di mulut, sedangkan karbohidrat dengan
berat molekul yang rendah seperti gula akan segera meresap ke dalam
plak dan dimetabolisme dengan cepat oleh bakteri. Dengan demikian,
makanan minuman yang mengandung gula akan menurunkan pH plak
dengan cepat sampai pada level yang dapat menyebabkan demineralisasi
email. Plak akan tetap bersifat asam selama beberapa waktu. Untuk
kembali ke pH normal sekitar 7, dibutuhkan waktu 30-60 menit. Oleh
karena itu konsumsi gula yang sering dan berulang-ulang akan tetap
menahan pH plak dibawah normal dan menyebabkan demineralisasi
email.
Sintesa polisakarida ekstra sel dari sukrosa lebih cepat ketimbang
glukosa, fruktosa dan laktosa. Oleh karena itu, sukrosa merupakan gula
yang paling kariogenik, walaupun gula lainnya tetap berbahaya. Dan
karena itu sukrosa merupakan gula yang paling banyak dikonsumsi, maka
sukrosa merupakan penyebab karies yang utama (Kidd and Joyston,
1992).
c. Host yang rentan.
Terdapat beberapa faktor host yang dapat mempengaruhi gigi
untuk terjadinya karies, antara lain termasuk hiposaliva, enamel
hipoplasia, perkembangan enamel yang tidak lengkap, morfologi gigi,
faktor imunologi, serta faktor genetik gigi seperti ukuran, permukaan, dan
kedalaman pit/fisur (Zafar et al, 2006).
d. Waktu.
Interaksi antara ketiga faktor tersebut selama suatu periode akan
merangsang pembentukan karies, yang dimulai dengan munculnya white
spots pada permukaan gigi tanpa adanya kavitas akibat proses
demineralisasi pada bagian enamel. Faktor waktu yang dimaksudkan
adalah lamanya pemaparan gigi terhadap penyebab-penyebab di atas
yang menyebabkan terjadinya karies dan bervariasi pada setiap orang,
diperkirakan antara 6-48 bulan (Pinkham, 2005).
Gambar 2. Faktor penyebab karies gigi (Panjaitan, 1997)
3. Gejala karies dini
Gejala paling dini suatu karies yang terlihat secara makroskopik
adalah adanya bercak putih. Warnanya sangat berbeda bila dibandingkan
dengan enamel sekitarnya yang masih sehat. Kadang-kadang lesi akan
tampak berwarna coklat disebabkan oleh materi di sekelilingnya yang
terserap ke dalam pori-pori enamel (Kidd and Joyston, 1992). Karies yang
berwarna coklat hingga kehitaman lebih lama menimbulkan lubang pada
gigi, sedangkan noda yang berwarna putih lebih cepat menimbulkan
lubang (Tarigan, 1991).
4. Klasifikasi karies gigi
Karies dapat diklasifikasikan berdasarkan daerah anatomis tempat
karies itu timbul. Dengan demikian lesi bisa dimulai pada pit dan fisur atau
pada permukaan halus. Lesi permukaan halus dimulai pada email atau
sementum dan dentin akar yang terbuka (karies akar). Kemungkinan lain
karies bisa timbul pada tepian restorasi. Ini disebut karies rekuren atau
karies sekunder (Kidd and Joyston, 1992).
Karies juga dapat diklasifikasikan berdasarkan stadium karies
(dalamnya karies) yaitu (Tarigan, 1991) :
a. Karies superficialis
Dimana karies baru mengenai enamel saja, sedang dentin
belum.
b. Karies media
Dimana karies sudah mengenai dentin, tetapi belum melebihi
setengah dentin.
c. Karies profunda
Dimana karies sudah mengenai lebih dari setengah dentin dan
kadang-kadang sudah mengenai pulpa.
Karies bisa juga digolongkan berdasarkan keparahan atau
kecepatan berkembangnya (Kidd and Joyston, 1992; Pickard et al, 2002):
a. Karies ringan
Jika yang terkena karies adalah daerah yang memang sangat
rentan terhadap karies misalnya oklusal gigi molar permanen.
b. Karies moderat/sedang
Jika karies meliputi permukaan oklusal dan proksimal gigi
posterior.
c. Karies parah
Jika karies telah menyerang gigi anterior, suatu daerah yang
biasanya bebas karier.
5. Pencegahan karies
Pencegahan karies gigi bertujuan untuk mempertinggi taraf hidup
dengan memperpanjang kegunaan gigi di dalam mulut. Lima strategi
umum yang merupakan kunci dalam mencegah terjadinya karies gigi yaitu
(Kidd and Joyston, 1992) :
a. Menjaga kebersihan mulut.
Kebersihan mulut yang baik mencakup gosok gigi sebelum atau
setelah sarapan dan sebelum tidur di malam hari serta membersihkan plak
dengan benang gigi (flossing) setiap hari. Hal ini sangat efektif dalam
mencegah terjadinya pembusukan permukaan yang licin. Menggosok gigi
mencegah terbentuknya karies di pinggir gigi dan flossing dilakukan di
sela-sela gigi yang tidak dapat dicapai oleh sikat gigi. Menggosok gigi
yang baik memerlukan waktu selama 3 menit. Pada awalnya plak agak
lunak dan bisa diangkat dengan sikat gigi yang berbulu halus dan benang
gigi minimal setiap 24 jam. Jika plak sudah mengeras maka akan sulit
untuk membersihkannya.
b. Makanan.
Semua karbohidrat bisa menyebabkan pembusukan gigi, tetapi
yang paling jahat adalah gula. Semua gula sederhana, termasuk gula
meja (sukrosa), gula di dalam madu (levulosa dan dekstrosa), buah-
buahan (fruktosa) dan susu (laktosa) memiliki efek yang sama terhadap
gigi. Jika gula bergabung dengan plak, maka dalam waktu sekitar 20
menit, bakteri Streptococcus mutans di dalam plak akan menghasilkan
asam. Jumlah gula yang dimakan tidak masalah, yang memegang peran
penting adalah lamanya gula berada di dalam gigi. Orang yang cenderung
mengalami karies harus mengurangi makanan yang manis-manis.
Berkumur-kumur setelah memakan makanan manis akan menghilangkan
gula, tetapi cara yang lebih efektif adalah dengan menggosok gigi. Untuk
menghindari terbentuknya karies, sebaiknya meminum minuman dengan
pemanis buatan atau minum teh atau kopi tanpa gula.
c. Fluor.
Fluor menyebabkan gigi, terutama email, tahan terhadap asam
yang menyebabkan terbentuknya karies. Sangat efektif mengkonsumsi
fluor pada saat gigi sedang tumbuh dan mengeras, yaitu sampai usia 11
tahun. Penambahan fluor pada air adalah cara yang paling efisien untuk
memenuhi kebutuhan fluor pada anak-anak. Tetapi jika terlalu banyak
mengandung fluor, bisa menyebabkan timbulnya bintik-bintik atau
perubahan warna pada gigi. Jika air yang diminum mengandung sedikit
fluor, bisa diberikan obat tetes atau tablet natrium florida. Fluor juga bisa
dioleskan langsung oleh dokter gigi pada gigi yang cenderung mengalami
pembusukan. Akan lebih baik jika menggunakan pasta gigi yang
mengandung fluor.
d. Penambalan.
Penambalan dapat digunakan untuk melindungi lekukan pada gigi
belakang yang sulit dijangkau. Setelah dibersihkan, daerah yang akan
ditambal ditutup dengan plastik cair. Setelah cairan plastik mengeras,
akan terbentuk penghalang yang efektif, dimana bakteri di dalam lekukan
akan berhenti menghasilkan asam karena makanan tidak dapat
menjangkau lekukan tersebut. Sebuah tambalan bertahan cukup lama;
sekitar 90% bertahan sampai 1 tahun dan 60% bertahan sampai 10 tahun;
tetapi kadang perlu dilakukan perbaikan atau penggantian.
e. Terapi antibakteri.
Beberapa orang memiliki bakteri penyebab pembusukan yang sangat
aktif di dalam mulutnya. Orang tua bisa menularkan bakteri ini kepada
anaknya melalui ciuman. Bakteri tumbuh di dalam mulut anak setelah gigi
pertama tumbuh dan kemudian bisa menyebabkan terjadinya karies.
Karena itu kecenderungan bahwa pembusukan gigi terjadi dalam satu
keluarga, tidak selalu menunjukkan kebersihan mulut maupun kebiasaan
makan yang jelek.
B. Streptococcus mutans
Streptococcus mutans adalah salah satu jenis bakteri yang mempunyai
kemampuan dalam proses pembentukan plak dan karies gigi. Bakteri ini
pertama kali diisolasi dari plak gigi oleh Clark pada tahun 1924 yang
memiliki kecendrungan membentuk kokus dengan formasi rantai panjang
apabila ditanam pada medium. Streptococcus mutans menjadi yang paling
banyak menyebabkan gigi berlubang di sekitar luka tetapi sampai pada
tahun 1960-an mikroba tersebut tidak ditemukan. Kemudiaan gula dan
sumber energi lain dimetabolisme, sehingga mikroba menghasilkan asam
yang menyebabkan rongga pada gigi ( Nugraha, 2008).
Streptococcus mutans adalah bersifat asidogenik yaitu
menghasilkan asam, asidodurik, mampu tinggal pada lingkungan asam,
dan menghasilkan suatu polisakarida yang dapat melekat, yang disebut
dextran. Oleh karena kemampuan ini, S. mutans bisa menyebabkan
melekatnya dan mendukung bakteri lain menuju ke email gigi. Dengan
demikian pH turun dan keadaan pH asam ini dapat melarutkan email gigi
sehingga terjadi karies gigi( Nugraha, 2008).
