(d)persiapan bahan eksplan
DESCRIPTION
jTRANSCRIPT
PERSIAPAN, PEMILIHAN DAN STERILISASI EKSPLAN
A. Tujuan Pembelajaran Umum (TPU).
Setelah selesai berlatih, peserta memahami persiapan, pemilihan dan sterilisasi
eksplan.
B. Pokok Bahasan :
1. Pengertian eksplan dan beberapa golongan eksplan menurut jaringan yang akan
dibiakkan.
2. Kondisi atau syarat/pertimbangan pemilihan bahan eksplan
3. Perlakuan bahan eksplan
4. Perkembangan eksplan menjadi plantlet.
C. Tujuan Pembelajaran Khusus (TPK).
Setelah selesai berlatih, peserta dapat :
1. Menjelaskan pengertian eksplan dan beberapa golongan eksplan menurut jaringan
yang akan dibiakkan dengan benar.
2. Menjelaskan kondisi atau syarat/pertimbangan pemilihan bahan eksplan dengan
benar.
3. Melaksanakan perlakuan terhadap bahan eksplan dengan benar.
4. Menjelaskan perkembangan eksplan menjadi plantlet dengan benar.
5. Menjelaskan tata cara sterilisasi eksplan yang baik dan benar.
6. Menjelaskan konsep dasar pengenceran (penurunan konsentrasi) bahan-bahan
sterilisasi eksplan.
INFORMASI :
Informasi 1. Pengertian Eksplan dan Beberapa Golongan Eksplan
Menurut Jaringan yang Akan Dibiakan.
Eksplan adalah bagian tanaman yang akan dikulturkan. Jika semua faktor yang
mempengaruhi keberhasilan dalam teknologi kultur jaringan berjalan dengan baik,
maka dari satu eksplan akan diperoleh ribuan tanaman. Tentu saja, akan lebih baik jika
kita memulai dengan beberapa eksplan untuk menghindari kehilangan eksplan sebagai
akibat dari kontaminasi, perlakuan pada eksplan saat sterilisasi misalnya penggunaan Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011
1
anti kontaminan yang berlebihan seperti Na-Hipoklorit (merek dagang: Bayclin, Clorox
dsb. dengan bahan aktif Na-CLO) atau disebabkan karena keadaan eksplan yang sudah
berpotensi untuk mengakibatkan kontaminasi.
Ukuran eksplan berkisar antara ukuran yang mikroskopis mulai 0,1 mm sampai
dengan ukuran yang cukup besar yang dapat mencapai 1 sampai 3 cm. Eksplan pada
prinsipnya dapat berasal dari semua jaringan. Eksplan dapat digolongkan menurut asal
eksplan jaringan yang akan dibiakan, yaitu :
1. Bagian tanaman yang terletak antara ujung tanaman seperti pucuk tanaman atau
ujung akar, jaringan ini mempunyai ciri cepat dalam tingkat sel, sel-selnya mudah
membelah atau meristematis dan ukurannya sangat kecil, diperlukan alat bantu
berupa mikroskop Tipe Meristem.
2. Pucuk
3. Batang
4. Antera
5. Bunga
6. Daun
7. Embrio
8. Hipokotil
9. Benih
10. Bibit
11. Akar
12. Bakal bunga
Informasi 2. Kondisi atau Syarat/Pertimbangan Pemilihan Bahan
Eksplan.
Penggunaan bahan eksplan sebagai bahan awal untuk dimulainya kultur
jaringan sangat dipengaruhi banyak faktor, termasuk di antaranya eksplan dapat diambil
dari tanaman yang tumbuh dari lingkungan yang berbeda, usia tanaman yang berbeda.
Kondisi optimal eksplan sulit untuk diperkirakan. Meskipun faktor-faktor tersebut
sudah diketahui, tetapi tidak dapat memberikan jaminan keberhasilan suatu petunjuk
atau suatu prosedur penggunaan eksplan. Selain itu, faktor genotipe tanaman, morfologi
eksplan, asal tanaman (dari rumah kaca atau lapangan) sangat menentukan keberhasilan
penggunaan eksplan.
Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011 2
Tahap yang paling sulit dalam persiapan eksplan adalah mempersiapkan
eksplan yang bersih. Petunjuk di bawah ini akan memudahkan pekerjaan, bagaimana
memperoleh eksplan yang bersih:
- Gunakan tunas yang baru tumbuh dari suatu tanaman karena tunas yang baru tumbuh
lebih bersih dibandingkan tunas yang berumur tua, dan mudah untuk dibersihkan.
- Tanaman dalam rumah kaca, tunas-tunas yang mengalami dormansi sering lebih
bersih dibandingkan dengan eksplan yang berasal dari tanaman yang tumbuh di lahan
terbuka.
- Plastik yang ditutupkan pada tunas yang akan tumbuh pada beberapa hari berikutnya
akan diperoleh tunas yang lebih bersih, tetapi dalam kondisi demikian tunas yang
terbentuk seringkali terbakar akibat terlalu tingginya suhu dan kelembaban di dalam
plastik. Untuk menghindarinya dapat digunakan naungan untuk mengurangi
intensitas cahaya yang masuk.
- Ukuran eksplan yang kecil lebih bersih dibandingkan yang berukuran besar.
- Penggunaan bahan untuk sterilisasi eksplan sebaiknya dimulai dari konsentrasi
rendah untuk meningkatkan efektifitas sterilisasi. Sebaiknya dengan menggunakan
konsentrasi Na-Hipoklorit yang tinggi akan menyebabkan matinya eksplan, berapa
konsentrasi yang tepat sangat tergantung dari penggunaan eksplan dan bahan
sterilisasi yang digunakan dan lama waktu penggunaan bahan sterilisasi.
Informasi 3. Perlakuan Bahan Eksplan.
Hal yang perlu diperhatikan dalam mempersiapkan eksplan yang bersih,
digunakan beberapa eksplan untuk dikombinasikan dengan beberapa perlakuan
prosedur sterilisasi untuk mengurangi risiko terjadinya kontaminasi.
Eksplan dapat disterilisasi dengan menggunakan pemutih dari berbagai merk
dagang seperti bayclin, clorox dan lain-lain. Kandungan bahan aktifnya berupa Natrium
Hipoklorit sebesar 5,25%. Penggunaan bahan ini dapat pula dikombinasikan urutannya
dengan bahan lain seperti sabun, aquades steril, dan fungisida.
Untuk membuat 100 ml pemutih dengan konsentrasi tertentu dapat dilakukan
dengan cara :
1/2 campurkan 50 ml pemutih dengan 50 ml air
1/5 campurkan 20 ml pemutih dengan 80 ml air
1/10 campurkan 10 ml pemutih dengan 90 ml air
Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011 3
1/100 campurkan 10 ml dari 1/10 pemutih dengan 90 ml air
Cara perhitungan yang sama dapat dilakukan untuk bahan sterilisasi lain dengan
konsentrasi tertentu. Beberapa bahan sterilisasi dan konsentrasi lain yang sering
dipergunakan adalah sebagai berikut:
- Alkohol atau isopropyl alcohol 70%
- Kalsium Hipoklorit 0,8%
- Hidrogen peroksida (H2O2) 0,1%
- Mercuri Klorida 0,1%
- Sabun cair 5-10 menit pembilasan berkali-kali di bawah air mengalir
Satu contoh yang sering dipergunakan untuk sterilisasi eksplan adalah sebagai
berikut:
1) Masukkan eksplan pada gelas Beaker di atas magnetic stirer selama 10 menit dalam
1/100 pemutih yang telah ditambahkan 10 tetes sabun cair untuk setiap 100 ml
larutan sterilisasi.
