Fluido Selenita Cistina Medio se utiliza como un medio de enriquecimiento para el aislamiento de Salmonella de los alimentos, los productos lácteosproductos, materiales de importancia sanitaria y las muestras clínicas.Composición **Ingredientes gr / LitroParte A --Hidrolizados de caseína enzimática 5,000Lactosa 4,000Fosfato de sodio 10,000L-Cistina 0,010Parte B --Selenito ácido de sodio 4,000PH final (a 25 ° C) 7,0 ± 0,2** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimientoCómo llegarSuspender 4 gramos de la parte B en 1000 ml de agua destilada. Añadir 19,01 gramos de la parte A. Mezcle bien. Caliente para disolver elmedio completamente. Distribuir en tubos de ensayo estériles. Esterilizar en un baño de agua hirviendo o libre flujo de vapor durante 10 minutos.No esterilizar en autoclave. Un calentamiento excesivo es perjudicial. Desechar el medio preparados en caso de gran cantidad de selenita sereducido (indicado por precipitado rojo en la parte inferior del tubo / botella).Precaución: selenito ácido de sodio (bi-selenito de sodio) es muy tóxico, agente corrosivo y las causas de teratogenicidad. Tiradorcon mucho cuidado. En contacto con la piel, lavar inmediatamente con mucha agua.

Bismuto sulfito Agar M027 Bismuto sulfito Agar es recomendado para el aislamiento selectivo e identificación preliminar de Salmonella Salmonella typhi y otros materiales patológicos, alcantarillado, abastecimiento de agua, alimentos, etc Composición ** Ingredientes gr / Litro Péptica compendio de tejidos de origen animal 10,000 Extracto de carne de vacuno 5,000 Dextrosa 5,000 Fosfato disódico 4,000 Sulfato ferroso 0,300 Indicador de sulfito de bismuto 8,000 0,025 verde brillante Agar 20,000 PH final (a 25 ° C) 7,7 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 52,33 gramos en 1000 ml de agua destilada. Llevar a ebullición para disolver el medio por completo. NO Esterilizar en autoclave o la esterilización fraccionada desde el recalentamiento puede destruir la selectividad de la medio. La sensibilidad del medio depende en gran medida de dispersión uniforme de precipitado de sulfito de bismuto en el gel final, que deben ser dispersados antes de verter en placas de Petri estéril. Principio e Interpretación Las salmonelas constituyen el grupo más complejo taxonómico de bacterias entre los Enterobacteriaceae (1). Humanos Infecciones por Salmonella son los más comúnmente causada por la ingestión de alimentos, leche o agua contaminados por humanos o animales excretas. Los seres humanos son los depósitos sólo de S. Typhi (2). Cuatro tipos clínicos de infecciones por Salmonella pueden ser distinguidos (3) a saber, la gastroenteritis, bacteriemia o septicemia, fiebre tifoidea y un estado

de portador. De los distintos medios de comunicación empleado para el aislamiento e identificación preliminar de las salmonelas, en particular Salmonella typhi; Bismuto Sulfito Agar es la más productiva (4). Bismuto sulfito Agar es una modificación del original de Wilson y Blair Medium (5-7). También se recomienda por varias Asociaciones (8-13) para el aislamiento e identificación preliminar de Salmonella typhi y Salmonella que otros materiales patológicos, alcantarillado, agua, alimentos y otros productos. S. Typhi, S. Enteritidis y S. Typhimurium en general crecen como colonias de color negro con un brillo metálico que rodea resultantes de la producción de sulfuro de hidrógeno y la reducción de sulfito a sulfuro de hierro negro. Salmonella paratyphi A crece a medida que las colonias de la luz verde. Agar sulfito de bismuto puede inhibir a algunas cepas de las especies de Salmonella y por lo tanto no debe utilizarse como único medio selectivo para estos organismos. Especies de Shigella son en su mayoría inhibido en este medio, las excepciones que S es. flexneri y S. sonnei (14) y también algunos de Salmonella como S @. Sendai, S. Berta, S. Gallinarum, S. Abortus equi-están inhibidos (14). También este medio favorece el uso de grandes como inóculo en comparación con otros medios selectivos, ya que la acción inhibitoria ha únicos a microorganismos gram-positivos y coliformes. Péptica resumen de los tejidos animales y la carne de vacuno extracto de servir como fuentes de carbono, nitrógeno, vitaminas y factores de crecimiento esenciales. La dextrosa es la fuente de carbono. Fosfato disódico mantiene el equilibrio osmótico. Indicador de bismuto de sulfito a lo largo de con el verde brillante inhibe la gram-positivos intestinales y las bacterias gram-negativas. Ayudas de sulfato ferroso en la detección de de la producción de sulfuro de hidrógeno. Las muestras clínicas se pueden usar directamente para inocular bismuto sulfito Agar. En el caso de muestras de alimentos, el enriquecimiento antes de de la muestra se realiza antes de la inoculación. Control de Calidad Apariencia Luz amarilla a amarillo verdoso homogéneo polvo suelto Gelificantes Firma, comparable con el 2,0% en gel de agar. HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Color y la claridad de medio preparado De color amarillo verdoso, opalescente, con floculante precipitado en placas de Petri. Reacción Reacción del 5,23% w / v en solución acuosa a 25 ° C. pH: 7,7 ± 0,2Xilosa-lisina desoxicolato Agar (XLD Agar) M031 Xilosa-lisina desoxicolato Agar (XLD Agar) es un medio selectivo recomendado para el aislamiento y la de enumeración de Salmonella typhi y otras especies de Salmonella. Composición *** Ingredientes gr / Litro Extracto de levadura 3,000 L-Lisina 5,000 Lactosa 7,500 Sacarosa 7,500 Xilosa 3,500 Cloruro de sodio 5,000 Desoxicolato de sodio 2,500 De tiosulfato de sodio 6,800 Citrato férrico de amonio 0,800 Rojo de fenol 0,080

Agar 15,000 PH final (a 25 ° C) 7,4 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 56,68 gramos en 1000 ml de agua destilada. El calor con agitación frecuente hasta que el medio hierva. NO Autoclave o sobrecaliente. Transferencia de inmediato a un baño de agua a 50 ° C. Después de enfriar, vierta en Petri estéril, placas. No es aconsejable preparar un gran volumen que requieren un calentamiento prolongado. Principio e Interpretación XLD Agar fue formulado por Taylor (1-5) para el aislamiento y diferenciación de los agentes patógenos entéricos como Salmonella typhi de otras especies de Salmonella. XLD Agar ha sido recomendado para la identificación de Enterobacterias (7) y para el análisis microbiológico de alimentos, agua y productos lácteos (8-12). XLD Agar muestra un aumento de la selectividad y la sensibilidad con respecto a otros medios de comunicación por ejemplo, planchas SS Agar (M108), EMB Agar (M022) y bismuto sulfito Agar (M027) (2, 4, 6 y 13-16). La formulación de los medios de comunicación no permite el crecimiento excesivo de de otros organismos más de Salmonella y Shigella (17). Las muestras sospechosas de contener agentes patógenos entéricos, junto con otro tipo de flora mixta, inicialmente se enriquece en Modificado semisólidos RV Medio Base (M1482) (18). El medio contiene extracto de levadura, que dispone de nitrógeno y vitaminas necesarias para el crecimiento. Aunque los azúcares xilosa, lactosa y sacarosa proporcionar fuentes de hidratos de carbono fermentables, principalmente xilosa es incorporado en la medio, ya que no es fermentada por bacilos disentéricos pero prácticamente por todos los entéricos. Esto ayuda en la diferenciación de la Especies de Shigella. El cloruro de sodio mantiene el equilibrio osmótico del medio. La lisina es incluido para diferenciar los Grupo de Salmonella de la falta de agentes patógenos. Salmonella rápidamente xilosa fermento y agotar la oferta. Posteriormente la lisina es descarboxila por la enzima lisina descarboxilasa para formar aminas con reversión a un pH alcalino que la imita la reacción de Shigella. Sin embargo, para evitar esta reacción positiva de la lisina-coliformes, lactosa y sacarosa se añadido para producir el ácido en exceso. La degradación de xilosa, lactosa y sacarosa a ácido causas indicador rojo fenol para el cambio su color al amarillo. Las bacterias que descarboxilan lisina a cadaverina se puede reconocer por la aparición de un color rojo coloración alrededor de las colonias debido a un aumento en el pH. Estas reacciones pueden proceder de forma simultánea o sucesivamente, y esto puede causar que el indicador de pH presentan distintos tonos de color o cambiar su color de amarillo a rojo en la incubación prolongada. Para agregar a la capacidad de diferenciación de la formulación, un sistema de indicadores de H2S, compuesto de tiosulfato de sodio y de citrato férrico de amonio, se incluye para la visualización de sulfuro de hidrógeno producido, resultando en la formación de de las colonias con los centros de negro. El H2S no patógenos productores de lisina no se descarboxilasa, por lo tanto, el ácido la reacción producida por ellos impide que el ennegrecimiento de las colonias (1). HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Medio XLD Agar es selectiva y diferencial. Utiliza desoxicolato de sodio como agente selectivo y por lo que es inhibitorio a microorganismos Gram-positivos. Algunas cepas de Proteus puede

