development of chloroplast- based indel markers for the
TRANSCRIPT
้่ฅไฝ่ช(Korean J. Medicinal Crop Sci.) 29(1) : 11 โ 16 (2021) ISSN(Print) 1225-9306ISSN(Online) 2288-0186
http://www.medicinalcrop.org
http://dx.doi.org/10.7783/KJMCS.2021.29.1.11
11
์ค๋ฏธ์๊ณผ ์๋ฌผ ์ข ํ๋ณ์ ์ํ ์ฝ๋ก์ฒด ๊ธฐ๋ฐ InDel ๋ง์ปค์ ๊ฐ๋ฐ
์ ํฌ์ 1ยท์ด์ฌ๋ณต2
ยท๊ธธ์ง์3ยทํ์ฐฝํ4
ยท๊ฐ์ํธ5ยท๊ถ์์ง6
ยท๊นํจ์ง7ยท๊น์ฐฝ๊ตญ8
ยท์ด์ ํธ9ยท์ด์ด10โ
Development of Chloroplast-based InDel Markers for the Discrimination of Schisandraceae Plant Species
Hee Jeong Jeong1, Jea Bok Lee2, Jin Su Gil3, Chang Pyo Hong4, Sang Ho Kang5, Soo Jin Kwon6, Hyo Jin Kim7, Chang Kug Kim8, Jung Ho Lee9 and Yi Lee10โ
์ ์ธ
์ค๋ฏธ์๋ ์ค๋ฏธ์๊ณผ (Schisandraceae)์ ์ํ๋ ๋ฉ๊ตด์ฑ ์๋ฌผ
์ด๋ค. ์ค๋ฏธ์๊ณผ๋ Schisandra ์, Illicium ์, Kadsura ์
๋ฑ 3 ์์ ํฌํจํ๋ฉฐ (APG III, APG IV), ์ด๋ค 3 ์์ ๋
ํ๋ฏผ๊ตญ์ ๋ถํฌํ๊ณ ์๋ค (Lee, 1979; APG, 2009, 2016).
Schisandra ์์๋ ๋์ฝํ์ฝ ๋ฉ๊ตด์ฑ ์๋ฌผ์ธ ์ค๋ฏธ์
[Schisandra chinensis (Turcz.) Baill.]์ ํ์ค๋ฏธ์ [(Schisandra
repanda (Siebold & Zucc.) Radlk.)] ๋ฑ 2 ์ข ์ ์๋ฌผ์ด ์๋ค
(Lee, 1979).
ํ์ค๋ฏธ์์ ํ๋ช ์ S. repanda์ด๋ S. nigra๋ผ๋ ์ด๋ช ์ ๊ฐ
๊ณ ์์ผ๋ฉฐ ์์ ๋ด๊ทธ๋ฃจ์ธ ์๋ฌผ์ด๋ค (Kim et al., 1999).
Kadsura ์์๋ ์๋กํ์ฝ ๋ฉ๊ตด์ฑ ์๋ฌผ์ธ ๋จ์ค๋ฏธ์ [Kadsura
japonica (L.) Dunal] 1 ์ข ์ ์๋ฌผ์ด ์๋ค (Lee, 1979).
ABSTRACT
Received: 2020 October 81st Revised: 2020 November 42nd Revised: 2020 December 303rd Revised: 2021 January 6Accepted: 2021 January 6
This is an open access articledistributed under the terms of theCreative Commons AttributionNon-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits unrestrictednon-commercial use, distribution,and reproduction in any medium,provided the original work is properlycited.
Background: The three Schisandracae species, Schisandra chinensis, Schisandra repanda, andKadsura japonica, which are used as raw materials for the production of herbal medicines, arereadily confused. However, of these three species, only S. chinensis is formally registered as amedicinal herb in the Korean Pharmacopeia. In order to facilitate the clear identification of S. chin-ensis, S. repanda, and K. japonica, we developed insertion or deletion (InDel) markers by compar-ing the chloroplast sequences of the three species.Methods and Results: Genomic DNA was extracted from the leaves of S. chinensis, S. repanda,and K. japonica, and next generation sequencing (NGS) analysis was performed using the IlluminaHiSeq-2500 platform. Chloroplast sequences for the three species were obtained and compared toidentify polymorphic loci. Primers were designed for those InDel loci showing polymorphism inall three species, and four InDel markers were accordingly developed and successfully used forspecies discrimination. Conclusions: In this study, we developed four markers that can be used to discriminate S. chinen-sis, S. repanda, and K. japonica at the molecular level.
