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n
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMICAS
CARRERA DE BIOQUÍMICA CLÍNICA
PREVALENCIA DE PARÁSITOS ZOONÓTICOS PRESENTES EN HECES
CANINAS MUESTREADAS EN EL PARQUE “LA CAROLINA” DEL DISTRITO
METROPOLITANO DE QUITO.
Trabajo de investigación presentado como requisito previo para la obtención del
título de Bioquímico Clínico.
Autor: Vanessa Julieth Arguero Rodríguez.
Tutora: Echeverría Llumipanta Inés Catalina MSc.
DMQ, Marzo 2018.
ii
Prevalencia de parásitos zoonóticos presentes
en heces caninas muestreadas en el parque
La Carolina del Distrito Metropolitano de
Quito.
Autor: Vanessa Julieth Arguero Rodríguez
Tutora: Dra. Inés Echeverría MSc.
Quito, 2018.
iii
Dedicatoria
Este trabajo de investigación, resultado de mi esfuerzo y perseverancia, se lo dedico en
primer lugar a Dios por guiarme hacia el camino del bien, a mis padres por haberme dado la
vida y apoyarme incondicionalmente en todo momento y por ser ellos quienes han sabido
inculcar en mí el hábito de cada día ser mejor y luchar por mis sueños.
iv
Agradecimiento
Un sincero agradecimiento a la Facultad de Ciencias Químicas, lugar en el cual recibí mi
formación profesional basada en valores y principios. Y a todos aquellos docentes que a lo
largo de la carrera han formado parte importante de esta etapa de mi vida.
Un profundo agradecimiento a la Doctora Inés Echeverría, tutora de la investigación, por
guiarme con sus conocimientos y ayudarme incondicionalmente durante el desarrollo del
presente trabajo.
Al Doctor Iván Tapia, que con su experiencia y amplios conocimientos supo orientarme
durante toda la investigación.
A la Doctora Rommy Terán por formar parte del tribunal de este trabajo, por su colaboración
y apoyo en el mismo.
A la Doctora Walkyrie Aguilar por brindarme la facilidad de desarrollar la investigación en
el laboratorio que se encuentra a su cargo.
Al Centro Internacional de Zoonosis, en especial a la Doctora Maritza Celi por la
colaboración prestada en parte de la ejecución de la investigación.
v
Derechos de Autor
Yo, Vanessa Julieth Arguero Rodríguez CI: 1722410006 en calidad de autora del trabajo de
investigación: “Prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces caninas muestreadas en
el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito”, autorizo a la Universidad Central
del Ecuador a hacer uso de todos los contenidos que me pertenecen o parte de los que contiene
esta obra, con fines estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autora me corresponden, con excepción de la presente autorización,
seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8; 19 y
demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento.
También, autorizo a la Universidad Central del Ecuador a realizar la digitalización y
publicación de este trabajo de investigación en el repositorio virtual, de conformidad a lo
dispuesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior.
El autor declara que la obra objeto de la presente autorización es original en su forma de
expresión y no infringe el derecho de autor de terceros, asumiendo la responsabilidad por
cualquier reclamo, que pudiera presentarse por esta causa y liberando a la Universidad de toda
responsabilidad.
Dado en la ciudad de Quito, a los 5 días del mes de marzo del 2018.
_________________________________
Vanessa Julieth Arguero Rodríguez
CI: 1722410006
vi
Constancia de Aprobación del Tutor.
Yo, Dra. Inés Echeverría MSc. en calidad de tutora del proyecto de investigación titulado
“Prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces caninas muestreadas en el parque La
Carolina del Distrito Metropolitano de Quito”, elaborado por Vanessa Julieth Arguero
Rodríguez CI: 1722410006, estudiante de la Carrera de Bioquímica Clínica, Facultad de
Ciencias Químicas de la Universidad Central del Ecuador, considero que el mismo reúne con
los requisitos y méritos necesarios en el campo epistemológico y metodológico, por lo que
APRUEBO, a fin de que sea sometido a la evaluación por parte del tribunal calificador que se
designe.
En la ciudad de Quito, a los 2 días del mes de febrero del 2018.
___________________________________
Dra. Inés Catalina Echeverría Llumipanta
CI: 1715966741
vii
Constancia de aprobación del trabajo final por parte del tribunal.
El Tribunal constituido por: Dra. Inés Echeverría, Dra. Rommy Terán y Dr. Iván Tapia, luego
de revisar el trabajo de investigación titulado: “Prevalencia de parásitos zoonóticos presentes
en heces caninas muestreas en el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito”
previo a la obtención del título (o grado académico) de Bioquímica Clínica presentado por la
señorita Vanessa Julieth Arguero Rodríguez APRUEBA el trabajo presentado.
Por constancia de lo actuado firman:
_________________ ____________________
Dra. Rommy Terán. Dr. Iván Tapia
CI: 1708168966 CI: 1708468358
___________________
Dra. Inés Echeverría.
CI: 1715966741
viii
Lugar donde se realizó la investigación
El muestreo realizado en el presente trabajo de investigación, se llevó a cabo en el parque
Metropolitano La Carolina ubicado en la zona de Iñaquito y delimitado por las avenidas
Shyris, Eloy Alfaro, Amazonas y Naciones Unidas. Quito 170135, Ecuador.
(-0.181056500, -78.484218900). Mientras que el análisis de las muestras recolectadas, se
realizó en el laboratorio de Análisis Clínico de la Universidad Central del Ecuador, ubicada
en Ciudadela Universitaria, Avenida América Quito 170129.
ix
Índice de Contenidos
Páginas preliminares .................................................................................................................. i-xiv
RESUMEN .................................................................................................................................... xv
ABSTRACT ................................................................................................................................. xvi
Introducción ..................................................................................................................................... 1
1. CAPÍTULO I El Problema .......................................................................................................... 4
1.1 Planteamiento del problema ...................................................................................................... 4
1.2 Formulación del problema ......................................................................................................... 8
1.3 Objetivos de la investigación ..................................................................................................... 8
1.3.1 Objetivo general .............................................................................................................. 8
1.3.2 Objetivos específicos ....................................................................................................... 8
1.4 Importancia y justificación de la investigación ......................................................................... 9
2. CAPÍTULO II Marco Teórico ................................................................................................... 10
2.1 Antecedentes ............................................................................................................................ 10
2.2 Fundamento teórico ................................................................................................................. 15
2.2.1 Zoonosis ........................................................................................................................ 15
2.2.2 Parasitosis ...................................................................................................................... 16
2.2.3 Principales parásitos zoonóticos transmitidos por Canis lupus familiaris. ................... 16
2.2.3.1 Toxocara canis. ....................................................................................................... 17
2.2.3.1.1 Transmisión de Toxocara canis. ....................................................................... 17
2.2.3.1.2. Toxocariosis ................................................................................................... 18
2.2.3.1.3 Epidemiología y control . ................................................................................ 20
2.2.3.2 Ancylostoma caninum .............................................................................................. 21
2.2.3.2.1 Transmisión de Ancylostoma caninum ............................................................. 22
2.2.3.2.2 Anquilostomiasis . ........................................................................................... 23
2.2.3.2.3 Epidemiología y control . ................................................................................ 23
x
2.2.3.3 Trichuris vulpis ........................................................................................................ 24
2.2.3.3.1 Transmisión de Trichuris vulpis ....................................................................... 25
2.2.3.3.2 Trichuriasis . .................................................................................................... 26
2.2.3.3.3 Epidemiología y control .................................................................................. 27
2.2.3.4 Dipylidium caninum ................................................................................................ 27
2.2.3.4.1 Transmisión de Dipylidium caninum ................................................................ 28
2.2.3.4.2 Dipilidiasis . ..................................................................................................... 29
2.2.3.5 Echinococcus granulosus ......................................................................................... 30
2.2.3.5.1 Transmisión de Echinococcus granulosus ....................................................... 30
2.2.3.5.2 Hidatidosis ....................................................................................................... 31
2.2.3.6 Giardia lamblia ........................................................................................................ 32
2.2.3.6.1 Transmisión de Giardia lamblia ...................................................................... 33
2.2.3.6.2 Giardasis .......................................................................................................... 34
2.2.3.6.3 Epidemiología y control .................................................................................. 35
2.2.3.7 Chilomastix mesnili .................................................................................................... 36
2.2.3.7.1 Transmisión de Chilomastix mesnili ................................................................ 36
2.2.3.7.2 Presentación clínica ......................................................................................... 37
2.2.3.7.3 Epidemiología y control .................................................................................. 37
2.2.3.8 Ascaris lumbricoides .................................................................................................. 38
2.2.3.7.1 Transmisión de Ascaris lumbricoides .............................................................. 39
2.2.3.7.2 Presentación clínica ......................................................................................... 40
2.2.3.7.3 Epidemiología y control .................................................................................. 40
2.2.3.7 Complejo Entamoebas ................................................................................................ 41
2.2.3.7.1 Entamoeba histolytica ...................................................................................... 41
2.2.3.7.1.1 Transmisión ................................................................................................ 42
xi
2.2.3.7.1.2 Presentación clínica .................................................................................... 43
2.2.3.7.1.3 Epidemiología y control ............................................................................. 44
2.2.3.7.2 Entamoeba coli ................................................................................................ 44
2.2.3.7.2.1 Transmisión ............................................................................................... 45
2.2.3.7.2.2 Epidemiología y control ............................................................................ 45
2.2.4 Técnicas para la identificación de parásitos zoonóticos ................................................ 45
2.2.4.1 Examen macroscópico .................................................................................... 46
2.2.4.2 Examen microscópico .................................................................................... 46
2.2.4.3 Métodos de flotación ...................................................................................... 46
2.2.4.4 Técnica de sedimentación espontánea en tubo ............................................... 47
2.2.4.5 Cuantificación mediante cámara de McMaster .............................................. 47
2.3 Marco Legal ............................................................................................................................. 48
2.4 Hipótesis ................................................................................................................................ 50
2.5 Conceptualización de variables ............................................................................................... 50
3. CAPÍTULO III Marco Metodológico........................................................................................ 52
3.1 Diseño de la investigación ....................................................................................................... 52
3.2 Materiales y métodos ............................................................................................................... 53
3.2.1 Población y muestra....................................................................................................... 53
3.2.2 Materiales ...................................................................................................................... 54
3.2.3 Métodos y técnicas de análisis....................................................................................... 55
3.3 Operacionalización de variables .............................................................................................. 58
3.4 Técnicas e instrumentos de recolección de datos .................................................................... 59
3.5 Técnica de análisis e interpretación de resultados ................................................................... 59
4. CAPÍTULO IV Análisis y Discusión de los Resultados ........................................................... 60
4.1 Resultados ................................................................................................................................ 60
4.2 Discusión de los resultados .................................................................................................... .64
5. CAPÍTULO V Conclusiones y Recomendaciones ................................................................... 69
xii
5.1 Conclusiones ............................................................................................................................ 69
5.2 Recomendaciones ................................................................................................................... .71
BIBLIOGRAFÍA ........................................................................................................................... 73
Índice de anexos
Anexo A: Árbol de problemas ....................................................................................................... 80
Anexo B: Mapa del área de recolección de muestras .................................................................... 81
Anexo C: Fotografía panorámica del parque La Carolina ............................................................. 82
Anexo D: Imágenes capturadas durante la investigación .............................................................. 83
Anexo E: Fotografías de especies parasitarias identificadas en el estudio .................................... 87
Anexo F: Flujograma de los macro y micro procesos ................................................................... 89
Anexo G: Guía de observación impresa ........................................................................................ 90
Anexo H: Guía de observación digital Microsoft Excel 2007 ...................................................... 91
Anexo I: Traducción certificada del resumen............................................................................... 92
Índice de figuras
Figura No. 1: Ciclo de vida de Toxocara canis ............................................................................. 19
Figura No. 2: Migración y localización de Toxocara spp en el hombre ....................................... 20
Figura No. 3: Boca de Ancylostoma caninum ............................................................................... 21
Figura No. 4: Huevos embrionados de Ancylostoma caninum ...................................................... 21
Figura No. 5: Ciclo de vida de Ancylostoma caninum .................................................................. 22
Figura No. 6: Paciente con el síndrome de larva migrans cutánea ................................................ 24
Figura No. 7: Parásito adulto de Trichuris vulpis .......................................................................... 25
Figura No. 8: Huevos de Trichuris vulpis ..................................................................................... 25
Figura No. 9: Ciclo de vida y transmisión Trichuris vulpis .......................................................... 26
Figura No. 10: Hipocratismo digital .............................................................................................. 27
Figura No. 11: Dipylidium caninum adulto .................................................................................. 28
xiii
Figura No. 12: Paquete de huevos de Dipylidium caninum .......................................................... 28
Figura No, 13: Ciclo de vida de Dipylidium caninum ................................................................... 29
Figura No. 14: Ciclo de vida de Echinococcus granulosus ........................................................... 30
Figura No. 15: Quistes hidatídicos ................................................................................................ 32
Figura No. 16: Trofozoito de Giardia lamblia .............................................................................. 33
Figura No, 17: Quiste de Giardia lamblia ..................................................................................... 33
Figura No. 18: Ciclo de vida de Giardia lamblia .......................................................................... 34
Figura No. 19: Ciclo de vida de Chilomastix mesnili .................................................................... 37
Figura No. 20: Huevo fertilizado de Ascaris lumbricoides ........................................................... 38
Figura No. 21: Huevo no fertilizado de Ascaris lumbricoides ...................................................... 38
Figura No. 22: Ciclo de vida de Ascaris lumbricoides .................................................................. 39
Figura No. 23: Quistes de Entamoeba histolytica ......................................................................... 41
Figura No. 23: Trofozoito de Entamoeba histolytica .................................................................... 41
Figura No. 25: Ciclo de vida Entamoeba coli ............................................................................... 42
Figura No. 26: Colitis amebiana .................................................................................................... 43
Figura No. 27: Quiste y trofozoito de Entamoeba coli.................................................................. 45
Figura No. 28: Cámara de McMaster ............................................................................................ 47
Figura No. 29: Ilustración de los campos observados en una cámara de McMaster ..................... 57
Figura No. 30: Flujograma de macroprocesos(Diseño experimental) ........................................... 57
Figura No. 31: Frecuencias de parásitos zoonóticos identificados ................................................ 61
Figura No. 32: Árbol de problemas ............................................................................................... 80
Figura No. 33: Mapa Parque Metropolitano La Carolina .............................................................. 81
Figura No. 34: Ilustración de las áreas del parque La Carolina .................................................. ..82
Figura No. 35: Imagen capturada durante las visitas de campo .................................................... 83
Figura No. 36: Imagen capturadas durante las visitas de campo................................................... 83
Figura No. 37: Imagen capturada durante las visitas de campo .................................................... 83
Figura No. 38: Imagen capturada durante el muestreo .................................................................. 84
Figura No. 39: Imagen capturada durante el muestreo .................................................................. 84
Figura No. 40: Imgagen capturada durante el muestreo ................................................................ 84
Figura No. 41: Lugar de recolección de una muestra positiva para Giardia lamblia ................... 85
Figura No. 42: Lugar de recolección de una muestra positiva para A. caninum ........................... 85
xiv
Figura No. 43: Lugar de recolección de una muestra positiva para Isospora canis ...................... 85
Figura No. 44: Lugar de recolección de una muestra positiva para Toxocara canis .................... 86
Figura No. 45: Lugar de recolección de una muestra positiva para T. canis e Isospora canis ..... 86
Figura No. 46: Huevos de Ancylostoma caninum ......................................................................... 87
Figura No. 47: Ooquistes de Isospora canis ................................................................................. 87
Figura No. 48: Huevos de Ascaris lumbricoides ........................................................................... 87
Figura No. 49: Huevos de Ancylostoma caninum (Sedimentación espontánea) ........................... 87
Figura No. 50: Huevos de Toxocara canis (Sedimentación espontánea) ...................................... 87
Figura No. 51: Huevo de Trichuris vulpis ..................................................................................... 87
Figura No. 52: Huevos de Toxocara canis (Flotación con solución salina st.) ............................. 88
Figura No. 53: Huevos de Toxocara canis (Observación microscópica directa.) ......................... 88
Figura No. 54: Quiste de Entamoeba coli ..................................................................................... 88
Figura No. 55: Flujograma de macro y microprocesos ................................................................. 89
Figura No. 56: Captura de pantalla de la guía de observación digital ........................................... 82
Figura No. 57: Traducción certificada del resumen por CEC-EPN .............................................. 82
Índice de tablas
Tabla No. 1: Materiales requeridos para la investigación ............................................................. 54
Tabla No. 2: Matriz de operacionalización de variables ............................................................... 58
Tabla No. 3: Áreas de recolección de muestras............................................................................. 60
Tabla No. 4: Presencia de expendio de alimentos en áreas contaminadas .................................... 60
Tabla No. 5: Presencia de parásitos zoonóticos ............................................................................ 61
Tabla No. 6: Tipos de parasitosis encontradas .............................................................................. 61
Tabla No. 7: Géneros y especies de parásitos revelados en el estudio .......................................... 62
Tabla No. 8: Lugares de recolección de muestras parasitadas ...................................................... 63
Tabla No. 9: Concetración parasitaria de helmintos...................................................................... 63
Tabla No. 10: Guía de observación y recolección de datos ........................................................... 90
xv
PREVALENCIA DE PARÁSITOS ZOONÓTICOS PRESENTES EN HECES CANINAS
MUESTREADAS EN EL PARQUE “LA CAROLINA” DEL DISTRITO
METROPOLITANO DE QUITO.
Autora: Vanessa Arguero.
Tutora: Dra. Inés Echeverría MSc.
RESUMEN
Las parasitosis zoonóticas constituyen un problema de salud pública a nivel mundial, dentro
de estas, las transmitidas por perros se encuentran entre las más frecuentes. En varios países
del mundo, se ha evidenciado que la materia fecal de perros, que contaminan calles, plazas,
parques, playas e incluso hogares, representan un foco de infección de zoonosis. El objetivo
principal de este estudio fue determinar la prevalencia de especies parasitarias zoonóticas,
encontradas en heces caninas que contaminan el parque La Carolina del Distrito
Metropolitano de Quito (DMQ), lugar con un área de 64 hectáreas y al que cada fin de semana
50 000 personas lo visita. Las 140 muestras recolectadas los domingos del período julio-
septiembre del 2017, fueron analizadas en el Laboratorio de Análisis Clínico de la Facultad de
Ciencias Químicas de la Universidad Central del Ecuador. Se realizaron exámenes
macroscópicos, coproparasitarios microscópicos y técnicas de flotación y sedimentación
espontánea. Los resultados obtenidos revelaron la presencia de parásitos zoonóticos, siendo
Ancylostoma caninum el más prevalente con un 40,0%, seguido de Entamoeba spp (25,0%),
Toxocara canis (20,0%), Trichuris vulpis (10,0%), Giardia lamblia (10,0%), Ascaris
lumbricoides (5,0%) y Chilomastix spp (5,0%). Se determinó además que el lugar de mayor
contaminación es el área comprendida por las canchas del parque (45,0%) y que el 64,3% de
las muestras fueron halladas en lugares cercanos a sitios de expendio y consumo de alimentos.
En conclusión, la contaminación ambiental dentro del parque La Carolina, con especies
parasitarias zoonóticas se afirma y debería generar acciones por parte de los organismos
encargados del control y manejo de la salud pública del DMQ, por lo que se recomienda que
estudios como este se lleven a cabo en lugares en los cuales exista una elevada afluencia de
personas y sobre todo en los que se expendan alimentos preparados al aire libre.
