eterinių aliejų panaudojimo galimybės grūdų saugyklų ... · grūdus išmatomis ir jiems...
TRANSCRIPT
LIETUVOS SVEIKATOS MOKSLŲ UNIVERSITETAS
VETERINARIJOS AKADEMIJA
Veterinarijos fakultetas
Agnė Matlauskienė
Eterinių aliejų panaudojimo galimybės grūdų saugyklų
aplinkos higieninei sanitarinei kokybei pagerinti Usability of Ethereal Oils in Grain Storage Environment
for Hygienic and Sanitary Quality Improvement
Veterinarinės maisto saugos ištęstinių studijų
MAGISTRANTŪROS BAIGIAMASIS DARBAS
Darbo vadovas: doc. dr.Violeta Baliukonienė
Kaunas, 2016
2
SANTRAUKA
„Eterinių aliejų panaudojimo galimybės grūdų saugyklų aplinkos higieninei sanitarinei kokybei
pagerinti“
Agnė Matlauskienė
Magistro baigiamasis darbas
Darbe yra 40 puslapių, 18 paveikslų, 3 lentelės, 4 priedai.
Darbo tikslas - įvertinti pasirinktose grūdų saugyklose aplinkos ir grūdų higieninius
sanitarinius rodiklius bei eterinių aliejų panaudojimo galimybes ir komercinių profilaktinių priemonių
efektyvumą saugyklų dezinfekcijai.
Uždaviniai: 1) įvertinti pasirinktų grūdų saugyklų higieninius sanitarinius rodiklius grūdų
sandėliavimo metu; 2) nustatyti pasirinktose saugyklose saugomų grūdų užsikrėtimą mikroskopiniais
grybais; 3) nustatyti mikotoksinų (AFL B1, DON, ZON, T-2 toksino) paplitimą grūduose
sandėliavimo metu; 4) įvertinti eterinių aliejų panaudojimo galimybes ir komercinių profilaktinių
priemonių efektyvumą saugyklų dezinfekcijai.
Tyrimų metodikos. Bendras mikroorganizmų skaičius nustatytas skiedimo būdu pagal LST
EN ISO 4833:2003 „Maisto ir pašarų mikrobiologija. Bendrasis metodas. Kolonijų skaičiavimo 30oC
temperatūroje metodą“, o gyvybingų mikromicetų sporų skaičius vadovaujantis Lietuvos standartu
LST ISO 7954:1998E „Mikrobiologja. Mielių ir pelėsinių grybų skaičiavimas. Bendrieji nurodymai.
Kolonijų skaičiaus nustatymas 25 oC temperatūroje“. Nustatant mikotoksinus buvo taikomas
plonasluoksnės chromatografijos metodas pagal Romer Lab (JAV) metodikas. Gauti tyrimų
duomenys įvertinti „Microsoft Exel“ programa.
Rezultatai. Lyginant mikroorganizmų skaičių prieš dezinfekciją eteriniais aliejais ir praėjus 3
val. po dezinfekcijos, abiejose saugyklose šis skaičius buvo sumažėjęs 3 kartus. Lyginant
mikroorganizmų skaičių prieš dezinfekciją ūkininkų priemonėmis ir praėjus 3 val. po dezinfekcijos,
mikroorganizmų skaičius abiejų grūdų saugyklų aplinkoje sumažėjo 2 kartus.
Išvada. Ūkininkų naudojamos priemonės veikia grūdų saugyklų aplinkoje esančius
mikroorganizmus, tačiau atsižvelgiant į vartotojų poreikius, siūloma saugyklų aplinkos dezinfekcijai
naudoti natūralias dezinfekcines priemones, t.y. čiobrelio (Thymus vulgaris) ir raudonėlio (Origanum
vulgare) eterinius aliejus.
Raktažodžiai: Thymus vulgaris, Origanum vulgare, eteriniai aliejai, saugyklų aplinka,
dezinfekcija
3
SUMMARY
Usability of Ethereal Oils in Grain Storage Environment for Hygienic and Sanitary Quality
Improvement
Agnė Matlauskienė
Master‘s Thesis
The volume of this Thesis is 40 pages, including 18 images, 3 tables and 4 attachments.
The main objective of this Thesis was to evaluate the hygienic and sanitary indicators of
environment and grains in the chosen grain storage facilities, as well as, to investigate the usability
of ethereal oils and the efficiency of conventional prophylactic measures when they are used for
desinfection of the storage facilities.
In order to achieve the above mentioned objective the following tasks were created: 1) to
evaluate the hygienic sanitary indicators of the selected grain storage facilities during the grain
storage period; 2) to determine the level of grain infestation with microscopic fungi at the chosen
storage facilities; 3) to determine the spread of mycotoxins (AFL B1, DON, ZON, T-2 toxin) in grain
during the storage period; 4) to evaluate the usability of ethereal oils and the efficiency of
conventional prophylactic measures when they are used for desinfection of the storage facilities.
The research methodologies. The total number of microorganisms was determined by method
of dilution according to the LST EN ISO 4833:2003 „The Microbiology of Food and Feed. The
General Method. The Method of Colony Count at 30 ° C Temperature“, and the number of viable
micromycete spores was determined on the basis of the Lithuanian Standard LST ISO 7954:1998E
„Microbiology. Calculation of Yeasts and Molds. General Insutructions. The method of Colony
Count at 25 oC temperature“. The number of mycotoxins was measured using Romer Labs (USA)
thin layer chromatography. The data obtained was analyzed using „Microsoft Exel“ software.
Results. When comparing the number of microorganisms before disinfection with ethereal oils
and within 3 hours after the disinfection, the number of microorganisms at both storage facilities had
diminished by three times. When the number of microorganisms at the grain storage facilities was
measured and compared before its desinfection with conventional chemical measures and within 3
hours afterwards, it was found that this number has diminished by two times at both storage units.
Conclusion. The conventional disinfection measures used by farmers affects microorganisms
at the grain storage facilities, however, taking into account the needs of consumers it is advised to use
natural disinfectants for disinfection of storage facilities, i.e. the ethereal oils of thyme (Thymus
vulgaris) and oregano (Origanum vulgare).