Key Words: Kadsura japonica, Schisandra chinensis, Schisandra repanda, Chloroplast, Insertionor Deletion Marker
โ Corresponding author: (Phone) +82-43-261-3373 (E-mail) [email protected])์ถฉ๋ถ๋ํ๊ต ํน์ฉ์๋ฌผํ๊ณผ ๋ํ์์ / Graduate student, Department of Industrial Plant Science & Technology, Chungbuk National University, Cheongju 28644, Korea.2)์ถฉ๋ถ๋ํ๊ต ํน์ฉ์๋ฌผํ๊ณผ ๋ํ์์ / Graduate student, Department of Industrial Plant Science & Technology, Chungbuk National University, Cheongju 28644, Korea.3)์ถฉ๋ถ๋ํ๊ต ํน์ฉ์๋ฌผํ๊ณผ ๋ํ์์ / Graduate student, Department of Industrial Plant Science & Technology, Chungbuk National University, Cheongju 28644, Korea.4)(์ฃผ)ํ ๋ผ์ ๋ฐ์ด์ค ์ด์ฌ / Director, Theragen Bio Co., Ltd., Suwon 16229, Korea.5)๋์ด์งํฅ์ฒญ ๊ตญ๋ฆฝ๋์ ๊ณผํ์ ์ฐ๊ตฌ์ฌ / Researcher, National Institute of Agricultural Science, RDA, Jeonju 55365, Korea.6)๋์ด์งํฅ์ฒญ ๊ตญ๋ฆฝ๋์ ๊ณผํ์ ์ฐ๊ตฌ๊ด / Researcher, National Institute of Agricultural Science, RDA, Jeonju 55365, Korea.7)์ ๋ผ๋ถ๋๋์ ๊ธฐ์ ์ ์ฝ์ฉ์์์ฐ๊ตฌ์ ์ฐ๊ตฌ์ฌ / Researcher, Jeollabukdo ARES Medicinal Resource Research Institute, Jinan 55440, Korea.8)๋์ด์งํฅ์ฒญ ๊ตญ๋ฆฝ๋์ ๊ณผํ์ ์ฐ๊ตฌ์ฌ / Researcher, National Institute of Agricultural Science, RDA, Jeonju 55365, Korea.9)๋ น์์๋ฌผ์ฐ๊ตฌ์ ์์ฅ / Research institute director, Green Plant Institute, Yongin 16954, Korea.10)์ถฉ๋ถ๋ํ๊ต ํน์ฉ์๋ฌผํ๊ณผ ๊ต์ / Professor, Department of Industrial Plant Science and Technology, Chungbuk National University, Cheongju 28644, Korea.
์ ํฌ์ ยท์ด์ฌ๋ณต ยท๊ธธ์ง์ ยทํ์ฐฝํ ยท๊ฐ์ํธ ยท๊ถ์์ง ยท๊นํจ์ง ยท๊น์ฐฝ๊ตญ ยท์ด์ ํธ ยท์ด์ด
12
Illicium ์์๋ ๋ถ์๋๋ฌด (I. anisatum) 1 ์ข ์ด ์ฐ๋ฆฌ๋๋ผ์ ์
์ํ๊ณ ์๋ค.
๋ํ๋ฏผ๊ตญ ์ฝ์ ์์ ์ค๋ฏธ์๋ ์ ์ต์ ์ค๋ฏธ์ (S. chinensis)
์ด๋งค๋ก ๊ท์ ํ๊ณ ์์ผ๋ฉฐ ์ฌ์๋๋ฆฐ (C24H32O7 : MW. 432.51),
๊ณ ๋ฏธ์ A (C23H28O7 : MW. 416.46) ๋ฐ ๊ณ ๋ฏธ์ N (C23H28O6 :
MW. 400.47)์ ํฉ์ด 0.7% ์ด์ ํจ์ ๋์ด์ผ ํ๋ค๊ณ ๋์ด ์
์ผ๋ ํ์ค๋ฏธ์ ๋ฐ ๋จ์ค๋ฏธ์๋ ํ์ฝ์ฌ ์๋ฃ๋ก์จ์ ์ฌ์ฉ์ด ๊ท์
๋์ง ์๊ณ ์๋ค (KFDA, 2012).
๋ถ์๋๋ฌด์ ์ด๋งค๋ ๋ค๋ฅธ 3 ์ข ์ ์๋ฌผ๊ณผ ํ์ ํ๊ฒ ๋ค๋ฅธ ํ
ํ๋ฅผ ๊ฐ์ง๊ณ ์์ผ๋ ํ์ฝ์ฌ๋ก ์ด์ฉ๋๋ ์ค๋ฏธ์๋ ํ์ค๋ฏธ์
๋ฐ ๋จ์ค๋ฏธ์์ ๊ฑด์กฐ๋ ์ด๋งค์ ์ก์์ ์ํ ํ๋ณ์ด ์ด๋ ค์ ์
๋ฃ์ ํผยท์ค์ฉ ๋ฌธ์ ๊ฐ ์ผ๊ธฐ๋ ์ ์์ผ๋ฉฐ (Kim et al.,
1999), ์ด๋ฅผ ๋ฐฉ์งํ๊ธฐ ์ํด ๋ถ์์๋ฌผํ์ ๊ธฐ๋ฒ์ ์ํ ํ๋ณ
์ด ํ์ํ๋ค.
์ง๊ธ๊น์ง ์ฐ๋ฆฌ๋๋ผ์์ ์ค๋ฏธ์์ ๋ํ ์ฐ๊ตฌ๋ ์ฃผ๋ก ์ค๋ฏธ์
์ด๋งค์์ ์๋ฆฌํ์ฑ ๋ฐ ํจ๋ฅ ์ค์ฌ์ผ๋ก ์งํ๋์์ผ๋ฉฐ (Han et
al., 2019), ๋ถ์ ์๋ฌผํ์ ์ผ๋ก ์ค๋ฏธ์๊ณผ์ ์ข ํ๋ณ์ ๊ดํ ์ฐ
๊ตฌ๋ก๋ RAPD (random amplified polymorphic DNA) ์ ๋
SCAR (sequence characterized amplified region) marker ๋ฐ
multiplex-PCR ๊ธฐ๋ฒ ๊ฐ๋ฐ, nrDNA-ITS ๋ถ์๋ง์ปค๋ฅผ ์ด์ฉํ ์ค
๋ฏธ์ ์ข ๊ฐ๋ณ ๋ฑ์ด ๋ณด๊ณ ๋์ด ์๋ค (Gao et al., 2003; Moon
et al., 2010; Kim et al., 2012; Lee et al., 2013). SCAR
marker ๊ธฐ๋ฐ์ multiplex-PCR์ ์ด์ฉํ ๊ฒฝ์ฐ ๋ค์์ primer๋ฅผ
์ฌ์ฉํด์ผํ๋ฉฐ ์ฆํญ์ด ์ ๋๋ก ์ด๋ค์ง์ง ์์ ์ ์๋ ๋จ์ ์ด
์๋ค (Henegariu et al., 1997; Lee et al., 2013). ๋ํ SNP
(single nucleotide polymorphism)๋ InDel (insertion or
deletion) ๋ง์ปค์ ๋นํด ๋ถ์ ์ ๊ณ ๊ฐ์ ์ฅ๋น๊ฐ ํ์ํ๊ธฐ ๋๋ฌธ
์ ์ต์ํ์ ์คํ์ฅ๋น๋ก ํฌ๊ธฐ์ ๋ฐ๋ผ ์ฝ๊ฒ ๊ตฌ๋ณํ ์ ์๋
InDel ๋ง์ปค๊ฐ ์ ํธ๋๊ณ ์๋ค (Vรคli et al., 2008; Kim et al.,
2012; Li et al., 2014; Moghaddam et al., 2014; Lv et
al., 2016).