Gambar 3. Pewarnaan Gram Streptococcus sp. (http://bagusrn-fpk09.web.unair.ac.id)
1. Klasifikasi (Capuccino and Natalie, 2001)
Kingdom : Bacteria
Phylum : Firmicutes
Class : Bacilli
Order : Lactobacillales
Family : Streptococcaceae
Genus : Streptococcus
Species : Streptococcus mutans
2. Morfologi dan identifikasi
a. Ciri-ciri organisme.
Streptococcus mutans merupakan bakteri gram positif, bersifat
nonmotil (tidak bergerak), bakteri anaerob fakultatif. Memiliki bentuk kokus
berbentuk bulat atau bulat telur dan tersusun dalam rantai. Bakteri ini
tumbuh secara optimal pada suhu sekitar 180C – 400C. Streptococcus
mutans biasanya ditemukan pada rongga gigi manusia yang luka dan
menjadi bakteri yang paling kondusif menyebabakan karies untuk email
gigi (Nugraha,2008).
b. Kultur.
Kebanyakan streptococcus dapat tumbuh dalam media yang padat
dan tampak sebagai koloni discoid. Biasanya berdiameter 1-2 mm. strain
yang menghasilkan bahan berupa kapsul seringkali berkembang ke arah
koloni mucoid (Brooks et al, 2005)..
c. Karakteristik pertumbuhan.
Energi secara prinsip didapat dari pemanfaatan gula. Pertumbuhan
streptococcus cenderung lambat pada media padat atau media cair
kecuali diperkaya dengan cairan darah atau cairan jaringan. Kebutuhan
akan makanan sangat beragam diantara jenis-jenis yang berbeda. Bakteri
yang patogen pada manusia adalah yang paling sulit karena memerlukan
berbagai faktor pertumbuhan. Pertumbuhan dan proses hemolisis akan
dibantu dengan mengeramkan bakteri dalam suasana CO2 10% (Brooks
et al, 2005).
3. Uji diagnostik laboratorium
a. Spesimen.
Spesimen diperoleh tergantung dari letak infeksi streptococcus.
Usapan tenggorokan, nanah atau darah diperlukan untuk kultur. Serum
diperlukan untuk penentuan antibodi.
b. Hapusan.
Hapusan dari nanah lebih sering menunjukkan coccus tunggal atau
berpasangan daripada rantai. Coccus kadangkala bersifat gram negatif
karena organisme tidak bertahan hidup dan kehilangan kemampuannya
untuk menyimpan bahan warna biru (crystal violet) dan yang seharusnya
gram positif.
c. Kultur.
Spesimen yang dicurigai mengandung streptococci anaerob dikultur
pada cawan agar darah. Media anaerobik yang sesuai juga harus
diinokulasi. Inkubasi pada 10 persen CO2 kadang-kadang mempercepat
hemolisis. Irisan inokulum pada agar darah memiliki pengaruh yang sama,
karena oksigen tidak mudah berdifusi melalui medium ke organisme yang
menempel dan oksigen tidak mudah berdifusi melalui medium ke
organisme yang menempel dan oksigen inilah yang mengakibatkan
streptolisin O menjadi tidak aktif.
Kultur darah akan menumbuhkan streptococcus hemolitik grup A
(seperti pada sepsis) dalam beberapa jam atau beberapa hari.
Streptococcus hemolitik α tertentu dan enterococcus tumbuh dengan
lambat, sehingga kuktur darah pada kasus endokarditis yang dicurigai
tidak berubah menjadi positif dalam 1 minggu atau lebih.
Macam dan tingkatan dari hemolisis (dan penampakan koloni)
membantu penempatan mikroorganisme pada kelompoknya.
Streptococcus grup A dapat dengan cepat diidentifikasi oleh tes antibodi
fluresens, tes PYR, dan tes khusus untuk melihat keberadaan antigen
kelompok A khusus. Pengelompokkan serologis ditandai oleh tes presipitin
atau koagulasi yang seharusnya terbentuk ketika diperlukan untuk
klasifikasi dan untuk alas an epidemik. Streptococcus yang termasuk grup
A dimungkinkan untuk diidentifikasi dengan adanya hambatan
pertumbuhan oleh bacitracin, tetapi hanya bisa digunakan bila tes difinitif
tidak tersedia.
d. Tes deteksi antigen.
Beberapa peralatan komersial tersedia untuk deteksi cepat dari
antigen streptococcal kelompok A penyebab sakit kerongkongan.
Perangkat ini menggunakan enzim atau metode kimia untuk mengekstrak
antigen dari jaringan yang sakit tadi kemudian menggunakan EIA atau tes
aglutinasi untuk menunjukkan adanya antigen. Ada 60-90 persen yang
sensitif dan 98-99 persen yang spesifik ketika dibandingkan dengan
metode kultur. Tes perlengkapan lebih cepat dibandingkan metode kultur.
e. Tes serologi.
Peningkatan titer antibodi dari antigen streptococcus grup A dapat
diperkirakan : seperti antibodi meliputi antistreptolisin O (ASO), terutama
pada penyakit respiratory, anti-D Nase dan antihyaluronidase, terutama
pada infeksi kulit; streptokinase, antibodi anti-M tipe spesifik; dan lainnya.
Dari semuanya Anti-ASO titer paling luas penggunaannya (Brooks et al,
2005).
C. Staphylococcus aureus
Stafilokokus merupakan sel gram positif berbentuk bulat biasanya
tersusun dalam bentuk kluster yang tidak teratur seperti anggur.
Stafilokokus tumbuh dengan cepat pada beberapa tipe media dengan aktif
melakukan metabolisme, melakukan fermentasi karbohidrat dan
menghasilkan bermacam-macam pigmen dari warna putih hingga kuning
gelap. Beberapa merupakan anggota flora normal pada kulit dan selaput
lendir manusia; yang lain ada yang menyebabkan supurasi dan bahkan
septimia fatal. Stafilokokus yang patogen sering menghemolisis darah,
mengkoagulasi plasma dan menghasilkan berbagai enzim ekstraseluler
dan toksin. Bentuk keracunan makanan paling sering disebabkan oleh
enterotoksin stafilokokal yang stabil terhadap panas. Stafilokokus cepat
menjadi resisten terhadap beberapa antimikroba dan ini merupakan
masalah besar pada terapi (Brooks et al, 2005).
Gambar 4. Pewarnaan Gram Staphylococcus sp. (American Society for Microbiology. 2005)
1. Klasifikasi (Capuccino and Natalie, 2001)
Kingdom : Bacteria
Phylum : Firmicutes
Class : Bacilli
Order : Bacillales
Family : Staphylococcaceae
Genus : Staphylococcus
Species : Staphylococcu aureus
2. Morfologi dan identifikasi
a. Ciri khas organisme.
Stafilokokkus adalah sel yang berbentuk bola dengan diameter
1μm yang tersusun dalam bentuk kluster yang tidak teratur. Kokkus
tunggal, berpasangan, tetrad dan berbentuk rantai juga tampak dalam
biakan cair. Stafilokukkus bersifat nonmotil dan tidak membentuk spora. Di
bawah pengaruh obat seperti penisilin, stafilokokus mengalami lisis.
b. Kultur
Stafilokokus tumbuh dengan baik pada berbagai media bakteriologi
di bawah suasana aerobik atau mikroaerofilik. Tumbuh dengan cepat pada
temperatur 37 0C namun pembentukan pigmen yang terbaik adalah pada
temperatur kamar ( 20- 35 0 C ). Koloni pada media yang padat berbentuk
bulat, lembut dan mengkilat. S. aureus biasanya membentuk koloni abu-
abu hingga kuning emas. Tidak ada pigmen yang dihasilkan secara an
aerobik atau pada media cair. Berbagai macam tingkat haemolisis
dihasilkan oleh S. aureus dan kadang- kadang oleh spesies lain.
c. Karakteristik pertumbuhan.
Stafilokokus menghasilkan katalase yang membedakannya dengan
streptokokus. Stafilokokus memfermentasi karbohidrat, menghasilkan
asam laktat dan tidak menghasilkan gas. Aktifitas proteolitik bervariasi dari
satu galur ke galur lain (Brooks et al, 2005).
3. Uji diagnostik laboratorium
a. Spesimen.
Usapan permukaan, pus, darah, aspirat trakea atau cairan spinal,
dipilih bergantung pada tempat infeksi.
b. Hapusan.
Stafilokokus yang khas dilihat pada apusan yang dicat dari pus atau
sputum, hapusan ini tidak bisa membedakan organisme saprofitik (S.
epidermidis) dari organisme patogen (S. aureus).
c. Biakan.
Spesimen yang ditanam pada lempeng agar darah menunjukkan
koloni yang khas dalam waktu 18 jam pada suhu 37oC tetapi hemolisis
dan produksi pigmen mungkin tidak terjadi sampai beberapa hari
kemudian, dan optimal pada suhu kamar. Spesimen yang dikontaminasi
dengan flora campuran dapat dibiakkan pada media yang mengandung
NaCl 7,5%; garam tersebut menghambat sebagian besar flora normal
lainnya tapi tidak menghambat S. aureus.
d. Tes katalase.
Tetes larutan hidrogen peroksida ditempatkan pada gelas objek
dan sejumlah kecil bakteri yang tumbuh diletakkan dalam larutan tersebut,
pembentukan gelembung (pelepasan oksigen) menunjukkan bahwa tes
positif. Tes ini dapat dilakukan dengan cara menuangkan larutan hidrogen
peroksida pada biakan bakteri yang padat pada agar miring dan diamati
munculnya gelembung.
e. Tes koagulase.
Plasma kelinci atau manusia yang ditambah sitrat dicairkan dalam
perbandingan 1 : 5 dicampur dengan volume yang sama dari biakan cair
atau dari koloni pada agar dan diinkubasi pada suhu 37o C. satu tabung
plasma dicampur dengan media cair yang steril dipakai sebagai kontrol.