Key words : Thymus vulgaris, Origanum vulgare, ethereal oils, storage environment, disinfection
4
TURINYS
SANTRUMPOS .................................................................................................................................. 6
ĮVADAS .............................................................................................................................................. 7
1. LITERATŪROS APŽVALGA .................................................................................................... 8
1.1 Vyraujantys mikroorganizmai grūdų saugyklų aplinkoje ......................................................... 8
1.2 Sąlygos, įtakojančios mikroorganizmų veiklą grūdų saugyklose .............................................. 8
1.3 Bakterijų paplitimas ................................................................................................................... 9
1.4 Mikromicetų ir jų antrinių metabolitų paplitimas.................................................................... 10
1.5 Grūdų saugyklų aplinkos gerinimas ........................................................................................ 11
1.5.1 Fizikiniai metodai ir priemonės ........................................................................................ 11
1.5.2 Cheminiai metodai ir priemonės ...................................................................................... 12
1.5.3 Biologiniai metodai ir priemonės ..................................................................................... 12
1.6 Eteriniai aliejai ......................................................................................................................... 13
1.6.1 Eterinių aliejų gavyba ....................................................................................................... 13
1.6.2 Eterinių aliejų cheminė sudėtis ir jų poveikis ................................................................... 13
1.6.3 Eterinių aliejų panaudojimo galimybės ............................................................................ 15
2. TYRIMO MEDŽIAGA IR METODAI ..................................................................................... 16
2.1 Tyrimo medžiaga ..................................................................................................................... 16
2.2 Tyrimo metodai ....................................................................................................................... 16
3. TYRIMŲ REZULTATAI.......................................................................................................... 21
3.1 Bakterinis užterštumas ............................................................................................................. 21
3.1.1 Grūdų saugyklų aplinkos užterštumas .............................................................................. 21
3.1.2 Grūdų saugyklų aplinkos mikrobiologinis užterštumas prieš ir po dezinfekcijos ............ 22
3.1.3 Saugyklose laikomų kviečių užterštumas ......................................................................... 23
3.2. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius ................................................................................. 25
3.2.1 Grūdų saugyklų aplinkoje ................................................................................................. 25
3.2.2 Grūdų saugyklų aplinkoje prieš ir po dezinfekcijos ......................................................... 26
3.2.3. Saugyklose laikomuose kviečiuose ................................................................................. 27
3.3. Vyraujančios mikromicetų gentys grūdų saugyklų aplinkoje ................................................ 29
3.4 Išorinis ir vidinis kviečių užkrėstumas mikromicetų gentimis ................................................ 29
3.5 Mikotoksinų koncentracijos kviečiuose .................................................................................. 32
4. REZULTATŲ APIBENDRINIMAS ........................................................................................ 35
IŠVADOS .......................................................................................................................................... 37
5
LITERATŪROS SĄRAŠAS ............................................................................................................. 38
PRIEDAI ........................................................................................................................................... 41
6
SANTRUMPOS
AFL B1 – aflatoksinas B1
aw – vandens aktyvumas
CO2 – anglies dioksidas
DON – deoksinivalenolas
KSV – koloniją sudarantys vienetai
O2 – deguonis
SO2 – sieros dioksidas
UV – ultravioletiniai spinduliai
ZON – zearalenonas
7
ĮVADAS
Mikrobiologinė tarša yra vienas iš svarbiausių veiksnių, lemiančių maisto kokybę. Ji prasideda
nuo grūdų, sėklų, daržovių, bulvių, vaisių, uogų žaliavos išauginimo ir tęsiasi produktų gamybos ir
realizavimo metu, o baigiasi tik suvartojus. Augalai visais savo gyvavimo etapais kontaktuoja su
gyvais ir negyvais aplinkos objektais ir gausybe mikroorganizmų, kurie egzistuoja ir funkcionuoja jų
paviršiuje ir viduje. Viena tokių mikroorganizmų grupė yra mikromicetai, dar dažnai vadinami
mikroskopiniais grybais, pelėsiniais grybais arba tiesiog pelėsiais. Jie kontaminuoja ir pažeidžia
augalinės kilmės medžiagas, naudojamas maistui ir pašarams.
Šiandien vartotojai vis labiau reikalauja, kad jų vartojamas maistas būtų minimaliai apdorotas
sintetiniais konservantais ir priedais, dėl jų galimo poveikio žmonių sveikatai. Problema, su kuria šiuo
metu susiduria maisto pramonė yra - kaip pagaminti maisto produktus, kad patenkintų šiuos kriterijus
ir būtų saugūs vartoti.
Yra žinoma, kad tam tikros prieskoninių augalų rūšys turi antimikrobinių savybių. Dėl to
eteriniai aliejai, ekstraktai, aliejinės dervos ir jų pagrindiniai sudedamieji junginiai, išskirti iš natūralių
žolelių kaip antimikrobinės priemonės, patraukė dėmesį kaip vienas iš galimų sprendimų
kontroliuojant grybų augimą ir mikotoksinų biosintezę maiste, kuris nėra toksiškas, priešingai nei
cheminiai priedai.
Tikslas: įvertinti pasirinktose grūdų saugyklose aplinkos ir grūdų higieninius sanitarinius
rodiklius bei eterinių aliejų panaudojimo galimybes ir komercinių profilaktinių priemonių efektyvumą
saugyklų dezinfekcijai.
Uždaviniai:
1. Įvertinti pasirinktų grūdų saugyklų higieninius sanitarinius rodiklius grūdų
sandėliavimo metu;
2. Nustatyti pasirinktose saugyklose saugomų grūdų užsikrėtimą mikroskopiniais grybais;
3. Nustatyti mikotoksinų (AFL B1, DON, ZEN, T-2 toksino) paplitimą grūduose
sandėliavimo metu;
4. Įvertinti eterinių aliejų panaudojimo galimybes ir komercinių profilaktinių priemonių
efektyvumą saugyklų dezinfekcijai.
8
1. LITERATŪROS APŽVALGA
1.1 Vyraujantys mikroorganizmai grūdų saugyklų aplinkoje
Sandėliuose grūdai užteršiami grybais su ore esančiomis dulkėmis, juos platina vabzdžiai ir
graužikai. Dauguma mikromicetų pradų į sandėlius patenka kartu su žemės ūkio produktais.
Pagrindinis grūdų užterštumo mikroorganizmais šaltinis laukuose yra dirvožemis, kuriame
aptinkamos tipinės dirvos bakterijos – Bacillus subtillis, Clostridium perfringens, taip pat randamos
termofilinės, pigmentinės, nepigmentinės bakterijos, aktinomicetai, pelėsiniai grybai ir kiti
mikroorganizmai. Pirmiausiai jais užsikrečia stiebai, lapai, o vėliau grūdai [1,2].
Tarp dulkių ir mikroorganizmų kiekio ore yra tamprus tarpusavio ryšys [3]. Mikroorganizmų
kiekis ore būna nepastovus, jis priklauso nuo meteorologinių sąlygų, žmogaus ūkinės veiklos
intensyvumo. Į orą mikroorganizmai patenka nuo žemės paviršiaus su dulkėmis. Kuo daugiau ore
dulkių, tuo daugiau ir mikroorganizmų. Ore randamos sporinės bakterijos Bacillus subtilis. Drėgname
ore vyrauja įvairių rūšių aktinomicetai, grybai, pigmentinės saprofitinės bakterijos, mikrokokai,
sarcinos. Ore randama ir santykiškai patogeninių mikroorganizmų, t.y. grybų sporos iš Aspergillus,
Penicillium genčių. Ore ypač ilgai išsilaiko bacilų ir pelėsių sporos, nes jos labai atsparios
nepalankiems aplinkos veiksniams [2].
Sandėliuojant grūdus, susidaro sandėlių mikroflora. Ima vyrauti Aspergillus, Penicillium,
Rhizopus, Mucor genčių mikroskopiniai grybai. Susidarius palankioms sąlygoms, mikroskopiniai
grybai bei bakterijos plinta ir blogina grūdų kokybę [4].
Kai kurios Cladosporium rūšys lengvai utilizuoja aromatinius junginius, ypač tuos, kuriuose
yra chloro, gerai įsisavina anglies šaltinius, produkuoja jų alkoholius, esterius. Šios genties grybai
lengvai vystosi ant mūrinių sienų tinko ir tampa pastoviu mikologinės taršos šaltiniu [5].
1.2 Sąlygos, įtakojančios mikroorganizmų veiklą grūdų saugyklose
Grūdų užterštumas mikromicetų pradais sandėliuose priklauso nuo atvežtos žaliavos ir pradinio
aruodo užterštumo, grūdų saugojimo trukmės, sandėliavimo sanitarinių sąlygų, aplinkos temperatūros
ir drėgmės. Orui judant, mikromicetų pradai išnešiojami po visas patalpas, nusėda ant įvairių paviršių.
Mikromicetai greičiau pažeidžia suskilusius, plyšusius, pašalinėmis medžiagomis užterštus grūdus.
Grybų hifai greičiausiai įsiskverbia į grūdų vidų pro natūralius arba dėl pažeidimų atsiradusius
plyšelius [1].