Palabras Clave: PARASITOSIS, ZOONOSIS, HECES CANINAS, PARQUE LA
CAROLINA, ANCYLOSTOMA, ENTAMOEBAS, TOXOCARA.
xvi
PREVALENCE OF ZOONOTIC PARASITES PRESENT IN CANINE STOOL
SAMPLES IN THE "LA CAROLINA" PARK OF THE METROPOLITAN DISTRICT
OF QUITO.
Author: Vanessa Arguero
Thesis Director: Echeverría Inés MSc.
ABSTRACT
Zoonotic parasites are a public health problem worldwide. In several countries, those
spread by dogs are among the most frequent. It has been shown that the fecal matter of
dogs that contaminates streets, squares, parks, beaches and even homes represents a focal
point for zoonotic infection. The main objective of this study was to determine the
prevalence of zoonotic parasites in the canine feces that contaminate “La Carolina” park
that consists of 64 hectares, located in the Metropolitan District of Quito (MDQ), and is
visited by 50,000 people each weekend. The 140 samples collected on Sundays from July
to September 2017, were analyzed in the Laboratory of Clinical Analysis of the Faculty of
Chemical Sciences of the Central University of Ecuador. Macroscopic, microscopic
coproparasitic, flotation techniques and spontaneous sedimentation tests were performed.
The results obtained revealed the presence of zoonotic parasites, with Ancylostoma
caninum being the most prevalent with 40.0%, followed by Entamoeba spp (25.0%),
Toxocara canis (20.0%), Trichuris vulpis (10.0%), Giardia lamblia (10.0%), Ascaris
lumbricoides (5.0%) and Chilomastix spp (5.0%). It was further found that the place of
greatest contamination is the area covered by the park courts (45.0%) and that 64.3% of the
samples were found in locations close to places used for the sale and consumption of food.
In conclusion, the environmental contamination of “La Carolina” park with zoonotic
parasites has been demonstrated and should generate action by the agencies responsible for
the control and management of public health in the MDQ. Furthermore it is recommended
that studies like this be carried out in places where there is a high influx of people and
especially in locations where food is prepared and sold outdoors.
DESCRIPTORS: PARASITOSIS, ZOONOSIS, CANINE FECES, LA CAROLINA
PARK, ANCYLOSTOMA, ENTAMOEBAS, TOXOCARA.
I, Dawn Courtenay Luck Pinsent, certify under oath that I am fluent (conversant) in the English and Spanish
languages, and that the above document is an accurate translation of the original attached document in
Spanish.
____________________________ Date: February 27, 2018
Dawn Courtenay Luck Pinsent CEC-EPN
traducciones@cec-epn.edu.ec Quito-Ecuador
(593) 2 252 5766 ext. 118
1
Introducción
Las enfermedades zoonóticas constituyen un problema de salud pública en diversos países
del mundo, y han generado gran atención en las autoridades sanitarias locales e
internacionales. Dentro de estas enfermedades las parasitosis transmitidas por animales,
específicamente perros causan preocupación por la elevada cantidad de familias que conviven
con estos animales.
Actualmente los animales de compañía se han convertido en parte importante de las
familias, principalmente los perros, que según César Milán experto en conducta animal, se han
ido integrando sorprendentemente a la vida de los humanos, creándose una dependencia entre
ambos. Así por ejemplo en nuestro país, según una publicación del diario El Telégrafo del año
2015 se revela que tres de cada cinco familias ecuatorianas tiene una mascota, mientras que
diario El Comercio publicó en el año 2016 que existe un animal domesticado por cada cuatro
habitantes en la ciudad de Quito, es decir, hay la presencia de aproximadamente 500 000
perros y gatos (EL COMERCIO, 2016). El hecho de tener un perro en casa involucra un
contacto permanente con el mismo, sobre todo con los niños y a pesar de que esta situación
tiene ventajas sobre su salud emocional, también puede representar un efecto negativo si se
toma en cuenta las enfermedades que estos animales pueden transmitir a los humanos, entre
las que se encuentran la enfermedad de Lyme, rabia, tiña, escabiosis, leptospirosis, y una gran
variedad de parásitos intestinales que entre los más frecuentes se encuentran: Toxocara canis
causante de los denominados síndromes de la larva migrans visceral y ocular, Dipylidium
caninum o tenia del perro, agente causal de las dipilidiasis humanas, Ancylostoma caninum
causante de las anquilostomiasis y del característico síndrome de la larva migrans cutánea,
Trichuris vulpis agente patógeno de las trichuriasis, y Echinococcus granulosus causante de la
enfermedad denominada hidatidosis (López-Ykehara, 2015).
La sobrepoblación de perros callejeros en la ciudad de Quito, constituye un factor
importante para la existencia de estas parasitosis zoonóticas y por lo tanto es un grave
problema de salud pública. Según una publicación de diario Extra y datos de Urbanimal se
sabe que aproximadamente 280 000 perros deambulan por las calles de la capital, siendo el
Parque Metropolitano La Carolina, uno de los lugares en el que con más frecuencia se
2
abandonan los canes, que son incapaces de regresar a sus hogares y permanecen en el lugar
(Castellanos, 2016). La presencia de perros callejeros, la elevada cantidad de mascotas que
frecuentan el sitio junto a sus dueños y el mal manejo de los desechos biológicos de estos
animales, representan un problema dentro de la convivencia en el parque y puede ser un foco
de infección de enfermedades zoonóticas, debido a que en la mayoría de los casos las personas
no eliminan correctamente las heces fecales de sus mascotas y estas permanecen en el lugar
contaminando suelos, áreas verdes y zonas de recreación (Figura No. 32).
La importancia de este estudio se debe a que dentro de los lugares de esparcimiento del
área urbana del Distrito Metropolitano de Quito (DMQ), no se han realizado estudios de
identificación de parásitos presentes en materia fecal canina, con riesgo potencial de provocar
enfermedades zoonóticas a las personas que con frecuencia acuden a esos lugares. Por tal
motivo el objetivo principal de esta investigación fue determinar la prevalencia de las
diferentes especies de parásitos zoonóticos encontradas en heces caninas muestreadas en el
parque La Carolina y procesadas con protocolos ampliamente utilizados en diversos países
que incluyeron: examen macroscópico, examen microscópico directo, técnicas de flotación y
sedimentación espontánea en tubo. Para el estudio se tomó como referencia el Parque
Metropolitano La Carolina, debido a que se encuentra ubicado en el centro financiero de Quito
y representa uno de los parques más grandes de la ciudad, con una afluencia aproximada de 50
000 personas cada fin de semana (EL COMERCIO, 2009).
El presente trabajo de investigación está estructurado en cinco capítulos principales.
Capítulo I: El Problema, donde se describe la importancia y justificación del tema de
investigación, respaldado de referencias bibliográficas, además se ponen en conocimiento los
objetivos general y específicos de la investigación. El Capítulo II: Marco Teórico, en el cual
se hace referencia a los antecedentes de investigación junto con la fundamentación teórica,
que contiene los temas más relevantes relacionados al proyecto, incluyendo el marco legal.
Dentro de este capítulo también se describen las hipótesis al problema planteado y se
identifican las variables a través de su conceptualización. El Capítulo III: Marco
Metodológico, implica el establecimiento de la población objeto de estudio, materiales,
métodos y procedimientos analíticos para llevar a cabo la investigación. El Capítulo IV:
Análisis y Discusión de los Resultados, dentro del cual se dan a conocer los resultados
3
obtenidos, además de los cálculos realizados en programas de bioestadística como el IBM
SPSS Statistic versión 20.0, con el uso de tablas y figuras así como con la interpretación de
cada una de ellas. El Capítulo V: Conclusiones y recomendaciones, en el cual se muestran de
forma resumida los resultados más relevantes de la investigación, los aportes logrados tras el
estudio, la verificación del cumplimiento de los objetivos planteados y sobretodo el
establecimiento de recomendaciones respecto a la temática que favorezcan a tomar iniciativas
en el ámbito de estudio abordado. Finalmente se incluyen los anexos como: árbol de
problemas (Figura No.32), flujograma de macro y micro procesos (Figura No. 55), mapa del
lugar de muestreo (Figura No.33), fotografías tomadas durante toda la investigación (Anexo
D), fotografías de especies parasitarias encontradas y observadas por microscopía óptica en el
estudio (Anexo E), instrumento de recolección de datos (Tabla No.10) y guía de observación
digital (Figura No. 57).
4
Capítulo I
El Problema
1.1. Planteamiento del Problema
En la actualidad las enfermedades transmitidas por animales, denominadas zoonosis, se han
convertido en un problema de salud pública a nivel mundial. Dentro de esta, las parasitosis
zoonóticas representan enfermedades importantes de estudiar, ya que las mismas pueden
producirse por el contacto directo con animales infectados o por el consumo de alimentos
contaminados. La Organización Mundial de la Salud, señala que cada año enferman en el
mundo aproximadamente 600 millones de personas, es decir, casi uno de cada 10 habitantes,
por ingerir alimentos contaminados y que 420 000 mueren por esta misma causa (OMS,
2015).
Hoy en día una de las especies con las que el hombre mantiene un contacto permanente es
un mamífero carnívoro de la familia de los cánidos llamado perro, el vínculo creado entre el
perro y las personas se ha convertido en algo mucho más estrecho hasta el punto de considerar
a estos animales como “hijos adoptivos”. También es bien conocido que el hecho de tener al
cuidado una mascota implica una serie de beneficios en personas de todas las edades
principalmente niños y adultos mayores, por tal motivo y con el afán de comprobar esta
relación se han realizado diversos estudios alrededor del mundo, poniendo como un claro
ejemplo el estudio realizado por Folch A, et al. (2016) a personas de la tercera edad, residentes
en el geriátrico Santa Teresa de Valls en España, con el cual se llegó a la conclusión que la
aplicación de terapias asistidas con perros en estos pacientes produce una disminución
significativa de los síntomas depresivos, así como de los niveles de presión arterial, mejorando
de esta manera su calidad de vida (Folch A, et al, 2016).
Así mismo, en un reporte emitido por la Federación Internacional de Envejecimiento, se
asegura que la presencia de un perro como mascota de compañía, ayuda a las personas
mayores a atravesar etapas como un duelo, disminuyendo el deterioro de la salud de los
viudos/as y que además la presencia de estos animales permite un aumento de la autoestima y
en general involucra la existencia de estados de ánimo positivos. Gómez L, et al (2007) en el
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artículo “La influencia de las mascotas en la vida humana” revelan que los perros pueden ser
utilizados como recursos terapéuticos en la terapia asistida motivacional en pacientes con
síndrome de inmunodeficiencia adquirida, Alzheimer y varios transtornos psicológicos.
Además, mencionan que la tenencia de una mascota es un factor de protección frente a
enfermedades cardiovasculares, ya que pueden favorecer a la disminución de ciertos factores
de riesgo como la presión arterial, frecuencia cardiaca y ansiedad (Gómez-G LF, Atehortúa-H
CG, Orozco-P SC, 2007).
Meer et al (2004) y Hesselmar et al (1999) llegaron a la conclusión que el poseer una
mascota a temprana edad, constituye un factor de protección frente a enfermedades alérgicas
como el asma, la rinitis alérgica y la atopia; así mismo en un estudio realizado por Wood et al
(2005) se encontró que los niños dueños de perros, casi nunca se sienten solos, y se les hace
mucho más fácil iniciar amistades, mejorando así sus relaciones interpersonales
Actualmente más de la mitad de la población a nivel mundial tiene un perro, sin poseer una
cifra precisa de la cantidad de perros en el mundo, se conoce que existen aproximadamente
500 millones de canes, dato obtenido después de un censo mundial con datos de 68 países
realizado por la Sociedad Mundial para la Protección Animal, cifra que según los expertos se
encontraría muy debajo de la real (San Martín, 2014). Se estima además que
aproximadamente 72 millones de familias poseen y comparten su vida con mascotas en la
Unión Europea, mientras que en los Estados Unidos de Norteamérica, la Asociación
Americana de productos para mascotas estima que existen un total de 83,3 millones de perros.
América Latina, es la región en la cual existe una mayor cantidad de dueños de mascotas,
específicamente en la ciudad de Quito, según datos publicados por diario El Comercio, existen
cerca de 500 000 animales domesticados, es decir, un animal por cada cuatro habitantes.
Además se estima que alrededor de 280 000 perros deambulan en las calles de Quito, en busca
de un poco de agua y comida para lograr sobrevivir; sin embargo la mayoría de ellos han sido
abandonados por sus dueños situación que dentro del área urbana de Quito es demasiado
frecuente y uno de los lugares más comunes para el abandono, es el Parque Metropolitano La
Carolina (EL COMERCIO, 2016).
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En el parque La Carolina, lugar donde se realizó el estudio, ubicado en el centro financiero
de la ciudad de Quito es fácil observar a las personas paseando, trotando o sencillamente
caminando junto a sus mascotas. Así como también, se puede observar a perros abandonados
que caminan por el lugar al no tener la posibilidad de regresar a casa (Figura No.36). Para el
estudio se tomó como referencia este parque ya que representa uno de los más grandes de la
ciudad de Quito, del Ecuador y de América del Sur (Figura No. 33). Durante los fines de
semana llegan a este lugar aproximadamente 50 000 personas, que pueden recrearse utilizando
sus diferentes áreas como canchas de fútbol, tenis, pelota nacional, baloncesto, pista de
atletismo, patinaje, etc. Así como todos sus espacios verdes entre los cuales destacan el Jardín
Botánico, la laguna el Quinde y la zona canina (Anexo C), misma que se encuentra destinada
para disfrutar, relajarse y ejercitarse junto a las mascotas, pues según estimaciones el 35% de
los visitantes llevan a sus animales al lugar (Negrete, 2016). Además aproximadamente 112
vendedores ambulantes debidamente regularizados realizan sus ventas en este lugar; sin
embargo datos revelados por la administración del parque indican que más de 400 vendedores
sin el permiso respectivo llegar a proporcionar sus productos al lugar (Figura No. 39) (EL
COMERCIO, 2009).
La población canina que visita el parque acompañada de sus dueños es elevada, estos
perros, sumados a los canes en situación de calle que viven en el lugar, constituyen un
potencial riesgo para la salud de los visitantes, ya que durante visitas al parque se observó la
presencia de materias fecales en las áreas de recreación, que no han sido eliminadas
correctamente por parte de los dueños de las mascotas o en el caso de los animales que viven
en el sitio, por el personal encargado de la limpieza del parque (Figura No. 40). La presencia
de esta materia fecal en el suelo de las áreas verdes puede ser un foco de infecciones
parasitarias zoonóticas para los visitantes, pues estas personas llegan al lugar con el propósito
de descansar, correr, jugar, patinar, comer al aire libre y en cualquiera de sus actividades
podrían tener contacto con los desechos biológicos caninos.
La materia fecal canina puede contener un sin número de agentes patógenos, que tienen el
potencial riesgo de producir enfermedad en los seres humanos, como por ejemplo Toxocara
canis, un helminto que parasita los perros y que puede producir en los humanos el
denominado síndrome de la larva migrans visceral y larva migrans ocular, la contaminación
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puede ocurrir cuando se ingieren huevos del parásito de manera accidental (Huapaya et al.,
2009). Esta situación fácilmente puede ocurrir dentro del parque, debido a la presencia de
perros y por lo tanto al gran número de huevos infectantes en el medio ambiente. Otro parásito
sumamente común en las heces fecales de los perros es Ancylostoma caninum, un helminto
cuyos huevos se eliminan en las deposiciones y requieren de un ambiente como el suelo para
poder desarrollarse y finalmente convertirse en larvas infectantes para el ser humano,
provocando el síndrome de la larva migrans cutánea, por lo que este parásito también puede
fácilmente encontrarse en varios sitios estrechamente vinculados con las actividades de las
personas que visitan el parque (DATABiO, 2017). Los niños son un grupo de alto riesgo al
contagio de estos parásitos, debido a su mal hábito de no lavarse las manos y llevarse
cualquier objeto contaminado a la boca.
Finalmente, con todo lo expuesto y como se detalla en el Anexo A, esta investigación se
realizó debido a la elevada contaminación con materia fecal canina dentro del parque La
Carolina, la excesiva venta de alimentos que en el lugar se ofertan, la poca disponibilidad de
espacios destinados al lavado de manos, pues por la gran extensión del parque, estos lugares
se encuentran distribuidos aleatoriamente, un tanto lejos de las actividades de los visitantes.
Así todos estos factores aumentan las probabilidades de que las personas, principalmente
niños que lo visitan, pueden contraer algún tipo de enfermedad zoonótica, situación que en
otros lugares del mundo ha ocurrido.
Formulación del problema
Determinación de la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces caninas
muestreadas en el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.
¿Qué son las enfermedades zoonóticas?
¿Cuáles son los principales parásitos de perros encontrados en el parque que pueden afectar a
los seres humanos?
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¿Cuáles son las áreas con mayor concentración de muestras fecales caninas dentro del parque
La Carolina?
¿Cuáles serían los factores de riesgo para que los seres humanos adquieran parásitos de
animales?
¿Cuáles son las medidas de prevención para evitar la infección zoonótica?
1.2. Objetivos
1.2.1. Objetivo general:
Determinar la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces caninas muestreadas
en el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito los días domingos durante el
período julio-septiembre del 2017.
1.2.2. Objetivos específicos:
Establecer el género y la especie de los parásitos más frecuentes encontrados en el
parque La Carolina que pueden afectar a los seres humanos.
Establecer las áreas de mayor contaminación con materia fecal canina del Parque
Metropolitano La Carolina.
Proponer medidas de prevención en la ciudadanía que visita el parque La Carolina con
el fin de reducir las infecciones zoonóticas.
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Justificación
Durante los fines de semana llegan aproximadamente 50 000 personas a visitar el parque
La Carolina del DMQ, muchas de ellas en compañía de toda su familia y sus mascotas.
Desafortunadamente no todas estas personas sienten la obligación de recoger la materia fecal
de sus perros, por lo que estos desechos se pueden encontrar fácilmente en cualquier zona del
parque (Figura No.40), a lo que se suma la contaminación generada por los perros en situación
de calle que habitan el lugar y cuyos desechos biológicos no son eliminados por el personal
que cuida la limpieza del lugar. La presencia de toda esta materia fecal en el suelo, arena,
césped o cualquier otro lugar representa un potencial riesgo para la salud de los visitantes
principalmente para los niños.
La materia fecal canina puede contener un sinnúmero de patógenos como bacterias,
parásitos y otros microorganismos que pueden ser transmisibles para los humanos y tienen una
elevada posibilidad de afectar gravemente la salud de las personas, ya que la materia fecal al
estar expuesta a los cambios de temperatura y humedad en el suelo, se convierte en polvo que
rápidamente se dispersa y contamina el aire, produciendo además la contaminación de los
alimentos que se preparan y expenden en el lugar (Enríquez, 2017).
Ciertos factores dentro del parque La Carolina, como la venta de alimentos que se ubica en
prácticamente cualquier área, tal como se puede apreciar en la figura No. 38, el número tan
elevado de personas y perros que lo visitan y la posible contaminación de los alimentos que
ahí se expenden, generan preocupación en cuanto al riesgo que tienen los visitantes de
contraer algún tipo de enfermedad zoonótica, específicamente una parasitosis transmitida por
alimentos contaminados con partículas de materia fecal canina parasitada. Dentro de estas
parasitosis las más frecuentes son la infección por Toxocara canis causante del síndrome de la
larva migrans visceral y ocular; así como por Ancylostoma caninum causante del síndrome de
la larva migrans cutánea; ambas parasitosis que pueden comprometer significativamente la
salud de las personas. Siendo la población más afectada los niños que tienen como factor de
riesgo la geofagia, la falta de lavado de manos y el contacto más estrecho con los espacios
verdes durante la realización de juegos o cualquier otra actividad.
