diversidad genÉtica en genotipos de alfalfa …

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DIVERSIDAD GENÉTICA EN GENOTIPOS DE ALFALFA (Medicago sativa L.) MEDIANTE MARCADORES SSR Y CARACTERÍSTICAS AGRONÓMICAS Grandón N. G. 1 , Alarcón Y. 1 , Moreno M.V. 1 , Arolfo V. 2 , Odorizzi A. 2 , Bruno C. 3 , Basigalup D. H. 2 , Gieco, J. O. 1 1 Grupo de biotecnología en cultivos, INTA-EEA Manfredi, Córdoba, Argentina. 2 Grupo de mejoramiento genético de alfalfa, INTA-EEA Manfredi, Córdoba, Argentina. 3 Cátedra de Estadística y Biometría, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina Email 1 : [email protected] INTRODUCCIÓN MATERIALES Y MÉTODOS RESULTADOS Y DISCUSIÓN CONCLUSIONES La alfalfa es una leguminosa, perenne y autotetraploide (2n=4x=32). Los cultivares son poblaciones sintéticas obtenidas por tres o cuatro generaciones de panmixia a partir de un conjunto de varios parentales (Flajoulot et al., 2005). Su importancia como cultivo forrajero radica en su alto contenido de proteínas, vitaminas y minerales, y en que actúa como fuente fijadora de nitrógeno, mediante la simbiosis que establece con Sinorhizobium meliloti (Barnes et al., 1988). En la Argentina se cultivan alrededor de 4 millones de hectáreas, de las cuales el 90% se localiza en las provincias de Entre Ríos, Santa Fe, Córdoba, Buenos Aires y La Pampa (Basigalup y Rossanigo, 2007). Al establecer programas de mejoramiento, la caracterización molecular de la diversidad genética en el germoplasma puede aportar datos útiles para auxiliar al mejorador en la selección de los parentales de poblaciones básicas. La Estación Experimental Agropecuaria Manfredi del INTA cuenta con un banco activo de germoplasma de alfalfa, el cual aún no ha sido caracterizado a nivel molecular. Debido a esto, se busca aportar nueva información que, sumado a la correcta caracterización agronómica de aquel, servirá como una herramienta auxiliar para el mejoramiento y el desarrollo de nuevos cultivares con una base genética más amplia. El objetivo de este trabajo consistió en determinar la diversidad genética en genotipos de alfalfa a través de la caracterización agronómica y el uso de marcadores microsatélites. Se trabajó con 40 genotipos de diferentes cultivares pertenecientes al germoplasma implantado en el ensayo Nursery 2006 del programa de mejoramiento de alfalfa del INTA - EEA Manfredi. Cada genotipo incluyó tres clones obtenidos por esquejes (Figura 1) a partir de una planta individual elegida al azar. El transplante a campo se realizó después de un periodo de rustificación a la intemperie (Figura 2). Para el ensayo se utilizó un diseño en parcelas subdivididas con tres repeticiones (Figura 3). Figura 2: Transplante a campo. Figura 1: Clonado de plantas individuales. Figura 4: Individuos genotipados con el primer AFca1. De los 18 loci SSR genotipados, solo seis mostraron buena resolución en gel. Se identificaron un total de 84 alelos para los loci SSR analizados, con un promedio de 14 alelos por locus (Tabla 1). AFct32 fue el locus más polimórfico y el que presentó mayor número de alelos. Los genotipos presentaron de 1 a 4 alelos (Figura 4), con un promedio de 2,7 alelos por genotipo por locus. El valor D promedio fue de 0,843, indicando un alto grado de heterosis entre los genotipos evaluados. Esto también se vio reflejado en los demás índices de diversidad (Tabla 2). Una forma de cuantificar el polimorfismo presente en un locus determinado es a través del PIC. Es así que, el valor PIC promedio (PIC=0,826) indicó que los loci analizados son altamente polimórficos e informativos. La producción de materia seca (MS) se registró al 10% de floración de tres cortes. La velocidad de rebrote (VR) se midió a los 10 días posteriores a cada corte registrando la altura modal (altura a la que llegan la mayoría de los brotes). El comportamiento frente a tres enfermedades foliares: tallo negro de primavera (TNP), mancha ocular (MO) y roya de la alfalfa (R), se evaluó en los meses de mayor incidencia. Para ello se utilizó una escala de severidad visual de 6 grados, donde 0 representó la ausencia de enfermedad y 5 más del 50% del área foliar afectada. El genotipado se realizó con 18 loci SSR (Simple Sequence Repets) unilocus (Diwan et al., 1997 y Julier et al., 2003) y los fragmentos amplificados se resolvieron por electroforesis en gel de poliacrilamida 6% (p/v) (Figura 4). Figura 6: Dendrograma agronómico. Coef. Correlación Cofenético: 0,808. Figura 8: Configuración consenso entre las ordenaciones agronómicas y moleculares. Tabla 1: Número y tamaño de alelos encontrados para los 6 loci SSR analizados. Figura 7: Dendrograma molecular. Coef. Correlación Cofenético: 0,554 En el análisis de clusters solo el AC agronómico (Figura 6) mostró formación de 5 grupos al 52% de la distancia total. No así el AC molecular (Figura 7) donde aparecen los genotipos mezclados, posiblemente debido a la alta variabilidad que presentan. Esto también se vio reflejado en los altos valores de He promedio que presentaron los genotipos evaluados. Si bien en el cluster agronómico se observó cierto agrupamiento de los individuos