dar coloración rojo a amarillo con la mayoría de las colonias en desarrollo los centros de negro, dando lugar a falsas reacciones positivas. Entéricos no como Pseudomonas y Providencia pueden presentar colonias rojas. S. paratyphi A, S. Choleraesuis, S. pullorum y S. gallinarum pueden formar rojo colonias sin H2S, con lo que se asemeja especies de Shigella (19). Control de Calidad Apariencia Luz amarilla y rosa homogénea polvo suelto Gelificantes Firma, comparable con el 1,35% en gel de agar Color y la claridad de medio preparado De color rojo claro que forma un gel ligeramente opalescente en placas de Petri Reacción Reacción del 5,48% w / v de solución acuosa a 25 ° C (después de la calefacción). pH: 7,4 ± 0,2 Respuesta de la Cultura Respuesta de la Cultura se observó después de una incubación a 30-35 ° C durante 18-24 horas. Tasa de recuperación se considera como el 100% para el crecimiento de bacterias en la caseína de soja Digest Agar. Salmonella typhimurium ATCC 14028 rojo exuberante con los centros de negro Staphylococcus aureus ATCC 25923 > = 10 ³ inhibidoTraducción del inglés al españolSelenito Caldo (Caldo Selenito F) (Twin Pack) M052 Caldo de selenito se recomienda como medio de enriquecimiento para el aislamiento de Salmonella de las heces, orina u otros materiales patológicos. Composición ** Ingredientes gr / Litro Parte A -- Hidrolizados de caseína enzimática 5,000 Lactosa 4,000 Fosfato de sodio 10,000 Parte B -- Selenito ácido de sodio 4,000 PH final (a 25 ° C) 7,0 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 4,0 g de la parte B en 1000 ml de agua destilada. Añadir 19,0 gramos de la parte A. Mezcle bien. Caliente para disolver el medio completamente. Distribuir en tubos de ensayo estériles. Esterilizar en un baño de agua hirviendo o libre flujo de vapor durante 10 minutos. No esterilizar en autoclave. Un calentamiento excesivo es perjudicial. Desechar el medio preparados en caso de gran cantidad de selenita de se reduce (indicado por precipitado rojo en la parte inferior del tubo / botella). Precaución: selenito ácido de sodio (biselenite de sodio) es muy tóxico, agente corrosivo y las causas de teratogenicidad. Tirador con mucho cuidado. Si hay contacto con la piel, lavar inmediatamente con abundante agua. Principio e Interpretación Klett (1) demostró por primera vez los efectos de inhibición selectiva de selenita y Guth (2) utilizado para aislar Salmonella Typhi. Leifson investigado selenita y formuló los medios de comunicación (3). Los medios de enriquecimiento, se aplican sistemáticamente para la detección de patógenos en las heces como los patógenos están presentes en un número muy pequeño en el tracto intestinal la flora. Caldo de selenito es útil para la detección de la salmonela en las fases no agudas de la enfermedad cuando se producen en los organismos de las heces en los números bajos y para los estudios epidemiológicos para mejorar la

detección de bajo número de organismos de la pacientes asintomáticos o de convalecencia (4). Hidrolizados de caseína enzimática proporciona sustancias nitrogenadas. Lactosa mantiene el pH del medio. Selenita se reduce por el crecimiento de bacterias y el álcali se produce. Un aumento en el pH disminuye la toxicidad de la selenita y los resultados en el crecimiento excesivo de otras bacterias. El ácido producido por las bacterias debido a la fermentación de lactosa sirve para mantener un pH neutro. Sodio fosfato mantiene un pH estable y también reduce la toxicidad de selenita. Caldo enriquecido se cultivan en diferenciales los medios de comunicación, tales como placas de bismuto sulfito Agar (M027), Verde Brillante Agar (M016), XLD Agar (M031), etc No Incubar el caldo de más de 24 horas, disminuye el efecto inhibidor de selenita después de 6 a 12 horas de incubación (5). Control de Calidad Apariencia Parte A: Crema a amarillo claro homogéneo de flujo libre de polvo Parte B: blanco a crema, polvo cristalino de color Color y la claridad de medio preparado Crema a amarillo solución transparente de color sin ningún tipo de precipitado Reacción Reacción de medio [(1,9% w / v) de la Parte A y (0,4% w / v) de la parte B] a 25 ° C. pH: 7,0 ± 0,2 Respuesta de la Cultura M052: Características culturales observado cuando cultivan en MacConkey Agar (M081) después de una incubación a 35-37 ° C durante 18-24 horas. Organismo inóculo (CFU) Recuperación de color de colonia Escherichia coli ATCC 25922 50-100 ninguno a los pobres (sin aumento en números) rosa con la bilis precipitado Salmonella Choleraesuis ATCC 12011 50-100 goodluxuriant incoloro HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Salmonella typhi ATCC 6539 50-100 goodluxuriant incoloro Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 goodluxuriant incoloro Escherichia coli ATCC 8739 50-100 ninguno a los pobres (sin aumento en números) rosa con la bilis precipitado Escherichia coli NCTC 9002 50-100 ninguno a los pobres

(sin aumento en números) rosa con la bilis precipitadoAgar BPL M1020 Agar BPL (verde brillante rojo fenol-lactosa Agar) se utiliza para el aislamiento selectivo e identificación de Salmonella , con la excepción de Salmonella typhi en las heces, orina, leche, carne y otros materiales. Composición ** Ingredientes gr / Litro Peptona de carne 7,000 Cloruro de sodio 5,000 Lactosa 15,000 Rojo de fenol 0,040 0,005 verde brillante Agar 13,000 PH final (a 25 ° C) 6,5 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 40,04 gramos en 1000 ml de agua destilada. Llevar a ebullición para disolver el medio por completo. Dispensar y esterilizar en autoclave a presión de 15 libras (121 ° C) durante 15 minutos. Mezclar bien y verter en placas de Petri estéril. Principio e Interpretación De un verde brillante, rojo fenol Agar, la lactosa (BPL) es un medio de agar selectivo para la identificación y aislamiento de De Salmonella con la excepción de Salmonella typhi en las heces, orina, leche, carne y otros materiales (1). El medio contiene peptona de carne, que suministra los nutrientes nitrogenados a los organismos. La lactosa es el los hidratos de carbono fermentables, que después de la degradación de los rendimientos de la producción de ácido, indicados por el indicador rojo fenol. En el rango ácido, rojo fenol se vuelve amarillo, mientras que en condiciones alcalinas se vuelve rojo. Verde brillante inhibe Gram-positivos organismos y también Salmonella typhi y Shigella. Control de Calidad Apariencia Luz amarilla y rosa homogénea polvo suelto Gelificantes Firma, comparable con el 1,3% gel de agar. Color y la claridad de medio preparado De color verde amarronado, claro que forma un gel ligeramente opalescente en placas de Petri.

Reacción Reacción del 4,0% w / v en solución acuosa a 25 ° C. pH: 6,5 ± 0,2 Respuesta de la Cultura M1020: Características culturales observados en una atmósfera húmeda después de una incubación a 35-37 ° C durante 18-24 horas. Organismo inóculo (CFU) Crecimiento de recuperación de color de colonia Bacillus subtilis ATCC 6633 50-100 ninguno de los pobres <= 10% Enterococcus faecalis ATCC 29212 50-100 ninguno de los pobres <= 10% Escherichia coli ATCC 25922 50-100 pobres buen 30-40% amarillo Salmonella Choleraesuis

ATCC 12011 50-100 goodluxuriant > = 50% rosa-rojo Salmonella enteritidis ATCC 13076 50-100 goodluxuriant > = 50% rosa-rojo Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 goodluxuriant > = 50% de rosa a rojo Staphylococcus aureus ATCC 25923 > = 10 ³ inhibido 0% Referencia 1. Kauffmann, F., 1935, Z. Hyg. Infekt. Kr., 117:26. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30 ° C y el medio preparado a 2 - 8 ° C. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta.Sugiere una traducción mejor

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Caldo de lactosa * M1003 Caldo de lactosa se utiliza para la detección de bacterias coliformes en el agua, los alimentos y productos lácteos, según la norma Métodos. Composición *** Ingredientes gr / Litro Péptica resumen de tejido animal 5,000 Extracto de carne de vacuno 3,000 Lactosa 5,000 PH final (al 25ТАC) 6.9ТБ0.2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 13 gramos en 1000 ml de agua destilada. El calor si es necesario para disolver el medio por completo. Para mayores inóculos (10 ml o más), medio concentrado puedan ser preparados para dar cuenta de la dilución por medio de la inoculación. Dispense en tubos con vial de fermentación invertido (tubo Durhams) como se desee. Esterilizar en autoclave a presión de 15 libras (121ТАC) durante 15 minutos. Principio e Interpretación Examen de agua, alimentos, ingredientes y materias primas, por la presencia de grupos como marcador de coliformes es una de de las pruebas más comunes en un laboratorio de microbiología, en parte debido a la relativa facilidad y rapidez con que estos las pruebas se pueden realizar. Donde se afirma que el agua potable ha sido procesado por la