Mikromicetų pradai, kurių visada gausu aplinkoje, ima vystytis kai tik susidaro palankios
temperatūros ir drėgmės sąlygos, todėl šie du veiksniai yra svarbiausi mikromicetams vystytis. Jei
kviečių grūduose drėgmės kiekis yra ne didesnis kaip 13,5 proc., tuomet mikromicetai jų nepažeidžia.
Svarbus veiksnys yra nevienodas drėgmės pasiskirstymas grūdų masėje, nes mikromicetai
9
intensyviausiai vystosi ten, kur pakanka drėgmės. Dėl drėgno oro ir temperatūrų skirtumų, drėgmė
dažnai kondensuojasi ant sandėlio konstrukcijų ir lašų pavidalu patenka ant išdžiovintų grūdų. Tokiu
būdu grūdų masėje atsiranda vadinamieji „karštieji taškai“, kuriuose susidaro palankios sąlygos
mikromicetams vystytis [1].
Mikromicetų vystymuisi ne mažiau svarbus veiksnys yra aplinkos temperatūra. Labiausiai
palanki temperatūra yra 22 – 35 oC, nors minimalios ir maksimalios augimo ribos svyruoja nuo 5 iki
45oC. Kai kurių rušių mikromicetai (Cladosporium herbarum, Fusarium avenaceum, F. nivale ir t.t.)
auga žemesnėje negu 0 oC temperatūroje [6].
Grūdų gedimo priežastimi gali būti ir vabzdžiai bei erkės, nes jie aktyviai sąveikaudami su
užkrėstais ir sveikais grūdais, gali pastariesiems pernešti mikromicetų sporas.Vabzdžiams teršiant
grūdus išmatomis ir jiems kvėpuojant, išskriamas tam tikras vandens kiekis, kuris sudaro palankias
sąlygas mikromicetų vystymuisi, nes padidėja grūdų drėgnis [7].
1.3 Bakterijų paplitimas
Dėl plataus grūdų ir grūdų produktų naudojimo maistui ir gyvulių pašarams, jų mikrobiologija
ir saugumas yra labai svarbios sritys. Grūdų mikrobiologinių taršos šaltinių yra daug, tačiau jie visi
yra siejami su aplinka, kurioje grūdai auginami, tvarkomi ir apdorojami [8].
Grūdų mikroflora susideda iš virusų, bakterijų, siūlinių grybų, mielių, pelėsinių grybelių ir
pirmuonių. Grūduose gali būti aptikta per 10 milijonų bakterijų ir daugiau negu 150 skirtingų grybų
rūšių [9].
Mikroorganizmai, kurie užteršia grūdus, gali atsirasti iš oro, dulkių, dirvožemio, vandens,
vabzdžių, graužikų, paukščių, gyvūnų, žmonių, sandėliavimo ir transportavimo konteinerių ir
tvarkymo bei apdorojimo įrangos. Daugelis faktorių, kurie yra aplinkos dalis, daro įtaką mikrobiniam
javų užteršimui, apimdami kritulius, sausrą, drėgmę, temperatūrą, saulės šviesą, šaltį, dirvožemio
sąlygas, vėją, vabzdžių, paukščių ir graužikų veiklą, derliaus nuėmimo įrangą, laikymą ir drėgmės
kontrolę [8].
Dažniausiai ant grūdų pasitaikančios bakterijų rūšys nepatogeninės. Kai kurių bakterijų
buvimas ant grūdo rodo, kad paukščiai ar graužikai užteršė juos. Užteršimas gali įvykti nuėmimo
metu, tačiau dažniausiai tai prastos higienos transportavimo metu arba prastos kenkėjų kontrolės
sandėliavimo metu rezultatas [10].
Patogeninės bakterijos, kurios gali užteršti grūdus ir grūdinius produktus ir sukelti problemų,
apima Bacillus cereus, Clostridium botulinum, Clostridium perfringens, Echerichia coli, Salmonella
sp. ir Staphylococcus aureus. Koliforminės bakterijos ir enterokokai pasireiškia kaip antisanitarinio
tvarkymo ir perdirbimo bei galimo fekalinio užteršimo indikatoriai [8].
10
Fitogeniniai mikroorganizmai, pasitaikantys grūduose, apima bakterijas, tokias kaip
Pseudomonadaceae, Micrococcaceae, Lactobacillaceae ir Bacillaceae, mieles, tokias kaip Candida,
Crypococcus, Pichia, Sporobolomyces, Rhodotorula, Trichosporon [9].
1.4 Mikromicetų ir jų antrinių metabolitų paplitimas
Mikotoksinai yra toksiški antriniai metabolitai, produkuojami mikroskopinių grybų (pelėsių).
Mikotoksinų gamyba laukuose, derliaus nuėmimo metu, sandėliuojant ar perdirbant gali prasidėti dėl
atitinkamų aplinkos sąlygų. Šie metabolitai paprastai yra susiję su grybais, priklausančiais Alternaria,
Aspergillus, Fusarium ir Penicillium gentims. Toksiškos Alternaria ir Fusarium rūšys dažniausiai
priskiriamos lauko grybams, o Aspergillus ir Penicillium rūšys laikomos sandėlių grybais [11].
Aflatoksinai yra grupė chemiškai panašių toksiškų grybų metabolitų, produkuojamų
Aspergillus genties. Yra keturi aflatoksinų tipai – B1, B2, G1 ir G2, o aflatoksinas B1 yra
toksiškiausias [12]. Aflatoksinai aptinkami javų grūduose, viso gūdo kviečių ir ryžių duonoje,
aliejinių kultūrų sėklose, fermentuotuose gėrimuose, pagamintuose iš grūdų, piene, sūriuose, mėsoje,
riešutų produktuose, vaisių sultyse ir daugelyje kitų žemės ūkio produktų [13].
Fusarium rūšies grybai augimui reikalauja didesnės substrato drėgmės (20-21 proc.) ir
žemesnės temperatūros, ir dažniausiai užteršia augalus laukuose. Jie yra dažni grūdų (kukurūzų,
miežių, kviečių, avižų, rugių, ryžių ir t.t.), grūdų produktų (miltų, duonos, tortų ir t.t.), vaisių ir
daržovių teršalai [14]. Dažniausi Fusarium mikotoksinai yra trichotecenai – deoksinivalenolas,
nivalenolas, T-2 toksinai, zearalenonas ir fumonizinai [11].
Fusarium verticillioides ir Fusarium proliferatum yra dvi pagrindinės rūšys, kurios produkuoja
fumonizinus. Jos gali kolonizuoti ir produkuoti fumonizinus laukuose ir jeigu derlius nuimamas esant
dideliam grūdų drėgnumui, sąlygos tampa palankios grybų augimui ir mikotoksinų gamybai [15].
Deoksinivalenolas yra dažniausiai aptinkamas mikotoksinas pasaulyje. Juo užteršta apie 50
proc. grūdų [4]. Zearalenonas yra gaminamas F. graminearum ir F. culmorum genčių ir gali atsirasti
daugelyje javų, įskaitant kukurūzus, kviečius, miežius, avižas ir ryžius. Sukaupto zearalenono
koncentracijos javuose priklauso nuo daugelio faktorių, tokių kaip substratas, temperatūra, Fusarium
augimo trukmės ir grybelinės rūšies padermės [15].Magan ir Sanchis [16] nurodo, jog 15-30 oC
temperatūra ir 0,9-0,995 aw yra optimalios sąlygos šio mikotoksino gamybai.
Penicillium rūšies grybai turi mažesnius reikalavimus substrato drėgmei (13-18 proc.), bet
didesnės temperatūros reikalavimus ir dažniausiai išskiriami iš sandėliuojamų produktų [14].Šie
grybai gamina ochratoksiną A, citrininą ir patuliną [11].