por cultivares, esto no se observó en el cluster molecular. Como tampoco se vio correlación entre los clusters definidos por las características agronómicas y el definido por los datos moleculares. Figura 3: Ensayo. El APG (Figura 8) combina la información brindada por los caracteres agronómicos y los SSR. Es así, que existe un 65,4% de consenso entre el ordenamiento agronómico y el molecular; probablemente debido al escaso número de genotipos analizados y a la falta de asociación entre los SSR genotipados y los caracteres agronómicos evaluados. La dispersión de los puntos observada en el gráfico mostraron una alta variabilidad agronómica y molecular de los genotipos analizados. Como se puede ver aquí tampoco se agruparon por cultivares (referenciados por color). Tabla 2: Índices de diversidad genética promedio. 0,00 0,17 0,34 0,52 0,69 17 60 108 200 241 309 322 47 402 70 111 78 146 457 149 169 135 163 227 374 113 363 183 327 195 203 462 140 190 215 150 225 484 397 350 427 477 482 166 84 0,00 0,36 0,72 1,09 1,45 17 60 47 163 327 484 350 397 70 427 190 166 227 457 477 200 309 215 363 374 482 169 84 108 146 241 78 111 113 135 150 203 225 402 183 195 140 462 149 322 -0,15 -0,08 0,00 0,08 0,15 CP 1 (25,7%) -0,13 -0,07 0,00 0,07 0,13 CP 2 (19,2%) 17 47 60 70 78 84 108 111 113 135 140 146 149 150 163 166 169 183 190 195 200 203 215 225 227 241 309 322 327 350 363 374 397 402 427 457 462 477 482 484 17 47 60 70 78 84 108 111 113 135 140 146 149 150 163 166 169 183 190 195 200 203 215 225 227 241 309 322 327 350 363 374 397 402 427 457 462 477 482 484 Índices de Diversidad Promedio Diversidad 0,843 Heterocigosis 0,93 Heterocigosidad esperada o insesgada de Nei 0,854 PIC 0,826 Nº alelos/individuo/locus 2,724 Los resultados del presente trabajo indicarían que para análisis de diversidad molecular se requiere evaluar un mayor número de individuos. Se confirma la posibilidad de analizar la diversidad genética presente en el germoplasma de alfalfa a través del uso conjunto de marcadores microsatélites y un software estadístico adecuado. Estos resultados servirían como herramienta para asistir al mejoramiento tradicional a través de la formación de grupos heteróticos constituidos por individuos genéticamente distantes, con alta producción de forraje y tolerancia a las enfermedades foliares evaluadas en este trabajo. Primer Tamaño en pb. Nº alelos MTIC451 125-160 13 B14B03 130-190 13 MTIC432 160-220 12 AFca1 130-170 16 AFct11 170-210 8 AFct32 100-180 22 El análisis estadístico se realizó con el programa Info-Gen/P 2006p.1 Versión 1.0. Se codificó cada banda de cada locus con una letra del alfabeto. El análisis de componentes principales (ACP) se construyó a partir de los datos agronómicos estandarizados. Para el análisis de cluster (AC) agronómico se calculó las distancias a partir del índice de Gower. Para el AC molecular se calculó las distancias a partir del índice de Nei Standard. La diversidad genética se determinó calculando los índices: Diversidad (D), Heterocigosis (H), Hetocigosidad esperada o insesgada de Nei (He) y el Contenido de Información Polimórfica (PIC). Por último, se realizó el análisis de procrustes (APG) para determinar la correlación entre las ordenaciones agronómica y molecular. -4,00 -2,00 0,00 2,00 4,00 CP 1 (35,4%) -4,00 -2,00 0,00 2,00 4,00 CP 2 (27,6%) VR MS MO TNP R VR MS MO TNP R Componentes principales agronómico Figura 5: Biplot obtenido a partir del ACP. Ordenamiento producido por 5 caracteres agronómicos de la media de los individuos analizados. En el ACP (Figura 5) las dos primeras componentes explicaron el 63% de la varianza total, posiblemente debido a que los caracteres analizados no permitieron explorar la variabilidad total contenida en el material evaluado. Por lo tanto, indicaría que los materiales no son agronómicamente muy diferentes. Como se muestra en la figura las variables con mayor peso para la CP1 fueron TNP, MS y VR. Para la CP2 fueron R y MO. Referencias: Barnes, D.K.; Goplen, B.P.; Baylor, J.E. 1988. Highlights in the USA and Canada. In: Hanson A.A. et al. (Eds.). Alfalfa and Alfalfa Improvement. Madison, Wisconsin, USA. American Society of Agronomy. Agronomy Monograph Nº 29. Cap. 1, p. 1 24. Basigalup, D.H. y Rossaningo, R. 2007. Panorama actual de la alfalfa en la Argentina. En: Basigalup D.H. (Ed.). El cultivo de la alfalfa en la Argentina. Córdoba (AR): Ediciones INTA. Cap. 1, p. 13 25. Diwan, N.; Bhagwat, A.A.; Bauchan, G.R.; Cregan, P.B. 1997. Simple sequence repeat DNA markers in alfalfa and perennial and annual Medicago species. Genome, 40: 887 895. Flajoulot, S.; Ronfort, J.; Baudouin, P; Barre, P.; Huguet, T; Huyghe, C.; Julier, B. 2005. Genetic diversity among alfalfa (Medicago sativa) cultivars coming from a breeding program, using SSR markers. Theor. Appl. Genet., 111: 1420 1429. Julier, B.; Flajoulot, S.; Barre, P.; Cardinet, G.; Santoni, S.; Huguet, T.; Huyghe, C. 2003. Construction of two genetic linkage maps in cultived tetraploid alfalfa (Medicago sativa) using microsatellite and AFLP markers. BMC Plant Biology. Disponible en: http ://www.biomedcentral.com/1471-2229/3/9