seguridad, el hallazgo de tales organismo demuestra un fracaso del proceso. Es un indicador valioso de bacterias para determinar el alcance de la materia fecal la contaminación de las aguas superficiales de recreo o de agua potable (1). Caldo de lactosa es recomendado por APHA en el rendimiento y la confirmación de la prueba presuntiva para coliformes bacterias en el agua (2), alimentos (3) y leche (4). Este medio fue inicialmente aparece como una alternativa a la Laurilsulfato Caldo en el presunto Estándar Coliformes totales de tubos múltiples (NMP) de prueba para análisis de agua. Aunque no es el formulación original, Caldo Lactosa proporciona excelentes resultados en Eijkman Ensayos de la producción de gas en 45ТАC, que es un característica de Escherichia coli. Durante la preparación de este medio es importante para evitar el sobrecalentamiento y la distribución de que en los tubos antes de la esterilización. Péptica resumen de los tejidos animales, y el extracto de carne de vacuno en el suministro de nutrientes esenciales para el medio de los organismos. La lactosa es un hidrato de carbono fermentables para los coliformes. Tubos de caldo lactosa se inoculan con diluciones de agua o leche, etc sometido a la prueba, y se incuban a 35ТАC y examinados para la formación de gas después de 24 y 48 horas. Los miembros de los coliformes grupo se definen como aeróbicas y anaeróbicas gram-negativas facultativa y no sporing bacilos, que fermentan la lactosa con formación de gas dentro de 48 horas a 35ТАC. En las pruebas de los productos lácteos, la lactosa caldo se utiliza sólo en la prueba efectuada (3). Muestras de agua de gran tamaño pueden requerir el doble fuerza a la lactosa Caldo de reducir al mínimo el volumen final. Control de Calidad Apariencia Crema a amarillo homogéneo polvo suelto Color y la claridad de medio preparado A media luz de color ámbar claro, sin solución de cualquier precipitado Reacción Reacción del 1,3% w / v en solución acuosa 25ТАC. pH: 6.9ТБ0.2 Respuesta de la Cultura M1003: Características culturales observados después de una incubación a 35-37ТАC para 18-48 horas. Organismo inóculo (CFU) El crecimiento de Gas Enterobacter aerogenes ATCC 13048 50-100 positivo exuberante reacción Enterococcus faecalis ATCC 29212 50-100 negativos exuberante reacción Escherichia coli ATCC 25922 50-100 positivo exuberante reacción HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 50-100 negativos exuberante reacción Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027

50-100 negativos exuberante reacción Escherichia coli ATCC 8739 50-100 exuberante positivo reacción Escherichia coli NCTC 9002 50-100 exuberante positivo reacción Referencia 1. Corry, JEL, Curtis GDW, y Baird RM, Medios de Cultivo para Microbiología de Alimentos, vol. 34, Progreso Industrial Microbiología, 1995, Elsevier, Amsterdam 2. Eaton AD, Clesceri LS, Rice EW y Greenberg A W. (eds.), 2005, Standard Methods para el examen de Agua y Aguas Residuales, Ed. 21., APHA, Washington, DC 3. Downes FP y Ito, K., (Eds.), 2001, compendio de métodos para el análisis microbiológico de los alimentos, 4 ª Ed., APHA, Washington, D. C. 4. Wehr HM y Frank JH, 2004, Standard Methods para el análisis microbiológico de productos lácteos, 17 Ed., APHA Inc., Washington, D. C. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30ТАC y el medio preparado a 2 - 8ТАC. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta.

SS Agar, Modificado M1032 Agar SS (Salmonella Shigella Agar) Modificado se utiliza para el aislamiento selectivo y la diferenciación de Salmonella y especies de Shigella de muestras patológicas, los alimentos sospechosos, etc Composición *** Ingredientes gr / Litro Extracto de carne de vacuno 5,000 Péptica resumen de tejido animal 5,000 Lactosa 10,000 Las sales biliares mezcla 5,500 Citrato de sodio 10,000 De tiosulfato de sodio 8,500 Citrato férrico 1,000 Brillante 0,00033 verde Rojo neutro 0,025 Agar 12,000 PH final (a 25 ° C) 7,2 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 57,02 gramos en 1000 ml de agua destilada. Llevar a ebullición con agitación frecuente para disolver el medio por completo. No esterilizar en autoclave o de sobrecalentamiento. El recalentamiento puede destruir la selectividad del medio. Enfriar a unos 50 ° C. Mezclar y verter en placas de Petri estéril. Principio e Interpretación Salmonella y Shigella son gram-negativas, anaerobios facultativos, no esporuladas barras en la familia Enterobacterias. Tienen una amplia distribución en los animales, infectando principalmente el estómago y los intestinos. SS El agar es recomendado como un medio selectivo y diferencial para el aislamiento de Salmonella y Shigella especies de muestras patológicas (1) y los alimentos sospechosos (2, 3, 4, 5) y para la prueba de límite microbiano (6). SS agar es un moderado medio selectivo en el que las bacterias gram-positivas son inhibidos por las sales biliares, verde brillante y citrato de sodio. Péptica resumen de los tejidos animales y la carne de vacuno extracto de proporcionar los nutrientes esenciales para el crecimiento. La lactosa es la fermentación,

hidratos de carbono. Verde brillante, sales biliares y tiosulfato de inhibir selectivamente microorganismos gram-positivos y coliformes. De tiosulfato de sodio se reduce en determinadas especies de organismos entéricos de sulfito y de gas H2S. Esta reductora proceso enzimático se atribuye a tiosulfato reductasa. La producción de gas H2S se detecta como un negro insoluble precipitado de sulfuro de hierro, formado en la reacción del H2S con los iones de hierro o de citrato férrico, indicado por negro centrado en colonias. La alta selectividad de Salmonella Shigella Agar permite el uso de los inóculos grandes directamente de las heces, hisopos rectales u otros materiales sospechosos de contener bacilos patógenos entéricos. En la fermentación de la lactosa por pocos lactosefermenting la flora intestinal normal, se produce el ácido que se indica por el cambio de color del amarillo al rojo por el pH el indicador rojo neutro. Así, estos organismos crecen como colonias de color rojo. No lactosa fermentación organismos crecen como colonias incoloro transparente con o sin centros de negro. Salmonella especies presentan colonias incoloro con centros de negro resultante de la producción de H2S. Especies de Shigella forman colonias incoloro, que no producen H2S. Si bien a partir de muestras sospechosas de estar expuestos a tratamientos que podrían haber dañado la viabilidad de los microorganismos debido a la transformación de las materias de alimentos o muestras de pacientes bajo tratamiento con antibióticos, etc, el enriquecimiento anterior en Selenito cistina base de caldo (M025) o tetrationato base de caldo (M032) es necesario. Inocular SS placas de agar con el enriquecido la cultura. Después de la incubación de las colonias sospechosas se cultivan en los medios de comunicación diferencial para ser identificados bioquímica o serológicamente. Se recomienda vacunar a las placas de los medios de comunicación menos inhibitoria paralela a SS Agar, como Hektoen Enteric Agar (M467) o desoxicolato citrato Agar (M065) para facilitar el aislamiento de Especies de Shigella (7). Control de Calidad Apariencia HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Luz amarilla y rosa homogénea polvo suelto Gelificantes Firma, comparable con el 1,2% de gel de agar Color y la claridad de medio preparado De color naranja de color rojizo claro a forma un gel ligeramente opalescente en placas de Petri

Reacción Reacción del 5,7% w / v en solución acuosa a 25 ° C. pH: 7,2 ± 0,2 Respuesta de la Cultura M1032: Características culturales observadas después de una incubación a 35-37 ° C durante 18-24 horas. Organismo inóculo (CFU) Crecimiento de recuperación de color de colonia Escherichia coli ATCC 25922 50-100 justo 20-30% de color rosa con la bilis precipitado Enterobacter aerogenes ATCC 13048 50-100 justo 20-30% crema rosa

Enterococcus faecalis ATCC 29212 50-100 ninguno de los pobres <= incoloro de 10% Proteus mirabilis ATCC 25933 50-100 justo incoloro 30-40% buena, puede tener centro negro Salmonella Choleraesuis ATCC 12011 50-100 goodluxuriant > = 50% incoloro con negro centro Salmonella typhi ATCC 6539 50-100 goodluxuriant > = 50% incoloro con negro centro Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 goodluxuriant > = 50% incoloro con negro centro Salmonella enteritidis ATCC 13076 50-100 goodluxuriant > = 50% incoloro con negro centro Shigella flexneri ATCC 12022 50-100 incoloro 40-50% bueno Referencia 1. Murray PR, Baron JH, Pfaller MA, Jorgensen JH y Yolken RH, (Eds.), 2003, Manual of Clinical Microbiology, 8th ed., American Society for Microbiology, Washington, DC,, 2. Downes FP y Ito, K., (Eds.), 2001, compendio de métodos para el análisis microbiológico de los alimentos, 4 ª Ed., APHA, Washington, D. C. 3. Wehr HM y Frank JH, 2004, Standard Methods para el análisis microbiológico de productos lácteos, 17 Ed., APHA Inc., Washington, D. C. 4. Eaton AD, Clesceri LS, Rice EW, y Greenberg, AW, (Eds.), 2005, Standard Methods para el examen de Agua y Aguas Residuales, Ed. 21., APHA, Washington, DC 5. Williams, S., (Ed.), 2005, Métodos Oficiales de Análisis de la Asociación de Químicos Analíticos Oficiales, Ed. 19., AOAC, Washington, D. C. 6. La Farmacopea de los Estados Unidos, 2006, USP29/NF24, Estados Unidos Pharmacopeial Convención. Rockville, MD. 7. MacFaddin JF, 1985, Medios para aislamiento, cultivo-identificación-Mantenimiento de la medicina bacterias, vol. Yo, Williams and Wilkins, Baltimore. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30 ° C y el medio preparado a 2 - 8 ° C. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta.