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Este estudio pretendió revelar las especies de parásitos que con mayor prevalencia se
encuentran en las heces caninas que contaminan el parque La Carolina del DMQ, para de esta
manera brindar medidas de prevención a la comunidad que lo vistita y evitar el riesgo de una
transmisión de parásitos zoonóticos. Así como también dar a conocer los resultados a las
autoridades y entidades pertinentes como la Unidad de Espacio Público de la Empresa
Metropolitana de Movilidad y Obras Públicas del Municipio de Quito, encargada de ejercer el
cuidado y mantenimiento de los espacios públicos, para que se den cumplimiento a las
ordenanzas municipales descritas en el marco legal del presente trabajo. Además, que con los
datos generados se logre que la Secretaría de Salud del DMQ y Urbanimal, ambas
dependencias del municipio capitalino, realicen campañas de promoción y prevención de
enfermedades zoonóticas con el adecuado manejo de la fauna urbana.
El estudio también pretende crear conciencia en los propietarios de las mascotas, en cuanto
a la correcta eliminación de los desechos biológicos de sus animales, así como la obligación
de desparasitarlos, vacunarlos y llevarlos periódicamente a sus controles veterinarios. Con
respecto a la población canina en situación de calle, la investigación busca captar la atención
de la Empresa Pública Metropolitana de Aseo de Quito (EMASEO), la Secretaría de
Ambiente de Quito y la Agencia Metropolitana de Control (AMC), para que se apliquen
medidas en cuanto a la correcta eliminación de materia fecal canina en espacios públicos de la
cuidad; así como para que se realicen campañas que busquen un manejo adecuado de los
perros callejeros, con protocolos apegados a los derechos y bienestar animal.
Es importante además conocer las acciones que han tomado los gobiernos locales de varios
países para combatir esta problemática, por ejemplo recientemente el gobierno de Bogotá
estableció una multa ambiental de 205 000 pesos (≈ 70 dólares) a toda persona que no recoja
los desechos de sus mascotas (Sostenible S.A., 2015). Holanda, el primer país sin perros
callejeros, logró tal fin mediante la ejecución estricta de campañas de esterilización, pues
según la OMS y la World Animal Protection esta medida es la única solución para frenar la
sobrepoblación canina callejera, que representa un factor importante en la contaminación
ambiental con materia fecal potencialmente peligrosa para la salud humana (Diez, 2016). En
España, el ayuntamiento de Játiva ha reducido en un 80% en el último año la presencia de
materia fecal canina en las calles, mediante la creación de un banco de ADN canino y la
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aplicación de una ordenanza en la que los dueños de perros tienen la obligación de registrar el
perfil genético del animal, de tal manera que se facilita mucho la identificación por parte de
los técnicos municipales de la persona que no recogió y a la que se le aplica una multa de
entre 100 y 300 euros (Alcorta, 2016). En Quito, a pesar de la existencia de ordenanzas
municipales en las que se estipula la aplicación de multas de alrededor de 73 dólares a los
dueños de mascotas que no eliminen adecuadamente los desechos, el problema sigue sin tener
una evidente solución, posiblemente debido a una falta de ejecución de dichas ordenanzas.
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Capítulo II
Marco Teórico
2.1. Antecedentes de la Investigación:
La prevalencia de parásitos encontrados en heces caninas con potencial riesgo zoonótico ha
sido estudiada en varios lugares del mundo, tomando como claros ejemplos los estudios
realizados por (Letra et al., 2014) bajo el título de “Múltiples parásitos zoonóticos
identificados en heces de perros recogidas en Ponte de Lima, Portugal- Una amenaza
potencial para la salud humana” después de analizar 592 muestras fecales recolectadas en tres
sitios diferentes como lugares públicos, granjas de perros y un grupo de perros de caza se
determinaron tras estudios coprológicos, técnicas de flotación y detección molecular de
Equinococus granulosus, la presencia de aproximadamente cuatro parásitos por muestra,
siendo el más prevalente Ancylostoma caninum, seguido de Trichuris spp, Toxocara spp,
Isospora spp, Dipylidium caninum y Toxascaris leonina. Resultados que revelaron un alto
nivel de contaminación ambiental con parásitos zoonóticos y la necesidad urgente de realizar
un cambio en la educación para la salud y la comunicación de riesgos entre familias,
agricultores y cazadores en esta zona de Portugal.
Un estudio realizado por Mahdy et al (2012) en Selangor, un estado de Malasia, en el que
se analizaron y procesaron 221 muestras de materia fecal de perros callejeros de zonas
urbanas, rurales y perros de refugios, por el método de concentración formalina-éter, tinción
con yodo, observación microscópica directa y análisis molecular de las muestras positivas, se
obtuvo como resultado una prevalencia del 48% para Ancylostoma, un género de gusanos
redondos que parasitan los perros con capacidad de infectar a los humanos provocando el
síndrome de la larva migrans cutánea. Encontrándose además que los perros callejeros de la
zona rural tenían cinco veces más riesgo de infección por Ancylostoma. Después de realizar
pruebas de PCR en las muestras positivas de la población canina incluida en este estudio y con
ayuda de la base de datos de GenBank utilizando BLAST, se mostró que los parásitos más
prevalentes fueron Ancylostoma canimun y Ancylostoma ceylanicum, existiendo así un alto
riesgo de contaminación de áreas públicas con larvas infectantes para los seres humanos.
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Dentro del continente Americano, el estudio sobre la temática ha sido más abordado, pues
en países como México, Colombia, Perú, Chile, Brazil, Argentina, Bolivia se han realizado
investigaciones en busca de la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en materia fecal
canina. Poniendo como ejemplo el estudio realizado en México, en el cual se encontró que de
180 muestras recolectadas en la ciudad de Puerto Escondido-Oaxaca, analizadas por frotis
directo y flotación simple, el 73,33% de las mismas registraba presencia de parásitos y de
todas estas, aproximadamente el 66,66% poseían parásitos de potencial riesgo zoonótico
dentro de los cuales el más prevalente fue Toxocara canis con un 47,78% seguido de
Ancylostoma caninum (17,88%), Isospora spp (14,44%), Dipylidium caninum (18,89%),
Toxascaris leonina (7,22 %) y Trichuris vulpis con el 1,11%. Resultados considerados como
alarmantes, pues la mayor prevalencia de parásitos se situó en áreas con fines turísticos-
recreativos, siendo un foco de infección para quienes visitan Puerto Escondido (Vélez-
Hernández L y cols, 2014).
En Colombia, existe una diversidad de estudios acerca de la presencia de parásitos
zoonóticos en materia fecal canina, se puede hacer referencia al realizado por Sierra-Cifuentes
et al (2015), en el que se estudió la materia fecal de todos los perros de dos centros de
bienestar animal de Medellín y del oriente Antoqueño, realizando exámenes microscópicos
directos con solución fisiológica y lugol, mediante la técnica de flotación de Sheather, además
del recuento de huevos en las muestras positivas, encontrándose una prevalencia de infección
del 72,1% con una tasa mayor de helmintos a comparación con protozoos. Dentro de los
parásitos más prevalentes encontrados en ambos centros se citan Uncinaria stenocephala,
Ancylostoma caninum, Trichuris vulpis y Toxocara spp (Sierra-Cifuentes et al., 2015).
Otro estudio colombiano es el realizado en la población canina con dueños del Municipio
de La Mesa en Cundinamarca, en el cual se recolectaron 122 muestras de materia fecal,
mismas que fueron procesadas mediante la técnica de Ritchie para la identificación de
parásitos, obteniéndose una prevalencia de parásitos gastrointestinales en la población de
19,67%, siendo Ancylostoma spp (17,21%) el parásito más encontrado, seguido de Trichuris
vulpis (1,63%) y Giardia spp con el 0,81%, los cuales son potencialmente peligrosos para la
salud humana (Alarcón et al., 2015). Citando un tercer estudio realizado en Colombia por
González-Giraldo (2015), en el que se recolectaron muestras de materia fecal de 175 perros de
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casa en la zona urbana de Coyaima y procesaron utilizando la técnica de concentración formol
éter, en busca de formas parasitarias, se obtuvo como resultado una prevalencia del 53,1%
siendo las especies de parásitos más prevalentes Uncinarias con el 20,6%, Toxocara canis
(8,6%), Strongyloides spp (2,9%), Entamoeba spp (21,1%), Blastocystis spp (18,3%) y
Giardia spp (16%); agentes patógenos de importancia por su potencial riesgo zoonótico
(González-Giraldo, 2015).
Taranto et al. (2000) recolectaron 106 muestras de un número desconocido de perros en el
domicilio y peridomicilio de niños residentes en el Chaco Salteño en Argentina, mismas que
fueron analizadas mediante un estudio coproparasitario que incluyó un frotis en fresco directo
y técnicas de flotación para la búsqueda de parásitos y cuantificación de huevos, de las cuales
el 77,4% resultaron positivas siendo Ancylostoma spp y Toxocara canis los más prevalentes y
encontrándose aproximadamente 200 y 3 871 huevos por cada gramo de heces
respectivamente (Taranto et al., 2000). Otro estudio realizado en Argentina, en el que se
procesaron mediante la técnica de flotación-sedimentación de Willis 288 muestras de heces
caninas, procedentes de 21 plazas pertenecientes a barrios de diferente situación
socioeconómica de la ciudad de Mar del Plata, y cuyos resultados arrojaron que todas las
plazas involucradas en el estudio se encontraban contaminadas con heces caninas parasitadas,
pues 120 del total de muestras resultaron positivas al examen coproparasitario, con la
identificación de especies como Uncinarias, Trichuris vulpis, Toxocara canis, coccidios y
amebas. Demostrando de esta manera una elevada prevalencia de parásitos de importancia
zoonótica en plazas de Mar del Plata lo que trae consigo un elevado riesgo de que la población
adquiera enfermedades zoonóticas (Andresiuk et al., 2004).
En el Ecuador, se han realizado estudios relacionados al tema, como el realizado por Aucay
(2015) en Sucúa-Morona Santiago, en el que se recolectaron un total de 120 muestras de heces
caninas y analizaron mediante examen microscópico directo, teniendo como resultado la
presencia de Toxocara canis y Giardia canis, parásitos de riesgo zoonótico (Aucay, 2015). De
igual manera, en otro estudio realizado en la ciudad de Cuenca por Ramón (2012) y tras la
recolección y análisis de 382 muestras de heces de perros domiciliados de quince parroquias
urbanas de la ciudad, se encontró la presencia de Ancylostoma caninum (4,19%), Toxocara
canis (3,66%), Uncinaria stenocephala (2,36%) y Trichuris vulpis (1,05%). Finalmente, un
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estudio realizado por Caiza (2010) en el sector de Carapungo de la ciudad de Quito, con el
análisis de un total de 291 muestras de heces de perros tanto callejeros como de aquellos que
acudieron a CEGECA (Centro de Gestión Canina de Carapungo), por servicios veterinarios y
procesadas bajo el método de concentración formol éter, se encontró una prevalencia de
60,48%, siendo el parásito más encontrado Toxocara canis con 42 casos positivos,
representando el 14,4% (Caiza, 2010).
En Quito, un estudio realizado en parques urbanos de la ciudad en el año 2014, confirmó la
existencia de especies parasitarias en dichas áreas. Con el análisis de 500 muestras de heces y
500 muestras de suelo, Ancylostoma caninum, fue el parásito zoonótico más prevalente y
precisamente el parque La Carolina al norte de la ciudad se encontró como el más
contaminado junto con el parque Lineal ubicado en el sur de la urbe (Latorre y Nápoles,
2014). Sin embargo, el estudio no se centra específicamente al parque La Carolina de Quito, y
al ser este parque en la actualidad, el más concurrido de la ciudad surge la necesidad de
establecer la prevalencia de las especies de parásitos que tienen el potencial riesgo de producir
enfermedad en los seres humanos y por lo tanto con los resultados que de esta investigación se
obtengan, aportar de manera significativa al conocimiento del nivel de contaminación
ambiental en lugares de esparcimiento masivo y sobretodo captar la atención de las
autoridades pertinentes para que la contaminación dentro del parque sea nula.
2.2. Fundamento teórico
2.2.1. Zoonosis
Las zoonosis son un grupo de enfermedades de los animales que pueden ser transmitidas a
los seres humanos ya sea por un contacto directo con el animal, mediante el contacto con
desechos biológicos contaminados o con la ayuda de un vector como mosquitos o insectos.
(Ministerio de Salud Presidencia de la Nación, 2017). Además, pueden ser transmitidas por el
consumo de alimentos contaminados que no han sido sometidos a los correspondientes
controles sanitarios. Este tipo de enfermedades pueden ser provocadas por un sin número de
agentes entre los que destacan virus, bacterias o parásitos, últimos que pueden encontrarse en
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la piel de los animales (ectoparásitos) o dentro de su organismo (endoparásitos), muchos de
ellos pueden ser observados a simple vista y otros solamente con el uso del microscopio. Los
parásitos viven y se alimentan a expensas del huésped, con lo que son capaces de producir una
enfermedad leve asintomática o incluso enfermedades mucho más graves que llegan a
comprometer la vida del hospedador. Se pueden mencionar algunos de los parásitos
zoonóticos como; Equinococcus granulosus, patógeno causante de hidatidosis, Toxocara
canis asociado al síndrome de la larva migrans visceral y cutánea, Ancylostoma caninum
causante del síndrome de la larva migrans cutánea o Sarcoptes scabiei, causante de la sarna
sarcóptica (Programa Nacional de Control de Enfermedades Zoonóticas, 2017).
2.2.2. Parasitosis
La parasitosis es una patología asociada con agentes pertenecientes a uno de los dos
grandes grupos de parásitos protozoos y helmintos. Este tipo de enfermedad se encuentra
ampliamente distribuida a nivel mundial y es una causa importante de una cifra significativa
de morbimortalidad, sobre todo en las regiones tropicales. Generalmente, estas infecciones se
asocian aún más en países en vías de desarrollo, en comparación con los países desarrollados,
que cuentan con medidas de salud pública como la educación sanitaria y el control vectorial,
las cuales les han permitido un mejor control de estas parasitosis e incluso han logrado
erradicar parte de estas (Pérez-Molina et al., 2010).
2.2.3. Principales parásitos zoonóticos transmitidos por perros (Canis lupus familiaris).
Los parásitos que a continuación se describen, son aquellos que según la bibliografía han
sido encontrados como los que más comúnmente causan enfermedad zoonótica, sin embargo
también se incluyen a los parásitos que fueron revelados en este estudio.
2.2.3.1. Toxocara canis
Es un parásito gusano redondo, de cuerpo cilíndrico no segmentado perteneciente a los
Nemátodos, mide aproximadamente entre 5 y 15 centímetros de longitud, se encuentra
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parasitando el intestino de canes, lobos y zorros. Una hembra adulta tiene la capacidad de
producir alrededor de 200 000 huevos en su hospedador definitivo, mismos que pueden ser
eliminados diariamente en la materia fecal de estos animales (Figura No.1). El suelo
representa un reservorio natural en el que los huevos se desarrollan hasta la forma de larvas
infectantes, pudiendo permanecer viables por un tiempo estimado de uno a tres años, debido a
que los huevos presentan un caparazón grueso y altamente resistente a las condiciones
ambientales normales (Archelli-Kozubsky, 2008).
2.2.3.1.1. Transmisión: El ser humano adquiere el parásito de forma oral a través de
diferentes vías, siendo la vía directa o geofagia la más frecuente. La vía indirecta
puede darse al consumir alimentos contaminados con tierra que contiene huevos
infectantes del parásito o a través de la ingesta de tejidos de animales que
representan huéspedes de transporte y que contienen las formas juveniles
infectantes. Dentro de todos estos modos de transmisión, el suelo cumple un papel
muy importante pues permite la diseminación de esta zoonosis (Archelli-
Kozubsky, 2008).
Tradicionalmente se sabía que la transmisión de Toxocara canis, era improbable
solamente por el contacto directo con los animales enfermos, debido a que los
huevos necesitan de un período de días o semanas para volverse infectivos, sin
embargo, se han encontrado huevos larvados en el pelaje de los perros, hallándose
estos en cantidades mayores en perros callejeros que en animales de compañía, por
lo que esta vía de transmisión también es posible, pero no es la más importante, ya
que se han hecho estudios serológicos que demuestran una relación débil e
inconsistente entre el hecho de mantener contacto con un perro y el título de
anticuerpos anti-Toxocara del propietario. Por lo que la forma principal de
transmisión es la ingesta de huevos larvados del parásito, ya sea de manera
accidental o por malas conductas de higiene (Macpherson C, Meslin F, Wandeler
A, 2000).
2.2.3.1.2. Toxocariosis: Los parásitos adultos de Toxocara canis habitan en el intestino
delgado de los perros, la hembra adulta produce gran cantidad de huevos que son
expulsados en las heces, estos huevos a condiciones óptimas, como una
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temperatura superior a 11°C y una humedad adecuada, se vuelven infectivos. La
infección en el ser humano ocurre tras la ingesta de huevos larvados, mismos que
en el intestino liberan las larvas L2/3 que atraviesan la mucosa intestinal y viajan
por los sistemas linfático y circulatorio hasta alcanzar pulmones e hígado,
diseminándose a partir de allí a múltiples tejidos, como se puede apreciar en la
figura No.2. Las personas infectadas con Toxocara canis pueden no presentar
ningún síntoma, pero existen dos formas principales de la enfermedad:
- Síndrome de la larva migrans visceral:
La migración de gran cantidad de larvas hacia el hígado y las vísceras puede
generar una marcada reacción inflamatoria, que se relaciona con diferentes
manifestaciones clínicas como hepatitis, hepatomegalia, tos, crisis asmatiforme,
miocarditis e incluso insuficiencia cardíaca, en la piel se puede observar eczema
localizado. Cuando la afectación es entérica cursa con anorexia, nauseas, vómitos,
fiebre alta, artralgias, dolor abdominal y eritema; el cuadro se presenta
clínicamente con hipergammaglobulinemia, hipereosinofilia y elevación de las
isohemoaglutininas Anti A y Anti B; así también con serología positiva para
anticuerpos antitoxocara, con concentración leucocitaria que se encuentra entre 12
000 a 58 000 glóbulos blancos/mL y con eosinofilias absolutas de 500 a 34 000
eosinófilos/mL. El diagnóstico suele ser complicado, incluso las manifestaciones
clínicas junto con la determinación del título de anticuerpos suelen ser de escasa
ayuda, el diagnóstico definitivo se lleva a cabo tras la demostración de la presencia
de las larvas del parásito en los tejidos a través de biopsias. El tratamiento
antihelmíntico puede conseguir eliminar las larvas, sin embargo, las reacciones
inflamatorias que estas ocasionaron, junto con las manifestaciones clínicas pueden
tomar un cierto tiempo hasta que desaparezcan completamente (Macpherson C,
Meslin F, Wandeler A, 2000).