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DIVERSIDAD GENÉTICA EN GENOTIPOS DE ALFALFA (Medicago sativa L.)

MEDIANTE MARCADORES SSR Y CARACTERÍSTICAS AGRONÓMICAS

Grandón N. G.1, Alarcón Y. 1, Moreno M.V. 1, Arolfo V. 2, Odorizzi A. 2, Bruno C. 3, Basigalup D. H. 2, Gieco, J. O. 1

1Grupo de biotecnología en cultivos, INTA-EEA Manfredi, Córdoba, Argentina. 2Grupo de mejoramiento genético de alfalfa, INTA-EEA Manfredi, Córdoba, Argentina. 3Cátedra de Estadística y

Biometría, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina

Email 1: [email protected]

INTRODUCCIÓN

MATERIALES Y MÉTODOS

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

CONCLUSIONES

La alfalfa es una leguminosa, perenne y autotetraploide (2n=4x=32). Los cultivares son poblaciones sintéticas

obtenidas por tres o cuatro generaciones de panmixia a partir de un conjunto de varios parentales (Flajoulot et al.,

2005). Su importancia como cultivo forrajero radica en su alto contenido de proteínas, vitaminas y minerales, y en que

actúa como fuente fijadora de nitrógeno, mediante la simbiosis que establece con Sinorhizobium meliloti (Barnes et al.,

1988). En la Argentina se cultivan alrededor de 4 millones de hectáreas, de las cuales el 90% se localiza en las

provincias de Entre Ríos, Santa Fe, Córdoba, Buenos Aires y La Pampa (Basigalup y Rossanigo, 2007).

Al establecer programas de mejoramiento, la caracterización molecular de la diversidad genética en el germoplasma

puede aportar datos útiles para auxiliar al mejorador en la selección de los parentales de poblaciones básicas. La

Estación Experimental Agropecuaria Manfredi del INTA cuenta con un banco activo de germoplasma de alfalfa, el cual

aún no ha sido caracterizado a nivel molecular. Debido a esto, se busca aportar nueva información que, sumado a la

correcta caracterización agronómica de aquel, servirá como una herramienta auxiliar para el mejoramiento y el

desarrollo de nuevos cultivares con una base genética más amplia.