Selenito cistina base de caldo M1079 Se recomienda como un medio de enriquecimiento selectivo de Salmonella y Shigella sonnei, posiblemente, de las heces, orina, agua y productos alimenticios. Composición ** Ingredientes gr / Litro Hidrolizados de caseína enzimática 5,000 Lactosa 4,000 Fosfato disódico 10,000 L-Cistina 0,010 PH final (a 25 ° C) 7,0 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 19,01 gramos en 1000 ml de agua destilada. Añadir 4 gramos de selenito ácido de sodio (RM154). Caliente para disolver el medio por completo. Distribuir en tubos de ensayo estériles. Esterilizar en un baño de agua hirviendo o vapor que fluye libre por 10 minutos. No esterilizar en autoclave. Un calentamiento excesivo es perjudicial. Descartar el medio de preparados en caso de gran cantidad de selenita se reduce (indicado por precipitado rojo en la parte inferior del tubo / botella). Precaución: selenito ácido de sodio (biselenite de sodio) es muy tóxico y corrosivo agente y causas de teratogenicidad. Manejar con mucho cuidado. Si hay contacto con la piel, lavar inmediatamente con abundante agua. Principio e Interpretación Klett (1) demostró por primera vez los efectos de inhibición selectiva de selenita y Guth (2) utilizado para aislar Salmonella serotipo Typhi. Leifson investigado selenita y formuló los medios de comunicación. Selenito cistina Medio es un la modificación de Leifsons (3) la fórmula con adición de cistina (4). Modificación de la composición original y medios similares son recomendado por la AOAC, APHA, USP, etc (3-9). Los medios de enriquecimiento se utilizan de forma sistemática para la detección de patógenos en las heces como los patógenos están presentes en un número muy pequeño en la flora intestinal. Selenito Cistina Caldo es útil para la detección de la salmonela en las fases no agudas de la enfermedad cuando los organismos se producen en las heces de baja los números y para los estudios epidemiológicos para mejorar la detección de bajo número de organismos, desde asintomática o pacientes convalecientes (10). Hidrolizados de caseína enzimática proporciona sustancias nitrogenadas. Lactosa mantiene el pH del medio. Selenita se reduce por el crecimiento de bacterias y el álcali se produce. Un aumento en el pH disminuye la toxicidad de la selenita y los resultados en el crecimiento excesivo de otras bacterias. El ácido producido por las bacterias debido a la fermentación de lactosa sirve para mantener un pH neutro. Sodio fosfato mantiene un pH estable y también reduce la toxicidad de selenita. L-cistina mejora la recuperación de Salmonella. Caldo enriquecido se cultivan en los medios de comunicación diferencial, tales como placas de bismuto sulfito Agar (M027), verde brillante Agar (M016), XLD Agar (M031), etc No se incuba el caldo de más de 24 horas como efecto inhibidor de selenita disminuye después de 6 a 12 horas de incubación (11). Control de Calidad Apariencia Crema a amarillo claro homogéneo polvo suelto Color y la claridad de medio preparado Crema a amarillo solución transparente de color sin ningún tipo de precipitado Reacción Reacción del 1,9% w / v de por medio con 0,4% w / v de solución acuosa selenito a 25 ° C. pH:

7,0 ± 0,2 Respuesta de la Cultura M1079: Características culturales observado con añadido selenito ácido de sodio (RM154) cuando se cultivan en MacConkey Agar (M081), después de una incubación a 35-37 ° C durante 18-24 horas. Organismo inóculo (CFU) Recuperación de color de colonia Escherichia coli ATCC 25922 50-100 ninguno a los pobres (sin aumento en números) rosa con la bilis precipitado Salmonella Choleraesuis ATCC 12011 50-100 goodluxuriant incoloro HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Salmonella typhi ATCC 6539 50-100 goodluxuriant incoloro Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 goodluxuriant incoloro Referencia 1. Klett A., 1900, Zeitsch Für Hyg. Und. Infekt., 33: 137. 2. Guth, F., 1926, Zbl. Bakt. I. Orig., 77:487. 3. Leifson E., 1936, Am. J. Hyg., 24 (2): 423. 4. Norte W.R. y Bartran M.T., 1953, Appl. Microbiol., 1:130. 5. AOAC, 1978, bacteriológicas Analytic Manual, 5 ª ed., AOAC, Washington, DC 6. Downes FP y Ito, K. (Eds.), 2001, compendio de métodos de análisis microbiológico de los alimentos, , 4th ed., APHA, Washington, D. C. 7. Wehr HM y Frank JH, 2004, Standard Methods para el análisis microbiológico de productos lácteos, 17 Ed., APHA Inc., Washington, Distrito de Columbia 8. Eaton AD, Clesceri LS, Rice EW, y Greenberg A W., (Eds.), 2005, Standard Methods para el examen de Agua y Aguas Residuales, Ed. 21., APHA, Washington, DC 9. Farmacopea de los Estados Unidos, 2002, USP 25/NF 20, edición de Asia, Estados Unidos Pharmacopeial Convención, Inc., Rockville, MD. 10. Kelly, Brenner y Farmer, 1985, Manual of Clinical Microbiology, 4th ed., Lennett y otros (eds.), ASM, Washington, D. C. 11. Chattopadhyay W. y Pilford JN, 1976, Med.Lab. Sci.., 33:191. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30 ° C y el medio preparado a 2 - 8 ° C. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta.

Agar SS (Salmonella Shigella Agar) M108 Agar SS (Salmonella Shigella Agar) es un medio diferencial selectivo utilizado para el aislamiento de Salmonella y otros Especies de Shigella de muestras patológicas, los alimentos sospechosos, etc

Composición ** Ingredientes gr / Litro Extracto de carne de vacuno 5,000 Péptica resumen de tejido animal 5,000 Lactosa 10,000 Las sales biliares mezcla 8,500 Citrato de sodio 10,000 De tiosulfato de sodio 8,500 Citrato férrico 1,000 Brillante 0,00033 verde Rojo neutro 0,025 Agar 15,000 PH final (a 25 ° C) 7,0 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 63,02 gramos en 1000 ml de agua destilada. Hervir con agitación frecuente para disolver el medio por completo. DO No esterilizar en autoclave o de sobrecalentamiento. El recalentamiento puede destruir la selectividad del medio. Enfriar a 50 ° C. Mix y verter en placas de Petri estéril. Principio e Interpretación SS Agar se recomienda como un medio selectivo y diferencial para el aislamiento de Salmonella y Shigella especies de muestras patológicas (1) y los alimentos sospechosos (2, 3, 4, 5) y para la prueba de límite microbiano (6). Agar SS es un medio moderadamente selectiva en la que las bacterias gram-positivas son inhibidos por las sales biliares, verde brillante y de sodio citrato. Péptica resumen de tejidos de origen animal, extracto de carne de vacuno proporcionar los nutrientes esenciales para el crecimiento. La lactosa es el hidrato de carbono fermentables. Verde brillante, sales biliares y tiosulfato de inhibir selectivamente microorganismos gram-positivos y coliformes. Sodio de tiosulfato se reduce por determinadas especies de organismos entéricos de sulfito y de gas H2S y esta enzima reductora proceso es atribuido por la reductasa de tiosulfato. La producción de gas H2S se detecta como un precipitado negro insoluble de sulfuro de hierro, formado en la reacción del H2S con los iones de hierro o de citrato férrico, se indica en el centro de las colonias. La alta selectividad de Salmonella Shigella Agar permite el uso de los inóculos grandes directamente de las heces, hisopos rectales u otros materiales sospechosos de contener bacilos patógenos entéricos. En la fermentación de la lactosa por pocos lactosefermenting la flora intestinal normal, se produce el ácido que se indica por el cambio de color del amarillo al rojo por el indicador de pH rojo neutro. Así, estos organismos crecen como colonias de color rojo. No lactosa fermentación organismos crecer como transparente colonias incoloro, con o sin centros de negro. El crecimiento de las especies de Salmonella es desinhibido y aparece como colonias incoloras con los centros de negro resultante de la producción de H 2S. Especies de Shigella también crecen como colonias incoloras que no producen H2S. Se recomienda vacunar a las placas de los medios de comunicación menos inhibitoria paralela a SS Agar, como Hektoen Enteric Agar (M467) o desoxicolato citrato Agar (M065) para facilitar el aislamiento de especies de Shigella (7). Control de Calidad Apariencia Luz amarilla y rosa homogénea polvo suelto Gelificantes Firma, comparable con el 1,5% de gel de agar Color y la claridad de medio preparado

De color naranja de color rojizo claro a forma un gel ligeramente opalescente en placas de Petri

Reacción Reacción de 6,3% w / v en solución acuosa a 25 ° C. pH: 7,0 ± 0,2 HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Respuesta de la Cultura M108: Características culturales observadas después de una incubación a 35-37 ° C durante 18-24 horas. Organismo inóculo (CFU) Crecimiento de recuperación de color de colonia Escherichia coli ATCC 25922 50-100 justo 20-30% de color rosa con la bilis precipitado Enterobacter aerogenes ATCC 13048 50-100 justo 20-30% crema rosa Enterococcus faecalis ATCC 29212 50-100 ninguno de los pobres <= incoloro de 10% Proteus mirabilis ATCC 25933 50-100 justo incoloro 30-40% buena, puede tener centro negro Salmonella Choleraesuis ATCC 12011 50-100 goodluxuriant > = 50% incoloro con negro centro Salmonella typhi ATCC 6539 50-100 goodluxuriant > = 50% incoloro con negro centro Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 goodluxuriant > = 50% incoloro con negro centro Salmonella enteritidis ATCC 13076 50-100 goodluxuriant > = 50% incoloro con negro centro Shigella flexneri ATCC 12022 50-100 incoloro 40-50% bueno Referencia 1.Lennette y otros (eds.), 1985, Manual of Clinical Microbiology, 4th ed., ASM, Washington, DC 2.Downes FP e Ito K., (Eds.), 2001, compendio de métodos para el análisis microbiológico de los alimentos, 4 ª Ed., APHA, Washington, D. C.

