baciloscopia

142
TUBERCULOSIS Dr. Francisco A. LAJO SOTO

Upload: susej-huichi-jara

Post on 25-Oct-2015

66 views

Category:

Documents


2 download

TRANSCRIPT

Page 1: baciloscopia

TUBERCULOSISDr. Francisco A. LAJO SOTO

Page 2: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis

• CARACTERÍSTICAS GENERALES

• Orden: Actinomycetales

• Familia: Mycobacteriaceae

• Complejo M. tuberculosis: M. tuberculosis, M. bovis, M. Africanum, M. Microti y M. canetti

• Crecimiento lento (duplicación 15-24 hs)

Page 3: baciloscopia

Criterios de clasificación de las mico bacterias

• 1.- Criterio • Ritmo de crecimiento• Producción de pigmentos en presencia/ ausencia de luz• Tipo de parasitismo celular que determinan• Principales cuadros clínicos que producen• 2.- Criterio • Capacidad de acido resistencia• Presencia de ácidos micolicos (70 – 90 átomos C)• Contenido de adenosina + guanina en el ADN

Page 4: baciloscopia

• Parásitos intracelulares estrictos

– M.leprae Lepra

• Parásitos intracelulares facultativos

– M.tuberculosis

– M.atípicas Lesiones cutáneas o afectaciones tuberculoides

• Saprofitos – De vida libre en agua, suelo, piel, tracto GU.

Clasificación Micobacterias por tipo de parasitismo

Page 5: baciloscopia

Características mico bacterias

• Acido-alcohol resistencia

• Contenido lipidico pared

• Aerobios estrictos

• Lenta multiplicación

• Induccion granulomas

• Resistencia acidos/alcalis

• Pigmentacion

Page 6: baciloscopia

M. tuberculosis

1. Bacilo recto o ligeramente curvo y delgado, solos o agrupado

2. Composición química: 50-60% lípidos, hidrófobos

3. 0.2 a 0.6 x1 a 10 um

4. Requieren de 35°-37°C

5. Crecimiento lento (12-24 hrs a 8 semanas

6. Colonias no pigmentadas o tiñen de coloe beis

7. Aerobios, no esporulados, intracelulares facultativos. Inmoviles, no encapsulados

8. Baja permeabilidad a los colorantes básicos.

– Requieren exposición prolongada al calentamiento para teñirse.

Page 7: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis

• PARED CELULAR: Compleja, Rica lípidos: • Superficie hidrofobica y tenga resistencia a coloraciones y desinfectantes habituales (acido

resistentes)• No tiene membrana citoplasmática externa • La membrana citoplasmática interna, con capa gruesa de peptidoglucano• En membrana anclan proteínas de manosido de fosfatidilinositol y lipoarabinomanano (LAM)• LAM semejante a LPS O antigenicos de otras bacterias• Peptidoglucano forma esqueleto y se une los arabinolactanos (polisacáridos de D arabinosa y

D galactosa)• Residuo terminal de D arabinosa se esterifica : forma ácidos micolicos hidrofobicos a estos se

anclan glucolipidos de superficie (lípidos 60%)• En pared se intercalan proteínas transportadoras y porinas• Proteinas dan carácter antigénico estimulan respuesta inmunitaria

Page 8: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis

• Ácidos micólicos de cadena larga (90 átomos de carbono), a su presencia se le atribuye la propiedad de ácido resistencia (BAAR), en la tinción de Ziehl-Neelsen.

• Factor cordon: las cepas virulentas lo poseen el cual inhibe la migración de los leucocitos y causa los granulomas crónicos.

• PROTEÍNAS: Contienen varias proteínas responsables de la reacción a la tuberculina. (PPD) determina exposicion a micobacterium

Page 9: baciloscopia

Estructura pared celular mico bacterias

Page 10: baciloscopia

Factorcordón

Ácidos micólicos

Arabinogalactano

sulfátidos

N-acetil-glucosamín-N-acetilmurámico

trehalosa 6-6`dimicolato

Mycobacterium tuberculosis BACILO ACIDO ALCOHOL RESISTENTE: BAAR

Page 11: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis BACILO ACIDO ALCOHOL RESISTENTE: BAAR

Page 12: baciloscopia

Patogenia

• Intracelular• Partículas Ingresan vía respiratoria, llegan alveolos y son digeridas por

macrófagos• Impide fusión del fago soma con lisosomas • Fago soma se une a vesículas intracelulares y permite la nutrición y

replicación• Macrófagos secretan IL-12 y FNT alfa en respuesta a infección• Aumentan la inflamación al reclutar linfocitos T y NK hacia zona de

macrófagos infectados y los TH-1 ( colaboradores)

Page 13: baciloscopia

Patogenia

• Secretan INF gamma y macrófagos infectados se activan y aumenta fusión entre fago soma y lisosoma y hay destrucción intracelular

• El TNF alfa estimula producción de oxido nítrico y potencia destrucción intracelular

• si están disminuidos o tiene falla en receptores para estas citocinas , mayor probabilidad de hacer la enfermedad

Page 14: baciloscopia

Principales mecanismos destrucción micobacterias

Page 15: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis

• RESISTENCIA• Desecación• Ácidos y álcalis• Antibacterianos como penicilina

• SUCEPTIBILIDAD• Luz solar difusa y directa• Luz ultravioleta• Cloro al 10%• Fenol y sus derivados

Page 16: baciloscopia

COMPLEJO M. tuberculosis

• Retiene el colorante después de la decoloración con ácido y alcohol.

• Ácido alcohol resistentes.

Page 17: baciloscopia

EPIDEMIOLOGÍA. Ser humano es único reservorio natural • OMS: 1.500 millones de personas de infectados (1/3 de

Población mundial) 9 -10 millones de nuevos casos cada año

• Mueren mas de 2 -3 millones de personas cada año • Riesgo elevado en personas sin techo, alcoholicos, drogadictos, etc

• Enfermedad más importante asociada a SIDA

• La mayoría de los casos se encuentran en países pobres y poco desarrollados.