-Síndrome de la larva migrans ocular:
La migración larval hacia la retina, se asocia con la formación de granulomas
retinianos que provocan varios grados de discapacidad visual unilateral, causando
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desde una disminución de la agudeza visual, pudiendo llegar a la pérdida total de la
visión, todo dependiendo de la localización de la larva. Además se caracteriza por
leucocoria y endoftalmitis crónica, es más frecuente en niños de más de 10 años y
no cursa con eosinofilia absoluta como las otras toxocariosis (Macpherson C,
Meslin F, Wandeler A, 2000).
Toxocara canis además puede provocar una toxocariosis neurológica con
manifestaciones clínicas dependientes del lugar de localización de las larvas que
producen lesiones parecidas a los tumores, causando convulsiones, meningitis,
mielitis, encefalitis e incluso hemiplejía. Dentro de los factores que determinan la
presentación clínica, se encuentran el número de huevos infectantes ingeridos, el
contacto permanente con la fuente de infección, la edad y respuesta inmune del
huésped. Otros síndromes, menos frecuentes asociados a la infección por Toxocara
canis, incluyen asma, epilepsia, transtornos del sueño y eczemas (Archelli-
Kozubsky, 2008).
Figura No.1. Ciclo de vida de Toxocara canis.
Tomado de (CDC, 2013).
20
2.2.3.1.3. Epidemiología y control: Los seres humanos son susceptibles a la infección por
Toxocara canis, en cualquier etapa de su vida, sin embargo, los niños tienen aún
mayores probabilidades, sobre todo debido a la falta de higiene después de jugar en
ambientes contaminados, así como también debido a la geofagia, hábito usual en
este grupo de edad. El control de esta zoonosis, debería centrarse en crear medidas
que permitan reducir la contaminación del medio ambiente con materia fecal
canina que contenga huevos del parásito, como la desparasitación regular de las
mascotas, un control riguroso de la población canina callejera, y campañas de
educación hacia los propietarios de los animales para crear el hábito de recoger y
eliminar correctamente las heces de las áreas públicas. Debido a que son los
cachorros, quienes tienen una taza de producción de huevos de Toxocara canis
mucho más alta que los adultos, la desparasitación debería realizarse en este grupo
de animales, siguiendo el régimen de la primera dosis a las dos semanas de vida y
la continuación cada dos o tres semanas hasta las doce semanas de vida.
Figura No.2. Migración y localización de Toxocara spp en el hombre.
Tomado de (Archelli-Kozubsky, 2008).
21
2.2.3.2. Ancylostoma caninum
Es un gusano redondeado, perteneciente a la familia de los nemátodos, presentan un cuerpo
corto de aproximadamente 8 y 20 mm de longitud y 0,4 a 0,8 mm de diámetro (Figura No.3).
Los parásitos machos tienen una longitud menor que las hembras y tienen lóbulos para la
cópula en la parte posterior de su cuerpo. Hembra y macho presentan una boca dotada con
dientes que les permiten adherirse a la mucosa intestinal de su hospedador. Constituyen
reservorios de estos parásitos: los humanos, felinos, cánidos, agua, suelo y vegetación. El
hombre es un hospedador accidental de Ancylostoma caninum, mientras que los perros son los
hospedadores definitivos (DATABiO, 2017).
Figura No.3. Las flechas señalan la boca de
Ancylostoma spp.
Tomado de (DATABiO, 2017).
Figura No.4. Huevos larvados de Ancylostoma caninum, identificados
mediante técnica de flotación con solución salina saturada 40x, de una
muestra recolectada en el sector Laguna el Quinde del parque La Carolina.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
22
2.2.3.2.1. Transmisión: Ancylostoma caninum tiene un ciclo de vida directo en el que la
larva filariforme entra en el hospedador a través de la piel llegando a órganos
internos como corazón o pulmones por el torrente sanguíneo y vasos linfáticos. A
partir de los pulmones la larva pasa hacia la epiglotis para ser deglutida y en el
intestino delgado desarrollarse hasta su estadio adulto, proceso que no se requiere
en el caso que la larva haya sido ingerida accidentalmente, pues de esta manera
llega directamente al intestino donde después de la cópula, la hembra pone huevos
que son expulsados hacia el exterior en la materia fecal del hospedador, tal como
se puede apreciar en la figura No.5 (DATABiO, 2017). Los huevos expulsados en
las heces de los hospedadores, generalmente perros, requieren de condiciones
ambientales de temperatura y humedad entre 23 y 30°C para su desarrollo a estado
infectivo (Figura No.4). Las larvas filariformes se encuentran infectivas en el suelo
cuando las condiciones son las adecuadas, sin embargo sin la alimentación de un
Figura No.5. Ciclo de Vida de Ancylostoma caninum
Tomado de (BASKEN, 2017)
23
hospedador pueden morir en aproximadamente uno o dos meses. La transmisión
del parásito se produce principalmente por contacto directo con el suelo
contaminado, pues las larvas atraviesan la piel a través de pequeñas rozaduras o
por los folículos pilosos, la transmisión también se puede dar tras la ingesta
accidentalmente de las larvas (DATABiO, 2017).
2.2.3.2.2. Anquilostomiasis: Generalmente es asintomática, sin embargo en la zona de
entrada de la larva puede aparecer escozor, irritación o incluso una erupción
cutánea papular. Cuando la larva se adentra en el pulmón produce inflamación y
eosinofilia pulmonar simple o denominado síndrome de Löffler, un cuadro
respiratorio agudo con presencia de tos, dificultad para respirar y sibilancias.
Cuando la afectación es intestinal se presentan síntomas como náuseas, anorexia y
dolor abdominal lo que lleva a un cuadro de anemia, pérdida de peso y en general
provoca un estado de desnutrición.
El síndrome de la larva migrans cutánea consecuencia de la presencia y
migración de las larvas del parásito en las capas superficiales y profundas de la
piel, se caracteriza por la presencia de surcos levantados, sinuosos, únicos o
múltiples presentando pápulas, vesículas, descamación y eritema, estas lesiones
son rápidamente progresivas y generan una sensación de extrema picazón sobre
todo por las noches (Figura No.6). A pesar que la infección no madura y se limita a
la piel, la reacción inflamatoria que ocasiona es considerable, además es auto
limitada, pudiendo durar días, semanas o meses. El síndrome es una de las
dermatitis zoonótica más comunes en zonas cálidas y húmedas especialmente en
los niños (Macpherson C, Meslin F, Wandeler A, 2000).
La enteritis eosinofílica es otro cuadro clínico causado por Ancylostoma caninum,
en el cual se produce dolor abdominal, náuseas, vómitos y diarrea, en ocasiones
puede producir ulceración del íleon terminal y colon siendo esta última una
emergencia que requiere de una cirugía (DATABiO, 2017).
2.2.3.2.3. Epidemiología y control: El suelo constituye un reservorio importante en la
transmisión de Ancylostoma caninum, así como también los perros que son la
24
fuente de infestación del mismo, por lo que las medidas de control para disminuir
el riesgo de adquirir esta zoonosis, son similares a las mencionadas para Toxocara
canis, así pues el tratamiento antihelmíntico regular en perros, con nematicidas
como: benzimidazoles, piperazina, lactonas macrocíclicas, imidazotiazoles o
monepantel (Junquera, 2017). Y la educación en higiene de sus propietarios son
puntos clave para evitar que el ser humano adquiera esta enfermedad.
2.2.3.3. Trichuris vulpis
Parásitos nemátodos pertenecientes a la familia Trichuridae, también denominados
tricocéfalos, tienen forma de látigo, su extremo anterior es más fino que el posterior y presenta
un esófago con esticosoma. Las hembras miden aproximadamente 7 cm y los machos
presentan en el extremo posterior una espícula envainada (Figura No.7). Los huevos de
Trichuris vulpis, tiene la característica forma de un limón de aproximadamente 70 a 80 μm,
poseen una cáscara gruesa y cuando se recuperan de heces recién emitidas contienen una sola
célula, tal como se observa en la figura No.8 (Eiras, 2009). Estos parásitos tienen un ciclo de
vida directo y maduran en un solo hospedador, el hospedador se infecta cuando ingiere
accidentalmente huevos infectantes del medio ambiente, estos huevos llegan al intestino
Figura No.6. Paciente masculino, 36 años. Residente en Estados Unidos. Larva migrans
cutánea en pie. Adquirida en una playa del sur de México. Se aprecian varios trayectos
tortuosos, levantados, con vesículas, descamación y eritema. En la figura de la derecha,
paciente 3 días después de tratamiento con ivermectina DO y amoxicilina.
Tomado de (Uribarren, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), 2015).
25
delgado y en las pequeñas criptas maduran parcialmente para su maduración total en el
intestino grueso, por lo que los huevos son expulsados en las heces y necesitan de
aproximadamente semanas para considerarse infectantes y que en condiciones adecuadas
pueden permanecer viables por años (Figura No.8) (The Center for Food Security & Public
Health, 2005).
2.2.3.3.1. Transmisión: Trichuris vulpis infesta a los perros y tiene un carácter zoonótico,
por lo que los huevos expulsados en la materia fecal de estos animales, después de
semanas de permanecer en condiciones ambientales favorables para su desarrollo,
se convierten en huevos embrionarios, mismos que ingresan por vía oral al
hospedador, en este caso el ser humano. La larva del parásito eclosiona en el
trayecto hacia el intestino, realiza sus respectivas mudas hasta convertirse en
parásito adulto y llegar a las profundidades del colon y el ciego (Eiras, 2009). El
período de prepatencia, es decir, el lapso de tiempo que transcurre desde la entrada
del Trichuris vulpis al hospedador hasta su madurez sexual, dura entre 2.5 y 3
meses, mientras que la patencia, tiempo que el parásito adulto permanece dentro
Figura No.8. Huevo de Trichuris
vulpis, observado mediante técnica de
flotación con solución salina
saturada, de una muestra recolectada
en las canchas de Basketball del
parque La Carolina.
Tomado del registro fotográfico de la
autora.
Figura No. 7. Parásito adulto de Trichuris vulpis. La
extremidad posterior se observa gruesa en hembras
y machos, pero se ve enroscada solo en machos.
Tomado de (Eiras, 2009).
26
del hospedador, con producción de huevos tarda alrededor de 5 meses (Figura
No.9).
.
2.2.3.3.2. Trichuriasis: Puede desarrollarse de forma asintomática, sin embargo en una
infección grave aparecen manifestaciones clínicas como diarrea crónica que puede
llegar a ser hemorrágica, además de náuseas, vómitos, flatulencias, pérdida de
peso, dolor de cabeza, distensión abdominal y anemia. En los niños una infección
grave no tratada puede llegar a provocar hipocratismo (Figura No.10), aún por
mecanismos desconocidos. Las complicaciones de la trichuriasis pueden
comprender: prolapso rectal, apendicitis, proctitis, colitis e incluso se han
reportado escasos casos en los que los pacientes han desarrollado el denominado
síndrome de la larva migrans visceral causada por Trichuris vulpis. El diagnóstico
se realiza mediante la demostración de huevos del parásito en las heces, mismos
que son ovales de cáscara gruesa marrones amarillentos y tienen dos tapones en los
Figura No.9. Ciclo de Vida y transmisión al ser humano de Trichuris vulpis.
Tomado de (BASKEN, 2017) y (CDC, 2013).
27
polos tal como se observa en la figura No.8 (The Center for Food Security &
Public Health, 2005).
2.2.3.3.3. Epidemiología y control: Los seres humanos que presenten una infección patente
por Trichuris vulpis, pueden ser agentes de transmisión de la enfermedad a través
de la contaminación del medio ambiente con huevos, pues si los seres humanos
desarrollan la zoonosis patente, los huevos son viables. Como se sabe los huevos
de este parásito, que no han sido embrionados, es decir, los recién excretados no
son infectivos y necesitan de un ambiente favorable de aproximadamente 2
semanas para desarrollarse. Por este motivo, una medida de control de esta
parasitosis zoonótica, es la correcta eliminación de heces fecales caninas del medio
ambiente, sobretodo de lugares donde los niños juegan, en un período corto, de
manera que los huevos excretados no puedan desarrollarse hasta su etapa infectiva,
una adecuada higiene como el lavado de manos después de jugar con las mascotas
o después de haber realizado actividades al aire libre, así como una educación
sanitaria pública también contribuirían a evitar la transmisión de este parásito. Con
el fin de disminuir el riesgo de transmisión a los seres humanos, se debería
desparasitar además periódicamente a los perros de compañía, el césped de los
lugares públicos debería estar constantemente podado de tal manera que se
disminuya los espacios de sombra, en los cuales Trichuris vulpis tiene más
probabilidades de sobrevivir (The Center for Food Security & Public Health, 2005)
2.2.3.4. Dipylidium caninum
Es un cestodo que parasita el intestino delgado de perros, sobretodo en situación de
abandono, por la gran cantidad de ectoparásitos que presentan, felinos, zorros y
ocasionalmente el humano, pues este puede convertirse en un huésped accidental
Figura No.10. Hipocratismo
digital.
Tomado de (ADAM, 2013).
28
especialmente en los niños. El parásito adulto tiene una longitud de entre 20 y 75 centímetros
de forma plana y con estructuras en su cuerpo como el escólex, gancho, cuello y estróbilo con
proglótidos inmaduros, maduros y grávidos, tal como se observa en la figura No.11. Dentro de
los segmentos grávidos, se encuentran los huevos que tienen la apariencia esférica, cubierto de
una delgada membrana con medidas de 30 y 40 um (Figura No.12) (Martínez-Barbosa et al.,
2014).
2.2.3.4.1. Transmisión: Los parásitos adultos maduran en un período de un mes, los
proglótidos viajan hacia el ano y se eliminan espontáneamente o junto con la
materia fecal, los paquetes de huevos (Figura No.12) se liberan hacia el medio
ambiente en el cual se desarrollan hasta el estadio de larvas. El ser humano puede
adquirir el parásito al ingerir accidentalmente los huéspedes intermediarios como
pulgas o piojos, infectados con metacéstodos, casos que se han reportado con
mayor frecuencia en la población infantil debido a sus malos hábitos de higiene y
al contacto estrecho que mantienen con las mascotas (Figura No.13) (Martínez-
Barbosa et al., 2014).
Figura No.11. Dipylidium caninum adulto.
Tomado de (Uribarren, DIPYLIDIOSIS o
DIPILIDIASIS, 2016).
Figura No.12. Paquete de huevos
Dipylidium caninum.
Tomado de (Uribarren, DIPYLIDIOSIS o
DIPILIDIASIS, 2016).
29
2.2.3.4.2. Dipilidiasis: Las dipilidiasis humanas se producen generalmente en lactantes y
niños preescolares, debido al estrecho contacto que tienen con sus mascotas. Los
niños se contagian por el mismo mecanismo que los perros, es decir, por la
ingestión de pulgas parasitadas con larvas cisticercoides de Diphylidium caninum.
El ser humano al ser un hospedador accidental, tendrá una carga parasitaria baja
por lo que normalmente esta parasitosis es asintomática en la mayoría de los casos,
sin embargo pueden presentarse síntomas inespecíficos leves como pérdida de
peso, anorexia, malestar general, dolor abdominal, diarrea, meteorismo, prurito y
dolor anal, constipación, insomnio e irritación. Esta parasitosis muy pocas veces
afecta a los adultos y el diagnóstico se realiza mediante la revelación de las
proglótides o paquetes de huevos del parásito en la región perianal, heces o suelo.
Debido a que los huevos se desintegran rápidamente deben ser detectados en heces
recién emitidas (Martínez-Barbosa et al., 2014).
Figura No.13. Ciclo de vida de Dipylidium caninum.
Tomado de (Uribarren, DIPYLIDIOSIS o DIPILIDIASIS, 2016).
30
2.2.3.5. Echinococcus granulosus:
Es el cestodo causante de la hidatidosis en el ser humano, se localiza en el intestino
delgado de los perros, tiene unas dimensiones aproximadas de entre 2 y 6 mm de longitud, y
presenta de 3 a 4 proglótidos, un escólex dotado de cuatro ventosas y una doble corona de
ganchos (Uribarren, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), 2015). Sus
huevos, son la forma infectiva para los hospedadores intermediarios, entre los cuales destacan
ovejas, cerdos, vacas, cabras y caballos, miden aproximadamente 30 y 40 μm.
2.2.3.5.1. Transmisión: El ser humano adquiere la enfermedad por el consumo accidental de
huevos del parásito, que se pueden encontrar en agua, suelo o alimentos
contaminados o bien por el contacto directo con los animales hospedadores. Los
perros constituyen el reservorio del parásito y por lo tanto son los hospedadores
definitivos, estos se infectan al consumir vísceras frescas o restos de cadáveres de
ovejas enfermas que contienen quistes, las ovejas así como otros animales
constituyen los huéspedes intermediarios, los cuales adquieren el parásito al ingerir
huevos presentes en heces caninas, cuando se alimentan o beben agua
contaminada. Estos huevos eclosionan liberando las larvas que penetran las
paredes del intestino del hospedador, llegando finalmente a los diferentes órganos
y formando los denominados quistes hidatídicos o metacéstodos (Figura No.14),
cerrándose así el ciclo de vida de Echinococcus granulosus (vircell, 2014).
2.2.3.5.2. Hidatidosis: La sintomatología puede incluso aparecer 20 años después del
contagio, la infección puede dar lugar a la formación de quistes en prácticamente
cualquier órgano, como hígado, pulmón, riñón, bazo, tejido musculoesquelético u
otros órganos sobre todo los calcificados, siendo los más frecuentes el hígado y los
pulmones. Estos quistes pueden aumentar de tamaño gradualmente de 1 a 50 mm
cada año o no presentar ningún cambio con el paso del tiempo (Uribarren,
Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), 2015). Las manifestaciones
clínicas van a variar dependiendo de la localización, tamaño y número de quistes
hidatídicos, los pacientes pueden permanecer asintomáticos durante meses, años o
31
incluso de manera permanente. El principal mecanismo patógeno de estos quistes
es el mecánico, ya que son masas que ocupan espacios y pueden ocasionar
importantes desplazamientos. Estos quistes tienen forma esférica, con paredes
gruesas, como se pueden apreciar en la figura No.15 y la causa más frecuente de su
ruptura es un trauma, provocando inmediatamente reacciones anafilácticas de
curso moderado, severo o que incluso puede llevar a la muerte como resultado de
la liberación del fluido quístico, que es una mezcla de glucoproteínas,
aminoácidos, carbohidratos y productos del metabolismo del metacestodo a un pH
neutro (vircell, 2014).
Dentro de las manifestaciones clínicas de la hidatidosis, destacan el dolor del
hipocondrio, náuseas, vómito, hepatomegalia, distensión abdominal, cirrosis biliar,
ascitis, colestasis, hipertensión portal, urticaria y otros síntomas y signos
relacionados a los efectos de la presencia de masas que ocupan espacios dentro de
órganos vitales. Al ser estas manifestaciones inespecíficas, el diagnóstico de la
enfermedad suele ser complicado, sin embargo se puede llegar a él mediante
hallazgos clínicos, técnicas de imagen, serología y estudio de los antecedentes
epidemiológicos (Uribarren, Universidad Nacional Autónoma de México
(UNAM), 2015).
Figura No. 14. Ciclo de vida de Echinococcus granulosus.
Tomado de (BASKEN, 2017).
32
2.2.3.6. Giardia lamblia:
Es un protozoo flagelado, perteneciente al phylum Sarcomastigophora, subphylum
Mastigophora, (Sinónimo: Giardia intestinalis, Giardia duodenalis), agente causal de la
giardiasis, una parasitosis cosmopolita de gran importancia epidemiológica, debido a su
elevada prevalencia y patogenicidad principalmente en la población infantil. Giardia lamblia
es prácticamente indistinguible morfológicamente de las demás especies de Giardia que
parasitan a los mamíferos y en la naturaleza tiene la capacidad de adoptar dos formas
diferentes, una de trofozoito móvil y otra de quiste, que es la forma infectante (Vásquez O. y
Campos T., 2009).