3.Wehr HM y Frank JH, 2004, Standard Methods para el análisis microbiológico de productos lácteos, 17 Ed., APHA Inc., Washington, D. C. 4.Eaton AD, Clesceri LS, Rice EW, y Greenberg, AW, (Eds.), 2005, Standard Methods para el examen de Agua y Aguas Residuales, Ed. 21., APHA, Washington, DC 5.Williams S., (Ed.), 2005, Métodos Oficiales de Análisis de la Asociación de Químicos Analíticos Oficiales, Ed. 19., AOAC, Washington, D. C. 6.El Farmacopea de los Estados Unidos, 2006, USP29/NF24, La Convención de la Farmacopea de los Estados Unidos. Rockville, MD. 7.MacFaddin J., 1985, Medios para aislamiento, cultivo-identificación-Mantenimiento de la medicina bacterias, vol. I, Williams, y Wilkins, Baltimore. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30 ° C y el medio preparado a 2 - 8 ° C. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta.

Modificado Rappaport Vassiliadis Medio M1137 Modificado Rappaport Vassiliadis Medio se recomienda como un medio de enriquecimiento selectivo para el aislamiento de Especies de Salmonella de los alimentos y muestras ambientales. Composición ** Ingredientes gr / Litro Peptona de soya 5,000 Cloruro de sodio 8,000 Fosfato monopotásico 1,600 Cloruro de magnesio, 6H2O 40,000 0,040 malaquita verde PH final (al 25ТАC) 5.2ТБ0.2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 30,03 gramos de medio deshidratado en 1000 ml de agua destilada. Calentar ligeramente si es necesario para disolver el medio completamente. Prescindir de lo deseado en tubos y esterilizar en autoclave a presión de 10 libras (115ТАC) durante 15 minutos. Principio e Interpretación Modificado Rappaport Vassiliadis Medio es un caldo selectivo para el enriquecimiento de Salmonella en los productos alimenticios, medio ambiente y las muestras clínicas. La formulación original descrito por Rappaport et al (1) con cloruro de magnesio hexahidratado fue modificada por Vassiliadis et al (2) reduciendo la concentración de verde de malaquita y el aumento de la temperatura de incubación a 43ТАC. Este medio se recomienda como medio de enriquecimiento selectivo para el aislamiento de Salmonella de alimentos y muestras ambientales. La muestra de ensayo se añade el agua de peptona tamponada (M614) y se incuba a 35ТАC de 16 a 20 horas. Esta preenriched cultura del agua de peptona se inocula en Modificado Rappaport Vassiliadis Medio y se incuba a 42 ТБ 1ТАC de 24 a 48 horas y además cultivan en Brilliant Green Agar (M016). Control de Calidad Apariencia La luz amarilla a la luz azul homogénea polvo suelto Color y la claridad de medio preparado Solución de color azul claro sin preciitate Reacción Reacción del 3,0% w / v en solución acuosa 25ТАC. pH: 5.2ТБ0.2 Respuesta de la Cultura

M1137: Características culturales observadas después de una incubación a diferentes temperaturas durante 24-48 horas, cuando cultivan en Brilliant Green Agar Base (M016) y se incubaron a 35-37ТАC durante 18-24 horas. Organismo inóculo (CFU) La recuperación en 37ТАC La recuperación en 42 ТБ 1ТАC Color de la colonia Escherichia coli ATCC 25922 50-100 amarillento pobres justo verde Salmonella paratyphi B ATCC 8759 50-100 blanco rosa buena buena Salmonella enteritidis ATCC 13076 50-100 exuberante rosa blanco exuberante Salmonella typhi ATCC 6539 50-100 justo buenas rojo rosa justo Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 exuberante rosa blanco exuberante Referencia 1. Rappaport, F., Konforti N. y Navón B., 1956, J. Clin. Path., 9:261. 2. Vassiliadis P. Pateraki E., Papaiconomou N., Papadaicis JA, Trichopoulos D., 1976, Annales de Microbiologie (Instituto Pasteur), 127 B: 195. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30ТАC y el medio preparado a 2 - 8ТАC. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta.

Tetrationato CV caldo de enriquecimiento M1256 Tetrationato CV caldo de enriquecimiento se utiliza para el enriquecimiento selectivo de Salmonella de la carne y los productos alimenticios. Composición ** Ingredientes gr / Litro Hidrolizados de caseína enzimática 4,300 Péptica resumen de tejido animal 4,300 Cloruro de sodio 6,400 Potasio 20,000 tetrationato Cristal violeta 0,005 PH final (a 25 ° C) 6,5 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 35 gramos en 1000 ml de agua destilada. El calor si es necesario para disolver el medio por completo. Dispensar en tubos. No esterilizar en autoclave. Nota: El medio se debe utilizar en el día de preparación como el medio preparado no es estable. Principio e Interpretación El examen de los diversos tipos de productos de alimentos para la presencia de Salmonella requiere de métodos diferentes de los utilizados en los laboratorios clínicos. La necesidad de tales métodos se debe a los números generalmente bajo de Salmonella en los

los alimentos y el estado fisiológico con frecuencia los pobres de estos patógenos tras la exposición a condiciones de estrés durante el procesamiento de alimentos o el almacenamiento. Tetrationato CV caldo de enriquecimiento se utiliza para el enriquecimiento selectivo y aislamiento de los De Salmonella de la carne y los productos alimenticios. Tetrationato base de caldo fue descrita originalmente por Mueller (1) y se encontró que el medio inhibe selectivamente la coliformes y permite el crecimiento sin restricciones de los agentes patógenos entéricos. Mueller medio fue posteriormente modificado por Kauffman (2) y Knox (3) en el que obtuvieron mayor número de aislados. Tetrationato de Cristal Violeta caldo de enriquecimiento se ha elaborado como por la formulación descrita por Preuss (4) y se utiliza para el enriquecimiento selectivo de Salmonella de la carne y los productos alimenticios (5). Cumple con las especificaciones exigidas en la Ley de Inspección de Carnes de Alemania (6). Hidrolizados de caseína enzimática péptica y resumen de tejidos de origen animal son las fuentes de carbono, nitrógeno, vitaminas y minerales. Desoxicolato de sodio y el verde brillante y cristal violeta inhiben microorganismos gram-positivos. Los actos de potasio tetrationato como un agente selectivo. El cloruro de sodio mantiene el equilibrio osmótico del medio. Después de enriquecimiento de la muestra, racha en las placas de Brilliant Green Agar (M016), MacConkey Agar (M081), bismuto sulfito Agar (M027) para seguir Control de Calidad Apariencia Crema a amarillo puede tener tonos morados homogénea polvo suelto Color y la claridad de medio preparado Azul a la luz azul solución transparente de color sin ningún tipo de precipitado Reacción Reacción de 3,5% w / v en solución acuosa a 25 ° C. pH: 6,5 ± 0,2 Respuesta de la Cultura M1256: Características culturales observadas después de una incubación a 35-37 ° C durante 18-24 horas (la recuperación se hace en Brilliant Green Agar M016). Organismo inóculo (CFU) Crecimiento en M016 Color de la colonia Escherichia coli ATCC 25922 50-100 ninguno amarillento pobres verde Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 goodluxuriant blanco rosado Salmonella enteritidis ATCC 13076 50-100 goodluxuriant blanco rosado confirmación. HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Staphylococcus aureus ATCC 25923 > = 10 ³ inhibido Referencia

1.Mueller L., 1923, SOC. Biol., (París), 89:434. 2.Kauffman F., 1930, Zentralb. Bakteriol. Parasitenkd. Infektionskr-Hyg. Abt. I. Orig., 113:148. 3.Knox R., Gell P. y M. Pollack, 1942, J. Pathol. Bacteriol, 54:469. 4.Preuss H., 1949, Z. Hyg., 129:187. 5.MacFaddin JF, 1985, Medios para aislamiento, cultivo-identificación-Mantenimiento de la medicina bacterias, vol. 1, Williams and Wilkins, Baltimore. 6.Deutsches Fleischbeschaugesetz: Anlage 1zu: 20 Abs. 4. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30 ° C y el uso medio recién preparada. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta.