Page 18: baciloscopia

EPIDEMIOLOGÍARESERVORIO: Hombre enfermo/Vacas (M. bovis)/Animales

domésticos

• MECANISMO DE TRANSMISIÓN:

• Vía aérea, mediante la inhalación de Núcleos guticulares que contienen los bacilos tuberculosos, suspendidos en el aire, que un enfermo con tuberculosis pulmonar activa expulsó al toser o estornudar.

– Ingestión leche de vacas tuberculosas (M. bovis)– Inoculación accidental (lecheros, personal laboratorio)

• Inoculación accidental (en laboratorios).• Se suelen requerir contactos repetidos y estrechos

Page 19: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis• TUBERCULOSIS

• Es una enfermedad crónica caracterizada por fiebre ligera,

pérdida progresiva de peso, sudoración nocturna, y tos crónica a menudo productiva con expectoración hemoptoica (con sangre).

Page 20: baciloscopia

HISTORIA NATURAL

Macrófago alveolar

Inhalación de M. tuberculosis

VirulenciaCapacidad microbicida

FagocitosisMuerte del baciloNo resp inmune especNo infecciónTuberculina negativa

Multiplicación M. Tb 103-104

Diseminación a ganglios linfáticosRinón, hueso, cerebroRespuesta inmune celularTuberculina positiva (2-12 sem)Formación de granulomas

Destrucción local

Focos latentes

TuberculosisPrimaria progresiva5%

TB postprimariaReactivación 5%

Focos latentesToda la vida

Page 21: baciloscopia

Transmisión TBC vía aérea

Page 22: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis

• EVOLUCIÓN NATURAL

• PRIMOINFECCIÓN• Puerta de entrada: Vía aérea superior• Alvéolos pulmonares• Macrófagos: Evita el fagolisosoma• Inflamación local

• Diseminación: Linfática Ganglios regionales pulmonares• Hemática Todos los tejidos • • Granuloma - Infección latente: 90 - 95%•

Page 23: baciloscopia

Patogénesis de la tuberculosis

Page 24: baciloscopia

Patogénesis de la TBC

•Ac micólicos

•Sulfolípidos

•Proteínas pared

•Lipoarabinomanano

•Fijación a la superficie de los macrófagos alveolares

• Inhibición presentación de Ag a LT

•Modulación producción de citoquinas por LT

• Interferencia en las interacciones fagosoma-lisosoma en macrófago

•Resistencia a los mec. dependientes del O2

????????

Page 25: baciloscopia

3. Infección secundaria

2. Tuberculina +/Activación macrófagos

(TUBERCULOSIS LATENTE)

1. Infección primaria

Neumonía Linfáticos regionales

Contención/Formación de granuloma

Sangre

Otras localizaciones

Endógena: reactivación Exógena: reinfección

Necrosis y cavitación

Page 26: baciloscopia

TBC: Cuadros clínicos

• Tuberculosis pulmonar:– Primaria:

- Asintomática- Neumonía campos medios o inferiores

– Post-primaria: Neumonía cavitada

• Tuberculosis extrapulmonar:- Pleuritis- Adenitis- TBC osteoarticular- Otras

- TBC miliar- TBC genitourinaria- Meningitis

Page 27: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis

• FORMAS CLÍNICAS:

• Tuberculosis pulmonar primaria • Tuberculosis pulmonar posprimaria• Tuberculosis extrapulmonar:

• Tuberculosis miliar

Page 28: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis

• REACTIVACIÓN:

• 5-10% desarrollan la enfermedad por

• Factores de inmunodepresión.

• Granuloma Necrosis caseosa Propagación

Zona central

BAAR

Linfocitos

Monocitos

Macrófagos

Fibroblastos

Cell. epiteliodes

Page 29: baciloscopia

Diagnóstico

Antecedentes Cuadro Clínico Radiología

Sospecha de Tuberculosis

Page 30: baciloscopia

LABORATORIO DE MICROBIOLOGIA

• Diagnóstico presuncional

• Aislamiento e identificación (Diagnóstico definitivo)

• Evaluar la respuesta al tratamiento

• Pruebas de sensibilidad farmacológica

Page 31: baciloscopia

Diagnóstico microbiológico indirecto

• Prueba de la tuberculina o Mantoux

• Test de liberación de interferón-γ (IGRA)

48-72h

MID

EN

IN

MU

NID

AD

CELU

LA

R

Page 32: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis

• DIAGNÓSTICO DE LA INFECCIÓN

• TUBERCULINA

• PPD: Purified protein derivated

• 5 UT (unidades de tuberculina)

• Vía intradérmica, cara anterior del antebrazo

• Pápula: 48-72 horas, > 10 mm es positivo

Page 33: baciloscopia

DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO

• 1.-) EXAMEN DIRECTO: ZIEHL-NEELSEN: BAAR• 2.-) CULTIVO: Löwestein-Jensen Muestras contaminadas: Esputo• Método de Petrof: Descontaminación con NaOH al 4% Homogenización Centrifugación• Muestras estériles: Líquidos corporales y biopsias de tejido de órganos internos• 3.-) PRUEBAS BIOQUÍMICAS: Identificación • Producción de Niacina• Nitrato reductasa• Catalasa a 68° C

Page 34: baciloscopia

Diagnóstico microbiológico directo

• Tinciones: Especiales que ponen de manifiesto la ácido-alcohol-resistencia (5x103-104 bacterias/ml)

• Cultivo: en medios especiales (10-100 bacterias). Larga incubación.

• Detección de ácidos nucléicos.

• Detección antígenos.

