SANEAMIENTO Y PRODUCCIÓN DE

PLANTINES DE ANANÁ MEDIANTE SELECCIÓN PARTICIPATIVATéc. Eliseo Cornelius, Ing. Rolando Scribano,

Lic. Eric Stolar, Ing. Marcelo Mestres

Colección DIVULGACIÓN

PRET Alto Uruguay - MSNES 1242103

Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria

Autores:

Edición y Diseño:

Julio 2016

Téc. Eliseo Cornelius - OIT Santa Rita

Ing. Rolando Scribano - IPAF Nea

Lic. Eric Stolar - EEA Cerro Azul

Ing. Marcelo Mestres - EEA Cerro Azul

Lic. Francisco Pascual - AER Puerto RicoÁrea de Comunicaciones - Centro Regional Misiones

Para obtener más información escribir a:mestres.marcelo@inta.gob.ar; stolar.eric@inta.gob.ar

o comunicarse a los teléfonos:0376-4494740 / 41

:Esta cartilla también está disponible en formato pdf enwww.inta.gob.ar/cerroazul

PRET Alto Uruguay - MSNES 1242103

En el departamento de 25 de Mayo, sobre todo en la franja cercana al río Uruguay, el cultivo del ananá está difundido entre los productores. Debido a que se observaron plantaciones atacadas por fusariosis, enfermedad causada por el hongo Fusarium spp., que limita enormemente la productividad, se decidió establecer en forma participativa, una metodología de producción de plantines sanos.

Para ello, en talleres con productores, se seleccionaron plantas madres que a simple vista no presentaran signos de fusariosis y se fueron desarrollando los pasos que se comentan en esta cartilla para obtener plantines sanos.

Introducción

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Generalidades del CultivoCondiciones climáticas y de suelo

El cultivo de ananás es típico de zonas con clima tropical.

Requiere temperaturas entre 23 y 30 °C, temperaturas más bajas

o más altas reducen notablemente el crecimiento de las hojas y la

formación, maduración y calidad del fruto (Arteaga Salgado,

1991). Es poco exigente en cuanto a lluvias, ya que incorpora

agua de la humedad atmosférica, lo que le permite resistir sin

dificultad épocas secas. Prefiere suelos que presenten acidez

moderada (pH 4,5 a 5,5), textura media y no estén sujetos a

encharcamientos. Con pH por encima de 5,5 la nutrición de las

plantas tiende a verse afectada, especialmente el uso de

micronutrientes. Por lo que bajo estas condiciones requiere

especial cuidado en el manejo nutricional (Pereira et al., 2006).

Partes vegetales utilizadas para la obtención de plantines

Tras la cosecha, las plantas de ananás pueden propagarse mediante plantines o “mudas” obtenidos a partir de diferentes partes de la planta como coronas, hijuelos, chupones y segmentos del cormo o “tallo”.

Corona

Chupón

Hijuelo

Cormo o Tallo

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Coronas: Poseen poco vigor, además de contar con el ciclo más largo desde siembra hasta cosecha y ser más susceptibles a la aparición de hongos. A esto se suma que el principal destino de la producción es el mercado de consumo en fresco, en el cual la fruta es vendida junto con su corona.Hijuelos: Los plantines obtenidos son menos uniformes que los de coronas. Presentan un ciclo intermedio, con respecto al anterior y los chupones. Chupones: Son más vigorosos que las coronas e hijuelos. Presentan el ciclo productivo más corto y poseen poca uniformidad con respecto a tamaño y peso. Segmentos del cormo o “tallo”: Este método permite producir más cantidad de plantines por planta madre y real izar un mejor examen visual para detectar enfermedades y plagas. Se debe descartar rigurosamente todos los “tallos” que presenten síntomas de enfermedades. Si no se tiene este cuidado, el material enfermo contaminará el sitio comprometiendo la producción.

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Fusariosis

Esta enfermedad es considerada como la mayor amenaza para el cultivo de ananá en el ámbito mundial. Afecta la fruta, rebrotes, coronas y la planta en general, permaneciendo en los residuos vegetales. Durante el desarrollo del cultivo, todas las partes de la planta pueden mostrar exudación de goma de los tejidos infectados (Pereira et al., 2006). Esta “goma” va acompañada de otros síntomas: la planta amarillea, las hojas se acortan, las cuales aparecen en mayor cantidad y se doblan hacia abajo, se observan listas o manchas de color marrón en la parte interna del tallo cortado. Si se presenta al comienzo del cultivo, destruye la planta completamente. La goma que se observa en la planta es un síntoma, no es el hongo, ya que éste no se puede ver a simple vista, (Figuras 2 y 3).

Enfermedades y plagas más comunes

Figura 2: Exudado de mucílagos, “gomosis”, consecuencia de la pre-sencia de Fusarium sp. en el plantín.

Figura 3: Síntomas de “gomosis”, en fruto.