2) Bilas dengan aquadest
3) Rendam dalam larutan alkohol 70% selama 10 detik
4) Bilas dengan aquadest
5) Masukan ke dalam 1/10 pemutih di atas magnetic stirer selama 15 menit. Untuk
membantu penetrasi bahan sterilisasi dapat digunakan pompa vacuum.
6) Pada tahap selanjutnya sterilisasi dapat dilakukan di dalam LAF (Laminar Air
Flow) dan bilas eksplan dengan aquadest.
7) Bilas dengan aquadest steril selama 5 menit.
8) Jika perlu bilas dengan menggunakan antioksidan, misalnya Vitamin C.
9) Keringkan di atas kertas saring steril
10) Tempatkan pada medium kultur.
Penggunaan Meristem
Penggunaan meristem merupakan eksplan yang paling banyak digunakan
meskipun diperlukan mikroskop untuk mengambil eksplan yang bersifat meristematis
(sel-sel aktif membelah) di antara dua daun primordia. Meristem sering digunakan
untuk memperoleh planlet (tanaman kecil hasil kultur jaringan) yang bebas virus.
Secara teoritis pertumbuhan meristematis jaringan meristem lebih cepat dibandingkan
dengan pertumbuhan virus pada sel-sel meristem yang baru tumbuh, sehingga semakin
Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011 4
kecil jaringan meristem yang dipergunakan akan memperbesar kemungkinan
diperolehnya planlet bebas virus.
Penggunaan meristem pada tanaman stroberi sangat umum dilakukan
dibandingkan dengan tanaman lainnya, untuk memperoleh planlet. Sebagai contoh
pengambilan eksplan meristem dapat digambarkan sebagai berikut:
Pengambilan meristem dimulai dengan memotong 2-5 cm runner (anakan pada
tanaman stroberi) dengan sedikit daun. Meristem terdapat di antara dua daun primordia
di dalam bakal tunas. Oleh karena itu sterilisasi permukaan lebih mudah dengan
menggunakan bahan sterilisasi dan prosedur lebih sederhana dibandingkan dengan jika
menggunakan eksplan lain, dibandingkan dengan tanaman lain. Masukan eksplan (2-3
cm panjangnya) dan kocok atau putar di atas magnetic stirer yang telah dimasukkan
1/10 pemutih kemudian diikuti dengan pembilasan dengan aquades steril selama 2-5
menit. Kemudian bawa eksplan dalam gelas beaker tadi ke dalam Laminar Air Flow
(LAF). Tempatkan petridish di bawah mikroskop, dengan perbesaran sedang (40 kali).
Masukan kertas saring yang telah diberi aquadest steril, kemudian letakan tunas dari
runner tadi ke dalam petridish. Buka daun yang menutupi meristem dengan
menggunakan scalpel no 6. Pisahkan daun yang menutupi meristem. Pada pembuangan
daun jumlah tertentu akan terlihat batang tunas. Pada saat ini batang tunas dapat
dipotong. Jika ragu-ragu dapat dibiarkan terlebih dahulu sampai hampir semua daun
yang menutupi meristem dibuang. Pada saat mendekati meristem, ditandai dengan
tersisanya dua sampai tiga daun primordia. Jaringan berwarna lebih muda dibandingkan
dengan daun-daun sebelumnya. Pada tahap terakhir diperlukan ke hati-hatian untuk
mengambil meristem. Penggunaan ujung scalpel dan dibantu dengan kelembaban
meristem dapat menempel ke ujung scalpel untuk kemudian di tempatkan pada media
kultur.
Informasi 4. Perkembangan eksplan menjadi plantlet.