NGS (next generation sequencing) ๊ธฐ์ ์ ๋ฐ์ ์ผ๋ก
sequencing๊ณผ assembly์ ๋น์ฉ๊ณผ ์์ ์ ๋ณต์ก์ฑ์ด ์ค์์ผ๋ฉฐ
์๋ฌผ์ ์ ์ ๋ฐ ์ก์ข ์ฐ๊ตฌ์ ์ฌ์ฉํ ์ ์๋ ๋ง์ปค๋ฅผ ๊ฐ๋ฐํ
์ ์๋ ์ผ๊ธฐ์์ด์ ์ ๊ณตํ๋ฉฐ (Moore et al., 2006; Varshney
et al., 2009a; Varshney et al., 2009b), ์ด๋ฌํ NGS ๊ธฐ์
๋ฐํ์ผ๋ก ์ฝ๋ก์ฒด ๊ฒ๋์ ๋์ ์์ ํ์ข ์ ์๋ณํ๋๋ฐ ์ ์ฉํ
๋๊ตฌ๋ก ์ฌ์ฉ๋๋ค (Daniell et al., 2016).
์๋ฌผ์์ ์ฃผ๋ก ๋ชจ๊ณ ์ ์ ์ ํ๋ ์ฝ๋ก์ฒด DNA๋ ํต DNA
์ผ๊ธฐ ์์ด์ ๋นํด ์งํ๊ฐ ๋๋ฆฐ ๊ฒ์ผ๋ก ์๋ ค์ ธ ์์ด ์๋ฌผ์ ๊ณ
ํตํ์ ์ฐ๊ตฌ์ ์ฌ์ฉ๋๊ธฐ์ ์ ํฉํ๋ฉฐ (Wolfe et al., 1987;
Clegg et al., 1994; Ngan et al., 1999), ์ด๋ฌํ ์ฝ๋ก์ฒด์์
์ ์ ์ ๋ณ์ด๋ฅผ ๋ฐ๊ฒฌํ๊ณ ์ฝ๋ก์ฒด ์ ์ ์ฒด๋ฅผ ๊ธฐ๋ฐ์ผ๋ก ํ ์ข ์
ํ๋ณ์ด ๋ณด๊ณ ๋๊ณ ์๋ค (Liu et al., 2012; Kim et al., 2015;
Park et al., 2017; Song et al., 2017).
๊ธฐ์กด ์ข ์๋ณ์ ์ํ ์ฝ๋ก์ฒด ๊ธฐ๋ฐ InDel ๋ง์ปค ์ฐ๊ตฌ ์ฌ๋ก๋
Angelica polymorpha์ ์ฝ๋ก์ฒด ๊ฒ๋์ ์ผ๊ธฐ์์ด์ ๋ถ์ํ์ฌ
InDel ๋ง์ปค๋ฅผ ๊ฐ๋ฐํ์ฌ ์ข ์๋ณ์ ์ฌ์ฉ๋์๋ค (Park et al.,
2019). ์ด์ธ์๋ ๋ฒผ (Steele et al., 2008), ํ ๋งํ (Liu et
al., 2017), ์ฐจ๋๋ฌด (Liu et al., 2019) ์์ InDel ๋ง์ปค๋ฅผ ํ
์ข ์ ์๋ณ์ ์ด์ฉํ ๋ณด๊ณ ๊ฐ ์์๋ค.
๋ณธ ์ฐ๊ตฌ์์๋ ๊ตญ๋ด์ ์์ํ๊ณ ์๋ ์ค๋ฏธ์, ํ์ค๋ฏธ์ ๋ฐ
๋จ์ค๋ฏธ์์์ ํ๋ํ ์ฝ๋ก์ฒด ์ผ๊ธฐ์์ด ์ ๋ณด๋ฅผ ๋ฐํ์ผ๋ก ์ข ๊ฐ
์ ๋คํ์ฑ์ ํ์ธํ ์ ์๋ InDel ๋ง์ปค๋ฅผ ๊ฐ๋ฐํ์๋ค. ์ด๋
๊ฒ ๊ฐ๋ฐ๋ ๋ง์ปค๋ ํผ์ฉ๋๊ธฐ ์ฌ์ด 3 ์ข ์ ์ค๋ฏธ์๋ฅผ ์ฝ๊ฒ ๊ตฌ๋ถ
ํ๊ณ ํ์ฝ์ฌ ์ ํต๊ณผ์ ์ ์๋ฃ ํผยท์ค์ฉ์ ๋ฐฉ์งํ๋ฉฐ ์ค๋ฏธ์, ํ
์ค๋ฏธ์ ๋ฐ ๋จ์ค๋ฏธ์์ ๊ณํตํ์ ๊ด๊ณ๋ฅผ ๋ถ์ํ๊ฑฐ๋ ์๋ก์ด ํ
์ข ์ ๊ฐ๋ฐํ๋ ๋ฐ์๋ ์ด์ฉ๋ ์ ์์ ๊ฒ์ผ๋ก ๊ธฐ๋๋๋ค.