Page 35: baciloscopia

Profilaxis TBC

• Reservorio:– Diagnóstico precoz de personas enfermas/

aislamiento y tratamiento

– Diagnóstico y sacrificio de ganado infectado

• Población susceptible:– Tratamiento de la tuberculosis latente con

isoniacida

– Vacunación con BCG

Page 36: baciloscopia

COLORACIÓN DE ZIEHL-NEELSEN

BAAR

Page 37: baciloscopia

Tinción de Ziehl-Neelsen

Page 38: baciloscopia

TINCIÓN DE MICOBACTERIAS

• Auramina-Rhodamina

• Fluorocromo

• En micorscopio fluorescen (40x ó 20x)

• Bacilos amarillos o color oro

• Poco más sensible que Ziehl Neelsen

Page 39: baciloscopia

T. Fluorescente Auramina-Rodamina

Page 40: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosis

Page 41: baciloscopia

El personal de laboratorio deberá conocer y garantizar la ejecución correcta de:

La obtención de una buena muestra del paciente.

Procesamiento correcto de la baciloscopía (Ziehl-

Neelsen).

La conservación, manejo y envío de muestras para

cultivo.

Transporte rápido y eficiente de las muestras.

Llenado correcto de formatos

Page 42: baciloscopia

Detección

Médico y enfermera de las Unidades de Salud

participantes: búsqueda intencionada de pacientes

entre la población con tos y flema.

Las lesiones causadas por la tuberculosis pulmonar

pueden drenar intermitentemente, es posible que una

muestra sea negativa un día determinado y positiva al

día siguiente.

Page 43: baciloscopia

Procedimiento para la obtención de la muestra

1. Instruya al paciente para que se enjuague la boca con

agua previamente.

2. Indíquele que inspire dos veces profundamente,

conteniendo el aliento durante unos segundos

después de cada aspiración y que exhale lentamente.

3. Pídale que inspire por tercera vez y expulse el aire

vigorosamente. Pídale que inspire una vez más y

luego tosa.

Page 44: baciloscopia

Evaluación de la calidad y el volumen de la muestra

• Para que la calidad de la muestra sea satisfactoria es necesario que contenga material mucoide o mucopurulento.

En condiciones ideales el volumen debe ser de 3 a 5 ml.

Puede aceptarse una cantidad pequeña si la calidad es satisfactoria.

Page 45: baciloscopia

Procesamiento correcto de la baciloscopía (Ziehl-Neelsen)

Las baciloscopías se procesarán siguiendo las indicaciones del

Manual de Técnicas de Laboratorio para el Examen Baciloscópico.

No desechar la muestra, guardarla hasta obtener el resultado.

Cuando la Bk sea (+), además de enviar el resultado al médico

solicitante, avisar al evaluador.

Solicitará al paciente una nueva muestra de expectoración (muestra E)

para ser enviada al laboratorio local o al LESP

Page 46: baciloscopia

ENFERMEDAD TUBERCULOSAMUESTRAS BIOLÓGICAS

• Pulmonar– Expectoración, lavado y cepillado bronquial, aspirado gástrico.

Biopsia pulmonar.

• Extrapulmonar– Líquidos: pleural, cefalorraquídeo, peritoneal, sinovial, etc.

Orina, heces, sangre, médula ósea.

• Cualquier tejido (biopsia o autopsia).

Baciloscopia y cultivo

Page 47: baciloscopia

BACILOSCOPIA EN EXPECTORACIÓN

• Primera evidencia bacteriológica de la enfermedad.

• Se inicia el proceso de confirmación del diagnóstico.

• Ayuda al monitoreo de la respuesta al tratamiento.

Page 48: baciloscopia

BACILOSCOPIA

• Expectoración– Espontánea– Inducida (solución salina 10%)

Page 49: baciloscopia

BACILOSCOPIA EN EXPECTORACIÓN

• Tres muestras

• Días diferentes (consecutivos)

• 5-10 ml

• 1 ml / 6,000 BAAR (50% positiva)

• 1 ml/10,000 BAAR (100% positiva, 3 BAAR)

Page 50: baciloscopia

BACILOSCOPIA EN EXPECTORACIÓN

• CONSIDERACIONES– Proporciona rápidamente elementos para un

diagnóstico presuncional– Baciloscopia positiva, cuadro clínico y radiológico =

Diagnóstico Presuncional.– Baciloscopia negativa no excluye enfermedad.

Page 51: baciloscopia

BACILOSCOPIA EN EXPECTORACIÓN

• LIMITACIONES– Poco sensible (comparada con el cultivo) ya que

requiere de 6,000-10,000 bacilos/ml.– En las formas extrapulmonares y tuberculosis infantil

la sensibilidad es aún menor.– No discrimina bacilos viables de los no viables

Page 52: baciloscopia

BACILOSCOPIA

• Fibrobroncoscopia– Lavado y cepillado bronquial– Baciloscopia positiva en el 34% de los casos de

baciloscopia negativa en expectoración.– Cultivo positivo para M. tb en el 95%

Page 53: baciloscopia

CULTIVO

• Aislamiento

• Identificación

• Confirmación del diagnóstico

• Pruebas de susceptibilidad farmacológica

• Curación

Page 54: baciloscopia

Mycobacterium tuberculosisCULTIVO

• Crecimiento lento,> 7 días• Exigentes: Löwenstein-Jensen, Middlebrook en agar y caldo.• Aerobios estrictos• CO2 al 5%• Temperatura óptima: 37° C• Colonias rugosas, en coliflor, color crema, secas.

Page 55: baciloscopia

MEDIOS DE CULTIVO SÓLIDOS

• Lowenstein Jensen– Huevo, papa y glicerol.– Agar opaco

• 7 H10 y 7 H11– Agar transparente– Glicerol, albúmina

Page 56: baciloscopia

MEDIOS DE CULTIVO 7H 10 y 7H 11

• Ventajas– Las colonias se ven

mejor sobre agar transparente.

– Las pruebas de susceptibilidad son más estables.