El objetivo de este trabajo consistió en determinar la diversidad genética en genotipos de alfalfa a través de la

caracterización agronómica y el uso de marcadores microsatélites.

Se trabajó con 40 genotipos de diferentes cultivares pertenecientes al germoplasma implantado en el ensayo

Nursery 2006 del programa de mejoramiento de alfalfa del INTA - EEA Manfredi. Cada genotipo incluyó tres clones

obtenidos por esquejes (Figura 1) a partir de una planta individual elegida al azar.

El transplante a campo se realizó después de un periodo de rustificación a la intemperie (Figura 2). Para el ensayo

se utilizó un diseño en parcelas subdivididas con tres repeticiones (Figura 3).

Figura 2: Transplante a campo.Figura 1: Clonado de plantas

individuales.

Figura 4: Individuos genotipados con el primer AFca1.

De los 18 loci SSR genotipados, solo seis mostraron buena resolución en gel. Se identificaron un total de 84 alelos

para los loci SSR analizados, con un promedio de 14 alelos por locus (Tabla 1). AFct32 fue el locus más polimórfico y

el que presentó mayor número de alelos. Los genotipos presentaron de 1 a 4 alelos (Figura 4), con un promedio de 2,7

alelos por genotipo por locus. El valor D promedio fue de 0,843, indicando un alto grado de heterosis entre los

genotipos evaluados. Esto también se vio reflejado en los demás índices de diversidad (Tabla 2). Una forma de

cuantificar el polimorfismo presente en un locus determinado es a través del PIC. Es así que, el valor PIC promedio

(PIC=0,826) indicó que los loci analizados son altamente polimórficos e informativos.

La producción de materia seca (MS) se registró al 10% de floración de tres cortes. La velocidad de rebrote (VR) se

midió a los 10 días posteriores a cada corte registrando la altura modal (altura a la que llegan la mayoría de los brotes).

El comportamiento frente a tres enfermedades foliares: tallo negro de primavera (TNP), mancha ocular (MO) y roya de

la alfalfa (R), se evaluó en los meses de mayor incidencia. Para ello se utilizó una escala de severidad visual de 6

grados, donde 0 representó la ausencia de enfermedad y 5 más del 50% del área foliar afectada.

El genotipado se realizó con 18 loci SSR (Simple Sequence Repets) unilocus (Diwan et al., 1997 y Julier et al., 2003)

y los fragmentos amplificados se resolvieron por electroforesis en gel de poliacrilamida 6% (p/v) (Figura 4).Figura 6: Dendrograma agronómico. Coef. Correlación Cofenético:

0,808.

Figura 8: Configuración consenso entre las ordenaciones

agronómicas y moleculares.

Tabla 1: Número y tamaño de alelos encontrados para

los 6 loci SSR analizados.

Figura 7: Dendrograma molecular. Coef. Correlación Cofenético:

0,554

En el análisis de clusters solo el AC agronómico (Figura 6) mostró formación de 5 grupos al 52% de la distancia

total. No así el AC molecular (Figura 7) donde aparecen los genotipos mezclados, posiblemente debido a la alta

variabilidad que presentan. Esto también se vio reflejado en los altos valores de He promedio que presentaron los

genotipos evaluados. Si bien en el cluster agronómico se observó cierto agrupamiento de los individuos por cultivares,

esto no se observó en el cluster molecular. Como tampoco se vio correlación entre los clusters definidos por las

características agronómicas y el definido por los datos moleculares.

Figura 3: Ensayo.

El APG (Figura 8) combina la información brindada por los caracteres agronómicos y los SSR. Es así, que existe un

65,4% de consenso entre el ordenamiento agronómico y el molecular; probablemente debido al escaso número de

genotipos analizados y a la falta de asociación entre los SSR genotipados y los caracteres agronómicos evaluados.

La dispersión de los puntos observada en el gráfico mostraron una alta variabilidad agronómica y molecular de los

genotipos analizados. Como se puede ver aquí tampoco se agruparon por cultivares (referenciados por color).

Tabla 2: Índices de diversidad genética promedio.