Mueller Kauffman tetrationato Novobiocina base de caldo M1496I Mueller Kauffman tetrationato Novobiocina base de caldo se utiliza para el enriquecimiento y mejora de aislamiento de Salmonella. Composición ** Ingredientes gr / Litro Péptica resumen de tejido animal 4,300 Hidrolizados de caseína enzimática 8,600 Ox 4,750 biliares Cloruro de sodio 2,600 Carbonato de calcio 38,700 De tiosulfato de sodio pentahidratado 47,800 0,0095 verde brillante PH final (al 25ТАC) 8.2ТБ0.2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 89,42 gramos de mediumI deshidratado en 1000 ml de agua destilada. Calentar el medio justo de ebullición. NO AUTOCLAVE. Enfriar a 45-50ТАC y justo antes de su uso de forma aséptica añadir 20 ml de solución de yodo (20 gramos de yodo y 25 de gramos de yoduro de potasio en 100 ml de agua destilada estéril), junto con el contenido de rehidratada de 1 vial de MKTT Novobiocina Suplemento (FD203). Mezclar bien para dispersar el carbonato de calcio de manera uniforme antes de la dispensación en tubos estériles. Nota: Debido a la presencia de carbonato de calcio, los formularios preparados medios de solución opalescente con precipitado blanco. Principio e Interpretación El examen de los diversos tipos de productos alimenticios para Salmonella requiere de métodos diferentes de los utilizados en los laboratorios clínicos. La necesidad de tal método se debe a los números generalmente bajo de Salmonella en los alimentos y los el estado fisiológico con frecuencia pobres de estos patógenos tras la exposición a condiciones de estrés durante la comida transformación o almacenamiento. Lesionado Salmonella son resucitados en un medio no selectivo caldo, lo que facilita la detección de de Salmonella subletalmente heridos. El pre ideal caldo de enriquecimiento debería prever la reparación de los daños celulares, diluidas de sustancias tóxicas o inhibidoras y nutritivos suficientes para favorecer el crecimiento de Salmonella. En el análisis de los alimentos de Salmonella, las culturas pre-enriquecimiento suelen ser incubadas a 35-37ТАC durante 18-24 horas y luego una parte se sub culto a uno o varios caldos de enriquecimiento selectivo. Normalmente 1 ml de la cultura pre-enriquecimiento se inocula a 9 de ml de caldo de enriquecimiento selectivo. Medios de enriquecimiento selectivo selectivo contiene ingredientes que permiten la proliferación de de Salmonella e inhibir el crecimiento de los competidores no los microorganismos de la salmonela. Caldo de lactosa (M1003) es Recomendado por BAM para la pre-enriquecimiento de Salmonella de los alimentos.

Enriquecimiento selectivo se realiza en tetrationato Caldo de Rappaport y Vassiliadis Medio. Para la detección de Salmonella de origen alimentario, diferentes modificaciones de la Caldo tetrationato generalmente han encontrado una aplicación más amplia (7). Mueller (1) recomienda tetrationato caldo como un medio selectivo para el aislamiento de Salmonella. Kauffman (2) modificó la fórmula para incluir la bilis de buey y verde brillante como agentes selectivos para eliminar bacterias como Proteus especies. La especificación del estándar británico especifica Brilliant Green tetrationato Caldo para el aislamiento de Salmonella de la carne y productos cárnicos y de aves de corral y productos de aves de corral (3). También es un caldo selectivo recomendado para el aislamiento de Salmonella de las heces de los animales y el agua contaminada con aguas residuales (4). La selectividad es conferido por tetrationato (de de la reacción de tiosulfato y yodo). Uso de más de un caldo selectivo aumenta el aislamiento de Salmonella a partir de muestras con múltiples serotipos (5). Mueller Kauffman tetrationato Novobiocina base de caldo contiene caseína hidrolizada enzimática péptica y resumen de tejidos de origen animal como fuente de carbono, nitrógeno, vitaminas y minerales. Bilis de buey y añadió verde brillante son selectivos los agentes que inhiben gram-positivas y gram-negativos de otros. El carbonato de calcio es el buffer. Sodio el cloruro de mantener el equilibrio osmótico. De tiosulfato de sodio es una fuente de azufre. El tetrationato (S4O6) aniones constituyen el principio del agente selectivo en estos medios de enriquecimiento. Si lo desea, 4 mg de novobiocina por litro de caldo puede se añade a suprimir especies de Proteus (6). Añadir aproximadamente 10 gramos de muestra a 100 ml de caldo. Agitar bien y colocar el matraz en un baño de agua 45ТАC durante 15 minutos. Retirar los frascos y colocarlos en una incubadora o baño de agua en HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 43ТАC. Varios estudios han mostrado una mayor recuperación de Salmonella Después de la incubación de enriquecimiento selectivo en 43ТАC (8). Después de una incubación de 18-24 horas y 48 horas, en la subcultura de Brilliant Green Agar, Modificado (M016). Esto medio no es adecuado para el crecimiento de Salmonella typhi, Salmonella Sendai, y Salmonella pullorum, etc El medio completo es inestable y debe ser utilizado inmediatamente. Se puede almacenar a 2-8ТАC en la oscuridad por no más de 7 días. De otros organismos de Salmonella, como Morganella morganii y algunas enterobacterias puede crecer en el medio. Por lo tanto, las pruebas de confirmación debe llevarse a cabo en todas las colonias de presunción de Salmonella que se recuperan. Control de Calidad Apariencia Crema de color verde amarillento homogéneo polvo suelto Color y la claridad de medio preparado Luz verde de color opalescente, con formas de solución de precipitado blanco pesados Reacción Reacción de 8,93% w / v en solución acuosa 25ТАC. pH: 8.2ТБ0.2 Respuesta de la Cultura M1496I: características culturales observados después de una incubación a 43ТАC de 18-48 horas con el agregado de yodo 20ml solución y MKTT Novobiocina Suplemento (FD203), cuando se cultivan en soja de caseína Digest Agar (M290). Organismo inóculo (CFU)

Recuperación Escherichia coli ATCC 25922 50-100 ninguno de los pobres Proteus vulgaris ATCC 13315 50-100 ninguno de los pobres Shigella flexneri ATCC 12022 > = 10ТГ inhibido Salmonella enteritidis ATCC 13076 50-100 excelente Salmonella paratyphi A ATCC 9150 50-100 excelente Salmonella paratyphi B ATCC 8759 50-100 excelente Salmonella typhi ATCC 6539 > = 10ТГ inhibido Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 excelente Referencia 1.Mueller L., 1923, C. R. Soc. Biol., (Paris) 89:434. 2.Kauffman F., 1935, Ztschr. F. Hyg., 117:26. 3Las Organización Internacional de Normalización, 1974, (Proyecto de Norma Internacional ISO / DIS 3565), Ginebra, Suiza. 4.Public Health Laboratory Service, 1974, Serie de Monografías N º 8, Public Health Laboratory Service, Londres, Inglaterra. 5.Harvey R. W. S. y Price T. S., 1976, J. Hyg. Camb., 77:333. 6.Jeffries L., 1959, J. Clin. Pathol., 12:568. 7.Speck ML, (Ed.), 1984, compendio de métodos para el análisis microbiológico de los alimentos, 2 ª ed., American Public Health Association, Washington, D. C. 8.DAoust JY, 1989, Salmonella en los alimentos patógenos bacterianos, (Eds.) Doyle, MP, 327, Marcel Dekker, Nueva York. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30ТАC y el medio preparado en 2-8ТАC. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta.Sugiere una traducción mejor

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Tetrationato base de caldo, Hajna (TT base de caldo) M327 Tetrationato base de caldo, Hajna se utiliza para el enriquecimiento y el aislamiento de Salmonella. Composición ** Ingredientes gr / Litro Peptona, especiales 18,000 Extracto de levadura 2,000 Cloruro de sodio 5,000 D-Manitol 2,500 Dextrosa 0,500 Desoxicolato de sodio 0,500 De tiosulfato de sodio 38,000 Carbonato de calcio 25,000 0,010 verde brillante PH final (a 25 ° C) 7,6 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 91,51 gramos en 1000 ml de agua destilada. Llevar a ebullición para disolver completamente el medio o lugar en que fluye de vapor durante 30 minutos. No esterilizar en autoclave. Enfriar a 45 ° C. Mezclar y añadir 40 ml de solución de yodo (8 g de potasio y 5 g de yoduro de yodo por cada 40 ml). Mezclar y dispensar cantidades 10 ml en tubos. No caliente después de la adición de yodo. Nota: Debido a la presencia de carbonato de calcio, las formas de mediano preparado solución opalescente, con un blanco precipitado. Principio e Interpretación Tetrationato base de caldo se formuló por primera vez por Mueller (1) que puso de manifiesto que este medio favorece la libre el crecimiento de patógenos entéricos por la inhibición selectiva de la coliformes. Medio Mueller fue posteriormente modificado por Kauffman (2) y Knox (3) en el que obtuvieron mayor número de cepas. Tetrationato base de caldo, es Hajna la modificación formulada por Hajna y Damon (4). Este medio es recomendado por APHA (5) para el selectivo de enriquecimiento de Salmonella en los alimentos. Peptona especial y extracto de levadura son las fuentes de carbono, nitrógeno, vitaminas y minerales. La selectividad depende de la capacidad de tiosulfato y tetrationato (formado por la adición de yodo-yoduro) para suprimir coliformes comensales organismos (6, 7). Desoxicolato de sodio y el verde brillante inhiben microorganismos gram-positivos. La dextrosa y el manitol las fuentes de hidratos de carbono. El carbonato de calcio neutraliza la acidez de los productos de descomposición tetrationato. Sodio Cloruro mantiene el equilibrio osmótico del medio. Después de enriquecimiento de la muestra, racha en las placas de Brillante Green Agar (M016), MacConkey Agar (M081), bismuto sulfito Agar (M027) para una nueva confirmación, Control de Calidad Apariencia Crema a la luz verde homogéneo polvo suelto Color y la claridad de medio preparado Luz verde de color opalescente, con solución de precipitado blanco, de pie sobre el precipitado se establece. Reacción Reacción del 9,15% w / v en solución acuosa a 25 ° C. pH: 7,6 ± 0,2