• Desventajas– La exposición al calor

o a la luz causa la producción de formaldehído.

– Se requiere una atmósfera de CO2

5-10%

Page 57: baciloscopia

MEDIO DE CULTIVO LÍQUIDO

• 7 H9– Líquido claro libre de huevo.

– Sirve para producir colonias aisladas en medios sólidos para pruebas de identificación y susceptibilidad farmacológica.

Page 58: baciloscopia

CULTIVO EN SISTEMA BACTEC

• Medio de cultivo líquido (7H 12)

• Radiométrico (ácido palmítico + 14C

• Producción de CO2 radioactivo.

• Índice de crecimiento

• Frotis para confirmación del crecimiento y pruebas de sensibilidad farmacológica.

• Crecimiento en 1 a 2 semanas.

Page 59: baciloscopia

CULTIVO ESP

• Medio de cultivo líquido

• Mide la producción de CO2 y consumo de oxígeno.

• Crecimiento en 1-2 semanas

• Pruebas de susceptibilidad farmacológica

• No requiere 14C

• Más barato que BACTEC

Page 60: baciloscopia

PREVENCIÓN Y CONTROL

• Diagnóstico precoz• Tratamiento de los casos• Inmunización: BCG (Bacilo de Calmette-Guérin),

Bacilos de M. bovis vivos avirulentos.

Tuberculosis meníngea y miliar.• Pasteurización de la leche, no consumir leche cruda• Educación sanitaria

Page 61: baciloscopia

Vacuna

• Contraindicaciones de la vacuna BCG

• Prematuridad

• Bajo peso

• Inmunosupresión

• Enfermedades graves de piel

• Tratamiento con esteroides

Page 62: baciloscopia

MICOBACTERIAS NO TUBERCULOSAS

Produce micobacteriosisTienen el antecedente de traumatismo o procedimiento cosmético o estético

• CLASIFICACIÓN DE RUNYON• Grupo I: Fotocromógena. • Crecimiento lento(> 7 dias)• Solo producen pigmento en presencia de la luz. • Mycobacterium kansasii. Enfermedad. Pulmonar indistinguible de la tuberculosis

• Grupo II: Escotocromógena. • Crecimiento lento(> 7 dias)• Desarrollan pigmento en ausencia de la Luz. • Mycobacterium scrofulaceum. Linfadenitis.

• Grupo III: No cromógenas. • Crecimiento lento(> 7 dias)• No desarrollan pigmentos. • Mycobacterium avium-intracellulare. Enfermedad pulmonar Crónica

Page 63: baciloscopia

CLASIFICACION DE RUNYON

• GrupoIV: Fotocromógena. Crecimiento Rápido (< 7 dias)

• Mycobacterium marinum. Enfermedad cutánea: abscesos

• Grupo V: Escotocromógena. Crecimiento Rápido(< 7 dias)

• Mycobacterium acapulcelnse, M. phlei, M. smegmatis

• Grupo VI: No cromógena. Crecimiento Rápido (< 7 dias)

• Mycobacterium fortuitum, Enfermedades cutáneas. M. fallax

Page 64: baciloscopia

MYCOBACTERIAS NO TUBERCULOSAS

.

Page 65: baciloscopia

LEPRA

.

Page 66: baciloscopia

TRATAMIENTO

TUBERCULOSIS

Page 67: baciloscopia

Generalidades

• Diagnosticable, prevenible y curable.

• Múltiples fármacos (tiempo y frecuencia suficiente).

• Múltiples esquemas de tratamiento.

Page 68: baciloscopia

Generalidades

• Esquema más seguro y efectivo en el tiempo más corto.

• Fase inicial es crucial para prevenir fámaco-resistencia.

• Tasa de curación del 95% en tuberculosis Fármacosensible.

Page 69: baciloscopia

Objetivos del Tratamiento

• Erradicar los microorganismos de los ambientes en el huésped.

• Prevenir fármaco-resistencia

Page 70: baciloscopia

Ambientes Básicos del microorganismo

• Extracelular: paredes de la cavidad y necrosis líquida (mayor parte). Isoniacida

• Extracelular: Caseum (bacilos semidormidos) Rifampicina

• Intracelular: (bacilos de crecimiento lento, semidormidos) pH 5.5 Pirazinamida

• Organismos latentes (dormidos)

Page 71: baciloscopia

Determinantes de un tratamiento exitoso

• Adherencia

• Evitar monoterapia

• Evitar fármaco-resistencia

Page 72: baciloscopia

Tratamiento de la TBC: Asociación de fármacos

• Duración del tto. prolongada

• Actividad diferente en las distintas poblaciones bacilares

• Desarrollo resistencias a un solo escalón/Prevenir resistencias

• Antibiograma

Page 73: baciloscopia

Fármacos Esenciales

• Isoniacida

• Rifampicina

• Pirazinamida

• Etambutol

• Estremptomicina

Page 74: baciloscopia

Isoniacida

• 5-15 mg/día (300 mg/día)• Bactericida

– Inhibe la síntesis del ácido micólico• Se absorbe bien por TGI y tiene buena penetración en tejidos• Efectos adversos

– Hepatitis (0.3%-2.3% de acuerdo a la edad) – Neuropatía periférica

• Aumento de la excreción de piridoxina • En el 20% de alcohólicos, desnutridos, diabéticos • Poco común a 5 mg/Kg) • Toxicidad del SNC (raro)

• Interacciones farmacológicas– Aumenta los niveles séricos de carbamacepina y difenilhidatoína

Page 75: baciloscopia

Rifampicina

• 10 mg/Kg/día (600 mg/día)• Inhibición de la RNA polimerasa dependiente de DNA (suprime la

formación de la cadena), bactericida intra y extracelular• TGI, 75% se une a proteínas séricas, buena penetración en tejidos,

pobre en meninges no inflamadas• Intolerancia GI, tiñe orina, lágrimas y sudor de color naranja,

erupciones cutáneas, hepatitis, trombocitopenia, anemia hemolítica, IRA (poco usual a 10 mg/Kg)