Citrininas yra antrinis toksiškas metabolitas, gaminamas ir išskiriamas kai kurių Aspergillus ir
Penicillium rūšių, ypač P. citrinum. Citrininas paprastai susidaro po derliaus nuėmimo ir daugiausia
aptinkamas saugomuose grūduose, ypač miežiuose, kviečiuose ir ryžiuose, bet taipogi aptinkamas ir
11
kituose augaliniuose produktuose – pupelėse, vaisiuose, vaisių ir daržovių sultyse, žolelėse ir
prieskoniuose ir taip pat sugedusiuose pieno produktuose. Šio toksino gamyba vyksta esant 20-30 oC
temperatūrai ir 0,75-0,85 aw, priklausomai nuo rūšies [15].
Ochratoksinai (ochratoksinas A ir ochratoksinas B) yra produkuojami Aspergillus ochraceus,
Penicillium verucosum ir Aspergillus carbonarius. Pagrindinė P. verucosum buveinė yra javų
pasėliai, vėsioje ir vidutinio klimato šiaurės Europoje ir Kanadoje. Ochratoksinai aptinkami javų
produktuose, ypač miltiniuose gaminiuose, taip pat randami sūrio ir mėsos produktuose,
pagamintuose iš gyvūnų, kurių pagrindinis mitybos šaltinis yra javai [15].
1.5 Grūdų saugyklų aplinkos gerinimas
1.5.1 Fizikiniai metodai ir priemonės
Kuliant javus, kombaino valytuve ne visiškai atskiriamos priemaišos, dėl to kombaino
bunkeryje grūdai papildomai užsiteršia ir kartu su sveikais grūdais patenka kenkėjų pažeisti grūdai,
šiaudų bei varpų dalelės, piktžolių sėklos, dirvos gabalėliai. Todėl grūdų savalaikis valymas oro
sraute ir sietais yra viena iš mikromicetų paplitimo ir mikotoksinų susidarymo prevencijos priemonių
[7].
Viena iš paprasčiausių, pigiausių ir seniausiai naudojamų priemonių mikromicetų plitimui
sustabdyti yra grūdų masės ventiliavimas aplinkos oru [17]. Tačiau taikant šį džiovinimo būdą grūdų
masė bokšte ar aruode džiūsta nevienodai, nes susidaro džiūvimo zona [18].
Kitas svarbus būdas, stabilizuojantis mikromicetų augimą ir plėtrą yra džiovinimas
džiovyklose. Priklausomai nuo grūdų drėgnio, jiems džiovinti taikoma atitinkama technologija.
Grūdams, kurių drėgnis ne didesnis kaip 22 proc., džiovinti galima taikyti aktyviąją ventiliaciją.
Grūdus, kurių drėgnis nuo 22 iki 28 proc., vieną kartą perleidus per šiluminę džiovyklą, galima baigti
džiovinti aktyviąja ventiliacija, o grūdus, kurių drėgnis didesnis kaip 28 proc., reikia kelis kartus
džiovinti šiluminėse džiovyklose. Kuo sausesni grūdai, tuo džiovinimo proceso metu intensyviau
naikinami mikromicetai. Nustatyta, kad mikromicetai, likę ant grūdų paviršiaus po džiovinimo
proceso, yra potencialūs mikotoksinų producentai [19].
Dar vienas būdas yra šaldymas. Paveikus šalčiu, gyvi mikroorganizmai pereina į anabiozės
(laikinas organizmo medžiagų apykaitos sulėtėjimas) būseną, kuri būdinga virusams, bakterijoms ir
kai kuriems mikromicetams, o sąlygoms pasikeitus (atšilus), gyvybiniai organizmo procesai vėl
tampa normalūs. Taigi žema temperatūra nesunaikina mikroorganizmų, o tik sulėtina arba visiškai
sustabdo jų dauginimąsi. Dauguma mikroorganizmų 2 ºC temperatūroje nustoja vystytis [7].
12
1.5.2 Cheminiai metodai ir priemonės
Hermetiškas saugojimas yra modifikuotos aplinkos tipas, kuris taikomas sandėliuojamų žemės
ūkio produktų apsaugai. Daugelį metų buvo tyrinėjama, kaip modifikuota aplinka arba
alternatyviosios dujos veikia vidutinės trukmės ar ilgalaikio saugojimo javų grūdus, skirtus maistui
ar pašarams.Šis metodas pasinaudoja pakankamai sandariomis produktų struktūromis, kurios per
respiracinę medžiagų apykaitą leidžia vabzdžiams ir kitiems aerobiniams organizmams patiems
sukurti modifikuotą aplinką, mažinant O2 ir didinant CO2 koncentracijas. Hermetinis kviečių
laikymas, laikant juos ne aukštesniame nei 12,5 proc. drėgnume, užtikrina laikymą be reikšmingo
kokybės nuvertėjimo, įskaitant kepimo savybių išlaikymą iki 2 metų. Kipre tokie bunkeriai leido
išsaugoti miežius 3 metus. Bendri nuostoliai buvo nuo 0,66 iki 0,98 proc., o daigumas išliko virš 88
proc. [20,21].
Naikinant mikotoksinus efektyviai veikia plati cheminių medžiagų įvairovė. Šią įvairovę apima
įvairios rūgštys, bazės, oksidatoriai, druskos ir įvairūs reagentai, tokie kaip formaldehidas. Amoniako
naudojimas sulaukė didelio dėmesio dėl aflatoksinais ir ochratoksinais užteršto maisto detoksikacijos
ir buvo sėkmingai naudojamas keliose šalyse. Amoniakas beveik visiškai suardo ochratoksiną
kukurūzuose, kviečiuose ir miežiuose [22].
Mikromicetų inaktyvacijai gali būti naudojamas sieros dioksidas (SO2). Aktyviosios
ventiliacijos ore įmaišius 0,4 proc. SO2, sustabdoma mikromocetų veikla, grūdų kokybinės savybės
nenukenčia, tačiau oksidas skatina metalinių talpų koroziją.
Tyrimai rodo, kad efektingai mikromicetų vystimąsi stabdo fungicidinį poveikį turinčios
plovimo ir dezinfekavimo medžiagos. Dažnai atitinkama dezinfekavimo medžiaga sunaikinamos tik
kai kurios mikromicetų rūšys, o kitų veikla netgi skatinama [6]. Teigiama, kad mažesnės negu
optimalios fungicidinių preparatų koncentracijos netgi paspartina Penicillium cyclopium, Aspergillus
sydowi mikroskopinių grybų augimą [7].
1.5.3 Biologiniai metodai ir priemonės
Augalai yra laikomi unikaliais naudingų metabolitų šaltiniais. Augalų eteriniai aliejai dėmesio
sulaukė dėl plataus antimikrobinio veikimo prieš skirtingų grupių patogeninius mikroorganizmus.
Skirtingų augalų preparatai, įskaitant eterinius aliejus ir ekstraktus, pagaminti iš lapų, šaknų ir sėklų,
gali būti sėkmingai naudojami kaip stiprūs grybelių augimo ir mikotoksinų gamybos inhibitoriai.
De Lira Mota ir kt. [23] atliktų tyrimų duomenimis, Ocimum basilicum, Cymbopogon citratus,
C. Martini, C. Winterianus, Cinnamonum zeylanicum, Thymus vulgaris ir Origanum vulgare eteriniai
aliejai parodė stiprų ir platų priešgrybelinį veikimo spektrą prieš skirtingo atsparumo Rhizopus oryzae
padermes, tačiau Thymus vulgaris ir Origanum vulgare veikė geriausiai.
13
Sokovič ir kt. [24] tyrimų metu nustatyta, kad 0,25 μL/mL eterinio aliejaus koncentracija
slopina Alternaria alternata, Fusarium tricinctum, visas Aspergillus rūšis ir dermatomicetus.