Jika gumpalan terjadi dalam waktu 1-4 jam berarti tes positif.
Stafiolokokus koagulase positif dianggap patogen bisa manusia
namun demikian stafilokokus koagulase positif dari anjing (Staphylococcus
intermedius) dan dolpin (Staphylococcus delphini) jarang menyebabkan
penyakit pada manusia. Infeksi alat prostetik dapat disebabkan oleh
organisme kelompok S. epidermidis koagulase negatif.
f. Uji kepekaan.
Uji kepekaan mikrodilusi atau difusi cakram hendaknya dilakukan
secara rutin pada isolate stafilokokus dari infeksi yang secara klinis
bermakna. Resistensi terhadap penisilin G dapat diramalkan dengan uji β-
laktamase positif ; sekitar 90% S. aureus menghasilkan β-laktamase.
Resistensi terhadap nafsilin (dan oksasilin serta metasilin) terjadi pada
sekitar 20% isolate S. aureus dan hampir 75% isolate S. epidermidis.
g. Uji serologis dan penentuan tipe.
Antibodi terhadap asam teikoat dapat dideteksi pada infeksi yang
lama dan dalam. Uji serologis ini sedikit bermanfaat dalam praktek. Pola
kepekaan terhadap antibiotik bermanfaat dalam melacak infeksi S. aureus
dan dalam menentukan jika bakterimia disebabkan oleh S. epidermidis
multiple, apakah disebabkan galur yang sama (Brooks et al, 2005).
D. Daun Jambu biji (Psidium guajava L.)
Gambar 5. Daun jambu biji (http://www.iptek.net.id)
1. Klasifikasi ( Benson, L. 1957)
Kingdom : Plantae
Divisi : Spermatophyta
Sub divisi : Angiospermae
Kelas : Dicotyledoneae
Ordo : Myrtales
Famili : Myrtaceae
Genus : Psidium
Spesies : Psidium guajava L.
2. Uraian tumbuhan
Jambu biji atau bahasa latinnya Psidium guajava L. merupakan
jenis tanaman perdu dengan cabang yang banyak. Tinggi pohon ini rata-
rata sekitar 10-12 meter. Tanaman yang berasal dari Amerika Tengah ini
dapat tumbuh di dataran rendah maupun dataran tinggi. Ketinggian tempat
yang sesuai untuk tanaman ini sekitar 1.200 meter dari permukaan laut.
Daunnya berbentuk bulat telur, kasar, dan kusam. Bunganya relatif kecil
dan berwarna putih. Besar buahnya sangat bervariasi, berisi banyak biji
kecil-kecil dan ada juga yang tidak mempunyai biji yang biasa disebut
dengan jambu sukun (Wirakusumah, 2000).
3. Nama lain
Psidium guajava (Inggris/Belanda), Jambu Biji (Indonesia); Jambu
klutuk, Bayawas, tetokal, Tokal (Jawa); Jambu klutuk, Jambu Batu
(Sunda), Jambu bender (Madura) (Wirakusumah, 2000).
4. Kandungan kimia
Daun jambu biji mengandung zat-zat penyamak (psitadin) sekitar
9%, minyak atsiri berwarna kehijauan yang mengandung eugenol sekitar
0,4%, minyak lemak 6%, damar 3% dan garam-garam mineral
(Kartasapoetra, 1988), juga mengandung plavonoid yang terdiri dari morin,
guaijavarin dan quercetin (Arima and Danno, 2002), triterpenoid yang
terdiri dari asam betulinic dan lupeol (Ghosh et al, 2010). Menurut Kim
et al (2011), Daun Jambu Biji mengandung senyawa yang memiliki
aktivitas dalam menangkap radikal bebas yaitu 3-hydroxybutiric acid,
acetic acid, glutamic acid, asparagines, citric acid, malonic acid, trans-
aconitic acid, ascorbic acid, maleic acid, cis-aconitic acid, epicatechin,
protocatechuic acid dan xanthine.
5. Khasiat
Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) digunakan dibeberapa
negara sebagai obat tradisional untuk mengobati diare, gangguan
gastrointestinal dan pernafasan, hipertensi dan diabetes mellitus.
Beberapa penelitian menyarankan bahwa daun Jambu Biji bermanfaat
sebagai anti oksidatif, anti kanker, anti inflamasi, anti koagulase dan anti
diabetes (Kim et al, 2011).
E. Metode ekstraksi
Ekstraksi atau penyarian adalah kegiatan penarikan zat yang dapat
larut yang dapat larut dari bahan yang tidak dapat larut dengan pelarut
cair. Simplisia yang disari, mengandung zat aktif yang dapat larut dan zat
yang tidak dapat larut seperti serat, karbohidrat, protein dan lain-lain
(Ditjen POM, 1986).
1. Seduhan
Seduhan merupakan suatu sediaan cair yang diperoleh dengan
menyari simplisia nabati dengan cara diseduh dengan air mendidih,
pembuatan sediaan seduhan seduhan untuk tujuan pengobatan banyak
dilakukan berdasarkan pengalaman seperti pada pembuatan infus.
Pembuatan : air mendidih dituangkan ke simplisia, diamkan selama
5-10 menit dan saring. Jumlah simplisia dan air dinyatakan dalam takaran
gram dan air dinyatakan dalam takaran gram dan air dalam takaran ml
(Ditjen POM, 2000).
2. Infusa
Infusa adalah sediaan cair yang dibuat dengan mengekstraksi
simplisia nabati dengan air pada suhu 90O C selama 15 menit (Ditjen
POM, 1986; Ditjen POM, 2000). Pembuatan infus merupakan cara yang
paling sederhana untuk membuat sediaan herbal dari bahan yang lunak
seperti daun dan bunga. Dapat diminum panas atau dingin. Khasiat
sediaan herbal umumnya karena kandungan minyak atsiri, yang akan
hilang apabila tidak menggunakan penutup pada pembuatan infus (Ditjen
POM, 2000).
Penyarian dengan cara ini menghasilkan sari yang tidak stabil dan
mudah tercemar oleh kuman dan kapang. Oleh sebab itu sari yang
diperoleh dengan cara ini tidak boleh disimpan lebih dari 24 jam (Ditjen
POM, 1986).
3. Dekokta
Dekokta adalah sediaan cair yang dibuat dengan mengekstraksi
sediaan herbal dengan air pada suhu 90 OC selama 30 menit (Ditjen POM,
2000).
4. Maserasi
Maserasi merupakan cara penyarian yang sederhana. Maserasi
dilakukan dengan cara merendam serbuk simplisia dalam cairan penyari.
Cairan penyari akan menembus dinding sel dan masuk ke dalam rongga
sel yang mengandung zat aktif, zat aktif akan larut dank arena adanya
perbedaan konsentrasi antara larutan zat aktif di dalam sel dengan di luar
sel, maka larutan yang terpekat didesak keluar. Peristiwa tersebut
berulang sehingga terjadi keseimbangan antara larutan di luar sel dan di
dalam sel.
Cairan penyari yang digunakan dapat berupa air, etanol, air-etanol
atau pelarut lain. Bila cairan penyari digunakan air maka untuk mencegah
timbulnya kapang dapat ditambahkan bahan pengawet, yang diberikan
pada awal penyarian (Ditjen POM, 1986).
F. Kromatografi Lapis Tipis (KLT)
Kromatografi Lapis Tipis (KLT) dikembangkan oleh Izmailoff dan
Schraiber pada tahun 1938. Pada kromatografi lapis tipis, fase diamnya
berupa lapisan yang seragam (uniform) pada permukaan bidang datar
yang didukung oleh lempeng kaca, pelat alumunium atau pelat plastik.
Penjerap yang paling sering digunakan pada KLT adalah silica dan
serbuk selulosa, sementara mekanisme sorpsi-desorpsi (suatu
mekanisme perpindahan solut dari fase diam ke fase gerak atau
sebaliknya) yang utama pada KLT adalah partisi dan adsorbsi.
Fase gerak pada KLT dapat dipilih dari pustaka, tetapi lebih sering
dengan mencoba-coba karena waktu yang diperlukan hanya sebentar.
Sistem yang paling sederhana ialah dengan menggunakan campuran 2
pelarut organik karena daya elusi campuran kedua pelarut ini dapat
mudah diatur sedemikian rupa sehingga pemisahan dapat terjadi secara
optimal (Rohman, A., 2009).
G. Densitometri
Densitometri merupakan metode analisis instrumental yang
mendasarkan pada interaksi radiasi elektromagnetik dengan analit yang
merupakan bercak pada KLT. Densitometri lebih dititikberatkan untuk
analisis kuantitatif analit-analit dengan kadar kecil, yang mana diperlukan
pemisahan terlebih dahulu dengan KLT.
Untuk evaluasi bercak hasil KLT secara densitometry, bercak di-
scanning dengan sumber sinar dalam bentuk celah (slit) yang dapat dipilih
baik panjangnya maupun lebarnya. Sinar yang dipantulkan diukur dengan
sensor cahaya (fotosensor). Perbedaan antara signal optik daerah yang
tidak mengandung bercak dengan daerah yang mengandung bercak
dihubungkan dengan banyaknya analit yang ada melalui kurva kalibrasi
yang telah disiapkan dalam lempeng yang sama. Pengukuran
densitometry dapat dibuat dengan absorbansi atau dengan fluoresensi
(Rahman, A., 2009).