• Disminuye la actividad de warfarina, anticonceptivos orales, sulfonilureas, corticoesteroides, digoxina, DFH, barbitúricos, beta bloqueadors, teofilina

Page 76: baciloscopia

Etambutol

• 15-25 mg/Kg día (2.5 g/día)• Bacteriostático• Inhibe la síntesis de arabinogalactan• TGI, se acumula en insuficiencia renal, no penetra bien

en SNC• Neuritis óptica

– Visión borrosa, escotoma central, ceguera a rojo y verde

– 1% con dosis a 15 mg/Kg, mayor si se aumenta la dosis

Page 77: baciloscopia

Pirazinamida

• 15-30 mg/Kg (2 g)• Bactericida en ambiente ácido• TGI, buena penetración en tejidos y SNC• Efectos adversos

– Toxicidad hepática (aumenta los niveles de transaminas séricas y bilirrubinas

– Hiperuricemia • El ácido piranozoico compite con la excreción tubular renal de ácido

úrico – Erupción cutánea – Intolerancia gastrointestinal

Page 78: baciloscopia

Estreptomicina

• 15 mg/Kg/día (1 gr/día)– Dosis acumulada no mayor de 180 g

• Bactericida, inhibición de la síntesis de proteínas (unión a la subunidad ribosomal 30S)

• IM, IV, buena penetración tisular y en SNC

• Ototóxico, nefrotóxico sobre todo en mayores de 60 años

Page 79: baciloscopia

Medicamentos Antituberculosos

Dosis diaria

mg/kg

Dosis intermitentes mg/Kg

Fase intensiva

Fase de Sostén

Fármacos Presentación Niños Adultos Niños Adultos

Dosis total máxima

Combinación fija

Combinación fija

Isoniacida Comprimido

100 mg

10-15 5-10 10-15 800-900 75mg 200 mg

Rifampicina Cápsulas

300 mg

Jarabe 100 mg/5 ml

600 mg 150 mg 150 mg

Pirazinamida Comprimido

500 mg

3 g 400 mg

Page 80: baciloscopia

Combinación de Agentes

• Solo isoniacida (Elevada incidencia de fracaso y recaída).• Isonicida y rifampicina, esencial en todo el tiempo de

tratamiento.• Pirazinamida (en la fase inicial mejora la eficacia de los

regímenes < 9 meses.• Etambutol vs pirazinamida disminuye la efectividad del

tratamiento.

Page 81: baciloscopia

Ventajas de combinaciones fijas

• Favorece la adherencia en adultos

• Evita riesgo de monoterapia encubierta

• Previene el desarrollo de resistencia secundaria.

• Isoniacida, rifampicina, pirazinamida (Rifater, Finateramida)

• Isoniacida, rifampicina (Rifinah)

Page 82: baciloscopia

Monitoreo de Efectos Adversos

• Perfil hepático, ácido úrico, agudeza visual y percepción de colores, química sanguínea, examen general de orina, biometría hemática.

• En niños agudeza visual

• Clínico

• Individualizar

Page 83: baciloscopia

Tratamiento de la Tuberculosis Extrapulmonar

• Igual al de la forma pulmonar excepto:

• Miliar, ósea y meníngea (12 meses)

• Considerar cirugía y esteroides

Page 84: baciloscopia

Tratamiento en Patología Asociada

• Insuficiencia Renal: evitar aminoglucósidos y capreomicina.

• Insuficiencia Hepática: Monitoreo de la función hepática, no hay evidencia de mayor riesgo de hepatotoxicidad.

• Embarazo: I+R+E, (9 meses) + piridoxina.– Estreptomicina contraindicada– No contraindicar la lactancia

Page 85: baciloscopia

Fármacos Secundarios

• Cicloserina• Etionamida• Rifabutina• Rifapentina• Capreomicina• Acido p-aminosalicílico

• Tiacetazona• Clofazimina• Fluoroquinolonas • Macrólidos• Beta lactámicos• Sulfonamidas• Aminoglucósidos

Page 86: baciloscopia

Género Actinomyces

• Flora normal boca y tracto digestivo

• Anaerobio-microaerófilo

• Necesitan medios ricos para crecer

• Incubación 4-10 días

• Bacilos Gram positivos ramificados en ángulos agudos

Page 87: baciloscopia

Género Actinomyces

Colonias en forma de muela “gránulos de azufre”

Filamentos de actinomyces rodeados de arginina y depósitos de fosfato cálcico

Page 88: baciloscopia

Especies de Actinomyces

• A. israelii• A. georgiae• A. gerencseriae• A. meyeri• A. viscosus (animales y hombre)• A. naeslundii• A. odontolyticus….. Hasta 20 o más especies• A. bovis (animales)

Page 89: baciloscopia

Patogenia de la actinomicosis

Flora normal

Alteración de la barrera mucosa

Supuración crónica

• Fistulización• Diseminación por contigüidad• Diseminación hematógena

Criptas amigdalinas, encías, cariesTracto gastrointestinal, tracto genital femenino

Infección de la boca, extracción dental, mala higiene, trauma

Abundantes PMN y escasos gránulos de azufre

Page 90: baciloscopia

Actinomicosis: Formas clínicas1. Cervico-facial

– Hombre adulto– Periodo de incubación

largo– Origen dental unilateral

• Caries profunda• Nódulo de crecimiento

lento poco doloroso en ángulo submandibular

• Múltiples fístulas• Osteomielitis del maxilar

Gránulo de azufre

Page 91: baciloscopia

Actinomicosis: Formas clínicas

2. Torácica: por aspiración. Forma abscesos pulmonares

3. Abdominal: por cirugía o trauma intestinal (Perforaciones, apendicitis)

4. Genital: portadoras de DIU

5. Diseminada: immunodeprimidos

6. Por mordedura humana

Actinomyces viscosus/naeslundi- Caries - Inf. endodónticas- Periimplantitis

Patología oral

Page 92: baciloscopia

Actinomicosis: diagnóstico

• Difícil• Examen directo

– Exudado purulento: localizar el grano de azufre-> tinción de gram

– Biopsia: tinción de HE o Gram• Cultivo

– Medios ricos, incubación en anaerobiosis > 7 días (muestra ideal granos de azufre)