Respuesta de la Cultura M327: Características culturales observadas después de una incubación a 35-37 ° C durante 18-24 horas (la recuperación se hace en MacConkey Agar M081). Organismo inóculo (CFU) Crecimiento en M081 Color de la colonia Escherichia coli ATCC 25922 50-100 justo buena rosa-rojo con la bilis precipitado Salmonella Arizonae ATCC 13314 50-100 goodluxuriant incoloro Salmonella enteritidis ATCC 13076 50-100 goodluxuriant incoloro HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 goodluxuriant incoloro Shigella dysenteriae ATCC 13313 50-100 goodluxuriant incoloro Referencia 1. Mueller, L., 1923, C. R. Soc. Biol. (París), 89:434. 2. Kauffman, F., 1930, Zentralb. Bakteriol. Parasitenkd. Infektionskr-Hyg. Abt. I. Orig., 113:148. 3. Knox, R., Gell P. y M. Pollack, 1942, J. Pathol. Bacteriol, 54:469. 4. Hajna A. A. y Damon S. R., 1956, Appl. Microbiol., 4:341. 5. Downes FP y Ito, K., (Eds.), 2001, compendio de métodos para el análisis microbiológico de los alimentos, 4 ª Ed., APHA, Washington, D. C. 6. MacFaddin JF, 1985, Medios para aislamiento, cultivo-identificación-Mantenimiento de la medicina bacterias, vol. 1, Williams and Wilkins, Baltimore. 7. Pollock MR y Knor R., 1943, Biochem J., 37:476. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30 ° C y el uso medio recién preparada. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta

Mueller Kauffman tetrationato base de caldo M876 Mueller Kauffman tetrationato caldo se utiliza para el enriquecimiento de la mejora y el aislamiento de Salmonella. Composición ** Ingredientes gr / Litro Hidrolizados de caseína enzimática 7,000 Papaic resumen de harina de soja 2,300 Cloruro de sodio 2,300 Carbonato de calcio 25,000 De tiosulfato de sodio 40,700 Ox 4,750 biliares

PH final (al 25ТАC) 7.8ТБ0.2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 82,05 gramos en 1000 ml de agua destilada. Calentar el medio justo de ebullición. No esterilizar en autoclave. Enfriar y justo antes de usar añadir asépticamente 19 ml de solución de yodo (20 g de yodo y 25 g de yoduro de potasio en 100 ml de agua destilada estéril) y 9,5 ml de solución al 0,1% de un verde brillante. Mezclar bien para dispersar el carbonato de calcio de manera uniforme antes de la dispensación en tubos estériles. Nota: Debido a la presencia de carbonato de calcio, los formularios preparados medios de solución opalescente con precipitado blanco Principio e Interpretación El examen de los diversos tipos de productos alimenticios para Salmonella requiere de métodos diferentes de los utilizados en los laboratorios clínicos. La necesidad de tal método se debe a los números generalmente bajo de Salmonella en los alimentos y los el estado fisiológico con frecuencia pobres de estos patógenos tras la exposición a condiciones de estrés durante la comida transformación o almacenamiento. Lesionado Salmonella son resucitados en un medio no selectivo caldo, lo que facilita la detección de de Salmonella subletalmente heridos. El pre ideal caldo de enriquecimiento debería prever la reparación de los daños celulares, diluidas de sustancias tóxicas o inhibidoras y nutritivos suficientes para favorecer el crecimiento de Salmonella. En el análisis de los alimentos de Salmonella, las culturas pre-enriquecimiento suelen ser incubadas a 35-37ТАC durante 18-24 horas y luego una parte se subcultivo para uno o varios caldos de enriquecimiento selectivo. Normalmente 1 ml de la cultura pre-enriquecimiento se inocula a 9 de ml de caldo de enriquecimiento selectivo. Medios de enriquecimiento selectivo selectivo contiene ingredientes que permiten la proliferación de de Salmonella e inhibir el crecimiento de los competidores no los microorganismos de la salmonela. Caldo de lactosa (M1003) es Recomendado por BAM para la pre-enriquecimiento de Salmonella de los alimentos. Enriquecimiento selectivo se realiza en tetrationato Caldo de Rappaport y Vassiliadis Medio. Para la detección de Salmonella de origen alimentario, diferentes modificaciones de la Caldo tetrationato generalmente han encontrado una aplicación más amplia (7). Mueller (1) recomienda tetrationato caldo como un medio selectivo para el aislamiento de Salmonella. Kauffman (2) modificó la fórmula para incluir la bilis de buey y verde brillante como agentes selectivos para eliminar bacterias como Proteus especies. La especificación del estándar británico especifica Brilliant Green tetrationato Caldo para el aislamiento de Salmonella de la carne y productos cárnicos y de aves de corral y productos de aves de corral (3). También es un caldo selectivo recomendado para el aislamiento de Salmonella de las heces de los animales y el agua contaminada con aguas residuales (4). La selectividad es conferido por tetrationato (de de la reacción de tiosulfato y yodo). Uso de más de un caldo selectivo aumenta el aislamiento de Salmonella a partir de muestras con múltiples serotipos (5). Mueller Kauffman tetrationato base de caldo se ajusta a las especificaciones de la norma ISO (9). Mueller Kauffman tetrationato base de caldo contiene caseína hidrolizada enzimática y papaic resumen de harina de soja como fuentes de carbono, nitrógeno, vitaminas y minerales. Bilis de buey y añadió verde brillante son los agentes selectivos, lo que inhibir bacterias gram-positivas y gram-negativos de otros. El carbonato de calcio es el buffer. El cloruro de sodio mantiene el equilibrio osmótico. De tiosulfato de sodio es una fuente de azufre. El tetrationato (S4O6)

aniones constituyen el principio de agente selectivo en estos medios de enriquecimiento. Si lo desea, 4 mg de novobiocina por litro de caldo se puede añadir a suprimir Especies de Proteus (6). Añadir aproximadamente 10 gramos de la muestra a 100 ml de caldo. Agitar bien y colocar el matraz en un baño de agua para 45ТАC 15 minutos. Retirar los frascos y colocarlos en una incubadora o baño de agua a 43ТАC. Varios estudios han demostrado mayor HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 la recuperación de Salmonella después de la incubación de enriquecimiento selectivo en 43ТАC (8). Después de una incubación de 18-24 horas y 48 horas, subcultivo en Brilliant Green Agar, Modificado (M016). Este medio no es adecuado para el crecimiento de Salmonella typhi, Salmonella Sendai, y Salmonella pullorum, etc El medio completo es inestable y debe ser utilizado inmediatamente. Se puede almacenar a 2-8ТАC en la oscuridad por no más de 7 días. De otros organismos de Salmonella, como Morganella morganii y algunas enterobacterias pueden crecer en el medio. Por lo tanto, las pruebas de confirmación debe llevarse a cabo en todas las colonias de presunción de Salmonella que se recuperado. Control de Calidad Apariencia Crema a amarillo homogéneo polvo suelto Color y la claridad de medio preparado Con adición de yodo y de solución de verde brillante - Luz verde de color opalescente, con formas de solución de gran blanco precipitado Respuesta de la Cultura M876: Características culturales observados, cuando cultivan en soja de caseína digerir Agar, después de una incubación en 43ТАC de 18-24 horas con adición de yodo y de solución de verde brillante. Organismo inóculo (CFU) Recuperación Salmonella typhimurium ATCC 14028 50-100 excelente Salmonella enteritidis ATCC 13076 50-100 excelente Salmonella paratyphi A ATCC 9150 50-100 excelente Salmonella paratyphi B ATCC 8759 50-100 excelente Salmonella typhi ATCC 6539 > = 10ТГ inhibido Escherichia coli ATCC 25922 50-100 ninguno de los pobres Proteus vulgaris ATCC 13315 50-100 ninguno de los pobres Shigella flexneri ATCC12022

> = 10ТГ inhibido Referencia 1.Mueller L., 1923, C. R. Soc. Biol., (Paris) 89:434. 2.Kauffman F., 1935, Ztschr. F. Hyg., 117:26. 3Las Organización Internacional de Normalización, 1974, (Proyecto de Norma Internacional ISO / DIS 3565), Ginebra, Suiza. 4.Public Health Laboratory Service, 1974, Serie de Monografías N º 8, Public Health Laboratory Service, Londres, Inglaterra. 5.Harvey R. W. S. y Price T. S., 1976, J. Hyg. Camb., 77:333. 6.Jeffries L., 1959, J. Clin. Pathol., 12:568. 7.Speck ML, (Ed.), 1984, compendio de métodos para el análisis microbiológico de los alimentos, 2 ª ed., American Public Health Association, Washington, D. C. 8.DAoust JY, 1989, Salmonella en los alimentos patógenos bacterianos, (Eds.) Doyle, MP, 327, Marcel Dekker, Nueva York. 9.International Organization for Standardization (ISO), 2002, Proyecto de 6579. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30ТАC y usar el medio recién preparada. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta

De caseína de soja Digest Medio (Triptona soja caldo) M011 De caseína de soja Digest Medio es un medio de propósito general utilizado para el cultivo de una amplia variedad de microorganismos y se recomienda para el ensayo de esterilidad de mohos y bacterias más bajos. Composición ** Ingredientes gr / Litro Resumen pancreático de caseína 17,000 Papaic resumen de harina de soja 3,000 Cloruro de sodio 5,000 Dextrosa 2,500 De fosfato dibásico de potasio 2,500 PH final (a 25 ° C) 7,3 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 30 gramos en 1000 ml purificada y agua destilada. El calor si es necesario para disolver el medio por completo. Esterilizar en autoclave a presión de 15 libras (121 ° C) durante 15 minutos. Mezclar bien y distribuir como se desee. Principio e Interpretación De caseína de soja Digest Medio es recomendado por las farmacopeas diferentes como el ensayo de esterilidad y como microbiana limitar las pruebas media (1, 2, 3). Este medio es un medio altamente nutritivo utilizado para el cultivo de una amplia variedad de organismos (4). La combinación de resumen pancreático de caseína y de papaic resumen de harina de soja hace que el medio nutritivo de prestación de aminoácidos y péptidos de cadena larga para el crecimiento de microorganismos. Dextrosa y dibásico de potasio fosfato de servir como fuente de hidratos de carbono y el búfer, respectivamente, en el medio. El cloruro de sodio mantiene el el equilibrio osmótico del medio. Control de Calidad Apariencia Crema a amarillo homogéneo polvo suelto Color y la claridad de medio preparado Luz amarilla solución transparente de color sin ningún tipo de precipitado.