0,00 0,17 0,34 0,52 0,69

1760

10820024130932247

40270

11178

14645714916913516322737411336318332719520346214019021515022548439735042747748216684

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10814624178

111113135150203225402183195140462149322

-0,15 -0,08 0,00 0,08 0,15

CP 1 (25,7%)

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140

146149

150163

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169

183

190

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200

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227

241

309

322

327

350

363

374

397

402

427

457

462

477482

484

Índices de Diversidad Promedio

Diversidad 0,843

Heterocigosis 0,93

Heterocigosidad esperada

o insesgada de Nei 0,854

PIC 0,826

Nº alelos/individuo/locus 2,724

Los resultados del presente trabajo indicarían que para análisis de diversidad molecular se requiere evaluar un

mayor número de individuos.

Se confirma la posibilidad de analizar la diversidad genética presente en el germoplasma de alfalfa a través del

uso conjunto de marcadores microsatélites y un software estadístico adecuado.

Estos resultados servirían como herramienta para asistir al mejoramiento tradicional a través de la formación de

grupos heteróticos constituidos por individuos genéticamente distantes, con alta producción de forraje y tolerancia a

las enfermedades foliares evaluadas en este trabajo.

Primer Tamaño en pb. Nº alelos

MTIC451 125-160 13

B14B03 130-190 13

MTIC432 160-220 12

AFca1 130-170 16

AFct11 170-210 8

AFct32 100-180 22

El análisis estadístico se realizó con el programa Info-Gen/P 2006p.1 Versión 1.0. Se codificó cada banda de cada

locus con una letra del alfabeto. El análisis de componentes principales (ACP) se construyó a partir de los datos

agronómicos estandarizados. Para el análisis de cluster (AC) agronómico se calculó las distancias a partir del índice de

Gower. Para el AC molecular se calculó las distancias a partir del índice de Nei Standard. La diversidad genética se

determinó calculando los índices: Diversidad (D), Heterocigosis (H), Hetocigosidad esperada o insesgada de Nei (He) y

el Contenido de Información Polimórfica (PIC). Por último, se realizó el análisis de procrustes (APG) para determinar la

correlación entre las ordenaciones agronómica y molecular.

-4,00 -2,00 0,00 2,00 4,00

CP 1 (35,4%)

-4,00

-2,00

0,00

2,00

4,00

CP

2 (

27,6

%)

VR

MS

MO

TNP

R

VR

MS

MO

TNP

R

Componentes principales agronómico

Figura 5: Biplot obtenido a partir del ACP. Ordenamiento producido por 5

caracteres agronómicos de la media de los individuos analizados.

En el ACP (Figura 5) las dos primeras componentes explicaron el 63% de la varianza total, posiblemente debido a

que los caracteres analizados no permitieron explorar la variabilidad total contenida en el material evaluado. Por lo

tanto, indicaría que los materiales no son agronómicamente muy diferentes. Como se muestra en la figura las

variables con mayor peso para la CP1 fueron TNP, MS y VR. Para la CP2 fueron R y MO.

Referencias:

Barnes, D.K.; Goplen, B.P.; Baylor, J.E. 1988. Highlights in the USA and Canada. In: Hanson A.A. et al. (Eds.). Alfalfa and Alfalfa Improvement. Madison,

Wisconsin, USA. American Society of Agronomy. Agronomy Monograph Nº 29. Cap. 1, p. 1 – 24. Basigalup, D.H. y Rossaningo, R. 2007. Panorama

actual de la alfalfa en la Argentina. En: Basigalup D.H. (Ed.). El cultivo de la alfalfa en la Argentina. Córdoba (AR): Ediciones INTA. Cap. 1, p. 13 – 25.

Diwan, N.; Bhagwat, A.A.; Bauchan, G.R.; Cregan, P.B. 1997. Simple sequence repeat DNA markers in alfalfa and perennial and annual Medicago

species. Genome, 40: 887 – 895. Flajoulot, S.; Ronfort, J.; Baudouin, P; Barre, P.; Huguet, T; Huyghe, C.; Julier, B. 2005. Genetic diversity among alfalfa

(Medicago sativa) cultivars coming from a breeding program, using SSR markers. Theor. Appl. Genet., 111: 1420 – 1429. Julier, B.; Flajoulot, S.; Barre, P.;

Cardinet, G.; Santoni, S.; Huguet, T.; Huyghe, C. 2003. Construction of two genetic linkage maps in cultived tetraploid alfalfa (Medicago sativa) using

microsatellite and AFLP markers. BMC Plant Biology. Disponible en: http://www.biomedcentral.com/1471-2229/3/9