Los trofozoitos del parásito presentan una forma de lágrima de simetría bilateral, su
extremo anterior es redondeado mientras que su extremo posterior tiene forma punta, mide
entre 12 y 14 μm de longitud y aproximadamente 7 a 9 μm de ancho, además presentan 8
flagelos en forma de 4 pares simétricos, un par es antero lateral y el otro es postero-lateral, en
el citoplasma del trofozoito se encuentran dos núcleos ovoides, con un endosoma central
bastante diferencia, lo que le da la forma de una cara, tal como se observa en la Figura No. 16.
Los quistes son estructuras ovoides que se tiñen con lugol, y miden de 8 a 12 μm, tienen una
pared quística hialina lo que les confieren la resistencia a las condiciones ambientales
(Vásquez O. y Campos T., 2009).
Figura No.15. Imagen intraoperatoria donde se observan los quistes
hidatídicos una vez abierta la pleura mediastínica.
Tomado de (Álvarez et al., 2007).
33
2.2.3.6.1. Transmisión: Giardia lamblia, parasita el intestino delgado de distintos
vertebrados, incluyéndose dentro de este grupo los perros, gatos y el ser humano,
además es el parásito mayormente distribuido a nivel mundial. El ciclo de vida del
parásito inicia con la ingestión de quistes infectantes, se requiere de
aproximadamente 10 a 100 quistes para provocar una infección en el hombre,
mismo que puede adquirirla mediante varios mecanismos tales como por el
contacto con materia fecal presente en el medio ambiente, pues se sabe que una
muestra de heces pueden contener alrededor de 300 millones de quistes (Vásquez
O. y Campos T., 2009). Otro mecanismo de transmisión es el consumo de
alimentos mal lavados o aguas contaminadas y el fecalismo. Los perros también
constituyen huéspedes de Giardia spp, estudios epidemiológicos han revelado que
la prevalencia de este parásito puede llegar al 100% en animales que viven en
colectividad (Ortuño et al., 2004).
Los quistes al ser eliminados, sufren un proceso sencillo de división nuclear, así las
formas inmaduras pasan a su estado maduro tetranucledo y al ser ingeridos por el
huésped sufren un proceso de desenquistamiento que se inicia por acción de los
ácidos gástricos a un pH de 2 y se completa a nivel duodenal con la posterior
eliminación de dos trofozoitos por cada quiste, mismos que se alojan en la mucosa
intestinal específicamente en las microvellosidades del duodeno y yeyuno, cada
trofozoito se multiplica activamente, proceso que puede durar entre 7 minutos a 5
Figura No. 16. Trofozoito de Giardia
lamblia.
Tomado de (Virusys Corporation, 2017).
Figura No. 17. Quiste de Giardia spp
observado en suspensión con lugol.
Tomado de (Higuita, 2016).
34
horas, para después sufrir un proceso de enquistamiento en la porción baja del
íleon y finalmente en forma de quistes ser eliminados en la materia fecal y
nuevamente iniciar su ciclo en sus diferentes huéspedes. Los trofozoitos también
pueden encontrarse en las heces, debido a fallas en el proceso de enquistamiento,
sobre todo cuando el peristaltismo intestinal se encuentra alterado, sin embargo
estos se desintegran rápidamente ya que el proceso de enquistamiento solamente
ocurre dentro del intestino (Figura No.18) (Vásquez O. y Campos T., 2009).
Figura No. 18. Ciclo de vida de Giardia lamblia.
Tomado de (Centers for Disease Control and Prevention, 2015).
35
2.2.3.6.2. Giardiasis: La parasitosis puede pasar asintomática sobretodo en adultos, sin
embargo la presentación clínica más común de la infección ocasionada por Giardia
spp, es la presencia de diarreas explosivas, deposiciones acuosas de olor pútrido,
amarillentas y espumosas, dolores estomacales sobre todo a nivel del epigastrio, en
el hipocondrio derecho y región vesicular, además se pueden observar la presencia
de vómitos, astenia, irritabilidad; síntomas que pueden conducir a una pérdida de
peso y cuadros de deshidratación. Todas estas manifestaciones suelen aparecer
entre una o dos semanas tras la infección. No es muy común pero debido a esta
infección se ha documentado el desarrollo de dermatitis pruriginosa, que se
acompaña de eosinofilia, rash maculopapular eritematoso, linfocitosis y edema
alérgico solitario de Quincke. Existen dos mecanismos de patogenicidad del
parásito, el uno es mecánico el cual se describe como la obstrucción masiva de la
mucosa intestinal por los trofozoitos, causando una disminución de la absorción de
nutrientes, provocando de esta forma una malabsorción de las vitaminas
liposolubles (A, D, E, K), vitamina B12 y ácidos grasos. Otro mecanismo es el
daño de la mucosa intestinal, debido a la fuerte adherencia de los trofozoitos a las
microvellosidades, que se ven lesionadas. Además, se sabe que el parásito compite
con el huésped por los nutrientes, genera una producción excesiva de moco
obstruyendo las criptas de Lieberkunh y ayuda a que las bacterias colonicen el
duodeno, generando una descongujación de las sales biliares, desencadenando una
malabsorción de las grasas (Vásquez O. y Campos T., 2009).
El diagnóstico es algo sencillo, basta con la revelación del parásito en las heces del
paciente, son muy útiles para esto el uso de técnicas de concentración como la
técnica de flotación de Faust y la sedimentación espontánea en tubo, en un estudio
coproparasitario seriado.
2.2.3.6.3. Epidemiología y control: Giardia spp, es un parásito que se encuentra
ampliamente distribuido a nivel mundial, y tiene una habilidad enorme de
adaptarse a los cambios climáticos del medio ambiente, es más prevalente en
países subdesarrollados, por las deficiencias sanitarias que presentan y en países de
extrema pobreza donde el parásito es prevalente en un 100% en la población
36
infantil. Estados Unidos de Norteamérica, considera a este parásito como un arma
de bioterrorismo, debido a su capacidad de ser transmitido a través del agua, ser de
fácil manipulación genética y porque su ciclo de vida puede ser realizado y
completado dentro de un laboratorio. Los animales domésticos de compañía como
los perros, constituyen además una fuente de transmisión del parásito, y una
medida para combatir esta zoonosis es la correcta eliminación de sus heces fecales,
con el fin de evitar la contaminación de aguas, alimentos y espacios públicos, ya
que una posible contaminación podría generar que el parásito en cualquier
momento infecte y comience su ciclo de vida en cualquier otra especie.
2.2.3.7. Chilomastix mesnili
Es un protozoo flagelado comensal, que habita en el colon del ser humano, y de otros
animales sin producir patología. Es un parásito que se encuentra alrededor de todo el mundo,
pero con menos frecuencia que Giardia spp y Entamoebas. Tiene dos formas, una como
trofozoito de estructura piriforme, con su extremidad posterior aguda curva y unas
dimensiones de aproximadamente 10 a 15 μm de longitud y 3 a 10 μm de ancho, un surco a lo
largo de su cuerpo que se lo observa fácilmente en preparaciones frescas y una boca o
citostoma en el extremo anterior. La otra forma de presentación es como quiste, redondeado o
piriforme de 6 a 9 μm, con apariencia de limón debido a una prominencia que presenta, y
delimitado por una doble membrana y cuya forma es la infectante del parásito (Botero D. y
Restrepo M., 2004).
2.2.3.7.1. Transmisión: El mecanismo de transmisión de este parásito es fecal-oral, tiene
dos etapas principales una de trofozoito y otra de quiste, estos últimos son
extremadamente resistentes a las condiciones ambientales y por lo tanto son
responsables de transmitir el parásito. El ser humano adquiere Chilomastix mesnili,
al ingerir quistes presentes en alimentos o aguas contaminadas, o por contacto
directo con heces fecales o ambientes contaminados. Este parásito puede
considerarse como un agente zoonótico debido a una posible infección cruzada,
pues la presencia de Chilomastix mesnili se ha descrito en cerdos, equinos,
caprinos, aves, cobayos y conejos, los animales de compañía como los perros, a
37
pesar de que no se han reportado muchos casos, también pueden contraer e iniciar
el ciclo de vida (Figura No.19) de este parásito y transmitirlo al ser humano, sobre
todo los animales que viven en el abandono.
2.2.3.7.2. Presentación clínica: Chilomastix mesnili, es considerado como no patógeno para
el ser humano, sin embargo puede causar un cuadro de diarrea debido a una
irritación de la mucosa del intestino, sobre todo cuando la cantidad de parásitos es
elevada. El diagnóstico se basa en el hallazgo de quistes o trofozoitos en un
examen coproparasitario seriado, aumentado la sensibilidad de este usando
técnicas de concentración parasitaria.
2.2.3.7.3. Epidemiología y control: Debido a que Chilomastix mesnili, se encuentra
ampliamente distribuido en todo el mundo, y son varias las especies de animales
que pueden contraer la parasitosis, medidas de prevención como una correcta
conducta de higiene, un adecuado manejo y eliminación de las excretas y un
proceso de lavado y cocción de alimentos ideal, pueden ayudar a combatir esta
parasitosis.
Figura No.19. Ciclo de vida de Chilomastix mesnili.
Tomado de (CDC, 2016).
38
2.2.3.8. Ascaris lumbricoides
Es un gusano, perteneciente a los Nemátodos, el más grande que parasita al ser humano,
presenta una forma cilíndrica de aproximadamente 5 milímetros de diámetro, no segmentado
de simetría bilateral. Los machos miden de entre 15 y 20 cm y tienen su parte posterior
curvada con papilas y espículas, mientras que las hembras tienen una mayor longitud de entre
20 y 30 cm con su parte posterior recta terminada en punta. Ambos sexos presentan una boca
de tres labios dotada de dientes diminutos. La hembra además es capaz de contener un
promedio de 27 millones de huevos con una producción de 200 000 huevos por día. Existen
dos tipos de huevos, los fecundados y los no fecundados, los primeros tienen forma oval de un
tamaño de 40 a 80 μm de largo y de 25 a 50 μm de ancho, rodeados de una cápsula gruesa
formada por tres capas y en su interior el citoplasma en forma de masa amorfa, además tienen
una membrana vitelina que protege el embrión pues es inerte y gracias a su impermeabilidad
evita daños por sustancias tóxicas del ambiente (Figura No.20). Los huevos no fecundados en
cambio, no poseen membrana vitelina, su cubierta es delgada, no tienen mamelones, son de
tamaño aproximado 85-90 μm de largo por 30-40 μm de ancho (Figura No.21) (Hinojosa,
2017).
2.2.3.8.1. Transmisión: Se produce por vía oral, a través de la ingesta de huevos infectantes
que pueden encontrarse en fuentes de contaminación, como agua, alimentos, suelo,
etc, con esto empieza el ciclo de vida de Ascaris lumbricoides, pues al ingerir
Figura No.20. Huevo fertilizado
de Ascaris lumbricoides, en
estadio unicelular.
Tomado de (Hinojosa, 2017).
Figura No.20. Huevo no
fertilizado de Ascaris
lumbricoides.
Tomado de (Hinojosa, 2017).
39
huevos embrionados que contienen la larva L2, que es la infectante, una vez dentro
del intestino estas larvas son liberadas de los huevos y pasan hacia el torrente
sanguíneo. Dentro de 24 horas llegan al hígado por vía porta, en donde permanecen
de 3 a 5 días, aumentan de tamaño y llegan a su tercer estadio L3, para continuar
migrando por las venas suprahepáticas, vena cava inferior aurícula y ventrículo
derechos, arterias pulmonares, para atravesar la membrana alveolocapilar y caer en
los alveolos en donde la larva muda y llega a su cuarto estadio L4, llegando a
medir 1,5 cm así asciende por los bronquiolos, bronquio y tráquea para ser
deglutida y llevada al intestino delgado donde alcanza su madurez sexual L5,
aproximadamente 50 días tras la infección. Una vez en el intestino y después de la
fecundación la hembra coloca sus huevos que son arrastrados por las heces fecales
y eliminados hacia el exterior, sin embargo estos huevos no son inmediatamente
infectantes, sino que requieren de un período aproximado de 2 a 3 semanas en
suelos arcillosos a condiciones óptimas de temperatura, humedad, presencia de
oxígeno y sombra para desarrollar la larva L2 y comenzar nuevamente su ciclo en
el hospedador (Figura No. 22) (BDATABIO, 2013).
Figura No.22. Ciclo de vida y transmisión de Ascaris
lumbricoides.
Tomado de (Center for Disease Control and Prevention, 2015).
40
2.2.3.8.2. Presentación clínica: La infección por Ascaris lumbricoides en países
desarrollados es una patología rara y suele ser asintomática. Sin embargo, cuando
la infección se desarrolla aparecen síntomas que van a depender de la carga de
parásitos dentro del cuerpo, y de las reacciones inmunitarias del huésped, la
migración de las larvas a través de la membrana alveolocapilar va a conducir a la
formación de lesiones mecánicas, desencadenando el síndrome de Löeffler o
neumonía eosinofílica, caracterizada por procesos congestivos e inflamatorios que
van a cursar con eosinofilia local y sanguínea, fiebre, disnea de tipo asmático,
estertores bronquiales y tos, con presencia de exudado bronquialveolar. Ascaris
lumbricoides también puede provocar equimosis en la mucosas de los sitios de
implantación, acompañada de infección bacteriana y abscesos, cuando la cantidad
de parásitos es elevada el paciente cursa con anorexia, pérdida de peso, síndromes
diarreicos y astenia e incluso existen cuadros como obstrucción faríngea,
diverticulitis, apendicitis o abscesos hepáticos que requieren intervención
quirúrgica (BDATABIO, 2013).
El diagnóstico se realiza al revelar la presencia del parásito en un examen
coproparasitario, en expulsiones espontáneas de ano, boca o nariz, la observación
de larvas en esputo o lavado bronquialveolar. Los rayos X con contraste de sulfato
de bario, permiten ver las sombras que los parásitos dejan dentro del intestino. Una
eosinofilia marcada también permite el diagnóstico en la fase extra intestinal de la
parasitosis.
2.2.3.8.3. Epidemiología y control: Ascaris lumbricoides, tiene una distribución mundial,
sobre todo es prevalente en países con deficiencia en las condiciones de higiene. Es
más frecuente en la población infantil debido a su estrecho contacto con el suelo
durante sus actividades, geofagia y transmisión oral debido al deficiente lavado de
manos. El control de esta parasitosis debería involucrar un estricto cuidado
higiénico de los alimentos , una manipulación y eliminación correctas de las heces
humanas, evitando el fecalismo al aire libre por el riesgo de la generación de
polvos y aerosoles contaminantes. Los perros, sobre todo los callejeros, pueden
convertirse en reservorio de Ascaris lumbricoides, y ser contaminantes del medio
41
ambiente con huevos del parásito, aumentando el riesgo de transmisión a los
humanos, por lo que una medida importante de prevención sería, como ya se
mencionó, en todos los parásitos de riesgo zoonótico, eliminar correctamente las
excretas de estos animales de lugares públicos, especialmente de lugares en los
cuales se preparen alimentos al aire libre.
2.2.3.9. Entamoebas.
2.2.3.9.1. Entamoeba histolytica: Es un protozoo, cosmopolita que según estimaciones a
nivel mundial parasita al 10% de la población, y tiene una prevalencia que puede
alcanzar un 50,0% en Centroamérica, Sudamérica, Asia y África (UNAM, 2017).
Este parásito adopta dos formas principales en su ciclo de vida: Una vegetativa
invasiva de Trofozoito, que es la única forma que puede aparecer en los tejidos,
con un diámetro de 10-60 μm de forma alargada, un núcleo con endosoma en el
centro y fina cromatina periférica, y que además presenta movilidad progresiva, a
través de pseudópodos (Figura No.24). Y otra forma infectante, que son los quistes
de tamaño aproximado 10 a 20 μm, que se encuentran en el colon y pueden
aparecer en las heces formadas o semi formadas, dentro de su estructura y
dependiendo de su estado de maduración presentan de 1 a 4 núcleos, son
redondeados y en su interior contienen una vacuola de glucógeno y cuerpos
cromatoides, tal como se puede apreciar en la figura No. 23 (Jawetz, Melnick Y
Adelberg., 2011).
Figura No.23. Quiste de
Entamoeba histolytica en soporte
húmedo teñido con lugol. La flecha
indica el cuerpo de cromatoide
dentro del quiste.
Tomado de (CDC, 2016).
Figura No.24. Trofozoito de
Entamoeba histolytica en
soporte húmedo teñido con
lugol.
Tomado de (CDC, 2016).
42
2.2.3.9.1.1.Transmisión de Entamoeba histolytica: La infección se transmite por vía fecal
oral, cuando el huésped ingiere quistes maduros que se encuentran contaminando
manos, agua o alimentos. Los quistes al ser deglutidos por los seres humanos,
llegan al intestino delgado, pues son resistentes al ph ácido del estómago, y es ahí
donde sufren un proceso de desenquistamiento, con la posterior eliminación de los
trofozoitos que migran hacia el intestino grueso donde se alimentan de bacterias y
detritos celulares y atraviesan un proceso de fisión binaria para nuevamente
enquistarse, debido a ciertas condiciones de la luz del colon que les resultan poco
favorables, así pues se redondean, se cubren de una membrana o pared de quitina y
su núcleo sufre una división doble, dando la apariencia característica de quistes
tetranucleados, que finalmente serán eliminados en las heces del huésped y son las
formas que nuevamente darán inicio al ciclo de vida del parásito. Sin embargo es
importante también conocer que algunos trofozoitos pueden no pasar por el
proceso de enquistamiento y ser arrastrados con la materia fecal, sin que estos
sobrevivan demasiado tiempo en el exterior o bien pueden invadir la mucosa
intestinal y a través del torrente sanguíneo provocar manifestaciones extra
intestinales (Figura No.25) (CDC, 2016).
Figura No. 25. Ciclo de vida de Entamoeba histolytica.
Tomado de (CDC, 2016).
43
2.2.3.9.1.2. Presentación clínica: La infección puede pasar asintomática durante años, a estos
pacientes se los denomina eliminadores de quistes, pero siempre existe un
determinado riesgo que en algún momento desarrollen una amebiasis invasiva,
pues después del proceso de desenquistamiento, los trofozoitos de Entamoeba
histolytica, son capaces de reproducirse y adherirse en la mucosa del intestino
grueso, algunos de ellos como ya se mencionó son eliminados con las heces,
mientras que otros llegan a las células del epitelio, mismas que son destruidas y
fagocitadas, produciendo una lesión común de úlceras extendidas, en forma de
“cuello de botella” (Figura No.26).
Además estos trofozoitos pueden provocar afectaciones secundarias dentro del
intestino, sobre todo cuando los parásitos viajan a la válvula ileocecal y al íleon
terminal generando una infección crónica. En la pared intestinal también se forman
los denominados Amebomas, que son masas inflamatorias amebianas, que incluso
por su tamaño pueden bloquear el interior del colon y el recto (Jawetz, Melnick Y
Adelberg., 2011).