Reacción Reacción del 3,0% w / v en solución acuosa a 25 ° C. pH: 7,3 ± 0,2 Promoción del crecimiento de prueba De conformidad con el método armonizado de la USP / EP / BP / JP. Prueba de estabilidad Luz amarilla solución transparente de color sin ningún tipo de precipitación o sedimentación a temperatura ambiente durante 7 días Respuesta de la Cultura M011: Características culturales observadas después de una incubación a - Organismo inóculo (CFU) Crecimiento Crecimiento a 30-35 ° C durante <= 3 días Escherichia coli ATCC 25922 50 -100 exuberante Escherichia coli ATCC 8739 50 -100 exuberante Escherichia coli NCTC 9002 50 -100 exuberante Salmonella Abony NCTC 6017 50 -100 exuberante Salmonella typhimurium ATCC 14028 50 -100 exuberante Bacillus subtilis ATCC 6633 50 -100 exuberante Staphylococcus aureus ATCC25923 50 -100 exuberante Staphylococcus aureus ATCC 6538 50 -100 exuberante HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Micrococcus luteus ATCC 9341 50 -100 exuberante Streptococcus pneumoniae ATCC 6305 50 -100 exuberante Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 50 -100 exuberante Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027 50 -100 exuberante Crecimiento a 20-25 ° C para <= 5 días Candida albicans ATCC10231 50 -100 exuberante Candida albicans ATCC 2091 50 -100 exuberante * Brasiliensis Aspergillus ATCC 16404 50 -100 exuberante Referencia 1.MacFaddin JF, 1985, Medios para aislamiento, cultivo-identificación-Mantenimiento de la medicina bacterias, vol. 1,

Williams & Wilkins, Baltimore, M.D. 2.El United States Pharmacopeia, 2008, USP31/NF26, Estados Unidos Pharmacopeial Convención, Rockville, MD. 3.Indian Farmacopea de 2007, Gob. de la India, Ministerio de Salud y Bienestar de la Familia, Nueva Delhi, India. 4.Forbes BA, Sahm DF y Weissfeld AS, 1998, Bailey y Scotts diagnóstico Microbiología, 10th ed., Mosby, Inc., St. Louis, Mo. Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30 ° C y el medio preparado a 2 - 8 ° C. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta. Clave: *- Anteriormente conocido como Aspergillus NígerBrilliant Green Agar Base, Modificado M016 Brilliant Green Agar (Modificado) se utiliza para el aislamiento selectivo de Salmonella que no sean de Salmonella typhi faecesand otros materiales. Composición ** Ingredientes gr / Litro Peptona proteosa 10,000 Extracto de levadura 3,000 Lactosa 10,000 Sacarosa 10,000 Cloruro de sodio 5,000 Rojo de fenol 0,080 0,0125 verde brillante Agar 20,000 PH final (a 25 ° C) 6,9 ± 0,2 ** Fórmula ajustado, estandarizada para adaptarse a los parámetros de rendimiento Cómo llegar Suspender 29 gramos en 500 ml de agua destilada. Llevar a ebullición para disolver el medio por completo. Esterilizar en autoclave a 15 libras de presión (121 ° C) durante 15 minutos. Evitar el sobrecalentamiento. Para mayor selectividad, añadir asépticamente rehidratado contenido de 1 vial de sulfa Suplemento (FD068). Mezclar bien antes de verter en placas de Petri estéril. Principio e Interpretación Especies de Salmonella causan muchos tipos de infecciones, de la auto-limitación de la gastroenteritis leve a mortal fiebre tifoidea fiebre. La forma más común de enfermedad de la Salmonella es autolimitada gastroenteritis con fiebre que dura menos de 2 días y la diarrea que duran menos de 7 días (9). Brilliant Green Agar Base, se modificó, como un medio de recubrimiento primario para el aislamiento de especies de Salmonella por primera vez descrito por Kristensen et al. al. (1) y modificado nuevamente por Kauffmann (2). Brilliant Green Agar También se recomienda por APHA (3,4) de la FDA (5) y se describe en EP, BP y la PI (6,7,8). Este medio contiene verde brillante, que inhibe el crecimiento de la mayoría de bacterias Gram-negativas y Gram-positivas. Salmonella typhi, Escherichia coli, Shigella especies, especies de Pseudomonas, Staphylococcus aureus son en su mayoría inhibido. Las muestras clínicas pueden ser directamente chapado en este medio. Sin embargo, ser muy selectivo, es recomendó que este medio debe ser utilizado junto con un medio menos inhibitoria para aumentar las posibilidades de recuperación. A menudo las culturas enriquecido en selenita o tetrationato caldo se siembra sobre Brilliant Green Agar con sulfito de bismuto Agar, SS Agar, MacConkey Agar. El medio contiene peptona proteosa y extracto de levadura como fuente de carbono, nitrógeno, vitaminas, aminoácidos y nutrientes esenciales. Los dos azúcares es decir, la lactosa y sacarosa, sirven como fuentes de

energía. La fermentación de lactosa y / o de sacarosa en medio de los resultados en la formación de pH ácido que es detectado por el indicador rojo de fenol. Cloruro de sodio mantiene el equilibrio osmótico. Verde brillante ayuda a inhibir la microflora contaminante. El medio se puede seguir complementado con sulphacetamide (1g / l) y mandelato de sodio (0,25 G / l) para inhibir la contaminación microbiana cuando la muestra se sospecha que contiene gran número de organismos que compiten con las especies de Salmonella (10). No fermenta la lactosa, las bacterias se desarrollan colonias de color blanco a rosado rojo dentro de 18 a 24 horas de incubación. Salmonella Typhi y Shigella no pueden crecer en este medio. Además Proteus, Pseudomonas y Citrobacter

especies pueden confundirse con los agentes patógenos entéricos mediante la producción de pequeñas colonias rojas. Control de Calidad Apariencia Luz amarilla a luz rosa Homogénea de flujo libre de polvo Gelificantes Firma, comparable con el 2,0% en gel de agar. Color y la claridad de medio preparado Verde, marrón claro a forma un gel ligeramente opalescente en Petriplates Reacción Reacción del 5,8% w / v en solución acuosa a 25 ° C. pH: 6,9 ± 0,2 HiMedia Técnico de Laboratorio de Datos 2 Respuesta de la Cultura Respuesta de la Cultura se llevó a cabo después de una incubación a 30-35 ° C durante 24-48 horas. Tasa de recuperación es considerada como 100% para el crecimiento de bacterias en la caseína de soja Digest Agar. Respuesta de la Cultura Organismo inóculo (CFU) El valor del lote de crecimiento (CFU) Recuperación de color de Colonia Color de la colonia Salmonella typhimurium ATCC 14028 50 -100 goodluxuriant 25 -100> = 50% blanco rosado Salmonella Abony NCTC 6017 50 -100 goodluxuriant 25 -100> = 50% blanco rosado Salmonella enteritidis ATCC 13076 50 -100 frondosos 25 -100> = 50% blanco rosado Salmonella typhi ATCC 6539 50 -100 justo buenas 15 -40 30 -40% rojizo color de rosa Escherichia coli ATCC 25922 50 -100 ninguno amarillento 0 -10 0 -10% de pobres verde Escherichia coli ATCC 8739 50 -100 ninguno amarillento 0 -10 0 -10% de pobres verde Escherichia coli NCTC 9002 50 -100 ninguno amarillento 0 -10 0 -10% de pobres

verde Staphylococcus aureus ATCC 25923 > = 10 ³ inhibido 0% Staphylococcus aureus ATCC 6538 > = 10 ³ inhibido 0% Referencia 1. Kristensen, M., Lester V, y Jurgens A., 1925, Brit.J.Exp.Pathol., 6:291. 2. Kauffman, F., 1935, Seit F. Hyg. 177:26. 3. Downes FP y Ito, K. (Ed), 2001, Compendio de Métodos para el examen microbiológico de los alimentos, 4 ª ed. APHA, Washington, D. C. 4. Standard Methods para el análisis microbiológico de productos lácteos, 1995, Ed. 19, APHA, Washington, DC, 5. Bacteriological Analytical Manual, 5th Ed., 1978, AOAC, Washington, DC 6. La Farmacopea Europea, 2008, Consejo de Europa, Estrasburgo. 7. La Farmacopea Británica, 2007 vol. II, Londres. 8. Farmacopea de la India, de 2007, Ministerio de Salud y Bienestar Familiar, Gob., De la India,

Almacenamiento y vida en Conservar por debajo de 30 ° C y el medio preparado entre 2 a 8 ° C. Usar antes de la fecha de caducidad en la etiqueta.