Cladosporium cladosporioides buvo slopinamas mažesnės koncentracijos – 0,125 μL\mL.
Origanum vulgare L. eterinis aliejus per 30 minučių, esant 1,25 μl/ml-1 koncentracijai, lėmė
100 proc. gyvybingų Aspergillus flavus ir Aspergillus parasiticus mikromicetų sporų slopinimą [25].
Čiobrelių eterinio aliejaus koncentracija diapazone nuo 0,33 iki 2,67 mg/ml-1,slopina
Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Streptococcus sp., Pantoa sp. ir Eschericia coli
patogenines bakterijas [26].
1.6 Eteriniai aliejai
1.6.1 Eterinių aliejų gavyba
Pagrindiniai metodai,išgauti eterinius aliejus iš augalinės medžiagos yra hidrodistiliacija, garų
distiliacija, garų ir vandens distiliacija, maceravimas, destruktyvi destiliacija. Iš šių metodų
hidrodistiliacija yra dažniausiai naudojamas būdas išskirti eterinius aliejus iš vaistinių žolelių/augalų
[27].
Hidrodistiliacija yra paprasta garų distiliacijos forma, kuri dažniausiai yra naudojama
vandenyje netirpiems, aukštos virimo temperatūros natūraliems eteriniams aliejams [28].
Distiliuojant eterinius aliejus augalinė žaliava yra patalpinama į distiliuojamą indą, kur aukšto
spaudimo garai pereina per augalinę žaliavą. Šilti garai priverčia eterinį aliejų lašeliais išsiversti iš
augalinės žaliavos ir aliejus išgaruoja. Garai, kartu su išgaruotais eteriniais aliejais, pereina per
distiliuojamojo indo viršutinę dalį į vandens šaldytuvo vamzdelį, kur garai kondensuojasi atgal į
skystį. Eterinis aliejus atskiriamas nuo vandens, nes jis plūduriuoja paviršiuje.
Vandens distiliacijos būdu dažniausiai distiliuojami gėlių ir žiedlapių eteriniai aliejai. Vandens
ir garų distiliacijos būdu distiliuojami žolių ir lapų eteriniai aliejai. Be distiliacijos metodų dar gali
būti naudojamas šaltojo spaudimo būdas, kuris dažniausiai taikomas citrusinių žievių eteriniams
aliejams gauti [29,30].
1.6.2 Eterinių aliejų cheminė sudėtis ir jų poveikis
El. Nekeety ir kt. [13] atliko tyrimus, kuriais siekė išsiaiškinti čiobrelio eterinio aliejaus
cheminę sudėtį. Studijos metu buvo izoliuota 13 junginių iš čiobrelio eterinio aliejaus, surinkto
Egipte, Kaire. Razzaghi-Abyaneh ir kt. [31] tyrimų metu buvo izoliuoti 7 junginiai iš čiobrelių
eterinio aliejaus, surinkto Irane. Iš čiobrelių (Thymus vulgaris) (gautų iš Belgrado vaistinių augalų
tyrimų instituto) eterinio aliejaus buvo identifikuoti 27 komponentai. Pagrindiniai buvo timolis ir p-
cimenai [24]. Šie tyrimai parodo, jog cheminė sudėtis skiriasi priklausomai nuo geografinės vietos
[13].
14
Čiobrelio (Thymus vulgaris) eterinis aliejus yra monoterpenų mišinys. Pagrindiniai šio aliejaus
junginiai yra natūralus terpeninis timolis ir fenolio izomeras karvakolis. Eteriniai aliejai, gauti iš
Thymus augalų lapų yra turtingi monoterpeninių fenolių, ypač timolio ir karvakolio [32].
Daugelis tyrimų visame pasaulyje parodė eterinių aliejų ir ekstraktų efektyvumą slopinant
gedimo ir/arba toksiškų, su maistu susijusių grybų augimą [25].
Liaudies medicinoje kai kurios Thymus rūšys naudojamos dėl jų antihelmintinio, atsikosėjimą
lengvinančio, antiseptinio, antispazminio, antimikrobinio, priešgrybelinio, antioksidacinio,
antibiotinio, raminančio ir skysčius varančio poveikio [32].
Čiobrelio (Thymus vulgaris) eterinis aliejus turi antioksidacinį veikimą ir apsauginį poveikį
prieš aflatoksino toksiškumą [13], taipogi žinomas kaip antiseptinė, antivirusinė ir antimikrobinė
medžiaga [24].Šis eterinis aliejus, kartu su pagrindinėmis sudėtinėmis dalimis, turi priešgrybelinį
veikimą prieš dirvožemio patogenus, maisto laikymo grybus, fitopatogenus ir oportunistinius
žmogaus patogenus [24].
Thymus vulgaris eterinio aliejaus tyrimas mikropraskiedimo metodu parodė labai stiprų
priešgrybelinį veikimą prieš Alternaria alternata, Fusarium tricinctum, visas Aspergillus rūšis,
Cladosporium cladosporioides. Penicillium rūšys ir Trichoderma viride buvo labiausiai atsparios
šiam aliejui [24].
Mažesnis Thymus tosevii eterinio aliejaus priešgrybelinis aktyvumas, lyginant su Thymus
vulgaris eteriniu aliejumi, gali būti paaiškintas dėl mažesnio timolio kiekio ir jo pirmtakų (p-cimeno
ir γ-terpineno) ir dėl aukštesnio acetatų procento, kuris gali sukelti mažesnį priešgrybelinį potencialą.
Lyginant ankstesnius duomenis su eterinių aliejų chemine sudėtimi, tampa akivaizdu, kad yra ryšys
tarp aukšto Thymus tipo eterinių aliejų aktyvumo ir fenolio junginių, tokių kaip timolis ar karvakolis,
procento. Aukštas šių eterinių aliejų priešgrybelinis aktyvumas gali būti paaiškintas aukštu fenolio
komponentų procentu.Pagal tyrimų rezultatus matyti, kad Thymus rūšies eteriniai aliejai ir karvakolis
bei timolis turi aukštą priešgrybelinį aktyvumą, net aukštesnį negu komercinis fungicidas bifonazolis
[24].
Lietuvoje yra gana gausūs raudonėlio (Origanum vulgare) ištekliai, tačiau šis augalas
sintezuoja nedidelį eterinių aliejų kiekį. Daug raudonėlio eterinių aliejų tyrimų parodė, jog jo kiekiai
ir kokybė daugiausiai priklauso nuo žaliavos augimo vietos ir genetinių augalo savybių. Raudonėlio
porūšiai, kurie auga Pietų Europoje turi ypatingai didelį kiekį eterinių aliejų [33].
Dėl didelio kiekio oleanolio, ursolio, kofeino, rozmarino, litosperminės rūgšties, flavanoidų,
hidrochinonų, taninų ir fenolinių glikozidų, įrodyta, jog raudonėlis turi antioksidacinį ir antimikrobinį
aktyvumą. Dauguma tyrimų įvardija karvakolį ir timolį kaip pagrindinius junginius, susijusius su
antimikrobiniu raudonėlio aktyvumu. P-cimenas ir γ-terpinenas buvo įvertinti kaip silpnesnės
antimikrobinės medžiagos, lyginant su karvakoliu ir timoliu, nors jie yra biologiniai jų pirmtakai [14].
15
1.6.3 Eterinių aliejų panaudojimo galimybės
Cheminiai preparatai yra naudojami slopinti grybelių augimą maiste, bet neigiamas vartotojo
požiūris į cheminius preparatus atkreipia dėmesį į natūralias alternatyvas. Pastaruoju metu, dėl
atsiradusio augančio vartotojų poreikio sintetinius maisto priedus pakeisti natūraliais,antimikrobinis
eterinių aliejų veikimas sukėlė didelį susidomėjimą tiek akademinėje, tiek maisto pramonėje, dėl
galimo jų panaudojimo kaip natūralius ingredientus [25].