H. Pengujian aktifitas tanaman
Metode Disc Diffusion
Metode difusi (disc diffusion) merupakan teknik yang umum dipakai
untuk menetapkan kerentanan mikroorganisme terhadap zat
kemoterapeutik. Metode ini sederhana, cepat dan praktis. Medium yang
dapat digunakan yaitu Mueller-Hinton Agar, Blood Agar, dan Nutrient
Agar. Tetapi menurut National Commitee for Clinical Laboratory Standars
(NCCLS) menyarankan menggunakan Mueller- Hinton Agar. Metode ini
telah didokumentasikan dengan baik dan zona hambatan standar baik
untuk inokulum yang peka maupun resisten telah ditentukan. Selain
dipengaruhi oleh faktor antara obat dan bakteri, metode ini dipengaruhi
pula oleh beberapa faktor fisika dan kimia seperti sifat medium,
kemampuan difusi, ukuran molekuler dan stabilitas obat (Brooks et al.,
2005).
Dalam pelaksanaan pengujian ini semua kondisi harus konstan,
dan hanya ukuran diameter zona inhibisinya saja yang bersifat variabel.
Kondisi yang harus konstan dari pengujian ini adalah medium agar yang
digunakan, jumlah mikroorganisme yang diinokulasikan, konsentrasi
antibiotik dan kondisi inkubasi (waktu, temperatur, dan keadaan udara).
Jumlah organisme yang akan diinokulasikan distandarisasi berdasarkan
standar McFarland 0,5.
Cakram kertas saring atau disk ditempatkan pada permukaan
medium padat yang sebelumnya telah diinokulasi bakteri uji pada
permukaannya dan setelah itu diinkubasikan pada suhu 35-37oC pada
kondisi udara lingkungan selama 18-24 jam. Setelah inkubasi, diameter
zona hambatan di sekitar cakram menunjukkan kekuatan hambatan obat
terhadap bakteri uji.
Gambar 6: Tes Difusi (Disc Diffussion) (Cummings, B. 2004)
I. Kerangka Konsep
Karies Gigi
Ekstrak Daun Jambu Biji
(Psidium guajava L.)
Streptococcus mutans
Staphylococcus
aureus Mengandung zat aktif :
minyak atsiri, alkaloid, asam
malat, tannin, glikosida
Dinding sel terdiri dari
polisakarida, protein,
dan enzim
Struktur dan
komponen dinding sel
bakteri terganggu
Terjadi hambatan pertumbuhan
Streptococcus mutans dan
Staphylococcus aureus
J. Hipotesa
1. Ekstrak daun jambu biji ( Psidium guajava L. ) memiliki aktifitas
menghambat pertumbuhan Streptococcus mutans dan Staphylococcus
aureus penyebab karies gigi.
2. Metode ekstraksi berpengaruh terhadap kemampuan ekstrak daun
jambu biji (Psidium guajava L.) dalam menghambat pertumbuhan
Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus penyebab karies
gigi.
K. Definisi Dan Istilah
1. Simplisia adalah bahan alamiah yang dipergunakan sebagai obat yang
belum mengalami pengolahan apapun juga dan kecuali dinyatakan
lain, berupa bahan yang telah dikeringkan.
2. Ekstraksi adalah kegiatan penarikan zat yang dapat larut yang dapat
larut dari bahan yang tidak dapat larut dengan pelarut cair.
3. Seduhan merupakan suatu sediaan cair yang diperoleh dengan
menyari simplisia nabati dengan cara diseduh dengan air mendidih.
4. Infusa adalah sediaan cair yang dibuat dengan mengekstraksi simplisia
nabati dengan air pada suhu 90O C selama 15 menit.
5. Dekokta adalah sediaan cair yang dibuat dengan mengekstraksi
sediaan herbal dengan air pada suhu 90 OC selama 30 menit.
6. Maserasi merupakan cara penyarian yang dilakukan dengan cara
merendam serbuk simplisia dalam cairan penyari.
7. Metode difusi (disc diffusion) merupakan teknik yang umum dipakai
untuk menetapkan kerentanan mikroorganisme terhadap zat
kemoterapeutik.
8. Densitometri merupakan metode analisis instrumental yang
mendasarkan pada interaksi radiasi elektromegnetik dengan analit
yang merupakan bercak pada KLT.
9. Uji aktifitas adalah pengujian yang dilakukan untuk mengetahui
kemampuan suatu bahan alam dalam menghambat pertumbuhan
mikroorganisme berdasarkan diameter zona hambat yang lebih besar
dari kontrol negatif.
BAB III
METODE PENELITIAN
A. Jenis Penelitian
Jenis penelitian ini adalah penelitian eksperimen yaitu menentukan
aktifitas ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap
Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus penyebab karies gigi.
B. Waktu dan Lokasi Penelitian
1. Waktu penelitian
Penelitian ini dilaksanakan mulai bulan April – September 2012.
2. Lokasi penelitian
Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Biologi Molekuler dan
Imunologi Bagian Mikrobiologi Fakultas Kedokteran Universitas
Hasanuddin; Laboratorium BioFarmaka, Pusat Kegiatan Penelitian
Universitas Hasanuddin.
C. Variabel Penelitian
Variabel yang diteliti adalah :
Hasil identifikasi Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus.
Hasil uji aktifitas ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap
Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus penyebab karies
gigi.
D. Populasi dan Sampel
1. Populasi Penelitian
Populasi penelitian mencakup daun jambu biji (Psidium
guajava L.).
2. Sampel
Sampel dalam penelitian ini adalah daun jambu biji yang dipetik
secara acak untuk penelitian.
E. Bahan dan Alat Penelitian
1. Bahan penelitian
Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitan ini adalah Sampel
karies gigi yang terinfeksi Streptococcus mutans dan Staphylococcus
aureus, Muehler Hinton Agar, Muehler Hinton broth, Nutrient Agar, Blood
Agar, Brain Heart Infusion Broth, Air Suling, pewarna Gram, Reagen untuk
tes Biokimia, Paper disc, Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.),
vankomisin 30 µg, eluen kloroform : aseton : asam formiat (7:3:2),
lempeng KLT, etanol 96 %.
2. Alat penelitian
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah cawan petri,
tabung reaksi, mikropipet, gelas kimia, gelas ukur, labu erlenmeyer, botol
reagen, termometer, batang pengaduk, kain flanel, ose bulat, rak tabung,
tips untuk pipet, swab steril, panci Infus, bejana maserasi, jangka sorong,
timbangan analitik, bunsen, lampu spiritus, lumpang dan stamper,
epavorator, waterbath, autoclave, oven, biohazard (safety cabinet) dan
inkubator, chamber, lampu UV 254 nm dan 366 nm, TLC Scanner .
F. Cara Pengumpulan Data
Data yang diperoleh adalah hasil pengujian yaitu :
Hasil identifikasi Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus
Hasil uji aktifitas ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap
Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus penyebab karies gigi.
G. Cara Kerja
1. Uji pendahuluan (Ditjen POM, 1995)
a. Uji alkaloida
Reaksi pengendapan :
Timbang 500 mg serbuk simplisia, tambahkan 1 ml HCl 2 N dan 9
ml air, panaskan diatas tangas air selama 2 menit, dinginkan dan saring.
Pindahkan masing-masing 3 tetes filtrat pada dua kaca arloji. Tambahkan
2 tetes Mayer LP pada kaca arloji pertama dan 2 tetes Bouchardat LP
pada kaca arloji kedua. Jika pada kedua percobaan tidak terjadi endapan,
maka serbuk tidak mengandung alkaloida.
Jika dengan Mayer LP terbentuk endapan menggumpal berwarna
putih atau kuning yang larut dalam methanol P dan dengan Bouchardat LP
terbentuk endapan berwarna coklat sampai hitam, maka ada kemungkinan
terdapat alkaloida.
b. Uji glikosida
Masukkan 0,1 ml ekstrak methanol dalam tabung reaksi, uapkan di
atas tangas air. Pada sisa tambahkan 2 ml air dan 5 tetes alfa naftol LP.
Tambahkan hati-hati 2 ml H2SO4 P, terbentuk cincin berwarna ungu
(Reaksi Molish).
c. Uji tannin
Ekstrak kental direaksikan dengan larutan ferri klorida, bila terjadi
warna biru tua/hitam kehijauan menunjukkan adanya senyawa tannin.
d. Saponin
Masukkan 0,5 g serbuk yang diperiksa ke dalam tabung reaksi
tambahkan 10 ml air panas, dinginkan dan kemudian kocok kuat-kuat
selama 10 detik (jika zat yang diperiksa berupa sediaan cair, encerkan 1
ml sediaan yang diperiksa dengan 10 ml air dan kocok kuat-kuat selama
10 detik) : terbentuk buih yang mantap selama tidak kurang dari 10 menit,
setinggi 1 cm sampai 10 cm.
2. Isolasi dan identifikasi Streptococcus mutans dan
Staphylococcus aureus (Labkes, 2000)
Spesimen karies gigi diambil menggunakan swab steril dengan
cara dimasukkan ke dalam karies gigi, kemudian dimasukkan ke media
BHIB.
Spesimen diinokulasikan ke dalam media Blood Agar Plate dan
diinkubasi pada suhu 35 - 37o C selama 24- 48 jam. Koloni tersangka dari
Blood Agar Plate dilakukan pewarnaan Gram untuk menemukan bakteri
gram positif kokus bentuk rantai (Streptococcus mutans) dan gram positif
kokus berkelompok tidak teratur (Staphylococcus aureus).
Hasil bakteri gram positif kokus bentuk rantai dilanjutkan dengan uji
biokimia untuk menemukan bakteri gram positif kokus katalase negatif.
Bakteri yang termasuk golongan katalase negatif diamati sesuai dengan
tabel Connie Mohan dalam National Committee for Clinical Laboratory
Standart (NCCLS) untuk menemukan bakteri yang positif Streptococcus
mutans. yaitu : hemolisis (α, γ hemolisis); katalase (-); oksidase (-);
sorbitol (+); mannitol (+); nutrient broth + NaCl 6,5% (tidak tumbuh); bile
esculin (-).