Page 93: baciloscopia

Actinomicosis: tratamiento

• Drenaje quirúrgico del exudado purulento

• Tratamiento antibiótico durante varios meses (penicilina G a dosis altas/TTC)

• Curación: 90% de las formas cervicofaciales

Page 94: baciloscopia

TOMA, MANEJO Y

CONSERVACIÓN DE LA

MUESTRA

TOMA, MANEJO Y

CONSERVACIÓN DE LA

MUESTRA

CENTRO NACIONAL DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA Y CONTROL DE ENFERMEDADESINSTITUTO DE DIAGNÓSTICO Y REFERENCIA EPIDEMIOLÓGICOS

Page 95: baciloscopia

La realización de esta Encuesta es de primordial

importancia para el país, porque permitirá conocer la

magnitud del problema y tomar las estrategias necesarias

para su prevención y control.

Page 96: baciloscopia

La participación del laboratorio en la Encuesta

es vital y crucial para llevarlo a cabo.

Su buena actuación permitirá la obtención de resultados

oportunos y confiables durante la investigación.

Page 97: baciloscopia

La obtención de una buena muestra del paciente.

Procesamiento correcto de la baciloscopía (Ziehl-

Neelsen).

La conservación, manejo y envío de muestras para

cultivo.

Transporte rápido y eficiente de las muestras.

Llenado correcto de formatos

El personal de laboratorio deberá conocer y garantizar la ejecución correcta de:

Page 98: baciloscopia

Médico y enfermera de las Unidades de Salud

participantes: búsqueda intencionada de

pacientes entre la población con tos y flema.

Las lesiones causadas por la tuberculosis

pulmonar pueden drenar intermitentemente, es

posible que una muestra sea negativa un día

determinado y positiva al día siguiente.

Detección

Page 99: baciloscopia

Número de muestras

Para realizar el diagnóstico deben recogerse tres muestras del siguiente modo:

1a.1a.

80%80%

2a.2a.

10%10%

3a.3a.

5%5%

Page 100: baciloscopia

Para asegurar que los resultados sean

confiables es preciso asegurar que la toma de

muestra y el traslado al laboratorio sea el

adecuado.

Obtención de una buena muestra de expectoración

Page 101: baciloscopia

Dar al paciente instrucciones claras para obtener una buena muestra.

Bioseguridad: Cuando el paciente tose Manejo de la muestra

Los pacientes deben producir la muestra al aire libre y no en locales con poca ventilación como los baños.

Toma de muestra

Page 102: baciloscopia

Una buena muestra de expectoración es la que

proviene del árbol bronquial obtenida después de un

esfuerzo de tos y no la que se obtiene de faringe o por

aspiración de secreciones nasales o saliva.

La muestra

Page 103: baciloscopia

1. Instruya al paciente para que se enjuague la boca con

agua previamente.

2. Indíquele que inspire dos veces profundamente,

conteniendo el aliento durante unos segundos después

de cada aspiración y que exhale lentamente.

3. Pídale que inspire por tercera vez y expulse el aire

vigorosamente. Pídale que inspire una vez más y luego

tosa.

Procedimiento para la obtención de la muestra

Page 104: baciloscopia

4. Indique al paciente que sostenga el envase de la

muestra cerca de los labios y que escupa en el

después de que haya generado una tos productiva.

5. Si la muestra es insuficiente, aliente al paciente a

que tosa de nuevo hasta obtener una muestra

satisfactoria.

6. Demuestre al paciente como cerrar bien el envase .

Procedimiento para la obtención de la muestra

Page 105: baciloscopia

7. Rotúlelo claramente.

8. Lávese las manos con agua y jabón.

9. Entregue al paciente un nuevo envase y asegúrese que entienda

que debe recoger una nueva muestra del mismo modo, tan pronto

como se despierte por la mañana.

10. Indique al paciente que traiga la muestra al centro de salud o al

laboratorio.

Procedimiento para la obtención de la muestra

Page 106: baciloscopia

Para que la calidad de la muestra sea satisfactoria es necesario que contenga material mucoide o mucopurulento.

En condiciones ideales el volumen debe ser de 3 a 5 ml.

Puede aceptarse una cantidad pequeña si la calidad es satisfactoria.

Evaluación de la calidad y el volumen de la muestra

Page 107: baciloscopia

Purulento

Mucoide

Saliva o expectoración inducida

Hemoptisis

Calidad de la muestra

Page 108: baciloscopia

Las baciloscopías se procesarán siguiendo las indicaciones del

Manual de Técnicas de Laboratorio para el Examen Baciloscópico.

No desechar la muestra, guardarla hasta obtener el resultado.

Cuando la Bk sea (+), además de enviar el resultado al médico

solicitante, avisar al evaluador.

Procesamiento correcto de la baciloscopía (Ziehl-Neelsen)

Page 109: baciloscopia

Cumple las condiciones para participar en la Encuesta,

el entrevistador se encargará de obtener sus datos para

llenar el cuestionario.

Solicitará al paciente una nueva muestra de

expectoración (muestra E) para ser enviada al

laboratorio local o al LESP.

Si el paciente es Bk (+)

Page 110: baciloscopia

El laboratorio no la procesará, pero se encargará del

manejo, conservación y envío de la muestra para

hacerla llegar al LESP en las condiciones

adecuadas para su procesamiento para

baciloscopía, cultivo y prueba de sensibilidad.