Senovės graikai, egiptiečiai ir romėnai čiobrelį bei raudonėlį dažniausiai naudojo maistui dėl
skonio, kvapo ir konservavimo savybių. Lapinės čiobrelio dalys dažnai dedamos į mėsą, žuvį ir
maisto produktus bei naudojamos augaliniams vaistams [13].
Aromatinių augalų eteriniai aliejai taipogi plačiai naudojami liaudies medicinoje [34] įvairių
ligų gydymui, įskaitant virškinimo, bronchų ir plaučių sutrikimus, antispazminiu, raminamuoju,
skysčių varančiu, atihelmintiniu poveikiu [13].
R. Mickienė ir kt. [35] nustatė, jog pražangialapės mirtenės (Malaleuca alternifolia) eterinis
aliejus gali būti naudojamas kaip natūrali medžiaga, slopinanti mikroorganizmų augimą.
Thymus pulegioides eterinis aliejus turi priešgrybelinį veikimą prieš grybus, kurie yra
patogeniški žmonėms. Šis eterinis aliejus yra plataus veikimo spektro ir slopina ne tik dermatofitus,
Aspergillus ir Candida rūšis,bet ir flukanozolui atsparius C. albicans izoliatus, C. kursei ir C. glabrata
[34].
Razzaghi-Abyaneh ir kt. [31] tyrimai parodė, jog Carum carvi L., Thymus vulgaris ir Citrus
aurantifolia eteriniai aliejai gali būti naudojami kaip natūralūs konservantai, kontroliuojant maisto,
pašarų ir žemės ūkio produktų užteršimą aflatoksinais.
Thymus vulgaris, Thymus tosevii, Mentha piperita ir Mentha spicata eteriniai aliejai yra labai
aktyvūs prieš grybų toksinus ir gali būti saugiai naudojami kaip natūralūs konservantai, pakeičiant
sintetinius fungicidus, kai kurių augalų, žmonių ir gyvūnų grybelinių ligų prevencijoje ir gydyme
[24].
Čiobrelio sudėtinės dalys, ypač timolis, gali sudaryti naujus alternatyvius vaistinius preparatus
mikozių gydymui. Tačiau reikia daugiau tyrimų, kuriais būtų įrodytas saugus jų klinikinis naudojimas
[23].
16
2. TYRIMO MEDŽIAGA IR METODAI
2.1 Tyrimo medžiaga
Grūdų saugyklų aplinkos tyrimams mėginiai imti iš Prienų rajone ūkininkaujančių ūkininkų
mažų grūdų saugyklų, kuriose sandėliuojami grūdai. Tyrimams mėginiai imti iš 2 ūkininkų grūdų
saugyklų, 2013-2015 metais spalio, gruodžio, vasario ir balandžio mėnesiais.
Kviečių mėginiai imti iš tų pačių ūkininkų grūdų saugyklų. Sudarant vieną mėginį iš vienos
saugyklos, ėminiai buvo imti iš skirtingų vietų ir gylių saugykloje, dedami į švarią tarą ir sumaišomi.
Sumaišyti ėminiai sudedami į švarų maišelį ir pažymimi. Gaunamas galutinis mėginys, kurio svoris
apie 0,5 kg.
Grūdų saugyklų aplinkos dezinfekcijai buvo naudojami čiobrelio (Thymus vulgaris) ir
raudonėlio (Origanum vulgare) eteriniai aliejai ir ūkininkų naudojamas preparatas su veikliąja
medžiaga acetamipridu.
Grūdų saugyklų aplinkos ir jose laikomų kviečių mikrobiologiniai bei mikotoksikologiniai
tyrimai buvo atlikti 2013-2016 m. Lietuvos Sveikatos Mokslų Universitete, Veterinarijos
akademijoje, Maisto saugos ir kokybės katedroje,Gyvūnų gerovės tyrimų laboratorijoje.
2.2 Tyrimo metodai
Bendro bakterijų skaičiaus nustatymas grūdų saugyklų aplinkoje sedimentacijos metodu. 5
Petri lėkštelės, pripildytos 10 - 15 ml mėsos peptono agaro, išdėstomos keturiuose patalpos kampuose
ir viduryje. Atidengtas lėkšteles laikome 10 min. Skaitoma, kad ant Petri lėkštelės paviršiaus per 10
min. nusėda tiek mikroorganizmų, kiek jų yra 10 - 20 litrų oro. Po to lėkštelės talpinamos į termostatą
24 val. 30 oC temperatūroje. Rezultatus vertiname skaičiuodami išaugusių ant mėsos peptono agaro
mikroorganizmų kolonijų skaičių (KSV). Nustatyta, kad vidutiniškai per 5 min. ant 100 cm2 Petri
lėkštelės nusėda iš 3 litrų oro.
Gyvybingų mikromicetų sporų skaičiaus nustatymas grūdų saugyklų aplinkoje sedimentacijos
metodu. 5 Petri lėkštelės, pripildytos 10 - 15 ml Sabūro agaru su chloramfenikoliu, išdėstomos
keturiuose patalpos kampuose ir viduryje. Atidengtas lėkšteles laikome 10 min. Skaitoma, kad ant
Petri lėkštelės paviršiaus per 10 min. nusėda tiek mikroorganizmų, kiek jų yra 10 - 20 litrų oro.
Nustatyta, kad vidutiniškai per 5 min. ant 100 cm2 Petri lėkštelės nusėda iš 3 litrų oro. Po to lėkštelės
talpinamos į termostatą 5-7 dienom +26±2 ºC temperatūroje. Rezultatus vertiname skaičiuodami
išaugusių mikroorganizmų kolonijų skaičių (KSV) ant Sabūro agaro su chloramfenikoliu.
17
Bendro bakterijų skaičiaus nustatymas kviečių mėginiuose. Nustatyta skiedimo būdu pagal
LST EN ISO 4833: 2003 „Maisto ir pašarų mikrobiologija. Bendrasis metodas. Kolonijų
skaičiavimo 30 °C temperatūroje metodą“. Į kolbutę įpilama 90 ml distiliuoto vandens, 10 g mėginio,
dedama ant maišyklės ir maišoma 20 min. Po maišymo daromi praskiedimai iki 10-5 pagal schemą,
pateiktą 1 paveiksle.
1 pav. Tiriamojo mėginio praskiedimas
Iš mėgintuvėlio, kuriame praskiesta iki 10-5 , imama 1 ml tiriamojo mėginio ir sėjama į Petri
lėkštelę su Mitybiniu agaru, užpylimo būdu. Petri lėkštelės dedamos į termostatą +30 ºC
temperatūroje. Vertinama po 48 val. Lėkštelėse suskaičiuojamos kolonijos ir išvedamas vidurkis.
Gyvybingų mikromicetų sporų skaičiaus nustatymas kviečių mėginiuose. Tyrimai atlikti
vadovaujantis Lietuvos standartu LST ISO 7954:1998E. „Mikrobiologja. Mielių ir pelėsinių grybų
skaičiavimas. Bendrieji nurodymai. Kolonijų skaičiaus nustatymas 25 oC temperatūroje.“ Į kolbutę
įpilama 90 ml distiliuoto vandens, 10 g mėginio ir dedama ant maišyklės. Maišoma 20 min. Pabaigus
maišyti daromi praskiedimai iki 10-3 pagal pateiktą 2 paveikslą. Iš mėgintuvėlio, kuriame praskiesta
iki 10-3 , imama 1 ml tiriamojo mėginio ir sėjama į Petri lėkštelę su Sabūro terpe ir chloramfenikoliu
užpylimo būdu. Petri lėkštelės dedamos į termostatą, kuriame +26±2 ºC temperatūra. Vertinama po
5-7 dienų. Vertinant skaičiuojamos sporos ir vedamas vidurkis.