Hasil bakteri gram positif kokus berkelompok tidak teratur
dilanjutkan dengan uji biokimia untuk menemukan bakteri gram positif
kokus katalase positif. Bakteri yang termasuk golongan katalase positif
diamati sesuai dengan tabel Connie Mohan dalam National Committee for
Clinical Laboratory Standart (NCCLS) untuk menemukan bakteri yang
positif Staphylococcus aureus yaitu : katalase (+); oksidase (-); Staphylase
(+); koagulase (+); D-Nase (+).
3. Pengolahan Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) (Ditjen POM,
1986)
Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) yang segar dicuci bersih
kemudian dipotong kecil-kecil lalu dikeringkan dalam oven pada suhu
40o-60o. Daun yang telah dikeringkan disebut simplisia kering.
4. Pembuatan ekstrak daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) (Ditjen
POM, 1986; Ditjen POM, 2000)
a. Seduhan
Simplisia kering ditimbang sebanyak 10 gram dan 30 gram,
dimasukkan ke dalam gelas kimia lalu disiram dengan air mendidih hingga
100 ml lalu dibiarkan selama 5 – 10 menit lalu di serkai.
b. Infus
Ditimbang simplisia kering sebanyak 10 gram dan 30 gram,
masing-masing dibasahi dengan air suling sebanyak 2 kali bobotnya
kemudian dimasukkan ke dalam panci infus ditambahkan air suling
sampai 100 ml, panci ditutup kemudian dipanaskan pada suhu 90oC
selama 15 menit. Ekstrak cair didinginkan lalu diserkai dingin dengan
menggunakan kain flanel.
c. Dekokta
Ditimbang simplisia kering sebanyak 10 gram dan 30 gram,
masing-masing dibasahi dengan air suling sebanyak 2 kali bobotnya
kemudian dimasukkan ke dalam panci ditambahkan air suling sampai 100
ml, panci ditutup kemudian dipanaskan pada suhu 90oC selama 15 menit.
Ekstrak cair didinginkan lalu diserkai dingin dengan menggunakan kain
flanel.
d. Maserasi
Ditimbang simplisia kering sebanyak 10 gram dan 30 gram,
masing-masing dimasukkan ke dalam bejana maserasi lalu ditambahkan
100 ml etanol 96% kemudian bejana ditutup. Disimpan bejana ditempat
yang terlindung dari cahaya selama 5 hari sambil berulang-ulang diaduk.
Setelah 5 hari diserkai kemudian ampas diperas. Ekstrak yang diperoleh
disimpan ditempat sejuk dan terlindung dari cahaya selama 2 hari
kemudian endapan dipisahkan. Ekstrak yang diperoleh kemudian
diuapkan hingga diperoleh ekstrak kering. Dilakukan hal yang sama
dengan menggunakan pelarut etanol 50%.
5. Analisis densitometri dengan TLC Scanner
Lempeng KLT dipotong dengan ukuran 20 cm x 10 cm kemudian
dilakukan free wash dan diaktifkan di dalam oven pada suhu 110 o selama
30 menit. Masing-masing ekstrak daun jambu biji ditimbang kemudian
dilarutkan dengan etanol 96 % sehingga diperoleh konsentrasi 5 mg/ml
dan disentrifuge, selanjutnya masing-masing ekstrak ditotol pada lempeng
KLT sebanyak 10 µl. Lempeng KLT kemudian dielusi dengan
menggunakan eluen kloroform : aseton : asam formiat (7 : 3 : 2). Lempeng
KLT selanjutnya dianalisa dengan menggunakan TLC Scanner.
6. Uji aktifitas daun jambu biji (Psidium guajava L.) terhadap
Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus penyebab
karies gigi (Labkes, 2000; Lay, B.W., 2002)
a. Media dan reagen
Media yang digunakan adalah agar Mueller Hinton (dengan
ketebalan agar 4 mm). Reagen yang digunakan adalah larutan standar
NaCl fisiologis steril; larutan hipoklorit 2% dan standar kekeruhan Mc
Farland 0,5.
b. Prosedur pemeriksaan
Disc Diffusion
Inokulum disiapkan dengan menggunakan kapas lidi steril atau
sengkelit. Diambil 3-5 koloni Streptococcus mutans dan Staphylococcus
aureus hasil isolasi spesimen klinik dan disuspensikan ke dalam masing-
masing tabung berisi larutan NaCl fisiologis steril 5 ml, kemudian kapas lidi
bekas pakai dibuang dalam larutan hipoklorit 2 %. Hasil suspensi bakteri
dibandingkan dengan standar kekeruhan Mc Farland 0,5.
Kapas lidi dicelupkan ke dalam suspensi bakteri dan diputar
beberapa kali kemudian ditekan-tekan pada dinding tabung untuk
membuang kelebihan inokulum. Kapas lidi yang mengandung inokulum
dihapuskan secara merata pada permukaan agar Mueller Hinton,
kemudian cawan petri ditutup dan dibiarkan selama 3-5 menit.
Cakram kertas (paper disc) yang telah direndam dalam masing-
masing konsentrasi ekstrak Daun Jambu Biji (infuse, dekokta, perasan
dan seduhan) selama ± 10 menit diletakkan pada permukaan agar Mueller
Hinton dan sedikit ditekan agar melekat sempurna dan tidak bergeser.
Kemudian didiamkan selama 15 menit. Setelah itu diinkubasi pada suhu
35-37 0 C selama 16-20 jam dalam posisi cawan terbalik (Streptococcus
mutans). Untuk Staphylococcus aureus suhu inkubasi tidak boleh lebih
dari 35 0 C dan lama inkubasi adalah 24 jam.
Hasil diperoleh dengan mengukur zona hambatan yang terbentuk
pada agar. Semakin lebar/diameter zona hambatan yang terbentuk
semakin efektif sampel menghambat pertumbuhan mikroorganisme.
H. Analisis Data
Hasil pengamatan setiap zona hambatan, diukur
lebar/diameternya. Diameter zona hambatan yang berbeda dari sampel
menandakan perbedaan aktifitas daun jambu biji (Psidium guajava L.)
terhadap Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus penyebab
karies gigi.
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
A. Hasil
Penelitian ini bertujuan untuk menentukan aktifitas dan sediaan
ekstrak yang mana dari daun jambu biji (Psidium guajava L.) yang paling
aktif dalam menghambat pertumbuhan Streptococcus mutans dan
Staphylococcus aureus penyebab karies gigi. Sebelumnya dilakukan uji
pendahuluan untuk mengetahui senyawa kimia yang terkandung dalam
ekstrak daun jambu biji. Hasil uji pendahuluan dapat dilihat pada tabel 1.
Tabel 1. Hasil Uji Pendahuluan Ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.)
No Jenis uji
Ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.)
Seduhan Infus Dekokta Maserasi dengan
Etanol 50%
Maserasi dengan
Etanol 96%
1.
Alkaloid:
- Mayer
- Bauchardat
-
+
-
+
-
+
-
+
-
+
2. Tannin + + + + +
3. Saponin + + + + +
4. Glikosida + + + + +
Keterangan : + = ada
- = tidak ada
Uji aktifitas ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L.) dari
masing-masing metode ekstraksi terhadap pertumbuhan Streptococcus
mutans dan Staphylococcus aureus penyebab karies gigi dapat dilihat
pada tabel 2 dan 3. Pada tabel tersebut dapat dilihat bahwa metode
ekstraksi yang memiliki aktifitas yang paling besar dalam menghambat
pertumbuhan Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus
penyebab karies gigi adalah ekstrak maserasi dengan pelarut etanol 96 %
dengan konsentrasi 30 %.
Tabel 2. Hasil Uji Aktifitas Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) Terhadap
Pertumbuhan Streptococcus mutans
No. Metode
Ekstraksi
Konsentrasi
(%)
Diameter Zona Hambat (mm)
1 2 3 Rata-rata
1. Seduhan 10 6,00 6,00 6,00 6,00
30 6,00 6,00 6,00 6,00
2. Infus 10 10,00 9,00 11,00 10.00
30 13,00 11,00 12,00 12,00
3. Dekokta 10 11,00 12,00 11,00 11,33
30 13,00 13,00 14,00 13,33
4. Maserasi
Etanol 50 %
10 10,00 11,00 11,00 10,67
30 11,00 13,00 14,00 12,67
5. Maserasi
Etanol 96 %
10 15,00 12,00 15,00 14,00
30 16,00 15,00 17,00 16,00
6. Vankomisin 30 µg 19,00 16,00 20,00 18,33
7. Air - 6,00 6,00 6,00 6,00
8. Na. CMC 1 6,00 6,00 6,00 6,00
Tabel 3. Hasil Uji Aktifitas Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) Terhadap
Pertumbuhan Staphylococcus aureus
No. Metode
Ekstraksi
Konsentrasi
(%)
Diameter Zona Hambat (mm)
1 2 3 Rata-rata
1. Seduhan 10 6,00 6,00 6,00 6,00
30 6,00 6,00 6,00 6,00
2. Infus 10 7,00 8,00 10,00 8,33
30 11,00 10,00 10,00 10,33
3. Dekokta 10 10,00 9,00 8,00 9,00
30 10,00 10,00 12,00 10,67
4. Maserasi
Etanol 50 %
10 8,00 8,00 8,00 8,00
30 13,00 12,00 11,00 12,00
5. Maserasi
Etanol 96 %
10 14,00 13,00 11,00 12,67
30 14,00 14,00 13,00 13,67
6. Vankomisin 30 µg 16,00 15,00 17,00 16,00
7. Air - 6,00 6,00 6,00 6,00
8. Na. CMC 1 6,00 6,00 6,00 6,00
Untuk melihat profil senyawa kimia dari masing-masing ekstrak
daun jambu biji (Psidium guajava L.) dilakukan analisis TLC-Scanner dan
dapat dilihat pada tabel 2 sampai 11 .