Perkembangan eksplan menjadi planlet dalam teknologi kultur jaringan dapat
dibagi menjadi tiga tahap. Pada tahap pertama adalah persiapan eksplan dan sterilisasi
eksplan sampai pada tahap eksplan ditempatkan dalam media. Pada tahap kedua eksplan
mulai tumbuh dan berkembang ditandai dengan tumbuhnya organ-organ seperti tunas,
akar, dalam jumlah tertentu. Pada tahap ini tunas-tunas yang tumbuh dapat dikulturkan
kembali untuk memperoleh eksplan awal dalam jumlah lebih besar. Media dapat
Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011 5
diarahkan untuk memperoleh jumlah tunas yang optimal. Pada tahap tiga, merupakan
tahap stabilitas dan persiapan awal aklimatisasi termasuk proses perakaran dari tunas-
tunas yang belum tumbuh akarnya. Pada tahap empat adalah tahap aklimatisasi, yaitu
proses pemindahan planlet dari medium yang kaya akan nutrisi ke media tanah, di mana
planlet harus mulai hidup mandiri dengan sumber hidup dari hasil fotosintesis sendiri,
kadang-kadang ditemukan pertumbuhan akar lebih baik pada tahap ini, sehingga
diperoleh planlet dengan akar yang lebih kokoh. Tahapan di atas merupakan usulan
yang dikemukakan oleh Murashige dan Skoog (1992). Namun perkembangan yang
sama pada teknologi kultur jaringan kemudian Deberg (1992) menambahkan tahap 0
(nol) pada tahapan di atas. Secara rinci tahapan perkembangan eksplan menjadi planlet
adalah sebagai berikut:
Tahap 0. Tahap Persiapan; Persiapan dan seleksi tanaman donor
Kualitas eksplan dan respon eksplan dipengaruhi oleh fisiologi dan kebersihan tanaman
donor.
Pembersihan tanaman donor dari pathogen
Stok tanaman yang bebas pathogen dipelihara pada kondisi yang bersih
Pertumbuhan dapat dipacu dengan pemupukan, tetapi tidak melebihi batas
Tanaman donor dapat diberi pra perlakuan dengan cara tertentu (pestisida,
insektisida, dsb.)
Tahap 1. Stabilisasi Eksplan
- Sterilisasi permukaan. Menghindari semua mikroorganisme penyebab
kontaminasi tetapi tidak mematikan eksplan
- Pengambilan atau isolasi pucuk dalam keadaan steril
- Media harus mengandung semua komponen yang dibutuhkan, sehingga eksplan
dapat tumbuh normal.
o Pencoklatan media: hasil oksidasi senyawa phenol dari luka eksplan akibat
pemotongan, terjadi pada eksplan tanaman berkayu. Hal ini dapat dicegah
dengan penambahan anti oksidan atau memindahkan eksplan ke medium baru
(sub kultur).
o Media yang digunakan dapat media standar, misalnya Murashige dan Skoog
(MS), media yang lebih kompleks dapat digunakan jika eksplan yang
digunakan berukuran kecil.
o Media dapat berupa padat atau semi padat dengan kelebihan berbeda.
Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011 6
- Kondisi lingkungan
Cahaya
Suhu
Kelembaban relatif
- Stabilitas kultur
Tahap 2. Multiplikasi Proliferasi Tunas Aksilar
- Produksi tunas aksilar secara berulang
- Dirangsang menggunakan sitokinin dengan konsentrasi auksin yang rendah atau
tanpa auksin
- Panen tunas dengan dikulturkan pada media baru
- Jumlah subkultur bervariasi tergantung spesies dan kultivar.
Tahap 3. Perakaran
Merangsang tumbuhnya akar
Untuk perakaran dipergunakan auksin
Keuntungan perakaran setelah tahap in vitro
Mengurangi biaya lebih baik dalam struktur dan fisiologi
Tahap 4. Aklimatisasi
Aklimatisasi adalah proses pemindahan dari in vitro ke in vivo (keadaan sebenarnya)
- Merupakan proses yang relatif lambat, dapat mencapai beberapa minggu
- Perlu dikondisikan dari kelembaban tinggi ke kelembaban rendah (98-99%
sampai 20-60%)
- Dari kondisi bersih ke kondisi di mana terdapat hama dan penyakit.
Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011 7
PRAKTEK STERILISASI EKSPLAN
A. Salah satu contoh sterilisasi eksplan pada tanaman pisang (bahan eksplan
adalah bonggol + tunas) :
Bahan:
Air bersih (mengalir)
Twin 20
Bakterisida (Agrept)
Fungisida (Benstar)
Bayclin 30%
Alkohol 70%
Betadine
Alat:
Beaker Glass
Pinset
Pisau
Scalpel+Blade
Cara Kerja:
1. Cuci eksplan dengan air mengalir sambil dipotong dan dikelupas sampai
ukuran menjadi kecil (sekitar 3 - 5 cm tergantung ukuran awal eskplan),
2. Rendam dengan detergent 1-2 sendok makan dalam 1000 ml air biasa,
kocok selama 10 menit, bilas 3 kali dengan air biasa,
3. Rendam eksplan dengan Twin 20 sebanyak 3 ml dalam 100 ml akuades
selama 20 menit, bilas 3 kali dengan akuades,
4. Rendam eksplan dengan bakterisida 2 gr/L selama 1 jam, bilas 3 kali
dengan akuades,
5. Rendam eksplan dengan fungisida 2 gr/L selama 1 jam, bilas 3 kali dengan
akuades,
6. Rendam eksplan dengan bayclin 30% selama 30 menit, bilas 3 kali dengan
akuades,
Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011 8
7. Rendam eksplan dengan bayclin 20% selama 20 menit, bilas 3 kali dengan
akuades,
8. Rendam eksplan dengan alkohol 70% selama 1 menit, bilas 3 kali dengan
akuades, (Sterilisasi bagian ini dilakukan di dalam LAFC)
9. Kelupas kembali eksplan sampai kecil (sekitar 1 – 2 cm tergantung ukuran
awal eksplan), (Sterilisasi bagian ini dilakukan di dalam LAFC)
10. Pindahkan eksplan ke beaker glass baru,
11. Rendam eksplan dengan betadin secukupnya tanpa air selama 15 menit,
bilas 3 - 5 kali dengan akuades,
12. Eksplan siap ditanam dalam media kultur.
B. Salah satu contoh perhitungan pengenceran bahan sterilisasi eksplan :
Contoh Kasus:
1. Jika tersedia alkohol 95% sebanyak 1 liter, dan akan diencerkan atau
diturunkan konsentrasinya menjadi 70%, berapa ml volume aquadest yang
harus ditambahkan?
Jawab:
95% x 1 liter (1000 ml) 70%
95.000 ml 70
1.357,14
1.357,14 – 1000 ml
357,14
Jadi, aquadest yang harus ditambahkan sebanyak 357,14 ml.
2. Jika tersedia clorox atau bayclin 50% sebanyak 0,5 liter, dan akan dibuat
clorox atau bayclin 20%, berapa ml volume aquadest yang harus
ditambahkan?
Jawab :
50% x 0,5 liter (500 ml) 20%
25.000 ml 20
1.250 ml
Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011 9
1.250 ml – 500 ml
750 ml
Jadi, aquadest yang harus ditambahkan sebanyak 750 ml.
Daftar Pustaka
Arinto Nugroho dan Heru Sugito, 2005. Pedoman Pelaksanaan Teknik Kultur Jaringan. Penerbit Penebar Swadaya. Jakarta.
Murdaningsih H.K dan Suseno Amien, 2006. Pengambilan Eksplan dalam Teknologi Kultur Jaringan. UNPAD Bandung
Livy Winata Gunawan, 1992. Teknik Kultur Jaringan Tumbuhan. Departemen Pendidikan dan Kebudayaan. Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi. Pusat Antar Universitas Bioteknologi. Institut Pertanian Bogor (IPB)
Bahan Ajar/Persiapan dan Sterilisasi/AJ&AR/2011 10