Page 111: baciloscopia

Cada muestra, para ser enviada, debe ser rotulada con los siguientes datos:

No. de serie* : BCIII04-219ANo. de serie* : BCIII04-219A

Juan López RamírezJuan López Ramírez36 años Sexo M36 años Sexo MExpectoraciónExpectoraciónMuestra: AMuestra: AJurisdicción III Jurisdicción III Estado BCEstado BCCSU 4CSU 425-09-200625-09-2006

Número de serie: abreviatura del estado, con números romanos el número de la

jurisdicción, con números arábigos el número de laboratorio- el número de muestra

registrado en el laboratorio local y la letra “A” o “E” de la muestra. BCIII04-219A.

La conservación, manejo y envío de muestras para cultivo

Page 112: baciloscopia

Todos los formatos de cada paciente serán identificados con el mismo número de serie, que permita evitar duplicidades y mantener el control de las muestras y documentos en todo momento.Se deberán de llenar los siguientes formatos:

1. Forma “Solicitud e informe de resultado del examen bacteriológico” para el envío de muestra de expectoración2. Formato de custodia de muestra

Las muestras deben ser enviadas al laboratorio lo antes posible, después de su obtención.

Page 113: baciloscopia

MUCHAS GRACIASY BUENA SUERTE

Page 114: baciloscopia

ENVÍO DE MUESTRAS DEL LABORATORIO

PARA BK

Page 115: baciloscopia

MANEJO Y CONSERVACIÓN

Si no puede evitarse que el traslado se retrase, las

muestras deberán mantenerse en refrigeración.

La posibilidad de encontrar M. tuberculosis depende

de la rapidez y seguridad con que llegue la muestra al

laboratorio.

Page 116: baciloscopia

Exposición al calor excesivo

Exposición a la luz solar directa

Derrame del contenido del envase

Para el transporte de la muestra debe evitarse:

M en C. Armando Mtz.

Page 117: baciloscopia

Insumos necesarios para el embalaje de la muestraInsumos necesarios para el embalaje de la muestra

• FrascoFrasco para muestrapara muestra

• EtiquetaEtiqueta

• Bolsas de plásticoBolsas de plástico

• LigasLigas

• Caja de unicelCaja de unicel

• RefrigeranteRefrigerante

• Tira de temperaturaTira de temperatura

• Caja cartónCaja cartón

• Etiquetas y formatosEtiquetas y formatos

ENVIO DE MUESTRAS DEL LAB. LOCAL AL LESP

Page 118: baciloscopia

Cada muestra deberá estar bien cerrada y para su envío deberá introducirse en

una bolsa de plástico, cerrándola con una liga.

Posteriormente se colocará, en forma vertical, dentro de una caja de unicel.

Se Introducirá un refrigerante congelado al lado de la muestra, sin tener

contacto con ella.

Se pegará y activará una tira de temperatura en la pared interna de la caja de

unicel.

Transporte de la muestra

Page 119: baciloscopia

TIRA DE TIEMPO Y TEMPERATURA

Page 120: baciloscopia

Rellenar la caja con material de soporte (papel, periódico, etc.) para evitar el

movimiento y derrames. Tapar la hielera, asegurándola con cinta adhesiva.

Introducir la caja de unicel dentro de la caja de cartón.

Los formatos de solicitud de baciloscopía de cada muestra y el de custodia de

muestra deberán ir en un sobre pegado por fuera de la hielera, pero dentro de la

caja de cartón.

Transporte de la muestra

Page 121: baciloscopia

Díptico e instructivo de embalajeDíptico e instructivo de embalaje

Page 122: baciloscopia

Calidad de la muestra!!!!!!!!!!!

Page 123: baciloscopia

Envío de la muestra

Cada envase debe ir acompañado de la correspondiente

solicitud de examen e información necesaria.

Cada hielera debe llevar además, el formato de custodia

de muestra.

AMBOS FORMATOS NUNCA DEBEN IR DENTRO DE LA

BOLSA DONDE VA LA MUESTRA. SE COLOCAN EN

UN SOBRE Y SE PEGAN POR FUERA DE LA

HIELERA.

Page 124: baciloscopia

La caja de cartón deberá ser rotulada con dos etiquetas:

1. Con los datos del Laboratorio remitente. 2. Con los datos del Laboratorio Estatal de Salud Pública.

Page 125: baciloscopia

RemitenteRemitente

QFB. GUADALUPE MACIAS REYESQFB. GUADALUPE MACIAS REYESCENTRO DE SALUD DE CIUDAD JUÁREZ, CHIHUAHUACENTRO DE SALUD DE CIUDAD JUÁREZ, CHIHUAHUAC. ABASOLO NO. 65 COL. HUERTASC. ABASOLO NO. 65 COL. HUERTASCD. JUÁREZ, CHIH.CD. JUÁREZ, CHIH.01 614 411-37-66/33-15/63-0501 614 411-37-66/33-15/63-05FAX 411-37-66 Y 411-33-15 CP. 31000FAX 411-37-66 Y 411-33-15 CP. 31000

DestinatarioDestinatario

QFB. IMELDA MACHADO MUÑOZQFB. IMELDA MACHADO MUÑOZLABORATORIO ESTATAL DE SALUD PÚBLICA DE LABORATORIO ESTATAL DE SALUD PÚBLICA DE SCHIHUAHUASCHIHUAHUAC. JIMENEZ NO. 4203 COL.C. JIMENEZ NO. 4203 COL.CUARTELES CHIHUAHUA, CHIH.CUARTELES CHIHUAHUA, CHIH.01 614 411-37-66/33-15/63-0501 614 411-37-66/33-15/63-05FAX 411-37-66 Y 411-33-15 CP. 31440FAX 411-37-66 Y 411-33-15 CP. 31440

Etiquetado de la cajaEtiquetado de la caja

Page 126: baciloscopia

Debe usarse el medio de envío que garantice mayor rapidez y confianza de entrega

De ser posible confirmar con el LESP la llegada de la muestra.