Tabel 4. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) Metode Seduhan Pada Panjang Gelombang 254 nm
Subs.
Kim
ia
Seduhan 10 % Seduhan 30 %
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 209,6 0,29 200 229,1 0,25 200 440,5 0,26 200 499,8 0,28 200
288,5 0,28 200 253,5 0,44 200
B 197,2 0,41 200
C 284,8 0,60 200 364,0 0,56 200
D 336,8 0,32 200
E 203,9 0,51 200
Tabel 5. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium
guajava L.) Metode Seduhan Pada Panjang Gelombang 366 nm
Subs.
Kim
ia
Seduhan 10 % Seduhan 30 %
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 609,8 0,32 389 324,6 0,25 390 483,3 0,27 391 604,3 0,28 389
412,0 0,28 395
B 304,5 0,44 390 262,1 0,44 412
C 761,8 0,59 391 630,0 0,60 433 702,7 0,57 397
Tabel 6. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium
guajava L.) Metode Infus Pada Panjang Gelombang 254 nm
Subs.
Kim
ia
Infus 10 % Infus 30 %
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 1179,7 0,27 200 1687,8 0,26 200 1755,1 0,26 200 1693,9 0,25 200
B 530,8 0,42 200 803,5 0,42 200 665,7 0,42 200 657 0,41 200
C 1951,7 0,58 200 2495,9 0,58 200 2345,5 0,55 200 2824,2 0,56 200
Tabel 7. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) Metode Infus Pada Panjang Gelombang 366 nm
Subs.
Kim
ia
Infus 10 % Infus 30 %
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 2335,4 0,27 390 3099,2 0,26 390 2793,4 0,26 390 3029,5 0,26 390
B 1160,9 0,42 388 1511,7 0,42 387 1232,4 0,42 388 1312,0 0,41 390
C 3399,7 0,57 391 3912,3 0,57 391 3772,9 0,56 391 4193,0 0,56 390
Tabel 8. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) Metode Dekokta Pada Panjang Gelombang 254 nm
Subs.
Kim
ia
Dekokta 10 % Dekokta 30 %
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 1222,2 0,25 200 1547,6 0,26 200 1676,9 0,26 200 2062,7 0,26 200
B 560,8 0,40 200 762,4 0,40 200 737,4 0,40 200 855,2 0,40 200
C 2062,1 0,55 200 2444,8 0,54 200 1785,9 0,54 200 2119,2 0,54 200
Tabel 9. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium
guajava L.) Metode Dekokta Pada Panjang Gelombang 366 nm
Subs.
Kim
ia
Dekokta 10 % Dekokta 30 %
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 2073,5 0,25 390 2757,9 0,26 389 2911,0 0,26 389 3522,2 0,26 389
B 1137,6 0,40 389 1542,1 0,40 388 1722,3 0,41 388 2150,6 0,40 388
C 3008,3 0,54 391 3811,9 0,54 392 3723,9 0,55 390 4306,4 0,54 389
Tabel 10. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium
guajava L.) Metode Maserasi Dengan Pelarut Etanol 50 % Pada Panjang Gelombang 254 nm
Subs.
Kim
ia
Maserasi Dengan Pelarut Etanol 50 % (10g/100 ml)
Maserasi Dengan Pelarut Etanol 50 % (30 g/100 ml)
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 2067,5 0,25 200 2121,0 0,25 200 1007,8 0,26 200 1159,0 0,25 200
B 1699,6 0,40 200 1482,1 0,40 200 651,5 0,41 200 822,2 0,41 200
C 2048,2 0,53 200 2317,6 0,54 200 1016,1 0,55 200 1047,8 0,54 200
Tabel 11. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium
guajava L.) Metode Maserasi Dengan Pelarut Etanol 50 % Pada Panjang Gelombang 366 nm
Subs.
Kim
ia
Maserasi Dengan Pelarut Etanol 50 % (10g/100 ml)
Maserasi Dengan Pelarut Etanol 50 % (30 g/100 ml)
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 3639,7 0,25 391 3812,4 0,25 390 1508,5 0,26 390 1901,8 0,26 389
B 2793,7 0,40 389 2831,0 0,40 389 1063,0 0,40 389 1448,2 0,41 388
C 3520,2 0,53 389 3800,8 0,54 389 1754,0 0,54 389 2106,8 0,54 389
Tabel 12. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium
guajava L.) Metode Maserasi Dengan Pelarut Etanol 96 % Pada Panjang Gelombang 254 nm
Subs.
Kim
ia
Maserasi Dengan Pelarut Etanol 96 % (10g/100 ml)
Maserasi Dengan Pelarut Etanol 96 % (30 g/100 ml)
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 1678,2 0,28 200 1636,9 0,28 200 1854,0 0,26 200 1893,5 0,28 200
B 2603,2 0,41 377 2930,6 0,41 375 2069,2 0,40 375 2174,1 0,43 376
C 2646,3 0,54 367 3216,2 0,54 367 2052,6 0,54 200 2289,6 0,57 200
F 494,3 0,23 200
Tabel 13. Hasil Analisis TLC Scanner Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.) Metode Maserasi Dengan Pelarut Etanol 96 % Pada Panjang Gelombang 366 nm
Subs.
Kim
ia
Maserasi Dengan Pelarut Etanol 96 % (10g/100 ml)
Maserasi Dengan Pelarut Etanol 96 % (30 g/100 ml)
1 2 1 2
Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel Area Rf
Max Pj.Gel Area
Rf Max
Pj.Gel
A 3738,5 0,27 391 4368,0 0,27 390 3468,1 0,26 391 3685,4 0,28 390
B 4505,5 0,40 389 5230,7 0,40 390 3648,7 0,41 390 3961,2 0,43 389
C 4418,6 0,54 388 5189,0 0,54 387 3544,6 0,54 388 3716,5 0,57 387
B. Pembahasan
Pada penelitian ini dilakukan ekstraksi daun jambu biji (Psidium
guajava L.) dengan menggunakan metode ekstraksi seduhan, infuse, dan
dekokta dengan menggunakan pelarut air, dimana penggunaan obat
tradisional di masyarakat biasanya menggunakan air sebagai pelarut.
Pada penelitian ini, juga dilakukan ekstraksi dengan cara maserasi
menggunakan pelarut etanol 50 % dan etanol 96 %, dimana pembuatan
obat tradisional secara modern menggunakan etanol sebagai pelarut.
Masing-masing ekstrak dibuat dengan konsentrasi 10 % dan 30 %,
selanjutnya dilakukan uji aktifitas terhadap pertumbuhan Staphylococcus
aureus dan Streptococcus mutans penyebab karies gigi. Selain itu
dilakukan juga penentuan senyawa kimia yang terkandung dalam daun
jambu biji (Psidium guajava L.) dengan TLC-Scanner. Sebelumnya
dilakukan uji pendahuluan untuk mengetahui kandungan senyawa kimia
dari ekstrak daun jambu biji.
Uji pendahuluan dilakukan sebagai skrining awal untuk mengetahui
kandungan senyawa kimia dalam masing-masing ekstrak. Dari uji
pendahuluan diketahui bahwa semua ekstrak dari masing-masing metode
ekstraksi mengandung alkaloida, glikosida, tannin, dan saponin. Uji
alkaloida menggunakan pereaksi bouchardat terbentuk endapan coklat.
Uji glikosida dengan pereaksi molish terbentuk cincin ungu pada batas
cairan. Uji tannin menggunakan larutan FeCl3 menghasilkan larutan hitam
kehijauan dan Uji saponin menggunakan air dan dikocok kuat-kuat selama
10 detik menghasilkan buih yang tidak hilang dengan penambahan
HCl 2 N.
Berdasarkan hasil uji aktifitas, metode ekstraksi seduhan tidak
memiliki aktifitas dalam menghambat pertumbuhan Staphylococcus
aureus maupun Streptococcus mutans baik pada konsentrasi 10 %
maupun 30 % . Hal ini berdasarkan tidak adanya zona hambat di sekitar
paper disc. Hasil uji aktifitas untuk metode Infus 10 %, memperlihatkan
zona hambat dengan diameter sebesar 10 mm untuk Streptococcus
mutans dan 8,33 mm untuk Staphylococcus aureus. Pada konsentrasi
30 %, memperlihatkan zona hambat dengan diameter sebesar 12 mm
untuk Streptococcus mutans dan 10,33 mm untuk Staphylococcus aureus.
Pada ekstrak dengan metode dekokta konsentrasi 10 %, hasil uji aktifitas
memperlihatkan zona hambat dengan diameter sebesar 11,33 mm untuk
Streptococcus mutans dan 9 mm untuk Staphylococcus aureus. Pada
konsentrasi 30 % memperlihatkan zona hambat dengan diameter sebesar
13,33 mm untuk Streptococcus mutans dan 10,67 mm untuk
Staphylococcus aureus. Hasil uji aktifitas dengan metode maserasi
dengan menggunakan pelarut etanol 50 %, pada konsentrasi 10 %
memperlihatkan zona hambat dengan diameter sebesar 10,67 mm untuk
Streptococcus mutans dan 8,00 mm untuk Staphylococcus aureus. Pada
konsentrasi 30 % memperlihatkan zona hambat dengan diameter sebesar
12,67 mm untuk Streptococcus mutans dan 12 mm untuk Staphylococcus
aureus. Pada metode maserasi dengan pelarut etanol 96 %
memperlihatkan hasil uji aktifitas pada konsentrasi 10 % memperlihatkan
zona hambat dengan diameter sebesar 14 mm untuk Streptococcus
mutans dan 12,67 mm untuk Staphylococcus aureus. Pada konsentrasi
30 % memperlihatkan zona hambat dengan diameter sebesar 16 mm
untuk Streptococcus mutans dan 13,67 mm untuk Staphylococcus aureus.