์ฌ๋ฃ ๋ฐ ๋ฐฉ๋ฒ
1. ์คํ์ฌ๋ฃ
๋ณธ ์คํ์์ ์ฌ์ฉ๋ ์ค๋ฏธ์ (Schisandraceae)๋ ์ ๋ผ๋ถ๋๋
์ ๊ธฐ์ ์ ์ฝ์ฉ์์์ฐ๊ตฌ์์์ ์ก์ฑ์ค์ธ ๋ง์์ข , ์ค์์ข , ์กฐ์
์ข , ์ฌ๋์ข ๊ฐ 3 ๊ฐ์ฒด์ฉ ์ด 12 ๊ฐ์ฒด์์ ์์ ์ฑ์ทจํ์์ผ๋ฉฐ
Table 1. List of Schisandraceae materials used in this study.
Species Sample name Major character
Schisandra chinensis (Turcz.) Baill.
Sc-L11)
late ripening varietySc-L2
Sc-L3
Sc-M1medium ripening variety
Sc-M2
Sc-M3
Sc-E1
early ripening varietySc-E2
Sc-E3
Sc-N1
native varietySc-N2
Sc-N3
Schisandra repanda (Siebold & Zucc.)
Radlk.
Sr-F11)
female plantSr-F2
Sr-F3
Sr-M1
male plantSr-M2
Sr-M3
Kadsura japonica (L.) Dunal
Kj-11)
Kj-2
Kj-31)Plants used for the next generation sequencing analysis.
์ค๋ฏธ์๊ณผ ์ข ํ๋ณ๋ง์ปค ๊ฐ๋ฐ
13
ํ์ค๋ฏธ์ ์, ์๊ทธ๋ฃจ์ ๋จ์ค๋ฏธ์๋ 3 ๊ฐ์ฒด์ฉ 9 ๊ฐ์ฒด๋ฅผ ์ ์ฃผํน
๋ณ์์น๋ ๋์ ๊ธฐ์ ์์์ ์ฑ์ทจํ์ฌ -70โ์ ์ด์ ์จ ๋๋๊ณ ์
๋ณด๊ดํ์ฌ DNA ์ถ์ถ์ ์ฌ์ฉํ์๋ค (Table 1).
2. DNA ์ถ์ถ
DNA ์ถ์ถ์ ์ํด 21 ๊ฐ์ฒด์ ์ ์๋ฃ๋ฅผ ์ก์ฒด์ง์๋ก ๊ธ๋์
ํค๊ณ ๋ง์์ฌ๋ฐ์ ์ด์ฉํ์ฌ ๋ถ์ํ ํ DNeasy Plant Mini
Kit (QIAGEN GmbH, Hilden, Germany)๋ฅผ ์ฌ์ฉํ์ฌ ์ ์กฐ์ฌ
์์ ์ ์ํ๋ ๋ฐฉ๋ฒ์ ๋ฐ๋ผ ์ถ์ถํ์๋ค.
์ถ์ถ๋ DNA๋ 1% agarose gel์์ ์ ๊ธฐ์๋ ํ์ฌ ํ์ธ
ํ ํ Nanodrop (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham,
MA, USA) ๊ธฐ๊ธฐ๋ฅผ ์ด์ฉํ์ฌ ๋๋๋ฅผ ์ธก์ ํ ํ nuclease-free
water๋ฅผ ์ด์ฉํ์ฌ 5 ng/ใ๋ก ํฌ์ํ์๋ค.
3. InDel ๋ง์ปค ํ์
์ค๋ฏธ์์ ์ฝ๋ก์ฒด ์ผ๊ธฐ์์ด ํ๋ณด๋ฅผ ์ํด ์ถ์ถํ ์ค๋ฏธ์,
ํ์ค๋ฏธ์ ๋ฐ ๋จ์ค๋ฏธ์์ DNA๋ฅผ Illumina HiSeq 2500
platform (Illumina Inc., San Diego, CA, USA)์ ์ฌ์ฉํ์ฌ
์ผ๊ธฐ์์ด์ ๋ถ์ํ์๋ค. ์์ฐ๋ ์ผ๊ธฐ์์ด์ CLC Genomics
Workbench 11.0 (QIAGEN GmbH, Hilden, Germany) ํ๋ก
๊ทธ๋จ์ ํตํด ์กฐ๋ฆฝํ ๋ค InDel ๊ตฌ๊ฐ์ ํ์ํ์ฌ ํ๋ผ์ด๋จธ๋ฅผ ์
์ํ์๋ค. ํ๋ผ์ด๋จธ์ ์กฐ๊ฑด์ ๊ธธ์ด๋ 18 bp - 22 bp, ์จ๋๋
50โ - 60โ, G/C๋น์จ์ 50%, product size range๋ 150 bp
- 400 bp๋ก ํ์๋ค.