90ml H2O +
10 g mėginio
9ml
H2O 1
9ml
H2O
9ml
H2O
9ml
H2O 1 1 1
10-1 10-2 10-3 10-4 10-5
18
2 pav. Tiriamojo mėginio praskiedimas
Vyraujančių mikromicetų genčių nustatymas kviečiuose. Nustatant mikromicetų gentis,
vyraujančias grūdo viršutiniuose ir vidiniuose sluoksniuose, grūdai sėjami į Petri lėkšelę su Sabūro
agaru ir chloramfenikoliu. Nustatant mikromicetus, esančius grūdo paviršiuje, iš mėginio paimama
10 pilnų, nesuskilusių grūdų. Jie išdėliojami Petri lėkštelėje taip: 1 grūdas centre ir 9 grūdai aplinkui.
Nustatant mikromicetus vidiniame grūdų sluoksnyje, paimama saujelė grūdų ir supilama į
marlinį maišelį. Dezinfekuojama 70% spiritu 3 minutes. Praskalaujama distiliuotame vandenyje. Iš
jo paimama 10 pilnų, nesuskilusių grūdų ir jie išdėliojami kaip ir nustatinėjant mikromicetus grūdų
paviršiuje.
Petri lėkštelės dedamos į termostatą, kuriame +26±2 ºC temperatūra. Vertinama po 5-7 dienų.
Mikotoksinų kiekio nustatymas. Deoksinivalenolio, zearalenono, aflatoksino B1 ir T-2 toksino
kiekiui kviečiuose nustatyti buvo taikomas plonasluoksnės chromatografijos metodas pagal Romer
Lab (JAV) metodikas.
DON nustatymo eiga. Tiriamas mėginys (grūdai) sumalamas Romer Lab malūnu, sumaišomas
ir į švarų mikserio indą atsveriama 12,5 g mėginio. Jis užpilamas 100 ml 84/16 acetonitrilo/vandens
mišinio ir maišomas su mikseriu 3 minutes, perfiltruojama per popierinį filtrą. Gauto ekstrakto 7 ml
perkeliama į mėgintuvėlį ir perleidžiama per Mycosep® 227 Trich+ kolonėlę. 4 ml išvalyto ekstrakto
perleidžiama per sudrėkintą Multisep® 216 kolonėlę. Multisep® 216 kolonėlė praplaunama 2 kartus
4,5 ml 9/1 (9ml/1ml) acetonitrilo/vandens mišiniu. 13 ml mėginio ekstrakto išgarinama panaudojant
Romer® Evap sistemą. Nuosėdos ištirpinamos 400 µl 2/1 (1ml/0,5 ml) acetono/metanolo mišinyje.
Nustatant koncentraciją į specialius mikrošvirkštelius pritraukiama 10; 20; 40; 60; 80 µl DON
standarto ir 80 µl tiriamo mėginio ir užnešama ant chromatografinės plokštelės. Plokštelė įmerkiama
į vonelę su ½ (10 ml/20 ml) toluolo/acetono mišiniu, apipurškiama 15 proc. aliuminio chloridu
metanolyje, išdžiovinama ore ir pakaitinama 5 minutes ant plytelės 150 oC temperatūroje. Įvertinama
90ml H2O +
10 g mėginio
9ml
H2O 1
9ml
H2O 1
10-1 10-2 10-3
19
DON koncentracija UV spindulių fone (360 nm). DON koncentracija apskaičiuojama ppm (mg/kg).
Jo aptikimo riba 20 ppb.
T-2 toksino nustatymo eiga.Tiriamas mėginys (grūdai) sumalamas Romer Lab malūnu,
sumaišomas ir į švarų mikserio indą atsveriama 12,5 g mėginio. Jis užpilamas 100 ml 84/16
acetonitrilo/vandens mišinio ir maišomas su mikseriu 3 minutes, perfiltruojama per popierinį filtrą.
4,5 mlmėginio ekstrakto perkeliama į mėgintuvėlį ir pridedama 45 µl acto rūgšties, 10 sekundžių
maišoma. Mėginio ekstrakto valymui panaudotos MultiSep® 216 ir MycoSep® 227 valymo
kolonėlės (Romer Labs. Inc., Austrija). 13 ml išvalyto ekstrakto išgarinta Romer® Evap sistema.
Ekstrakto nuosėdos ištirpintos 320 μl 97/3 tolueno/acetonitrilo mišinyje. Į specialius mikrošvirkštus
pritraukus 10, 20, 40, 80 μl DON ar T-2 toksino standartų (100 μg/ml acetonitrilo) (Romer Labs. Inc.,
Austrija) ir 80 μl tiriamo mėginio, PSCh autospoteriu (autospotter) užnešamas standartas ir tiriamasis
mėginys ant silicio gelio chromatografinės plokštelės (Romer Labs. Inc., Austrija) 60°C
temperatūroje. Rezultatų išryškinimui DON plokštelė įmerkiama į 1/2 toluolo/acetono mišinio
vonelę, T-2 toksino - 25/15/1 metanolio/vandens/acto rūgšties mišinio. DON plokštelė apipurškiama
15 proc. aliuminio chloridu metanolyje, T-2 toksino - 10 proc. sieros rūgšties metanolyje. Plokštelė
išdžiovinama ore. Toksino koncentracija įvertinama pakaitinus plokštelę 150°C temperatūroje 5 min.
ultravioletinių spindulių (UV) fone (360 nm). Aptikimo riba – DON – 10 ppb, T-2 toksino – 10 ppb.
ZON ir AFL B1 nustatymo eiga.Tiriamas mėginys (grūdai) sumalamas Romer Lab malūnu,
sumaišomas ir į švarų mikserio indą atsveriama 12,5 g mėginio. Jis užpilamas 100 ml 84/16
acetonitrilo/vandens mišinio ir maišomas su mikseriu 3 minutes, perfiltruojama per popierinį filtrą.
4,5 ml mėginio ekstrakto perkeliama į mėgintuvėlį ir pridedama 45 µl acto rūgšties, 10 sekundžių
maišoma. 4,5 ml mėginio ekstrakto perleidžiama per Mycosep® 226 kolonėlę. 2 ml išvalyto mėginio
ekstrakto perkeliama į mėgintuvėlį ir išgarinama panaudojant Romer® Evap sistemą. Nuosėdos
ištirpinamos 300 µl 97/3 (97 ml/3 ml) toluolo/acetonitrilo mišinyje. Į specialius mikrošvirkštelius
pritraukiama 10; 20; 40; 80 µl zearalenono ir aflatoksino standartų ir 80 µl tiriamo mėginio ir
užnešama ant chromatografinės plokštelės. Ji įmerkiama į 9/1 (18 ml/2 ml) chloroformo/acetono
mišinio vonelę. Laikoma, kol skystis pakyla iki 1 cm plokštelės viršaus. Po to plokštelė išdžiovinama
ore. Įvertinama AFL B1 koncentracija UV spindulių fone. ZEN įvertinimui plokštelė apipurškiama
15 proc. aliuminio chloridu metanolyje. Ji išdžiovinama ore ir įvertinama ZEN koncentracija UV
spindulių fone. Toksino koncentracija apskaičiuojama ppm (mg/kg). ZEN aptikimo riba 10 ppb, o
AFL B1 – 2 ppb.