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Cochinillas

La cochinil la del ananá, D y s m i c o c c u s b r e v i p e s (Cockerell, 1893), es una plaga que causa graves daños d irectos a este cult ivo, además de facilitar el ingreso de Fusarium sp. y ser capaz de trasmitir el virus del "marchitamiento del ananá" (Figura 4). También ataca otras plantas como banano, caña de azúcar, maíz, frutales nativos, etc. Por lo general, vive en la base de las hojas y en las raíces formando colonias. Los síntomas de ataque aparecen inicialmente en las raíces, produciendo un marchitamiento gradual. A continuación, los bordes de las hojas se doblan hacia abajo y finalmente llegan a ocasionar el secado y muerte de la planta. Puede vivir asociada con hormigas, quienes las protegen de sus enemigos naturales y ayudan en su propagación, llevándolas de una planta a otra (Vargas Carrillo, 2011).

Figura 4: Colonia de cochinillas en plantín de ananá

Proceso de producción deplantines a partir de cormosSelección de plantas madres

Debemos partir de plantas madres que reúnan estas características: que hayan producido fruta de buen tamaño (Figura 5 ) y con una sola corona (Figura 6), rápido crecimiento, hojas anchas con pocas o ninguna espina (Figuras 7 y 8 ), de color verde intenso y sin síntomas de amarillamiento ni gomosidad,

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(Figuras 9 y 10). Todas estas observaciones deben realizarse antes de cosechar marcando las plantas seleccionadas. Este procedimiento permite tras varios ciclos de realizarlo, aumentar la productividad y mejorar la calidad de la fruta obtenida.

Figura 6: Izquierda, fruto sin corona. Derecha, fruto con coronas múltiples

Figura 5: Plantas madres seleccionadas en la chacra de un productor

Figura 8: Hojas sin espinasFigura 7: Hojas con espinas

Una vez cosechada la fruta, se arranca la planta, se eliminan las hojas, se cortan y tiran la parte superior y las raíces, utilizándose el tallo restante.

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Figura 9: Deshoje y primer control visual de los tallos

Figura 10: Síntomas expuestos de gomosis en el cormo tras el deshoje

Corte longitudinal de tallo y selección

Con la ayuda de una guillotina casera se procede a cortar en trozos longitudinales de unos 10 cm de largo o en discos, (Figuras 11 y 12) descartando rigurosamente toda planta que presente síntomas de Fusarium (Figuras 13 y 14). Desinfectar con agua con lavandina (al 10 %) el machete – guillotina luego de cortar cada tallo nuevo.

Figura 12: Cormos o “troncos” sanos.

Figura 11: Corte de tallo y nuevo control.

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Figura 13: Síntomas de fusariosis en cormo. Corte longitudinal.

Figura 14: Síntomas de fusariosis en cormo. Corte transversal.

Desinfección de los tallos cortados

Antes de la siembra y siempre utilizando los elementos de protección personal (guantes y barbijos), los tallos cortados deben desinfectarse sumergiéndolos en un caldo de fungicidas e insecticida durante tres a cinco minutos como mínimo (Figuras 15 y 16). Pueden utilizarse los siguientes productos diluidos todos juntos en 50 litros de agua: Carbendazim, 100 ml; Fosetil Aluminio, 50 g e Imidacloprid, 7 g.

Luego hay que dejar los trozos oreándose una semana a la sombra. Esto tiene doble finalidad: cicatrizar las heridas y generar stress en las yemas para que una vez plantados rápidamente generen raíces y hojas.

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Figura 15: Embolsado de los “troncos” cortados previo a la desinfección.

Figura 16: Inmersión de los

productos para su desinfección.

Selección del lugar para el vivero

Para evitar la contaminación del mismo, elegir un lugar donde no se haya producido ananá y tampoco se lo cultive pendiente arriba. Evitar lugares muy sombreados y con mal drenaje. Es Imprescindible tener cerca una fuente de agua para riego.

Preparación del almácigo

El suelo debe estar bien removido, libre de malezas y suelto. El cantero debe tener no más de 1,20 m de ancho para facilitar las prácticas culturales y una altura de 10 cm.

Un mes antes de la siembra colocar 2 a 3 kg de cal agrícola 2por m de cantero y mezclar bien (Figura 17). Esto reduce la

posibilidad de que hongos como Fusarium sp. se desarrollen. Previo a la siembra, conviene desinfectarlo nuevamente con

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algún fungicida, como folpet o captan a razón de 40 gramos en 20

2litros de agua cada 5 m de almácigo.

Es importante prever la protección de las heladas en invierno (tela antihelada) y del sol en verano con una media sombra (35%) que evite la deshidratación de las plantas y las quemaduras por insolación.

Figura 17: Aplicación de cal en el cantero.

Siembra

Los trozos oreados pueden sembrarse en forma vertical u horizontal. Si la realizamos verticalmente, se debe introducir al suelo ¾ parte del mismo con una leve inclinación y siempre con las yemas hacia arriba, distanciado a unos 15 cm uno de otro (Figura 18). Si lo hacemos horizontalmente, enterrarlos a 2 o 3 cm de profundidad. Es conveniente armar un túnel con media sombra para proteger los trozos de la insolación, (Figura 19).

Figura 18: “Troncos desinfectados plantados verticalmente en el cantero.

Figura 19: Protección con mediasombra durante el verano.