Berdasarkan hasil dari uji aktifitas dari masing-masing ekstrak
menunjukkan bahwa ekstrak maserasi dengan pelarut etanol 96 % pada
konsentrasi 30 % memiliki aktifitas yang paling besar dalam menghambat
pertumbuhan Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus
penyebab karies gigi (Tabel 2 dan 3).
Selanjutnya dilakukan analisis TLC Scanner pada panjang
gelombang 254 nm dan 366 nm. Hasil analisis TLC Scanner pada panjang
gelombang 254 nm, ekstrak dengan metode seduhan konsentrasi 10 %
diperoleh 3 substansi kimia yang dilabel A, B dan D dengan luas area
yang kecil. Pada konsentrasi 30 % diperoleh 3 substansi kimia yang
dilabel A, C dan E (Tabel 4). Pada ekstrak dengan metode infus baik
konsentrasi 10 % maupun 30 % terdapat 3 substansi kimia yang dilabel A,
B dan C (Tabel 6), begitupula untuk metode dekokta 10 % dan 30 %
(Tabel 8). Pada metode maserasi dengan pelarut etanol 50 % juga
memperlihatkan 3 substansi kimia yang dilabel A, B dan C begitupula
pada konsentrasi 30 % (Tabel 10). Untuk ekstrak dengan metode
maserasi menggunakan pelarut etanol 96 % pada konsentrasi 10 %
memperlihatkan 4 substansi kimia yang dilabel A, B, C dan F, sedangkan
pada konsentrasi 30 % memperlihatkan 3 substansi kimia yang dilabel A,
B dan C (Tabel 12).
Pada panjang gelombang 366 nm, untuk metode seduhan
konsentrasi 10 % diperoleh 3 substansi kimia yang dilabel A, B dan C
begitu pula pada konsentrasi 30 % (Tabel 5). Hal yang sama diperlihatkan
pada ekstrak dengan metode infus (Tabel 7), dekokta (Tabel 9) dan
maserasi dengan pelarut etanol 50 % (Tabel 11). Pada ekstrak dengan
metode maserasi dengan pelarut etanol 96 % juga memperlihatkan 3
substansi kimia baik konsentrasi 10 % maupun 30 % yang dilabel A, B dan
C (Tabel 13).
Berdasarkan hasil dari analisis TLC Scanner, pada panjang
gelombang 254 nm diperoleh 3 substansi kimia yang dilabel A, B dan C
yang terdapat pada semua ekstrak dari masing-masing metode ekstraksi.
Begitupula pada panjang gelombang 366 nm terdapat 3 substansi kimia
yang juga dilabel A, B dan C.
Hasil dari uji aktifitas menunjukkan bahwa metode ekstraksi
berpengaruh pada kemampuan aktifitas ekstrak daun jambu biji dalam
menghambat pertumbuhan Streptococcus mutans dan Staphylococcus
aureus penyebab karies gigi. Metode ekstraksi yang paling aktif adalah
maserasi menggunakan pelarut etanol 96 % dengan konsentrasi 30 %
dengan luas zona hambat 16 mm untuk Streptococcus mutans dan 13,67
mm untuk Staphylococcus aureus. Hal ini didukung dengan hasil TLC
Scanner dimana substansi B yang terdapat pada ekstrak maserasi dengan
pelarut etanol 96 tidak sama dengan substansi B yang terdapat pada
metode ekstraksi yang lain dan didukung dengan substansi lain yang
terkandung di dalam ekstrak tersebut sehigga aktifitas menghambatnya
semakin besar dibandingkan ekstrak dari metode yang lain.
Berdasarkan hasil statitistik dengan menggunakan T-Test, hasil uji
aktifitas ekstrak daun jambu biji non signifikan. Hal ini disebabkan karena
jumlah sampel yang tidak memenuhi syarat untuk T-Test.
Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa ekstrak daun jambu biji
(Psidium guajava L.) berpotensi sebagai obat alternatif untuk pengobatan
karies gigi yang disebabkan oleh Staphylococcus aureus dan
Streptococcus mutans. Ekstrak yang paling aktif adalah ekstrak dari
metode maserasi dengan pelarut etanol 96 % dengan konsentrasi 30 %
yaitu Streptococcus mutans 16 mm (2,5 mg/disc) dan untuk
Staphylococcus aureus 13,67 mm (2,5 mg/disc). Namun demikian,
diameter zona hambat vankomisin lebih luas yaitu Streptococcus mutans
18,33 mm dan untuk Staphylococcus aureus 16 mm, hal ini disebabkan
vankomisin sudah berupa senyawa murni sedangkan daun jambu biji
berupa ekstrak yang perlu dimurnikan, sehingga senyawa murni
vankomisin memiliki daya hambat yang lebih tinggi daripada ekstrak.
Aktifitas daun jambu biji telah diteliti oleh Jebashree, et al., 2011
bahwa ekstrak Hexan, ethyl acetat, etanol dan methanol menghambat
pertumbuhan Streptococcus mutans peyebab karies gigi. Diameter zona
hambat terbesar diperoleh pada ekstrak ethyl acetat yaitu 20 mm
(5 mg/disc) dan 18 mm (2.5mg/disc).
Screening fitokomia dari ekstrak Daun Jambu Biji menunjukkan
adanya karbohidrat, flavonoid glikosida, steroid dan tannin (Dhiman A.,
Nanda, A., and Narasimhan, B., 2010). Flavonoid merupakan senyawa
fenol yang bersifat desinfektan yang bekerja dengan cara mendenaturasi
protein yang dapat menyebabkan aktifitas metabolisme sel bakteri
berhenti karena semua aktifitas metabolisme sel bakteri dikatalisis oleh
suatu enzim yang merupakan protein. Berhentinya aktifitas metabolisme
ini akan mengakibatkan kematian sel bakteri. Flavonoid juga bersifat
bakteriostatik yang bekerja melalui penghambatan sintesis dinding sel
bakteri. Tanin yang juga merupakan senyawa fenol bekerja dengan cara
menghambat pertumbuhan bakteri dengan mengadakan denaturasi
protein dan menurunkan tegangan permukaan, sehingga permeabilitas
bakteri meningkat. Kerusakan dan peningkatan permeabilitas sel bakteri
menyebabkan pertumbuhan sel terhambat dan akhirnya dapat
menyebabkan kematian sel.
Pada penelitian ini dilakukan juga pengamatan terhadap bentuk
dari sel bakteri sebelum dan sesudah perlakuan dengan ekstrak daun
jambu biji. Tetapi tidak dilihat adanya perbedaan bentuk sel karena
adanya keterbatasan pembesaran dari mikroskop yang digunakan. Yang
bisa dilihat adalah adanya perbedaan jumlah sel bakteri, dimana jumlah
sel lebih sedikit sesudah perlakuan dibandingkan sebelum perlakuan
(Gambar 7 dan 8).
Gambar 7. Staphylococcus aureus sebelum (A) dan sesudah (B) perlakuan
A B
Gambar 8. Streptococcus mutans sebelum (A) dan sesudah (B) perlakuan
B A
BAB V
PENUTUP
A. Kesimpulan
Dari hasil penelitian yang diperoleh maka dapat disimpulkan
sebagai berikut :
1. Ekstrak daun jambu biji (Psidium guajava L. ) memiliki aktifitas dalam
menghambat pertumbuhan Streptococcus mutans dan Staphylococcus
aureus penyebab karies gigi
2. Ekstrak yang paling aktif dalam menghambat pertumbuhan
Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus penyebab karies
gigi adalah ekstrak maserasi dengan pelarut etanol 96 % pada
konsentrasi 30 % yaitu untuk Streptococcus mutans adalah 16 mm (2,5
mg/disc) dan untuk Staphylococcus aureus adalah 13,67 mm (2,5
mg/disc).
B. Saran
Disarankan pada peneliti selanjutnya supaya penelitian ini dapat
dilanjutkan dengan cara : isolasi dan identifikasi komponen kimia dari
ekstrak daun jambu biji yang aktif dalam menghambat pertumbuhan
bakteri dan bagian dari sel bakteri mana yang dirusak oleh komponen
kimia tersebut.
DAFTAR PUSTAKA
Arima, H. and Danno, Gen-ichi. 2002. Isolation of Antimicrobial Compounds from Guava (Psidium guajava L.) and their Structural Elucidation. JSBA, Biosci, Biotechnol, Biochem. 66 (8): 1727-1730.
Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan. 2008. Riset Kesehatan
Dasar (RISKESDA) 2007. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Brooks, G. F., Butel, J.S., Morse, S.A.,. 2001. Medical Microbiology. Edisi
20. Terjemahan oleh Bagian Mikrobiologi Fakultas Kedokteran
Universitas Airlangga. Salemba Medika. Jakarta
Capuccino, J.G., Natalie S., 2001, Microbiology, A Laboratory Manual,
Benyamin cummings, San Fransisco
Darby, M.L., Walsh, M.W. 1995. Dental Hygiene Theory and Practise. Jakarta : EGC.
Dhiman, A., Nanda, A., Ahmad, S., and Narasimhan, B. 2011. In Vitro
Antimicrobial Activity of Mathanolic Leaf Extract of Psidium guajav L. Journal of Pharmacy and Bioallied Sciences.3(2) : 226-229.
Dirks, D.B., Helderman, W.H. 1993. Ilmu Kedokteran Gigi Pencegahan.
diterjemahkan oleh Suryo, S. Yogyakarta : Gadjah Mada University Press.