4. PCR (polymerase chain reaction) ๋ฐ genotyping
PCR์ ์ฌ์ฉ๋ ํผํฉ์ฉ์ก ์กฐ์ฑ์ PCR mixture ์ด ๋ถํผ๋
20ใ๋ก 5 ng/ใ genomic DNA 2ใ, 2 ร Taq mix (Dong-
sheng Biotech Co., Ltd., Guangzhou, China) 10ใ, nuclease-
free water 6 ใ, 5 ยตM forward ๋ฐ reverse primer ๊ฐ๊ฐ 1
ใ๋ก ๊ตฌ์ฑํ์๊ณ T100 Thermal Cycler (Bio-Rad Inc.,
Hercules, CA, USA)๋ฅผ ์ฌ์ฉํ์ฌ ์ฆํญํ์๋ค.
PCR ๋ฐ์์ pre-denaturation 94โ 3 ๋ถ, denaturation 94
โ 30 ์ด, annealing 54โ - 55โ 30 ์ด, extension 72โ 1
๋ถ ์ด 34 ํ ๋ฐ๋ณตํ์์ผ๋ฉฐ final extension 72โ, 10 ๋ถ์
์กฐ๊ฑด์ผ๋ก ์ํํ์๋ค. PCR ์ฆํญ ์ฐ๋ฌผ์ 3๏ผ agarose gel์
์ 120 V๋ก 30 ๋ถ ์ํ ํ์์ผ๋ฉฐ Gel DocTM XR+ Gel
Documentation System (Bio-Rad Inc., Hercules, CA, USA)
์์ ์ฆํญ์ฐ๋ฌผ์ ์์ฑ์ ํ์ธํ์๋ค.
์ค๋ฏธ์, ํ์ค๋ฏธ์ ๋ฐ ๋จ์ค๋ฏธ์ ์์ ์ด 21 ๊ฐ์ฒด์ PCR
์ํ ํ ์์ฑ๋ ์ฆํญ ์ฐ๋ฌผ์ DNA Fragment Analyzer
Automated CE System (Advanced Analytical Technologies
Inc., Ankeny, IA, USA)์ ์ด์ฉํ์ฌ ๊ธธ์ด ๋ถ์์ ์ํํ์๋ค.
๋ถ์๋ data๋ PROSize 3.0 ํ๋ก๊ทธ๋จ (Advanced Analytic
Technologies Inc., Ankeny, IA, USA)์ ์ด์ฉํด ์ฌ์ด์ฆ๋ฅผ ์ธก
์ ํ์๋ค.
๊ฒฐ๊ณผ ๋ฐ ๊ณ ์ฐฐ
1. ์ฝ๋ก์ฒด ๊ธฐ๋ฐ InDel ๋ง์ปค ๊ฐ๋ฐ
CLC Genomics Workbench ver. 11.0 ํ๋ก๊ทธ๋จ (QIAGEN
GmbH, Aarhus, Denmark)์ ์ด์ฉํ์ฌ de novo assembly๋ฅผ
ํตํด ์กฐ๋ฆฝ๋ ์ค๋ฏธ์ (Schisandraceae) ์ผ๊ธฐ์์ด๋ก๋ถํฐ
sequencing depth์ BLAST (Basic Local Alignment Search
Tool) ๋ถ์์ ํตํ์ฌ ์ฝ๋ก์ฒด์ ์ผ๊ธฐ์์ด์ ์ ๋ฐํ๊ณ ์ด๋ค ์ผ
๊ธฐ์์ด์ ๋น๊ตํ์ฌ InDel ๊ตฌ๊ฐ์ ํ์ํ์๋ค. ์ด 4 ๊ฐ์
InDel ๊ตฌ๊ฐ์ด ์ ๋ฐ๋์ด ํด๋น ๊ตฌ๊ฐ์์ primer๋ฅผ ๋์์ธํ์๋ค
(Table 2).
2. ์ค๋ฏธ์๊ณผ ์๋ฌผ์ ์ข ํ๋ณ
์ ์๋ 4 ๊ฐ์ ํ๋ผ์ด๋จธ ์ธํธ๋ฅผ ์ค๋ฏธ์ 12 ๊ฐ์ฒด, ํ์ค๋ฏธ์
6 ๊ฐ์ฒด, ๋จ์ค๋ฏธ์ 3 ๊ฐ์ฒด์ ์ ์ฉํ์ฌ PCR ๋ถ์์ ์ํํ์๊ณ
PCR ์ฐ๋ฌผ์ fragment analyzer๋ฅผ ์ด์ฉํ์ฌ ๋ถ์ํ์ฌ size๋ฅผ
์ธก์ ํ์๋ค.
๊ทธ ๊ฒฐ๊ณผ 4 ๊ฐ์ ๋ง์ปค๋ ๋ชจ๋ ์ค๋ฏธ์, ํ์ค๋ฏธ์, ๋จ์ค๋ฏธ์๋ฅผ
ํ๋ณ์ ํ ์ ์์์ผ๋ฉฐ SCcpInDel-1์ ๊ฒฝ์ฐ ์ค๋ฏธ์ ์์ด์
๊ธฐ์ค์ผ๋ก ํ์ค๋ฏธ์๋ 24 bp, ๋จ์ค๋ฏธ์๋ 7 bp์ ์ผ๊ธฐ์์ด์ด
๊ฒฐ์ค๋์์ผ๋ฉฐ, SCcpInDel-2๋ ์ค๋ฏธ์ ์์ด ๊ธฐ์ค์ผ๋ก ํ์ค๋ฏธ์
๋ 148 bp, ๋จ์ค๋ฏธ์๋ 156 bp์ ์ผ๊ธฐ๊ฐ ๊ฒฐ์ค๋์๊ณ ,
SCcpInDel-3 ์ ๊ฒฝ์ฐ์๋ ์ค๋ฏธ์ ์์ด์ ๊ธฐ์ค์ผ๋ก ํ์ค๋ฏธ์๋
20 bp์ ์ผ๊ธฐ๊ฐ ์ฒจ๊ฐ๋์๊ณ , ๋จ์ค๋ฏธ์๋ 33 bp์ ์ผ๊ธฐ๊ฐ ๊ฒฐ์ค
๋์ด ์์์ผ๋ฉฐ, SCcpInDel-4์ ๊ฒฝ์ฐ์๋ ์ค๋ฏธ์ ์์ด ๊ธฐ์ค์ผ
๋ก ํ์ค๋ฏธ์์์ 27 bp, ๋จ์ค๋ฏธ์์์ 71 bp์ ์ผ๊ธฐ๊ฐ ๊ฒฐ์ค
๋์ด ์์๋ค (Fig. 1, Table 3).