Así en los cuadros graves de Amebiasis se presentan dolor abdominal intenso,
diarreas fulminantes y deshidratación. Mientras que en la formas menos graves de
la enfermedad son característicos los cuadros de diarrea, tenesmo, náuseas,
vómitos, cólicos y molestias en general, además de anorexia y pérdida de peso. Si
los trofozoitos de Entamoeba histolytica, son capaces de atravesar la lámina basal
y llegar a la circulación pueden alcanzar órganos vitales como el hígado, en el que
se puede producir hepatitis o un absceso hepático, con menos frecuencia también
pueden afectar a pulmones, cerebro y otros tejidos, sin embargo cualquier órgano
o tejido con trofozoitos en estado activo pueden ser lugar de invasión y desarrollo
de abscesos.
Figura No.26. Der.- Úlcera en “botón de camisa”: alteraciones
histopatológicas en intestino grueso. Izq.- Colitis amebiana: se observan
extensas úlceras en “cuello de botella”, mediante endoscopia.
Tomado de (UNAM, 2017).
44
2.2.3.9.1.3.Epidemiología y control: Entamoeba histolytica, es un parásito distribuido a nivel
mundial, es un microorganismo patógeno para el ser humano, pero tiene diversos
reservorios como primates, perros y gatos. Como se mencionó en el mecanismo de
transmisión los quistes eliminados por el huésped en la materia fecal, son
extremadamente resistentes a las condiciones ambientales y logran sobrevivir por
varias semanas. La infección inicia con la ingesta accidental de estos quistes que
pueden encontrarse contaminando agua, alimentos, suelos o manos; incluso pueden
ser transportados mecánicamente por moscas que se encuentran en el medio
ambiente, factor de riesgo importante en lugares públicos contaminados con
materia fecal por ejemplo canina donde se realice además venta de alimentos
expuesto al aire libre. Medidas como un correcto lavado de manos antes de la
manipulación de alimentos, un adecuado lavado de alimentos así como su cocción,
una conducta higiénica por parte de propietarios de mascotas que constituyen
reservorio del parásito, pueden llevar a disminuir los nuevos casos de esta
parasitosis, pues según datos de la OMS, existen 50 millones de casos nuevos cada
año y 70 000 muertes debido infección patógena por Entamoeba histolytica (OMS,
2015).
2.2.3.9.2. Entamoeba coli: Es una ameba intestinal no patógena para el ser humano. Al igual
que Entamoeba histolytica, presenta dos formas principales dentro de su ciclo de
vida: trofozoitos y quistes. Los primeros miden aproximadamente entre 15 y 50
μm, tienen poca movilidad, poseen pseudópodos cortos, no hialinos con su núcleo
visible, incluso en preparaciones sin tinción, generalmente su citoplasma es de tipo
granular y vacuolado, pudiendo presentar en su interior bacterias, levaduras o
cualquier otro detrito celular (Figura No. 27). Los quistes de igual forma que en el
resto de especies del complejo Entamoeba, presentan formas pre quísticas de
difícil adscripción específica, estos presentan una forma esférica u oval con un
tamaño de 15 a 25 μm, rodeados de una pared quística resistente. Los quistes en su
madurez, suelen contar con ocho núcleos (Figura No.27), y en ocasiones raras más
de 16 núcleos dentro de un citoplasma granular con presencia de glucógeno de
manera difusa (Gomila Sard. et al, 2011).
45
2.2.3.9.2.1.Transmisión: Esta ameba intestinal, posee un mecanismo de transmisión idéntico
al descrito para Entamoeba histolytica, en el que es necesario la ingesta de un
quiste maduro por vía oral para adquirir la infección, el ciclo de vida de igual
forma es similar, a diferencia que Entamoeba coli permanece como un comensal
en el intestino grueso de su huésped, eliminado quistes a través de las heces y sin
producir manifestaciones clínicas que generen preocupación. En cuanto al
diagnóstico es de mucha importancia diferenciar entre ambas especies, que por
métodos simples se puede realizar por microscopía óptica a través de la
observación de quistes en suspensiones fecales, ya sea con solución salina o lugol,
dicha diferenciación se logra por la identificación del número de núcleos dentro del
citoplasma de cada especie.
2.2.3.9.2.2. Epidemiología y control: Al ser un parásito de amplia distribución mundial, se
recomiendan las mismas medidas de control que para Entamoeba histolytica.
2.2.4. Técnicas para la identificación de parásitos zoonóticas en materia fecal canina
El diagnóstico de parásitos se basa en el análisis microscópico de la materia fecal, que
pueden incluir técnicas de flotación y sedimentación; ambas permiten la concentración de la
Figura No. 27. Der.- Trofozoito de Entamoeba coli.
Tomado de (Telmeds.org, 2009).
Izq.- Quiste de Entamoeba coli: Técnica de observación por
microscópica directa en lugol 40x, encontrado en una muestra de
materia fecal canina recolectada en las canchas de basketball cerca a
los juegos infantiles del parque La Carolina.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
46
muestra mejorando así los resultados, ya que en ciertas ocasiones la cantidad de parásitos
presentes es escasa, dificultando su identificación.
2.2.4.1. Examen macroscópico: Permite observar ciertas características de la materia fecal
como es el color, consistencia, presencia de moco o sangre. Este examen puede ser orientativo
de la presencia de parásitos como Ancylostoma caninum, pues estos provocan la pérdida de
sangre a nivel del sistema gastrointestinal de los perros, y por lo tanto el principal signo de la
infección, es la presencia de heces de color rojo oscuro o negras, debido a la presencia de
sangre digerida (MERIAL, 2017).
2.2.4.2. Examen microscópico directo: Este procedimiento es el más antiguo que ha sido
utilizado en la identificación de parásitos, es sencillo, económico y rápido, en la práctica
clínica ha demostrado ser eficaz cuando se lo realiza con lugol o solución salina, pues permite
la observación de quistes, huevos y larvas. El uso de solución fisiológica permite la
observación de formas móviles, como trofozoitos, mientras que el uso de lugol permite la
tinción de estructuras incoloras como quistes (Sixtos, 2015).
2.2.4.3. Métodos de flotación: Los métodos de flotación fecal, se usan para separar los
parásitos en todos sus estadios de otros objetos gracias a la diferencia de densidades, por lo
que para obtener resultados confiables es necesario elegir la solución adecuada. La densidad
de estas soluciones varía entre 1.18 y 1.20 en comparación con la densidad de la mayoría de
los parásitos caninos que es de 1.18 (Sixtos, 2015). Entre las soluciones más empleadas se
encuentran:
Solución salina saturada: La técnica de flotación usando esta solución permite la
identificación de protozoarios, nematodos y ciertos cestodos. El procedimiento
consiste en preparar una pasta blanda entre la solución y la materia fecal, que después
de un proceso de filtración permite una observación microscópica mucho más fácil
gracias a la concentración que sufre la muestra tras el procedimiento.
Solución de sacarosa: El uso de esta solución se recomienda para la observación e
identificación de helmintos, pero no es útil para el diagnóstico de Giardia spp.
Solución con sulfato de zinc: Esta técnica permite la obtención de resultados
cualitativos para la identificación de quistes de protozoarios.
47
2.2.4.4. Técnica de sedimentación espontánea en tubo:
“El método de concentración por sedimentación con formalina éter es el procedimiento más
utilizado para concentrar quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos, y es más eficiente que los
métodos de flotación.” (Luján-Roca et al., 2006). Sin embargo hay que tener precaución en el
proceso de decantación del sobrenadante obtenido ya que se puede perder una cantidad
significativa de parásitos. Esta misma técnica fue adaptada por Raúl Tello (Pajuelo-Camacho
et al., 2006), en la que se utiliza solución salina y se evita el uso del éter que constituye un
reactivo orgánico peligroso y además extremadamente inflamable.
2.2.4.5. Cuantificación de huevos de parásitos por gramos de heces - Cámara de
McMaster.
La cuantificación del número de huevos de parásitos en heces se puede determinar
mediante el uso de una cámara de McMaster, misma que permite realizar un examen
microscópico a un volumen determinado de suspensión fecal. Esta cámara presenta dos
componentes, cada uno con su respectiva marcación a manera de rejilla, como se aprecia en la
figura No.28. Cada componente de esta cámara al ser llenado con la suspensión, contiene un
volumen exacto de 0,15 mL, por lo que si para preparar la suspensión de heces fecales, se
utiliza un peso conocido de la muestra y un volumen determinado de líquido de flotación
como solución salina saturada, entonces la determinación de la concentración de huevos en la
muestra, se lo puede obtener solamente con el uso de factores de conversión (Guía RVC/FAO,
2017).
Figura No.28. Cámara de McMaster.
Tomado de (Alibaba.com, 2017).
48
2.3. Fundamento Legal
El presente trabajo de investigación se respalda con los siguientes artículos, señalados y
estipulados en la Constitución de la República del Ecuador 2008.
Artículo 14: “Se reconoce el derecho de la población a vivir en un ambiente sano y
ecológicamente equilibrado, que garantice la sostenibilidad y el buen vivir, sumak kawsay. Se
declara de interés público la preservación del ambiente, la conservación de los ecosistemas, la
biodiversidad y la integridad del patrimonio genético del país, la prevención del daño
ambiental y la recuperación de los espacios naturales degradados.”
Artículo 52: “Las personas tienen derecho a disponer de bienes y servicios de óptima
calidad y a elegirlos con libertad, así como a una información precisa y no engañosa sobre su
contenido y características”
Artículo 71: “El Estado incentivará a las personas naturales y jurídicas, y a los colectivos,
para que protejan la naturaleza, y promoverá el respeto a todos los elementos que forman un
ecosistema”
Artículo 415: “El Estado central y los gobiernos autónomos descentralizados adoptarán
políticas integrales y participativas de ordenamiento territorial urbano y de uso del suelo, que
permitan regular el crecimiento urbano, el manejo de la fauna urbana e incentiven el
establecimiento de zonas verdes.”
Ley Orgánica del Distrito Metropolitano de Quito
Artículo 2, numeral 3: “El Municipio del Distrito Metropolitano de Quito cumplirá las
finalidades siguientes: Prevendrá y controlará cualquier tipo de contaminación del ambiental”
Ley Orgánica de Salud
Artículo 123: “Es obligación de los propietarios de animales domésticos vacunarlos contra
la rabia y otras enfermedades que la autoridad sanitaria nacional declare susceptibles de causar
epidemias, así como mantenerlos en condiciones que no constituyan riesgo para la salud
49
humana y la higiene del entorno. El control y manejo de los animales callejeros es
responsabilidad de los municipios, en coordinación con las autoridades de salud.”
Ordenanza Municipal N°048: Tenencia, protección y control de la fauna urbana
Artículo 60: Infracciones Leves: “Serán sancionados con una multa que va del 10% al 21%
de una remuneración básica unificada a) Pasear a sus perros por las vías y espacios públicos,
sin collar y sujetos sin correa y b) No mantenerlos con una identificación visible, cuyo color
dependerá del resultado de la prueba de comportamiento.”
Artículo 60: Infracciones Graves: “Serán sancionadas con una multa que va del 45% al
90% de una Remuneración Básica Unificada a) Mantener un número mayor de animales de
compañía al que le permita cumplir satisfactoriamente con las normas de bienestar animal b)
No cumplir con el calendario de vacunación determinado por la autoridad sanitaria
correspondiente. c) No mantener animales de compañía dentro de su domicilio sin las debidas
seguridades, o dejarlos transitar por espacios públicos o comunitarios, sin la compañía de una
persona responsable del animal, a fin de evitar situaciones de peligro tanto para las personas
como para el animal. d) Comercializar animales de compañía de manera ambulatoria, en la
vía y espacios públicos o en aquellos lugares destinados al expendio de alimentos de consumo
humano”
Ordenanza Metropolitana N°100: Desechos y Medio Ambiente
Artículo II347 literal e: De las responsabilidades de los propietarios de animales.
1. Mantener la atención necesaria para que el animal doméstico que circule en la
vía pública no la ensucie.
2. De producirse este hecho, el propietario o quien conduzca el animal limpiará el
desecho producido por su mascota.
3. Conducir mascotas y animales domésticos por la vía público sujetos con una
correa y bozal.
Ordenanza Municipal N°128
Artículo 7: Acerca de los perros y otros animales vagabundos
50
“Los perros y otros animales vagabundos, es decir aquellos que circulan libremente por las
vías y espacios públicos sin las seguridades determinadas en el Artículo 3 de esta Ordenanza,
serán recogidos por el personal de la Administración Zonal correspondiente y serán
trasladados a los albergues municipales para animales domésticos... Sólo podrán ser retirados
aquellos animales que no representen peligro para la salud pública…”
Artículo 11: Otras Prohibiciones
“A los dueños o poseedores de perros u otros animales domésticos, en el Distrito
Metropolitano de Quito, les está prohibido… d) Hacer ingreso a sus perros y otras mascotas,
en restaurantes, bares, cafeterías, piscinas públicas y similares, así como en toda clase de
locales destinados a la fabricación, venta, almacenamiento, transporte o manipulación de
alimentos… y establecimientos donde habitual o eventualmente se produzcan aglomeraciones
de personas.
2.4. Hipótesis
2.4.1. Hipótesis de trabajo
Existe una elevada prevalencia de parásitos zoonóticos en las heces caninas muestreadas en
el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.
2.4.2. Hipótesis nula
No existe la presencia de parásitos zoonóticos en las heces caninas muestreadas en el
parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.
2.5. Conceptualización de Variables
Variable 1:
Lugar de muestreo: Área seleccionada para la recolección de una o varias muestras.
51
Variable 2:
Número de muestras fecales: Cantidad de desechos biológicos que pueden contener
agentes patógenos como: bacterias, virus, hongos o parásitos.
Variable 3:
Examen macroscópico: Observación directa de las muestras a analizar, mediante la cual
se revelan parámetros importantes para el estudio de las mismas, tales como: color (heces:
cafés, amarillas, negras o blancas), aspecto (homogéneo o heterogéneo), consistencia (heces:
firmes, blandas o líquidas) y presencia o ausencia de larvas.
Variable 4:
Examen microscópico: Técnica ampliamente utilizada en la identificación de parásitos en
materia fecal mediante el uso del microscopio, mediante el cual se puede determinar el género
de diversos microorganismos, como los parásitos.
Variable 5:
Concentración parasitaria: Cantidad de parásitos encontrados en una muestra fecal, se
expresa en número de huevos por gramo de heces y además permite diferenciar entre
diferentes grados de infestación parasitaria que puede afectar al huésped, como son:
infestación leve, moderada y grave.
52
Capítulo III
Marco Metodológico
3.1.Diseño de la investigación:
El presente trabajo de investigación se realizó en base a las reglas del paradigma
cuantitativo, debido a que dentro de su ejecución se realizó un estudio experimental,
mismo que proporcionó resultados que fueron cuantificados. Como lo manifiesta
(Barragán, 2003) “en las investigaciones en las que predomina lo cuantitativo hay una
preocupación por magnitudes, proporciones y datos agregables”. Es importante resaltar que el
fin último de esta investigación fue determinar la prevalencia de parásitos zoonóticos
presentes en heces caninas, para lo cual se recogió, procesó y analizó muestras biológicas,
coincidiendo de esta manera con lo cuantitativo pues según (Coello et al., 2012) este
enfoque permite explicar y predecir hechos a partir de relaciones de causa y efecto.
La modalidad de la investigación en este estudio fue de tipo descriptivo, debido a que
como lo define Supo (2016) “Un estudio descriptivo se usa cuando se tiene como objetivo
describir situaciones o eventos que han sido investigados previamente. En este tipo de estudio ya
existe una selección de variables, las cuales se miden de manera aislada e independiente y de esta
misma manera se presentan sus resultados.” precisamente lo que se pretendió con la
investigación, es decir, conocer la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en heces
caninas encontradas en el parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito. Además,
se sustenta aún más con lo que Noguera Ramos menciona (2003:30), citando al autor
Vandalen, D. y W. Meyer que “la investigación descriptiva no se limita a la mera
recolección de datos, la meta de los investigadores competentes es la predicción e
identificación de las relaciones que existen entre dos o más variables”.
El tipo de investigación que se utilizó en este estudio fue de tipo Experimental según la
intervención del investigador y de tipo transversal según el número de mediciones de las
variables, la elección de estos tipos de investigación, se basaron en la necesidad de procesar
muestras de materia fecal obtenidas tras un muestreo durante los días domingos del período
comprendido entre julio y septiembre de 2017 en el parque La Carolina del DMQ, con el
53
fin de determinar la prevalencia de parásitos zoonóticos presentes en las mismas. Debido a
que el investigador se encuentra involucrado en dichas determinaciones y por lo tanto
como lo manifiesta (Hernández y García, 2016) “asigna un factor de estudio y lo controla a
lo largo de la investigación”, el presente trabajo se trató de un tipo experimental. Además,
se aplicó un tipo de investigación transversal en la cual “todas las variables son medidas en
una sola ocasión; por ello de realizar comparaciones, se trata de muestras independientes”
(Supo, 2016); este tipo de investigación se utiliza para la determinación de prevalencias,
para lo cual usa fuentes de información como resultados de laboratorio, como en este caso
que se determinó la prevalencia de parásitos zoonóticos en materia fecal canina a través del
procesamiento de las muestras mediante examen microscópico directo, técnicas de
flotación y sedimentación espontánea.
3.2. Materiales y métodos:
3.2.1. Población y muestra
La población a estudiar estuvo constituida por todas las muestras de materia fecal canina,
encontradas los días domingos de los meses julio, agosto y septiembre del año 2017, en toda
la extensión del parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.
Las muestras fueron recolectadas utilizando un muestreo no probabilístico a juicio, en el
que la selección de las mismas, dependió de la accesibilidad, criterio personal o profesional de
la investigadora, basado además en experiencias de estudios previos y sobretodo tratando de
que la muestra extraída sea lo más representativa posible.
3.2.1.1. Criterios de inclusión
Se tomaron en cuenta para el estudio las muestras de materia fecal canina, tanto de los
perros que habitan en el parque La Carolina, así como de los perros que llegan al lugar con sus
dueños, de todas las edades, razas y sexo. De preferencia las muestras fueron recolectadas
cuando se encontraban de apariencia fresca.
54
3.2.1.2. Criterios de exclusión:
Muestras fecales de otras especies animales.
Muestras extremadamente secas.
3.2.2. Materiales
Los recursos materiales que fueron necesarios para llevar a cabo el trabajo de
investigación, se detallan claramente en la tabla No.1, y se encuentran clasificados por cada
proceso o técnica que se llevó a cabo.
Tabla No.1. Materiales requeridos para la investigación.
Examen microscópico directo. Técnica de sedimentación espontánea en
tubo.
Muestras de materia fecal canina
Placas portaobjetos
Cubreobjetos
Solución salina
Lugol
Aplicadores de madera
Microscopio
Frasco para cortopunzantes
Hipoclorito de sodio
Muestras de materia fecal canina
Tubos plásticos cónicos de 50 mL
Solución salina
Gasa
Portaobjetos y cubreobjetos
Gradilla para tubos
Microscopio
Lugol
Técnica de flotación con solución salina
saturada (Koffoyd y Barber)
Cuantificación de huevos en cámara de
McMaster.
Muestra de materia fecal canina
Solución salina saturada (331 g NaCl
y 1 litro de agua corriente)
Mortero
Baja lenguas
Colador
Tubos de ensayo de vidrio
Palillos
Placas portaobjetos
Cubreobjetos
Microscopio
Gradilla para tubo
Muestra de materia fecal canina
Solución salina saturada (331 g NaCl
y 1 litro de agua corriente)
Mortero
Baja lenguas
Colador
Tubos de ensayo de vidrio
Microscopio
Gradilla para tubos
Micropipeta
Cámara de McMaster
Elaborado por: Vanessa Arguero
55
3.2.3 Métodos
El diseño de investigación, que se utilizó en el estudio, se muestra en un flujograma de
macro procesos en la figura No.30. Y los microprocesos del diseño, que fueron aplicados se
detallan en el Anexo E.