Ditjen POM. 1986. Sediaan Galenik. Jakarta: Depkes RI. Ditjen POM. 1995. Materia Medika Indonesia. Jilid IV. Jakarta: Depkes RI.
Ditjen POM. 2000. Acuan Sediaan Herbal. Jakarta: Departemen Kesehatan Republik Indonesia.
Ghosh, P., Mandal, A., Chakrabotry, P., Rasul, M.G., Chakraborty, M., and Saha, A. 2010. Triterpenoid from Psidium guajava with Biocidal Activity. Indian Journal Pharmaceutical Sciences. 72 (4): 504-507.
Jebashree, H.S., Kingsley, S.J., Sathish, E.S., and Devapriya, D. 2011. Antimicrobial Activity of Few Medicinal Plants against Clinically Isolated Human Cariogenic Pathogens—An In Vitro Study. ISRN Dentistry. Volume 2011: 1-6.
Kidd, E.A.M. Joyston, S. 1992. Dasar-dasar karies: Penyakit dan penanggulangannya.. Terjemahan oleh Narlan Sumawinata, Safrida Faruk. 1992. Jakarta: EGC.
Kim, So-Hyun., Somi, K. Cho., Hyun, Sun-He., Park, Hae-Eun., Kim,
Young-Suk., and Choi Hyung-Kyoon. 2011. Metabolic Profiling and Predicting the Free Radical Scavenging Activity of Guava (Psidium guajava L.) Leaves according to Harvest Time by 1H-Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy. JSBA Bioschi. Biotechnol. Biochem. 75 (6): 1090-1097.
Laboratorium Kesehatan. 2000. Standar Operating Prosedur (SOP) in Microbiology. Jakarta: Depkes RI.
Lay, B.W. 2002. Analisis Mikroba di Laboratorium. Jakarta: P.T. Raja
Grapindo Persada. Losso, E.M., Travares, M.C., da Silva, J., Urban, C. 2009. Severe early
childhood caries: an integral approach. J Pediatr. 85(4): 295-300.
Nishikawara F, Katsumura S, Ando A, Tamaki Y, Nakamura Y, Sato K, Nomura Y, Hanada N.. 2006. Correlation of cariogenic bacteria and dental caries in adult. J.of OralScience, vol 48, No.4: 245-251.
Nugraha, A. W. (2008). Streptococcus mutans, Si Plak Dimana- mana.
Fakultas Farmasi USD. Yogyakarta. Pangkalan Ide. 2011. Health Secret of Guava. Jakarta: PT Elex Media
Komputindo.
Panjaitan, M. 1997. Etiologi Karies Gigi dan Penyakit Periodental. Cetakan ke I. Medan: USU Press.
Pickard, H. M., Kidd, E. A. M., Smith, B. G. N. 2002. Manual Konservasi Menurut Pickard. Edisi 6. Terjemahan oleh Narlan Sumawinata. Jakarta : Widya Medika.
Pinkham, J.R., 2005. Pediatric Dentistry: Infancy through asolescene. New Delhi: Elsevier. 4 th ed: 203-283.
Rohman, A., 2009. Kromatografi Untuk Analisis Obat. Yogyakarta : Graha Ilmu
Schuurs, A.H.B. 1992. Patologi Gigi Geligi. Yogyakarta : Gadjah Mada University Press.
Sugito S.F. 2000, Peranan Teh dalam Mencegah Terjadinya Karies Gigi. Jurnal Kedokteran Gigi Universitas Indonesia. Volume 7. Edisi Khusus. Jakarta. FKG Universitas Indonesia.
Tarigan, R. 1991. Karies Gigi. Cetakan Kedua. Jakarta: Penerbit Hipokrates.
Wirakusumah, E.S. 2000. Buah dan Sayur Untuk Terapi. Cetakan
Keenam. Jakarta: Penebar Swadaya.
Zafar, S., Harnekar, Y., Siddiqi, A. 2006. Early childhood caries: etiology, clinical considerations, consequences and management. Int Dent South Africa.11 (4): 24-32.
LAMPIRAN 1
ALUR KERJA
Decocta Infusa Maserasi Seduhan
Analisis KLT Ekstrak
Penderita Karies
Gigi
Swab Karies Gigi
Identifikasi
Streptococcus mutans &
Staphylococcus aureus
Disc Diffusion
Hasil
Daun Jambu Biji
(Psidium guajava L.)
LAMPIRAN 2
Skema Isolasi Dan Identifikasi
Streptococcus mutans dan Staphylococcus aureus
Inkubasi 35 – 370C, 1 x 24 jam
Inkubasi 35 – 370C, 1 x 24 jam
Swab Karies Gigi
Media Brain Heart Infusion Broth
(BHIB)
Agar Darah 5%
Koloni Koloni
Pewarnaan Gram
Tes Biokimia
Staphylococcus aureus
Pewarnaan Gram
Tes Biokimia
Streptococcus mutans
LAMPIRAN 3
Skema Pengujian Disc Diffusion
Inokulum Bakteri
Streptococcus mutans / Staphylococcus aureus
Suspensi Bakteri
Sesuaikan standar Mc Farland 0,5
Diusapkan pada permukaan Mueller Hinton Agar
Biarkan 5 menit
Kertas cakram mengandung Ekstrak Daun Jambu Biji
diletakkan diatas permukaan agar
Didiamkan 15 menit lalu diinkubasi terbalik
selama 20 jam suhu 35 – 37oC
Diukur zona hambatan
LAMPIRAN 4
Gambar Hasil Uji Pendahuluan
Keterangan :
A : Larutan ekstrak maserasi 30 %
B : Uji tannin
C : Uji alkaloida
D : Uji glikosida
E : Uji saponin
A
D
C
C
B
E
LAMPIRAN 5
Profil KLT Ekstrak Daun Jambu Biji ( Psidium guajava L.)
Dengan Lampu UV 366 nm
Keterangan :
Eluen : Kloroform : Aseton : Asam Formiat (7 : 3 : 2 ) A : Ekstrak Seduhan Daun jambu Biji 10% B : Ekstrak Seduhan Daun jambu Biji 30% C : Ekstrak Dekokta Daun jambu Biji 10% D : Ekstrak Dekokta Daun jambu Biji 30% E : Ekstrak Infus Daun jambu Biji 10% F : Ekstrak Infus Daun jambu Biji 30% G : Ekstrak Maserasi dengan pelarut Etanol 50% Daun jambu Biji 10% H : Ekstrak Maserasi dengan pelarut Etanol 50% Daun jambu Biji 30% I : Ekstrak Maserasi dengan pelarut Etanol 96% Daun jambu Biji 10% J : Ekstrak Maserasi dengan pelarut Etanol 50% Daun jambu Biji 30%
A D C E F G H I J B
A
LAMPIRAN 6
Profil KLT Ekstrak Daun Jambu Biji ( Psidium guajava L.)
Dengan Lampu UV 254 nm
Keterangan :
Eluen : Kloroform : Aseton : Asam Formiat (7 : 3 : 2 ) A : Ekstrak Seduhan Daun jambu Biji 10% B : Ekstrak Seduhan Daun jambu Biji 30% C : Ekstrak Dekokta Daun jambu Biji 10% D : Ekstrak Dekokta Daun jambu Biji 30% E : Ekstrak Infus Daun jambu Biji 10% F : Ekstrak Infus Daun jambu Biji 30% G : Ekstrak Maserasi dengan pelarut Etanol 50% Daun jambu Biji 10% H : Ekstrak Maserasi dengan pelarut Etanol 50% Daun jambu Biji 30% I : Ekstrak Maserasi dengan pelarut Etanol 96% Daun jambu Biji 10% J : Ekstrak Maserasi dengan pelarut Etanol 50% Daun jambu Biji 30%
A J I H G F E D C B
LAMPIRAN 7
Gambar Hasil Pengujian Disc Diffusion
Streptococcus mutans
Keterangan:
1 : Hasil uji Disc Diffusion Ekstrak seduhan daun jambu biji (Psidium
guajava L.)
2 : Hasil uji Disc Diffusion Ekstrak Infus daun jambu biji (Psidium
guajava L.)
3 : Hasil uji Disc Diffusion Ekstrak Dekokta daun jambu biji (Psidium
guajava L.)
4 : Hasil uji Disc Diffusion Ekstrak Maserasi dengan pelarut etanol
50% daun jambu biji (: Hasil uji Disc Diffusion Psidium guajava L.)
5 Ekstrak Maserasi dengan pelarut etanol 96% daun jambu biji
(Psidium guajava L.)
A : Ekstrak Konsentrasi 10%
B : Kontrol positif (Vancomycin 30 µg)
C : Kontrol negatif (Air suling dan Natrium CMC 1%)
D : Ekstrak Konsentrasi 30%
1 2 3 4 5
LAMPIRAN 8
Gambar Hasil Pengujian Disc Diffusion
Staphylococcus aureus
Keterangan:
1 : Hasil uji Disc Diffusion Ekstrak seduhan daun jambu biji (Psidium
guajava L.)
2 : Hasil uji Disc Diffusion Ekstrak Infus daun jambu biji (Psidium
guajava L.)
3 : Hasil uji Disc Diffusion Ekstrak Dekokta daun jambu biji (Psidium
guajava L.)
4 : Hasil uji Disc Diffusion Ekstrak Maserasi dengan pelarut etanol
50% daun jambu biji (Psidium guajava L.)
5 : Hasil uji Disc Diffusion Ekstrak Maserasi dengan pelarut etanol
96% daun jambu biji (Psidium guajava L.)
A : Ekstrak Konsentrasi 10%
B : Kontrol positif (Vancomycin 30 µg)
C : Kontrol negatif (Air suling dan Natrium CMC 1%)
D : Ekstrak Konsentrasi 30%
1 5 4 3 2