Table 2. Primer information for the InDel markers developed in this study.
NO. Marker namePrimer sequence (5' โ 3') Annealing
temparature (โ)Forward Reverse
1 SCcpInDel-1 CACAAGGATACAAAGGGATAGA CGGCGTGTGACTAAACAAAA 55
2 SCcpInDel-2 ATTCCTTTCCTCCACCGA CCAGAGTCTTTCTTTTCACT 54
3 SCcpInDel-3 CGTTGTGGAACTGATTGATT TCAATTGAAACGGGACTCG 54
4 SCcpInDel-4 CGAAAGACCCGATGAATT TGAAAACACAAAGACAAAGGGC 54
์ ํฌ์ ยท์ด์ฌ๋ณต ยท๊ธธ์ง์ ยทํ์ฐฝํ ยท๊ฐ์ํธ ยท๊ถ์์ง ยท๊นํจ์ง ยท๊น์ฐฝ๊ตญ ยท์ด์ ํธ ยท์ด์ด
14
๋ํ SCcpInDel-1 ๊ณผ SCcpInDel-2 ๋ง์ปค๋ ๊ฐ ์ผ๊ธฐ ์์ด
์ฐจ์ด๊ฐ ํฌ์ง ์์ agarose gel์์ ๋ถ์ํ๋๋ฐ ํ๊ณ๊ฐ ์์ด
fragment analyzer๋ฅผ ์ด์ฉํ์ฌ ๋ถ์ํด์ผ ํ์ง๋ง, SCcpInDel-3
๊ณผ SCcpInDel-4 ๋ง์ปค๋ agarose gel์์ ์ก์์ผ๋ก ์ฐจ์ด๋ฅผ ํ
์ธํ ์ ์์ด SCcpInDel-1๊ณผ SCcpInDel-2์ ๋นํด ๋น ๋ฅธ ์๊ฐ
์ ์ ์ ์ํ์ ํ์ธํ ์ ์์๋ค. ๊ธฐ์กด ์ค๋ฏธ์๊ณผ ์ข ํ๋ณ ์ฐ๊ตฌ
์ฌ๋ก (Gao et al., 2003; Moon et al., 2010; Kim et al.,
2012; Lee et al., 2013)์์ ์ฌ์ฉ๋ ๋ค์ ๋ณต์กํ ๋ฐฉ๋ฒ์ ๋นํด
์ด๋ฒ ์ฐ๊ตฌ๋ฅผ ํตํด ๊ฐ๋ฐ๋ SCcpInDel-3 ๊ณผ SCcpInDel-4 ๋ง์ปค
๋ ๋น ๋ฅธ ์๊ฐ ์์ ์ค๋ฏธ์๊ณผ ์๋ฌผ์ ํ๋ณํ ์ ์์ ๊ฒ์ผ๋ก
๋ณด์ธ๋ค.
๋ณธ ์ฐ๊ตฌ์์ ๊ฐ๋ฐ๋ 4 ๊ฐ์ ๋ง์ปค๋ ๊ตญ๋ด์ ์์ํ๊ณ ์๋
์ค๋ฏธ์๊ณผ ์๋ฌผ์ธ ์ค๋ฏธ์, ํ์ค๋ฏธ์ ๋ฐ ๋จ์ค๋ฏธ์๋ฅผ ์ถฉ๋ถํ ๊ตฌ
๋ถํ ์ ์์์ผ๋ฉฐ PCR ์ฆํญ์ฐ๋ฌผ์ ๊ธธ์ด ์ฐจ์ด๊ฐ ์ปค์ ์ฌ๋ฌ
๊ฐ์ง ์ข ์ด ํผํฉ๋์ด ์๋ ๊ฒฝ์ฐ์๋ ์ด๋ค ์ข ์ด ํผํฉ๋์ด ์๋
์ง๋ฅผ ํ๋ณํ ์ ์์ ์ ๋์ ํ๋ณ ๋ฅ๋ ฅ์ ๋ณด์๋ค. ์ด ๊ฒฐ๊ณผ๋
๊ธฐ์กด ์ค๋ฏธ์๊ณผ ์ข ํ๋ณ ์ฐ๊ตฌ ์ฌ๋ก (Gao et al., 2003; Moon
et al., 2010; Kim et al., 2012; Lee et al., 2013)์์ ํด
๊ฒฐํ ์ ์์๋ ํผํฉ๋ฌผ์ ๋ถ์ ๋ฑ ๋ง์ ๋ถ๋ถ์ ๋ณด์ํ ์ ์
์ ๊ฒ์ผ๋ก ๋ณด์ธ๋ค. ์ด ๋ง์ปค๋ค์ ํผ์ฉ๋๊ธฐ ์ฌ์ด 3 ์ข ์ ์ค๋ฏธ
์๊ณผ ์๋ฌผ์ ์ฝ๊ฒ ๊ตฌ๋ถํ๊ณ ํ์ฝ์ฌ ์ ํต๊ณผ์ ์ ์๋ฃ ํผยท์ค์ฉ
์ ๋ฐฉ์งํ๋ฉฐ ์ค๋ฏธ์๊ณผ ์๋ฌผ์ ๊ณํตํ์ ๊ด๊ณ๋ฅผ ๋ถ์ํ๊ฑฐ๋
์๋ก์ด ํ์ข ์ ๊ฐ๋ฐํ๋ ๋ฐ์๋ ์ด์ฉ๋ ์ ์์ ๊ฒ์ผ๋ก ๊ธฐ๋
๋๋ค.