Investigación documental: Se recolectó información de fuentes primarias como tesis,
artículos de revistas, monografías, etc. Con el fin de obtener la mayor cantidad posible
de estudios relacionados al tema que fundamenten y apoyen a la investigación que se
llevó a cabo.
Obtención de las muestras: Las muestras de materia fecal canina fueron recolectadas
en frascos estériles de boca ancha con tapa, mediante la utilización de baja lenguas y
considerando todas las normas de bioseguridad. Cada una de las muestras fueron
correctamente rotuladas, transportadas, procesadas y analizadas dentro de las 72 horas
posteriores a su recolección.
Conservación de las muestras: Las muestras obtenidas los días domingos, fueron
almacenadas en refrigeración, a una temperatura de entre 2 y 8°C, para su posterior
estudio los días siguientes.
Procesamiento de las muestras: Una vez en el Laboratorio de Análisis Clínico, las
muestras se procesaron bajo el siguiente protocolo, que fue adaptado con los
procedimientos publicados en la revista trimestral No.24 de Virbac Salud Animal
(Sixtos, 2015).
- Examen macroscópico: Se observó directamente la muestra en el recipiente que la
contenía, para establecer características como color, aspecto, consistencia y determinar
además la presencia de larvas.
- Examen microscópico directo: Se colocó una gota de solución fisiológica y una
gota de lugol por separado en una placa portaobjetos, seguido de esto y con ayuda de
56
un palillo o aplicador de madera se tomó una cantidad pequeña, pero representativa de
la materia fecal canina realizando una suspensión homogénea, tanto en la solución
fisiológica como en el lugol, finalmente se colocó un cubreobjetos en ambas
suspensiones y se observó al microscopio primero con el lento de 10x y posteriormente
con el lente de 40x en busca de cualquier forma parasitaria.
- Técnica de sedimentación espontánea en tubo. (Esta técnica se realizó con una
modificación al protocolo mencionado en relación al volumen final de filtrado, por
motivos operacionales).
Se mezcló aproximadamente 1 gramo de materia fecal canina con 3 mL de solución
salina, en un mortero con ayuda de un baja lenguas hasta conseguir la formación de
una pasta de consistencia homogénea. Esta mezcla se filtró a través de un colador o
una gasa y se la colocó en tubo de plástico cónico de 15 mL de capacidad, para
posteriormente completar el volumen final del mismo con solución fisiológica, se tapó
el tubo, se agitó de forma vigorosa durante 30 segundos y se dejó reposar por un
tiempo aproximado de 45 minutos. Finalmente se desechó el sobrenadante y mediante
la utilización de una pipeta pasteur se tomó una muestra del fondo del tubo y colocó de
3 a 4 gotas del sedimento, en dos portaobjetos para después añadir gotas de lugol a
ambas placas y realizar la observación microscópica.
- Técnicas de flotación con solución salina saturada: Se tomó entre 2 y 5 gramos de
materia fecal canina y colocó dentro de un mortero junto con 15 mL de solución salina
saturada, hasta disolver perfectamente las heces mediante el uso de baja lenguas y
observar la obtención de una pasta consistente y homogénea, esta mezcla se pasó por
un colador y colocó el líquido filtrado en un tubo de ensayo de vidrio, llenándolo
hasta el borde, de tal manera que se aprecie un menisco convexo al final del tubo, para
colocar un cubreobjetos en el borde durante aproximadamente 15 a 30 minutos y
finalmente retirarlo y colocarlo con mucho cuidado en un portaobjetos para la
observación microscópica.
57
- Cuantificación de huevos por gramo de heces (Cámara de McMaster): Para la
determinación de la concentración de huevos de parásitos de las muestras positivas, se
pesó 1 gramo de la muestra de heces, se colocó dicha cantidad en una caja petri
seguido de la adición de 14 mL de una solución de flotación (solución salina
saturada), con la que se formó una pasta homogénea de materia fecal y se filtró a
través de una gasa. Del líquido resultante tras la filtración se tomó aproximadamente
200 μL con la ayuda de una micropipeta, trasfiriendo dicha cantidad a la cámara de
McMaster hasta llenar completamente las dos rejillas para su observación
microscópica con lente de 10x, después de cinco minutos de reposo para lograr que los
huevos floten en la cámara y se mejore la cuantificación. El conteo se realizó
solamente tomando en cuenta los huevos que se encontraban dentro de los cuadrantes
de ambas rejillas de la cámara. Para el cálculo del número de huevos por gramo de
heces se utilizó la siguiente fórmula:
Donde: El recuento total hace referencia al
número total de huevos observados dentro
de los cuadrantes de ambas rejillas de la
cámara (1 y 2).
Figura No. 30. Flujograma de
macroprocesos (Diseño experimental).
Elaborado por: Vanessa Arguero
Figura No. 29. Ilustración de los
campos observados en una cámara de
McMaster.
Fuente: (Gomez, 2017).
Adaptado por: Vanessa Arguero
1 2
58
3.3. Operacionalización de variables:
En la tabla No.2 se encuentran descritas de manera detallada, cada una de las variables del
estudio, junto con las dimensiones, indicadores e instrumento de recolección de cada una.
Además estas variables se encuentran clasificadas según las fases del proyecto, lo que permite
su mejor comprensión.
Tabla No 2. Matriz de operacionalización de variables.
Fase 1: Muestreo
Variables Dimensiones Indicador Instrumento
Variable
independiente
Lugar de muestreo
Área de canchas
Laguna el Quinde
Área Jardín Botánico
Pista atlética
Zona canina
Pistas de bicicletas
Juegos infantiles
Porcentaje de
muestras encontradas
en cada área
Guía de
observación
impresa.
Mapa del parque La
Carolina
Variable
dependiente
Número de
muestras fecales
caninas
Alta
Media
Baja
Porcentaje de muestras
fecales caninas dentro
del parque
Guía de
observación
impresa.
Fase 2: Análisis
Variable
Independiente
Examen
macroscópico de la
muestra fecal
- Color (heces: cafés
amarillas, negras y
blancas)
- Aspecto (homogéneo,
heterogéneo)
- Consistencia (heces:
firmes, blandas y
líquidas )
- Presencia de larvas
Porcentajes de cada
dimensión
Observación
macroscópica
directa
Variables
Dependientes
Examen
microscópico de la
muestra
Género y especies de
parásitos
Porcentajes de cada
género y especie de
parásitos encontrados.
Examen
microscópico
directo
Concentración
parasitaria
(Tipo de
parasitosis)
#huevos/gramo de
heces caninas
Parasitosis única
Parasitosis múltiple
#huevos/gramo de
heces caninas
Porcentaje de
parasitosis únicas y
múltiples
Examen
microscópico
directo.
Técnica de
sedimentación
espontánea en tubo.
Técnica de
flotación con
solución salina
saturada.
Elaborado por: Vanessa Arguero
59
3.4. Técnicas e instrumentos de recolección de datos
Todos los datos relevantes para la investigación fueron recopilados en una guía de
observación tanto digital como impresa, la guía de observación impresa, que se la puede
observar en el anexo G, se utilizó durante el proceso de muestreo en el lugar de investigación
y durante el procesamiento de las muestras de materia fecal recolectadas.
Mientras que en la guía de observación virtual (Anexo H), una base de datos realizada en
un libro de Microsoft Office Excel 2007, se fueron registrando todos los resultados de los
estudios coproparasitario que incluyeron el examen directo, sedimentación espontánea y
técnica de flotación, a medida que se avanzó con la investigación, junto con los datos más
importantes obtenidos en las visitas de campo y registrados en la guía impresa.
3.5. Técnicas de procesamiento de datos:
El análisis estadístico se lo manejó en el programa informático software SPSS versión 20.0.
Se exportó la base de datos ingresada en el programa Microsoft Excel 2007 (Figura
No. 56) al programa SPSS vs. 20.0.
Ya dentro del programa estadístico SPSS vs. 20.0 se realizó el análisis descriptivo de
los resultados de la determinación de parásitos encontrados en la materia fecal canina.
Por último se evaluó los resultados realizando los siguientes cálculos estadísticos:
porcentajes y frecuencias.
60
Capítulo IV
Análisis y Discusión de Resultados
4.1 Análisis de Resultados:
4.1.1. Características generales de las muestras incluidas en el estudio.
En el período comprendido por los meses julio, agosto y septiembre del 2017, se
recolectaron un total de 140 muestras de heces fecales caninas en las diferentes zonas que
comprenden la extensión del Parque Metropolitano La Carolina de la Ciudad de Quito, como
se muestran en la tabla No.3.
Tabla No.3. Áreas de recolección de muestras dentro del parque La Carolina del DMQ
En el 64, 3% (n=90) de las zonas en donde se realizó la recolección de muestras de materia
fecal canina, se observó la presencia de venta y consumo de alimentos a escasos metros del
lugar contaminado, y en el 35,7% (n=50) no se evidenció esta situación, resultados que se
muestran en la tabla No.4
Tabla No. 4: Presencia de venta y consumo de alimentos en los lugares de recolección
Áreas Frecuencia (n) Porcentaje (%)
Canchas 48 33,6
Laguna el Quinde 36 25,7
Pista atlética 17 12,9
Pistas de bicicletas 17 12,1
Juegos infantiles 10 7,1
Área jardín botánico 7 5,0
Zona canina 5 3,6
Total 140 100,0
Presencia de venta de
alimentos cerca del lugar
de recolección
Frecuencia (n)
Porcentaje (%)
Si 90 64,3
No 50 35,7
Total 140 100,0
61
De las 140 muestras analizadas, el 14,29% (n=20) resultaron positivas a la presencia de
parásitos zoonóticos, mientras que en el 85,71% (n=120) no se identificaron formas
parasitarias; tal como se indica en la tabla No.5.
Tabla No. 5. Presencia de parásitos zoonóticos
Frecuencia (n) Porcentaje (%)
Muestras Negativas 120 85,71
Muestras Positivas 20 14,29
Total
140 100,0
En el 85,0% (n=17) de las muestras positivas se encontraron parasitosis únicas, mientras
que en el 15,0% (n=3) se identificaron parasitosis múltiple (Tabla No.6), dentro de las últimas
se revelaron asociaciones que se describen en la tabla No.7.
Tabla No. 6. Tipo de parasitosis encontradas.
Tipo de parasitosis Frecuencia (n) Porcentaje (%)
Parasitosis únicas 17 85,0
Parasitosis múltiples 3 15,0
Total 20 100,0
De los parásitos encontrados en las 20 muestras positivas, el 40,0% (n=8) fueron
Ancylostoma caninum, el 25,0% (n=5), especies de Entamoebas, el 20% (n=4) Toxocara
canis, el 10% (n=2) Trichuris vulpis y Giardia lamblia y el 5,0% (n=1) tanto para Ascaris
lumbricoides, como para Chilomastix spp, como se muestra en la figura No. 31.
Figura No. 31. Frecuencias de los diferentes géneros de parásitos zoonóticos identificados
por microscopía óptica, en las 20 muestras de materias fecales caninas parasitadas,
muestreada en el parque La Carolina del DMQ.
Elaborado por: Vanessa Arguero, 2017.
62
Tabla No. 7. Parasitosis zoonóticos identificados por microscopía óptica en las 20
muestras positivas recolectadas en el parque La Carolina del DMQ.
N° Área de
recolección
Parásitos
identificados N° Área de
recolección
Parásitos
identificados
1 Canchas fútbol Trichuris vulpis 11 Canchas basketball Entamoeba coli
2 Laguna el Quinde Ancylostoma
caninum y
Toxocara canis
12 Pista de bicicletas Ascaris
lumbricoides
3 Juegos infantiles Entamoeba coli 13 Juegos infantiles Entamoeba
histolytica
4 Juegos infantiles Toxocara canis 14 Canchas tenis Entamoeba coli
5 Canchas fútbol Giardia lamblia 15 Pista de bicicletas Entamoebas y
Chilomastix spp.
6 Canchas volyball Toxocara canis 16 Canchas de pelota
nacional
Ancylostoma
caninum y
Trichuris vulpis
7 Laguna el Quinde Ancylostoma
caninum
17 Laguna el Quinde Ancylostoma
canimun
8 Canchas fútbol Giardia lamblia 18 Canchas Ancylostoma
caninum
9 Laguna el Quinde Toxocara canis 19 Laguna el Quinde Ancylostoma
caninum
10 Pista atlética Ancylostoma
caninum
20 Canchas Ancylostoma
caninum
Las 20 muestras positivas fueron encontradas y recolectadas en las diferentes áreas del
parque La Carolina, tal como se muestra en la tabla No.8; siendo el sector de mayor
contaminación los espacios que comprenden los alrededores de las diferentes canchas
deportivas. Además en estas mismas muestras, se determinaron diferentes concentraciones de
huevos de helmintos zoonóticos, mediante el uso de una cámara de McMaster y soluciones de
flotación, resultados que se muestran en la tabla No.9.
63
Tabla No. 8. Lugares de recolección de muestras positivas para parásitos zoonóticos.
Lugar de recolección Frecuencia (n) Porcentaje (%)
Canchas 9 45,0
Laguna el Quinde 5 25,0
Juegos infantiles 3 15,0
Pista bicicletas 2 10,0
Pistas atlética 1 5,0
Total 20 100,0
Tabla No. 9. Concentración parasitaria de helmintos.
Helmintos zoonóticos Frecuencia (n) # huevos/g heces Tipo de infestación
Toxocara canis
4
300 Infestación leve
4 150 Infestación grave
600 Infestación moderada
250 Infestación leve
8
500 Infestación moderada
1 000 Infestación moderada
Ancylostoma caninum
500 Infestación moderada
1 050 Infestación grave
100
50
650
650
Infestación leve
Infestación leve
Infestación moderada
Infestación moderada
Trichuris vulpis 2 50 Infestación leve
200 Infestación leve
Ascaris lumbricoides 1 400 Infestación leve
Infestación leve: < 500 huevos/g heces.
Infestación moderada: 500-1 000 huevos/g heces.
Infestación grave: > 1 000 huevos / g heces.
64
Las características físicas macroscópicas de las 20 muestras positivas, se resumen a
continuación. Sin embargo estas, no mostraron ninguna relación significativa con la presencia
de parásitos zoonóticos específicos en las muestras.
Con respecto al color, el 74,0% de las muestras fueron de color café, 21,0% negras y
un 5,0% de color amarillo, no se encontraron muestras de color blanco parasitadas.
El 100% de las muestras positivas fueron de aspecto heterogéneo.
El 45,0% de las muestras positivas fueron blandas y el 55,0% de consistencia firme.
No se encontraron muestras líquidas.
Discusión de los resultados:
Se analizaron un total de 140 muestras de materia fecal canina muestreadas en toda la
extensión del parque metropolitano La Carolina, durante el período comprendido por los
meses julio a septiembre del año 2017, de las cuales el 14,29 %, es decir, un equivalente a 20
muestras, resultaron positivas para la presencia de parásitos zoonóticos. De este porcentaje,
Ancylostoma caninum fue el parásito más prevalente con un 40,0%, de manera similar a los
resultados encontrados en el estudio realizado por (Latorre y Nápoles, 2014) en parques del
área urbana del Distrito Metropolitano de Quito, en el cual se determinó que Ancylostoma
caninum era el parásito más frecuente con un 57% de las muestras encontradas como
positivas. Estos resultados también se asemejan a los encontrados en el estudio realizado por
Ramón (2012), en el que, tras la recolección y análisis de 382 muestras de heces de perros
domiciliados de quince parroquias urbanas de la ciudad de Cuenca, se encontró la presencia de
Ancylostoma caninum en un 4,19%, siendo este el parásito más prevalente (Ramón, 2012). Así
mismo, en el país fronterizo Colombia, específicamente en el municipio de Cundinamarca,
resultados encontrados por (Alarcón et al., 2015), revelaron que Ancylostoma spp era el
parásito más prevalente dentro de 122 muestras recolectadas y analizadas de animales
domiciliados.
Los resultados obtenidos en cuanto a la prevalencia de Ancylostoma caninum, se relacionan
directamente con las condiciones ambientales que este parásito necesita para sobrevivir, las
cuales deben ser lo suficientemente templadas para permitir su desarrollo en estadios larvales
65
libres (Fisher y McGarry, 2007), además la temperatura óptima para su desarrollo es de 23-
30°C, precisamente las temperaturas que se pueden registrar en los días calurosos en la ciudad
de Quito, constituyendo así este un factor importante para la viabilidad del parásito en los
suelos del parque y su posterior diseminación (Alfaro, 2011).
En segundo lugar dentro de los parásitos zoonóticos revelados en el estudio, se encuentran
Entamoeba coli y Entamoeba histolytica, las cuales fueron analizadas solamente a nivel de
género como Entamoebas spp, con un porcentaje del 25,0% son parásitos que a pesar de ser
microorganismos comensales del intestino del ser humano, pueden convertirse en un agente
zoonótico cuando el perro ha consumido heces humanas infectadas, y de esta manera se
convierte en un hospedador que fácilmente puede volver a transmitir el parásito a los seres
humanos, cuando estos ingieren accidentalmente alimentos contaminados con materia fecal
canina (Macpherson C, Meslin F, Wandeler A, 2000), situación que fácilmente puede ocurrir
dentro del parque, sobre todo con la población infantil que tiene un contacto directo con el
suelo que podría encontrarse contaminado con este parásito. Estos resultados se asemejan a
los encontrados en Colombia por González-Giraldo (2015), estudio en el cual, tras el
procesamiento de 175 muestras se reveló a Entamoeba spp, como uno de los parásitos más
prevalentes con un 21,1%.
Con un 20% (n=4), Toxocara canis, fue el tercer parásito zoonótico más frecuente
encontrado en el estudio, este helminto parasita a los perros, sobre todo a los jóvenes, debido a
un eficiente mecanismo de transmisión vertical. Toxocara canis, además ha causado gran
interés en cuanto a salud pública y ha sido el parásito por el cual se han tratado de
implementar campañas de desparasitación preventiva en varios países del mundo, sin embargo
y a pesar de estos esfuerzos la enfermedad transmitida por los perros a los seres humanos
denominada toxocariosis en la actualidad sigue generando nuevos casos. Toxocara canis, ha
sido encontrado como uno de las parásitos más frecuentes además en diversos estudios de
varios autores entre los cuales se puede citar el realizado por Taranto et al. (2000) y en cual se
determinó que Toxocara canis junto con Ancylostoma caninum eran los más prevalentes
dentro de 106 muestras de un número desconocido de perros en el domicilio y peridomicilio
de niños residentes en el Chaco Salteño en Argentina (Taranto et al., 2000). Así mismo
resultados similares se encontraron en el estudio realizado por Sierra-Cifuentes et al (2015),
66
en el que se estudió la materia fecal de todos los perros de dos centros de bienestar animal de
Medellín y del oriente Antoqueño y se encontró a Toxocara spp como uno de los parásitos
más prevalentes.
En el Ecuador, estudios realizados por ejemplo por Aucay (2015), en Sucúa-Morona
Santiago determinaron, la presencia de Toxocara spp dentro de los parásitos zoonóticos más
prevalentes encontrados; de igual manera en el estudio realizado por Ramón (2012), en
Cuenca, Toxocara canis se identificó como el segundo parásito más prevalente con un 3,66%.