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Riego

Garantizar la adecuada humedad en el suelo realizando riegos periódicos, cuidando de no encharcarlo. De ser posible, instalar un sistema de riego por microaspersión.

Manejo sanitario

Una vez brotados los plantines se debe realizar aplicaciones de fungicidas en forma preventiva, repitiéndolos cada 12 a 15 días, dependiendo de las condiciones climáticas. En el caso de observarse plantas con síntomas de Fusarium sp., eliminarlas completamente y en el lugar aplicar un poco de cal.

De observarse síntomas de ataque de cochinillas, aplicar un insecticida.

Cuando las plantas han alcanzado 30 cm de altura, ya están en condiciones de ser llevadas al lugar definitivo de plantación. Para ello, se retiran las plantas separándola del resto del tallo, (Figura 20).

Revisar en detalle cada una para verificar presencia o no de Fusarium: arrancar las hojas inferiores y descartar las que presenten

Acondicionamiento previo al trasplante de campo

Figura 20: Separación del plantín de los restos del tallo.

Figura 21: Planta sana.

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el mínimo síntoma de infección (Figuras 21 y 22). Esa revisión sirve también para detectar si hay ataques de cochinillas, (Figura 23).

Todos los restos desechados (tallos, hojas, plantas enfermas) deben llevarse a un lugar apartado y quemarlos, (Figura 24).

Figura 22: Plantas con síntomas de fusariosis.

Figura 24: Eliminación de restos y plantas enfermas.

Figura 23: Ataque de cochinillas.

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Oreado y desinfección de las plantas

Es importante dejar las plantas una semana, con las raíces para arriba, oreándose al sol, (Figura 25). La finalidad es la misma que con los tallos: cicatrización y stress. Antes de llevar las plantas a su lugar definitivo es conveniente desinfectarlas de manera similar a lo hecho con los tallos (Figura 26).

Figura 25: Plantas oreándose con las raíces hacia arriba.

Figura 26: Caldo con fungicida e insecticida para desinfección.

Preparación de la parcela definitiva

El terreno debe ser desinfectado; preferentemente un mes antes si se usa cal agrícola o cal apagada, o una semana antes si se usa cal

2viva. Colocar 2 kg por m . Esparcir la cal y remover bien. Otra alternativa es regar con captan o folpet como lo hecho en el cantero.

Si las plantas van a usarse como “madres” para multiplicar hijuelos, es conveniente darle más espacio que el normalmente utilizado para la obtención de fruta, plantando a 0,50 m por 0,50 m.

Arteaga Salgado, J., 1991. Aspectos Técnicos sobre Cuarenta y Cinco Cultivos Agrícolas de Costa Rica - Dirección General de Investigación y Extensión Agrícola. Ministerio de Agricultura y Ganadería. San José, Costa Rica. (https://es.scribd.com/doc/54816549/Aspectos-Tecnicos-sobre cuarenta) 12/08/2015

Pereira, F. A.; Carneiro, M. R. y Andrade, L. M. de, 2006. A cultura do abacaxi / Embrapa Mandioca e Fruticultura Tropical –2. ed. rev. amp. – Brasília, DF. (Coleção Plantar; 49) 91 p.

Vargas Carrillo, E., 2011. Guía para la identificación y manejo integrado de plagas en piña (http://www.cep.unep.org/repcar/proyectos-demostrativos/costa-rica-1/publicaciones-proagroin/GuiaManejoplagas.)12/8/2015.

Foto de la portada, y figuras: 5, 9, 11, 15, 16, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25 y 26 Ing. Marcelo Mestres.

Figuras: 1, 2, 3, 4, 6, 7, 8, 10, 12,13, 14 y 17, Lic. Eric Stolar.

Bibliografía

Créditos de las fotografías

Es un proceso que requiere dedicación y trabajo pero como dijo un productor de Colonia

Aurora: “es mejor cuidar 10.000 plantas sanas que 50 o 60.000 enfermas que producen mal”… “con 10 mil plantas a $ 15 por fruta se logra $ 150.000… Qué otro cultivo te da esa plata?”

En la provincia de Misiones, producir plantines de calidad sigue siendo un importante cuello de botella para la expansión y crecimiento de la zona productora de ananás. Principalmente, debido a la fuerte incidencia de la fusariosis, enfermedad que ataca todas las partes de la planta. Dado que el ananás se multiplica asexualmente, éstas plantas enfermas constituyen la principal vía de difusión de la enfermedad. Por lo tanto, contar con material de propagación de buena calidad, no contaminado por Fusarium, es esencial para el éxito económico de este cultivo.

El objetivo del presente trabajo ha sido, mediante investigación participativa llevada a cabo con productores, generar información clara y sencilla sobre la metodología más adecuada para seleccionar y propagar plantines sanos de ananás en sus propias chacras.

La elección del método de propagación aquí descripto, a partir de segmentos de la planta madre, contempla no solamente la elección de plantas madres sin síntomas de ataque de Fusarium, sino que también produzcan frutas de buen tamaño, con una sola corona, con hojas anchas con pocas o sin espinas y de rápido crecimiento.