Fig. 1. PCR analysis of 21 Schisandraceae (S. chinensis, S. repanda, K. japonica) plants using 4 InDel markers. A; SCcpInDel-1, B;SCcpInDel-2, C; SCcpInDel-3, D; SCcpInDel-4. M; 1 kb ladder plus size marker, lane 1; Sc-L1, lane 2; Sc-L2, lane 3; Sc-L3,lane 4; Sc-N1, lane 5; Sc-N2, lane 6; Sc-N3, lane 7; Sc-E1, lane 8; Sc-E2, lane 9; Sc-E3, lane 10; Sc-N1, lane 11; Sc-N2, lane12; Sc-N3, lane 13; Sr-F1, lane 14; Sr-F2, lane 15; Sr-F3, lane 16; Sc-M1, lane 17; Sc-M2, lane 18; Sc-M3, lane 19; Kj-1, lane20; Kj-2, and lane 21; Kj-3.
Table 3. Fragment size of the amplicons amplified using 4 InDelmarker.
SpeciesSamplename
SCcpInDel-1(bp)
SCcpInDel-2(bp)
SCcpInDel-3(bp)
SCcpInDel-4(bp)
Schisandrachinensis
Sc-L1 176 370 207 322
Sc-L2 176 370 207 322
Sc-L3 176 370 207 322
Sc-M1 176 370 207 322
Sc-M2 176 370 207 322
Sc-M3 176 370 207 322
Sc-E1 176 370 207 322
Sc-E2 176 370 207 322
Sc-E3 176 370 207 322
Sc-N1 176 370 207 322
Sc-N2 176 370 207 322
Sc-N3 176 370 207 322
Schisandrarepanda
Sr-F1 152 222 227 295
Sr-F2 152 222 227 295
Sr-F3 152 222 227 295
Sr-M1 152 222 227 295
Sr-M2 152 222 227 295
Sr-M3 152 222 227 295
Kadsurajaponica
Kj-1 169 214 194 251
Kj-2 169 214 194 251
Kj-3 169 214 194 251
์ค๋ฏธ์๊ณผ ์ข ํ๋ณ๋ง์ปค ๊ฐ๋ฐ
15
๊ฐ์ฌ์ ๊ธ
๋ณธ ์ฐ๊ตฌ๋ ๋์ด์งํฅ์ฒญ ์ฐ๊ตฌ์ฌ์ (๊ณผ์ ๋ฒํธ: PJ01349002)์ ์ง
์์ ์ํด ์ด๋ฃจ์ด์ง ๊ฒฐ๊ณผ๋ก ์ด์ ๊ฐ์ฌ๋๋ฆฝ๋๋ค.
REFERENCES
Angiosperm Phylogeny Group(APG). (2009). An update of the
Angiosperm Phylogeny Group classification for the orders and
families of flowering plants: APG III. Botanical Journal of the
Linnean Society. 161:105-121.
Angiosperm Phylogeny Group(APG). (2016). An update of the
Angiosperm Phylogeny Group classification for the orders and
families of flowering plants: APG IV. Botanical Journal of the
Linnean Society. 181:1-20.
Clegg MT, Gaut BS, Learn JGH and Morton BR. (1994). Rates
and patterns of chloroplast DNA evolution. Proceedings of the
National Academy of Sciences. 91:6795-6801.
Daniell H, Lin CS, Yu M and Chang WJ. (2016). Chloroplast
genomes: Diversity, evolution, and applications in genetic
engineering. Genome Biology. 17:134. https://link.springer.
com/article/10.1186/s13059-016-1004-2 (cited by 2020 Oct 3).
Gao J, Wang Y, Qiao C and Chen D. (2003). Ribosomal DNA
ITS sequences analysis of the Chinese crude drug fructus
schisandrae sphenantherae and fruits of Schisandra viridis. China
Journal of Chinese Materia Medica. 28:706-710.
Han SH, Jang JK, Ma KH, Kim YJ, Kim SM, Lee HJ andHong CO. (2019). Selection of superior resources through
analysis of growth characteristics and physiological activity
of Schisandra chinensis collection. Korean Journal of Medicinal
Crop Science. 27:9-16.
Henegariu O, Heerema NA, Dlouhy SR, Vance GH and VogtPH. (1997). Multiplex PCR: Critical parameters and step-by-
step protocol. Biotechniques. 23:504-511.
Kim JH, Byeon JH, Park HS, Lee JH, Lee SW, Cha SW andCho JH. (2015). Authentication of traded traditional medicine
ogapi based on nuclear ribosomal DNA internal transcribed
spacers and chloroplast DNA sequences. Korean Journal of
Medicinal Crop Science. 23:489-499.
Kim JS, Jang HW, Kim JS, Kim HJ and Kim JH. (2012).
Molecular identification of Schisandra chinensis and its allied
species using multiplex PCR based on SNPs. Genes and
Genomics. 34:283-290.
Kim PG, Lee KY, Kim SH and Han SS. (1999). Foliar charac-
teristics and photosynthetic efficiency of three species of
Schisandraceae trees distributed in Korea. Korean Journal of
Agricultural and Forest Meteorology. 1:90-96.