Finalmente los resultados arrojados en el presente estudio se correlacionan además con los
encontrados por Latorre y Nápoles (2014), en el que Toxocara canis con un 33,0% fue el
segundo parásito mas prevalente junto con Ancylostoma caninum.
Giardia spp un protozoo patógeno flagelado extracelular que habita en el intestino delgado
de una variedad de huéspedes mamíferos, incluyendo los perros y los seres humanos, se
encuentra ampliamente distribuido a nivel mundial, y es reconocido como uno de los parásitos
entéricos más comunes de animales domésticos y del hombre. (Macpherson C, Meslin F,
Wandeler A, 2000). Este parásito se evidenció dentro de los parásitos zoonóticos revelados en
el estudio con un 10,0% (n=2), resultados que se asemejan a los encontrados por (Taranto et
al., 2000), en Argentina, en el cual Giardia spp se encontró dentro de los parásitos revelados
tras el análisis de 106 muestras con un 14,5%. Así mismo en Chile, se demostró la presencia
de Giardia spp, como el único protozoo de riesgo zoonótico tras el análisis y procesamiento
de 452 muestras. (Luzio et al., 2015). En el Ecuador, de igual manera Aucay (2015) en Sucúa-
Morona Santiago, encontró a Giardia spp dentro de los parásitos zoonóticos más prevalentes.
De igual forma que Giardia spp, el nematelminto Trichuris vulpis se identificó dentro de
los parásitos zoonóticos revelados con un 10,0% (n=2), este parásito que infecta a perros,
zorros y otros cánidos tiene un ciclo de vida directo y maduran en un solo huésped, el ser
humano puede infectarse al ingerir agua o tierra contaminada con huevos del parásito, que a
condiciones óptimas pueden permanecer viables durante años. Este parásito de importancia
zoonótica también ha sido hallado en diversos estudios, como el realizado por (Andresiuk et
al., 2004) en Mar del Plata, Argentina en el cual tras el procesamiento de 205 muestras se
encontró a Trichuris vulpis, junto con Toxocara canis dentro de los parásitos más prevalentes.
67
De forma similar en Colombia, Trichuris vulpis, fue evidenciado junto con Ancylostoma
caninum y Giardia spp como los parásitos zoonóticos de mayor prevalencia dentro de 122
muestras de animales domiciliados (Alarcón et al., 2015).
Chilomastix mesnili, protozoo flagelado, que parasita a los humanos, cerdos, aves, conejos
y otras especies; fue determinado en el estudio con una prevalencia del 5,0% (n=1), este
parásito rara vez se lo ha descrito en perros, sin embargo un estudio chileno realizado por
López et al, 2006 en el que se analizaron 972 muestras fecales caninas, encontró la presencia
de este parásito en 92 casos de los 686 positivos, lo que significó un 9,5% (López et al., 2006).
El único caso encontrado en este estudio, seguramente se trató de un animal en situación de
calle, que consumió alimentos o agua contaminada con heces humanas que contenían quistes
de Chilomastix mesnili.
Con el reporte de un único caso también se halló la presencia de Ascaris lumbricoides
(5,0%), a pesar de que dentro del país no se ha reportado a este parásito en los estudios
realizados, de igual forma que en los países de la región, este hallazgo permite de cierto modo
corroborar los resultados de un estudio realizado por un grupo de investigadores del
Departamento de Parasitología del Centro Nacional de Investigación de Giza, en Egipto, en
donde se demostró que los perros pueden desempeñar el papel de reservorio de Ascaris
lumbricoides y por lo tanto convertirse en contaminadores del medio ambiente con sus
excretas, todo esto tras el análisis de 25 perros, de los cuales dos de ellos se encontraban
infectados por el parásito (Shalaby HA, Abdel-Shafy S, Derbala AA., 2010).
El área que comprenden los alrededores de las canchas deportivas del parque La Carolina,
se determinaron como los lugares de mayor contaminación con muestras fecales caninas
parasitadas con un 45,0%, situación que podría deberse al hecho que la mayoría de visitantes
acuden al lugar con el propósito de hacer uso de estas instalaciones como: canchas de fútbol,
basketball, volyball, tenis, pelota nacional, etc; y lo hacen acompañados muchas veces de sus
familias y mascotas; que permanecen a las afueras de las canchas observando los juegos
deportivos, pudiendo en cualquier lapso de este tiempo los perros contaminar estos espacios
con sus desechos biológicos, también se puede deber a que ciertos puntos de estas áreas son
68
un tanto escondidos a la vista de los transeúntes y los dueños de los animales aprovechan esta
situación para no eliminar correctamente las materias fecales de sus mascotas.
Las concentraciones de huevos de helmintos por cada gramo de heces caninas, fueron
determinadas mediante el uso de una cámara de McMaster y suspensiones fecales con
solución salina saturada. Estos datos arrojaron como resultados, en el caso de Ancylostoma
caninum una contaminación de 50, 100, 500, 650, 1 000 y 1 050 huevos por cada gramo de
heces respectivamente, en las muestras en las que se encontró este parásito. En las muestras en
las que se reveló la presencia de Toxocara canis se encontró una concentración de 250, 300,
600 y 4 150 huevos por cada gramo de heces respectivamente. En los dos casos que se reportó
la presencia de Trichuris vulpis se encontraron concentraciones de 50 y 200 huevos por gramo
de heces. Por otro lado, para el único caso en el cual se identificó a Ascaris lumbricoides, una
concentración de 400 huevos por gramo de heces. Cifras que muestran que los animales, de
los cuales se desconoce raza, sexo y edad, presentaban cuadros de parasitosis con grados de
infestaciones variables, siendo las más relevantes, las infestaciones graves encontradas con
Ancylostoma caninum (1050 huevos/gramo de heces) y Toxocara canis (4150 huevos/gramo
de heces), pues estas cantidades de huevos al ser relacionadas con los pesos totales de cada
muestra, que en estos dos casos en particular, superaron los 10 gramos de materia fecal,
constituyen una fuente supremamente elevada y peligrosa de contaminación dentro del parque
La Carolina, se suma a esto el hecho de que ambas muestras fueron recolectadas en dos áreas
críticas, como lo son el sector que rodea la laguna el Quinde, identificado como el segundo
lugar de mayor contaminación y los juegos infantiles, en los cuales existe una afluencia
masiva de niños que juegan e ingieren alimentos dentro de esta zona, sin siquiera tener
conocimiento de la contaminación a la que estarían expuestos.
En el Ecuador, específicamente en la provincia de Pichincha, en el cantón Quito, según
datos proporcionados por la Dirección Nacional de Estadística y Análisis de Información de
Salud del Ministerio de Salud Pública, en el año 2016 se atendieron un total de 4 041
pacientes con cuadros de amebiasis, 577 pacientes con giardiasis, 3 casos de anquilostomiasis
y 5 casos de pacientes que fueron atendidos por presentar el Síndrome de la larva migrans
visceral. Estos datos, junto a los resultados obtenidos en la investigación generan atención,
pues los parásitos que provocan las enfermedades antes mencionadas como: Entamoebas spp,
69
Giardia lamblia, Trichuris vulpis, Ancylostoma caninum y Toxocara canis, se identificaron en
este estudio, encontrándose dentro de estos los más prevalentes Ancylostoma caninum y
Entamoebas spp. Y tomando en cuenta, que no se puede precisar la verdadera totalidad del
número de parasitosis en la ciudad de Quito, ya que los datos publicados por el Ministerio de
Salud del Ecuador, corresponden a casos atendidos en centros de atención pública, sin tomar
en cuenta los casos registrados en centros de salud privados.
70
Capítulo V
Conclusiones y recomendaciones.
5.1. Conclusiones:
Se determinó, después del análisis y procesamiento de 140 muestras de materia fecal
canina, recolectadas dentro de las 64 hectáreas que comprenden el Parque Metropolitano La
Carolina, durante los días domingos de los meses julio, agosto y septiembre del año 2017, la
presencia de parásitos de riesgo zoonótico en un 14, 29% (n=20), encontrándose una
prevalencia mayor para protozoos en comparación con helmintos. Las parasitosis únicas
fueron más frecuentes con un 85,0% (n=17), que las parasitosis múltiples 15,0% (n=3).
Se estableció el género y especie de los parásitos encontrados en la materia fecal canina
que contamina el parque La Carolina, siendo Ancylostoma caninum el más prevalente con un
40,0% (n=8), seguido de parásitos del género Entamoeba con un 25,0% (n=5), Toxocara canis
con un 20,0% (n=4), Trichuris vulpis y Giardia lamblia con un 10,0% (n=2) y finalmente
Chilomastix mesnili junto con Ascaris lumbricoides con un 5,0% (n=1).
Se estableció el lugar de mayor contaminación con materia fecal canina parasitada dentro
del parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito, siendo esta el área comprendida
por las canchas la más contaminada con un 45,0% (n=9), seguido del área que rodea la laguna
el Quinde con un 25,0% (n=5), juegos infantiles con un 15,0% (n=3), pistas de bicicletas con
el 10,0% (n=2) y por último el área que se encuentra alrededor de la pista atlética con el 5,0%
(n=1).
Además, se evidenció que durante la recolección del total de muestras en el 64, 3% (n=90)
de las zonas en donde se realizó la recolección, existía la presencia de venta y consumo de
alimentos a escasos metros del lugar contaminado, constituyendo esta situación como un
factor importante de riesgo ante la posible transmisión de una enfermedad zoonótica.
En el estudio se encontró además la presencia de Isospora canis en un 20,0% (n=4), a pesar
de no ser un parásito zoonótico, pues los perros constituyen su único huésped, es importante
71
mencionar este hallazgo, debido a que es un parásito supremamente difícil de erradicar y es
causante de coccidiosis en gran número de mascotas.
Los resultados obtenidos generan gran preocupación, debido a la enorme afluencia de
visitantes que tiene el Parque Metropolitano La Carolina, pues son aproximadamente 50 000
personas las que llegan al lugar cada fin de semana, y según los resultados obtenidos, las
muestras parasitadas fueron encontradas prácticamente distribuidas en toda la extensión del
parque. Además, es preocupante el expendio desmedido de alimentos preparados al aire libre,
que se ubica en cualquier sector y se encuentran expuestos a una posible contaminación con
los parásitos zoonóticos identificados en este estudio, ya sea por una contaminación con polvo
o aerosoles de la materia fecal o bien por la propagación generada por insectos, que sirven
como medio de transporte de las heces y por lo tanto de los parásitos.
5.2. Recomendaciones:
Con los resultados obtenidos en esta investigación, y después de revelar la presencia de
parásitos zoonóticos, capaces de producir enfermedades que comprometen la salud de los
seres humanos, se recomienda el adecuado manejo y eliminación de las excretas de animales
en los espacios públicos, sobre todo en lugares con gran afluencia de personas como lo son
parques, plazas, bulevares, etc, pero sobretodo en lugares donde se realice expendio de
alimentos al aire libre.
Con respecto a la población, se recomienda practicar buenas conductas de higiene, el
lavado de manos es indispensable para evitar la transmisión de estas zoonosis, en la población
infantil sobre todo, que es la que mayor contacto tiene con los espacios verdes que podrían
estar contaminados dentro de este parque por ejemplo. Deberían realizarse además campañas
de concientización en guarderías y escuelas principalmente para combatir de cierto modo esta
problemática.
Buscar captar la atención de organismos municipales como la Secretaría de Salud de Quito,
EMASEO (Empresa Pública Metropolitana de Aseo de Quito), o a quien fuera pertinente para
que se regularice y controle la contaminación con heces fecales caninas en todo el Distrito
72
Metropolitano de Quito, mediante el cumplimiento de las ordenanzas municipales descritas en
el marco legal de este trabajo, para que así se cree conciencia y educación en los dueños de
mascotas, pues son ellos los responsables de la correcta eliminación de los desechos de sus
animales. Con respecto a los animales en situación de calle, buscar estrategias para que de
alguna manera se puedan mantener limpias y libres de contaminación: las calles, plazas,
parques y centros de afluencia masiva.
Crear conciencia en los propietarios de mascotas, de la responsabilidad de poseer una
mascota, del cuidado que deben tener en cuanto a la correcta eliminación de los desechos de
sus animales, así como para que proporcionen a sus animales un cuidado que garantice:
controles veterinarios periódicos, cumplimiento del calendario de vacunas y desparasitaciones,
todo esto con el fin de cuidar la salud pública dentro del área donde residen. Además debido a
que la población canina callejera también representa un problema frente a esta situación, se
recomienda que organismos como Protección Animal Ecuador (PAE), Urbanimal, o el
Municipio Capitalino en delegación con las instancias correspondientes y con ayuda de los
gobiernos locales, tomen medidas para el manejo adecuado de estos animales, realizando
además campañas de vacunación, esterilización y desparasitación masivas.
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80
ANEXOS
Anexo A: Árbol de problemas.
Figura No. 32. Árbol de problemas.
Elaborado por: Vanessa Arguero.
81
Anexo B: Área de recolección de muestras de heces caninas durante los días domingos del
período comprendido entre julio-septiembre de 2017.
Figura No. 33. Mapa parque La Carolina del DMQ.
Fuente: Escaneo de la carta geográfica del sector Tumbaco, adquirida en la oficina de ventas
del Instituto Geofísico Militar de la Ciudad de Quito.
82
Anexo C: Ilustración de las áreas del parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.
Figura No. 34. Recorte de periódico en el que se muestra una ilustración de las áreas del
parque La Carolina del Distrito Metropolitano de Quito.
Tomado de (EL COMERCIO, 2017).
83
Anexo D: Imágenes capturadas durante toda la investigación.
Figura No. 36. Capturada el 15 de abril del
2017.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
Figura No. 37. Capturada el 15 de abril del
2017.
Tomado del registro fotográfico de la
autora.
Figura No. 35. Capturada el 15 de abril del 2017 en el Parque Metropolitano La Carolina
Tomado del registro fotográfico de la autora.
84
Figura No. 38. Capturada el 29 de abril del 2017 en el parque La Carolina del Distrito
Metropolitano de Quito.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
Figura No. 39. Capturada el 29 de abril del 2017 en el parque La Carolina del Distrito
Metropolitano de Quito
Tomado del registro fotográfico de la autora.
Figura No. 40. Capturada el 29 de abril del 2017 en el parque La Carolina del
Distrito Metropolitano de Quito.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
85
Figura No. 41. Lugar de recolección de una muestra positiva para Giardia lamblia. Se observa
venta de alimentos a escasos metros de la muestra contaminada.
Lugar y fecha: Sector canchas de fútbol parque La Carolina. Domingo 30 de Julio del 2017.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
Figura No. 42. Lugar de recolección de una
muestra positiva para Ancylostoma caninum.
Lugar y fecha: Laguna el Quinde, se
observan personas consumiendo alimentos a
pocos metros de la muestra contaminada.
Domingo 13 de agosto del 2017.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
Figura No.43. Muestra positiva para
Isospora canis, se observa la presencia de
moscas, que constituyen una forma de
transporte y dispersión del parásito.
Lugar y fecha: Sector canchas de pelota
nacional. Domingo 17 de Septiembre del
2017.
Tomado del registro fotográfico de la
autora.
86
Figura No. 44. Lugar de recolección de una muestra positiva para Toxocara canis
Lugar y fecha: Laguna el Quinde, se observan personas consumiendo alimentos a
pocos metros de la muestra contaminada. Domingo 16 de julio del 2017.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
Figura No. 45. Lugar de recolección de una muestra positiva para Toxocara
canis e Isospora canis
Lugar y fecha: Juegos infantiles. Domingo 30 de julio del 2017.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
87
ANEXO E: Fotografías de las especies parasitarias identificadas en el estudio por
microscopía óptica.
Figura No. 46. Huevos de
Ancylostoma caninum.
Técnica de flotación con
solución salina saturada 40x.
Lugar de recolección: Laguna
el Quinde.
Tomado del registro
fotográfico de la autora.
Figura No. 47. Ooquistes de
Isospora canis. Técnica de
flotación con solución
salina saturada 40x.
Lugar de recolección: pista
atlética
Tomado del registro
fotográfico de la autora.
Figura No. 48. Huevos de
Ascaris lumbricoides.
Técnica de flotación con
solución salina saturada 40x.
Lugar de recolección: pistas
de bicicletas.
Tomado del registro
fotográfico de la autora.
Figura No. 49. Huevos de
Ancylostoma caninum. Técnica
de sedimentación espontánea
en tubo 40x.
Lugar de recolección: Laguna
el Quinde
Tomado del registro fotográfico
de la autora.
Figura No. 51. Huevo
de Trichuris vulpis.
Técnica de flotación
con solución salina
saturada. 40x
Lugar de recolección:
canchas de basketball.
Tomado del registro
fotográfico de la autora.
Figura No. 50. Huevo de
Toxocara canis. Técnica
de sedimentación
espontánea en tubo 40x.
Lugar de recolección:
juegos infantiles.
Tomado del registro
fotográfico de la autora.
88
Figura No. 53. Huevo de Toxocara
canis. Técnica de observación
microscópica directa en lugol 40x.
Lugar de recolección: Laguna el Quinde.
Domingo 10 de Septiembre del 2017.
Tomado del registro fotográfico de la
autora.
Figura No. 52. Huevos de Toxocara canis. Técnica
de flotación con solución salina saturada 40x.
Lugar de recolección: Laguna el Quinde.
Tomado del registro fotográfico de la autora.
Figura No. 54. Quiste de
Entamoeba coli. Técnica de
observación microscópica
directa en lugol 40x.
Lugar de recolección: canchas
de basketball cerca a juegos
infantiles. Domingo 10 de
Septiembre del 2017. Tomado
del registro fotográfico de la
autora.
89
Anexo F: Flujograma de los macro y micro-procesos.
Figura No. 55. Flujograma de macro y micro procesos.
Elaborado por: Vanessa Arguero
90
Anexo G: Guía de observación impresa que fue utilizada durante el muestreo y análisis
de la materia fecal canina.
Tabla No. 10. Guía de observación y recolección de datos.
Universidad Central Del Ecuador
Facultad de Ciencias Químicas
Bioquímica Clínica
Guía de observación-Instrumento de recolección de datos
Datos del muestreo Datos generales de la muestra
Fecha:
Número de muestra:
Hora:
Peso de la muestra:
Lugar de recolección: Canchas ( )
Juegos Infantiles ( )
Laguna el Quinde ( )
Pista atlética ( )
Zona canina ( )
Área Jardín Botánico ( )
Pistas de bicicletas ( )
Características macroscópicas
Color:
café ( )
amarillo ( )
blanco ( )
negro ( )
Aspecto: homogéneo ( )
heterogéneo ( )
Observaciones:
Consistencia: firme ( )
blanda ( )
líquida ( )
Presencia de
larvas:
SI ( )
NO ( )
Examen microscópico
Presencia de parásitos SI ( ) NO ( )
Resultados:
Técnica de sedimentación espontánea en tubo
Resultados:
Técnica de flotación
Resultados:
Elaborado por: Vanessa Arguero
91
Anexo H: Guía de observación digital para el almacenamiento de resultados.
Figura No. 56. Captura de pantalla del libro de Microsoft Office Excel 2007 que contiene la guía de
observación digital que fue utilizada durante la investigación.
Elaborado por: Vanessa Arguero.
92
Anexo I: Traducción certificada del resumen por el CEC-EPN,
Figura No. 57. Traducción certificada por el Centro de Educación Continua de la Escuela Politécnica
Nacional (CEC-EPN).
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