El LESP se encargará de enviar la muestra al INDRE.

Transporte de la muestra Transporte de la muestra

Page 127: baciloscopia

Abra la caja de entrega cuidadosamente y

verifique si contiene envases de muestras

rotos o con rajaduras.

Estos deberán esterilizarse en una autoclave

sin procesarlos y habrá que solicitar una

nueva muestra.

Recepción de las muestras en el LESP

Page 128: baciloscopia

Recepción de las muestras en el LESP

Verificar:

Que las muestras hayan sido rotuladas adecuadamente,

con números de identificación individuales, y que estos

correspondan a los números que figuran en la lista adjunta.

Que haya llegado también la información adicional

necesaria (los 2 formatos).

La calidad y volumen de la muestra.

Page 129: baciloscopia

RECUERDE:

El éxito de esta ENCUESTA depende de la

adecuada conservación de las muestras así

como su transporte rápido y eficiente.

Page 130: baciloscopia

Mycobacterium leprae

CARACTERÍSTICAS

• BAAR, 1-8 µm x 0,3-0,5 µm de ancho

• Bacilo descrito por Hansen en 1873

• Produce la lepra

• No se cultiva en medios de cultivo artificiales, solo en modelos animales (armadillos, cojín plantar de ratón).

Page 131: baciloscopia

Mycobacterium leprae

LEPRA: Es una enfermedad infectocontagiosa crónica que afecta Fundamentalmente a la piel y a los nervios periféricos.

Puede invadir cualquier órgano excepto SNC. Abundante en mucosa de la orofaringe, piel especialmente zonas frías como orejas, dorso de los dedos, codos, etc

y los troncos nerviosos periféricos

Page 132: baciloscopia

EPIDEMIOLOGÍA

Mycobacterium leprae

Distribución mundialOMS existen aproximadamente

10 y 12 millones de enfermos en el mundo.Asia 62%, África 34%

América 3% y el resto del mundo 1%

RESERVORIO: Hombre

MECANISMO DE TRANSMISIÓN: DIRECTO: Vía aérea, por tiempo prolongado Contacto íntimo piel a piel (familiares)

PERÍODO DE INCUBACIÓN: 3-7 AÑOS

Page 133: baciloscopia

Una vez traspasada la barrera mucosa o cutánea los bacilos se propagan fundamentalmente por vía nerviosa. Las células de Schwann de los nervios periféricos fagocitan

los bacilos y se movilizan, permitiendo el desplazamiento bacilar. Puede haber diseminación por vía linfática,

hasta los ganglios linfáticos y también diseminación hematógena (LL)

PATOGENIA

Page 134: baciloscopia

Mycobacterium leprae

Page 135: baciloscopia

Mycobacterium leprae

FORMAS CLÍNICAS

1) Lesiones tipo mácula o pápulaeritematosas, asimétricas

2) Disminución de la sensibilidad cutánea

3) No hay bacilos en las lesiones

4) Reacción de Mitsuda (+)

LEPRA TUBERCULOIDE

Page 136: baciloscopia

FORMAS CLÍNICAS

Mycobacterium leprae

1)Lesiones cutáneas nodulares simétricas.

2) Afectación de los troncos nerviosos, perdida sensorial bilateral y simétrica.Lesiones hipoestesicas y anestesicas.

3) SI hay bacilos en las lesiones

4) Reacción de Mitsuda (-)

LEPRA LEPROMATOSA

Page 137: baciloscopia

Mycobacterium leprae

Toma de muestra: linfaExamen directo: Coloracion de Ziehl- NeelsenM. leprae NO SE CULTIVA

DIAGNÓSTICO

1) Criterios clínico cutaneos2) Criterios clínico neurológicos3) Bacteriología

4) Prueba de la lepromina5) Biopsia de piel: Anatomía patológica

GLOBIS

Page 138: baciloscopia

Mycobacterium leprae

PREVENCIÓN Y CONTROL

• Detección precoz• Tratamiento sistemático de los casos para minimizar las fuentes de contagio

• Vigilancia de los contactos• Educación sanitaria del enfermo, grupo familiar y población en general.

Page 139: baciloscopia

MICOBACTERIAS NO TUBERCULOSAS

Page 140: baciloscopia

MICOBACTERIAS NO TUBERCULOSAS

Produce micobacteriosisTienen el antecedente de traumatismo o procedimiento cosmético o estético

Grupo I: Fotocromógena. Crecimiento lento(> 7 dias)Solo producen pigmento en presencia de la luz. Mycobacterium kansasii. Enfermedad. Pulmonar indistinguible de la tuberculosis

CLASIFICACIÓN DE RUNYON

Grupo II: Escotocromógena. Crecimiento lento(> 7 dias)Desarrollan pigmento en ausencia de la Luz. Mycobacterium scrofulaceum. Linfadenitis.

Grupo III: No cromógenas. Crecimiento lento(> 7 dias) No desarrollan pigmentos. Mycobacterium avium-intracellulare. Enfermedad pulmonar Crónica

Page 141: baciloscopia

GrupoIV: Fotocromógena. Crecimiento Rápido (< 7 dias)Mycobacterium marinum. Enfermedad cutánea: abscesos

Grupo V: Escotocromógena. Crecimiento Rápido(< 7 dias)Mycobacterium acapulcelnse, M. phlei, M. smegmatis

Grupo VI: No cromógena. Crecimiento Rápido (< 7 dias)Mycobacterium fortuitum, Enfermedades cutáneas. M. fallax

CLASIFICACIÓN DE RUNYON

Page 142: baciloscopia

¡GRACIAS POR SU ATENCIÓN!