Korea Food and Drug Administration(KFDA). (2012). The
Korean pharmacopoeia. Korea Food and Drug Adminis-
tration. Chungwon, Korea. p.76-77.
Lee CB. (1979). Coloured flora of Korea. Hyangmoonsa. Seoul,
Korea. p.375-376.
Lee YM, Moon BC, Ji YU, Seo HS and Kim HK. (2013). De-
velopment of RAPD-derived SCAR markers and multiplex-PCR
for authentication of the Schisandrae Fructus. Korean Journal of
Medicinal Crop Science. 21:165-173.
Li Y, Liu B, Reif JC, Liu Y, Li H, Chang R and Qiu LU.(2014). Development of insertion and deletion markers based
on biparental resequencing for fine mapping seed weight in
soybean. The Plant Genome. 7:1-8.
Liu S, An Y, Tong W, Qin X, Samarina L, Guo R, Xia X andWei C. (2019). Characterization of genome-wide genetic
variations between two varieties of tea plant(Camellia sinensis)
and development of InDel markers for genetic research. BMC
Genomics. 20:935. https://link.springer.com/article/10.1186/
s12864-019-6347-0 (cited by 2020 Sep 20).
Liu X, Geng X, Zhang H, Shen H and Yang W. (2017).
Association and genetic identification of loci for four fruit traits
in tomato using indel markers. Frontiers in plant science.
8:1269. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5515879/
(cited by 2020 Sep 20).
Liu Y, Zhang L, Liu Z, Luo K, Chen S and Chen K. (2012).
Species identification of Rhododendron(Ericaceae) using the
chloroplast deoxyribonucleic acid psbA-trnH genetic marker.
Pharmacognosy Magazine. 8:29-36.
Lv Y, Liu Y and Zhao H. (2016). mInDel: A high-throughput
and efficient pipeline for genome-wide InDel marker de-
velopment. BMC Genomics. 17:290. https://bmcgenomics.bio
medcentral.com/articles/10.1186/s12864-016-2614-5 (cited by
2020 Sep 19).
Moghaddam SM, Song Q, Mamidi S, Schmutz J, Lee R,Cregan P, Osorno JM and McClean PE. (2014). Developing
market class specific InDel markers from next generation
sequence data in Phaseolus vulgaris L. Frontiers in Plant
Science. 5:185. https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/
fpls.2014.00185/full (cited by 2020 Sep 19).
Moon BC, Ji YU, Seo HS, Lee AY, Chun JM and Kim HK.(2010). Molecular authentication of schisandrae fructus and
analysis of phylogenetic relationship based on nrDNA-ITS
sequences. Korea Journal of Herbology. 25: 47-54.
Moore MJ, Dhingra A, Soltis PS, Shaw R, Farmerie WG, FoltaKM and Soltis DE. (2006). Rapid and accurate pyro-
sequencing of angiosperm plastid genomes. BMC Plant
Biology. 6:17. https://link.springer.com/article/10.1186/1471-
2229-6-17 (cited by 2020 Sep 19).
Ngan F, Shaw P, But P and Wang J. (1999). Molecular authen-
tication of Panax species. Phytochemistry. 50:787-791.
Park IK, Yang SY, Kim WJ, Song HJ, Lee HS, Lee HO, LeeJH, Ahn SN and Moon BC. (2019). Sequencing and com-
parative analysis of the chloroplast genome of Angelica
polymorpha and the development of a novel Indel marker for
species identification. Molecules. 24:1038. https://www.mdpi.
com/1420-3049/24/6/1038 (cited by 2020 Sep 20).
Park SI, Hwang BK, Gil JS, Chung H, Kim HB, Kim OT,Kim SC, Koo SC, Um Y and Lee Y. (2017). Determination
of the origin of Angelica roots using Angelica gigas chloroplast
based SSR markers. Korean Journal of Medicinal Crop Science.
25:361-366.
Song Y, Chen Y, Lv J, Xu J, Zhu S, Li M and Chen N. (2017).
Development of chloroplast genomic resources for Oryza
species discrimination. Frontiers in Plant Science. 8:1854.
https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fpls.2017. 01854/
์ ํฌ์ ยท์ด์ฌ๋ณต ยท๊ธธ์ง์ ยทํ์ฐฝํ ยท๊ฐ์ํธ ยท๊ถ์์ง ยท๊นํจ์ง ยท๊น์ฐฝ๊ตญ ยท์ด์ ํธ ยท์ด์ด
16
full?report=reader (cited by 2020 Sep 19).
Steele KA, Ogden R, McEwing R, Briggs H and Gorham J.(2008). InDel markers distinguish Basmatis from other fragrant
rice varieties. Field Crops Research. 105:81-87.
Vรคli ร, Brandstrรถm M, Johansson M and Ellegren H. (2008).
Insertion-deletion polymorphisms(indels) as genetic markers
in natural populations. BMC Genetics. 9:8. https://link.springer.
com/article/10.1186/1471-2156-9-8 (cited by 2020 Sep 19).
Varshney RK, Close TJ, Singh NK, Hoisington DA and CookDR. (2009a). Orphan legume crops enter the genomics era.
Current Opinion in Plant Biology. 12:202-210.
Varshney RK, Nayak SN, May GD and Jackson SA. (2009b).
Next-generation sequencing technologies and their implications
for crop genetics and breeding. Trends in Biotechnology.
27:522-530.
Wolfe KH, Ll WH and Sharp PM. (1987). Rates of nucleotide
substitution vary greatly among plant mitochondrial, chloroplast,
and nuclear DNAs. Proceedings of the National Academy of
Sciences. 84:9054-9058.