Grūdų saugyklų dezinfekcija eteriniais aliejais. Čiobrelių eterinio aliejaus (Thymus vulgaris) ir
raudonėlio eterinio aliejaus (Origanum vulgare) mišinys lygiomis dalimis (1:1) ištirpinamas
alkoholyje ir skiedžiamas kambario temperatūros vandeniu. Skiedimo santykis 1:500. Mišinys buvo
20
skleidžiamas aerozolinio purškimo būdu, naudojant „Fogmaster Tri-Jet ® 6208 (The Fogmaster
Corporation) prietaisą, kuris mišinį išpurškia 20-30 μm dydžio lašeliais. Mišinys buvo purškiamas 30
sekundžių, 1 metro aukštyje, įrenginio kryptį keičiant taip, kad aerozolis pasklistų visoje patalpoje.
Mėginiai buvo paimti prieš saugyklų dezinfekciją, 1 val. ir 3 val. po dezinfekcijos ir įvertinti
vadovaujantis bendro bakterijų skaičiaus ir gyvybingų mikromicetų sporų skaičiaus grūdų saugyklų
aplinkoje nustatymo metodika.
Grūdų saugyklų dezinfekcija ūkininkų naudojamomis priemonėmis. Prieš dezinfekciją grūdų
saugyklos buvo paruošiamos jas iššluojant ir pašalinant sąšlavas iš aruodų. Dezinfekciją ūkininkai
vykdo naudodami preparatą, kurio veiklioji medžiaga yra acetamipridas 200 g/kg. Preparatas
ruošiamas 5 l vandens ir 2 g preparato miltelių santykiu. Paruoštas tirpalas aplinkoje paskleidžiamas
rankiniu slėginiu purkštuvu smulkia dulksna. Mėginiai buvo paimti prieš saugyklų dezinfekciją, 1
val. ir 3 val. po dezinfekcijos ir įvertinti vadovaujantis bendro bakterijų skaičiaus ir gyvybingų
mikromicetų sporų skaičiaus grūdų saugyklų aplinkoje nustatymo metodika.
Statistinė duomenų analizė. Tyrimų duomenys įvertinti ,,Microsoft Exel“ programa.
Apskaičiuoti gautų duomenų aritmetiniai vidurkiai (Xv), vidutiniai kvadratiniai nuokrypiai (S),
variacijos koeficientai (Cv), nustatytos didžiausios (Xmax) ir mažiausios (Xmin) reikšmės, įvertintas
statistinis patikimumas.
21
3. TYRIMŲ REZULTATAI
3.1 Bakterinis užterštumas
3.1.1 Grūdų saugyklų aplinkos užterštumas
Siekiant įvertinti grūdų saugyklų aplinkos bakterinį užterštumą, mėginiai saugyklose buvo imti
dvejus metus. Pirmaisiais ir antraisiais grūdų sandėliavimo metais buvo paimta po 4 mėginius (1
priedas).
Lyginant pirmųjų ir antrųjų metų saugyklos Nr. 1 rodiklius, antraisiais grūdų sandėliavimo
metais užterštumas buvo 9,4 proc. didesnis nei pirmaisiais. Pirmaisiais metais grūdų saugyklos
bakterinis aplinkos užterštumas svyravo nuo 15723 KSV/m3 iki 63417 KSV/m3, o antraisiais - nuo
35115 KSV/m3 iki 91719 KSV/m3. Atitinkamai didžiausias užterštumas tiek pirmaisiais, tiek
antraisiais metais nustatytas gruodžio mėnesį. Mažiausias užterštumas pirmaisiais metais buvo
vasario, o antraisiais – spalio mėnesiais. Vidutinis grūdų saugyklos aplinkos užterštumas pirmaisiais
grūdų sandėliavimo metais buvo 45466,25 KSV/m3 ir 50183,5 KSV/m3 antraisiais (3 pav.).
3 pav. Bendras bakterijų skaičius grūdų saugyklos Nr. 1 aplinkoje (1A – pirmieji sandėliavimo metai;
1B – antrieji sandėliavimo metai)
Saugyklos Nr. 2 vidutinis bakterinis užterštumas pirmaisiais grūdų sandėliavimo metais buvo
116745,3 KSV/m3, o antraisiais metais 73244 KSV/m3. Lyginant šiuos rodiklius, pirmaisiais grūdų
sandėliavimo metais bakterinis užterštumas buvo 37 proc. didesnis nei antraisiais. Pirmaisiais metais
bakterinis grūdų saugyklos aplinkos užterštumas svyravo nuo 49790 KSV/m3 iki 191300 KSV/m3, o
antraisiais nuo 15199 KSV/m3 iki 135220 KSV/m3 (4 pav.). Pirmaisiais metais spalio mėnesį
užterštumas buvo didžiausias, o antraisiais šį mėnesį užterštumas mažiausias. Panaši situacija ir
vasario mėnesį – pirmaisiais metais užterštumas mažiausias, o antraisiais – didžiausias.
0
20000
40000
60000
80000
100000
SpalisGruodis
VasarisBalandis
5345963417
15723
4926635115
91719
36164 37736
1A 1B
Ben
dra
sbak
teri
jųsk
aiči
us
(KS
V/m
3)
Mėginių paėmimo laikas
22
4 pav. Bendras bakterijų skaičius grūdų saugyklos Nr. 2 aplinkoje (2A – pirmieji sandėliavimo metai;
2B – antrieji sandėliavimo metai)
3.1.2 Grūdų saugyklų aplinkos mikrobiologinis užterštumas prieš ir po dezinfekcijos
Po pirmųjų grūdų sandėliavimo metų buvo atlikta grūdų saugyklų dezinfekcija eteriniais
aliejais, o po antrųjų metų – dezinfekcija ūkininkų priemonėmis.
Saugykloje Nr. 1, prieš atliekant dezinfekciją eteriniais aliejais, buvo paimti mėginiai, kad
įvertinti saugyklų aplinkoje esantį bendrą bakterijų skaičių. Gautas rezultatas buvo 72327 KSV/m3.
Mėginiai buvo paimti ir praėjus 1 ir 3 valandoms po dezinfekcijos. Praėjus 1 val. bendras bakterijų
skaičius buvo sumažėjęs 2 kartus, o po 3 val. – 3 kartus.
Prieš atliekant dezinfekciją ūkininkų priemonėmis, bendras bakterijų skaičius saugyklos Nr. 1
aplinkoje buvo 18344 KSV/m3. Praėjus 1 val. po dezinfekcijos, šis skaičius buvo sumažėjęs 1,6 karto,
o praėjus 3 val. po dezinfekcijos - 2 kartus (5 pav.).
5 pav. Bendras bakterijų skaičius grūdų saugyklos Nr. 1 aplinkoje prieš ir po dezinfekcijos
0
50000
100000
150000
200000
SpalisGruodis
VasarisBalandis
191300
143606
4979082285
15199
111635135220
30922
2A 2B
Ben
dra
sbak
teri
jųsk
aiči
us
(KS
V/m
3)
Mėginių paėmimo laikas
0
20000
40000
60000
80000
Prieš1 val. po
3 val. po
72327
34067
2306118344
110068910
Eteriniai aliejai Ūkininkų priemonės
Ben
dra
sbak
teri
jųsk
aiči
us
(K
SV
/m3)
Mėginių paėmimo laikas
23
Saugykloje Nr. 2, prieš dezinfekciją eteriniais aliejais, bendras bakterijų skaičius buvo 55556
KSV/m3. Praėjus 1 val. po dezinfekcijos, bendras bakterijų skaičius buvo sumažėjęs 2,3 karto, o 3
val. po dezinfekcijos – 3 kartus.
Prieš dezinfekciją ūkininkų priemonėmis, bendras bakterijų skaičius buvo 28302 KSV/m3.
Praėjus 1 val. po dezinfekcijos bendras bakterijų skaičius sumažėjo 1,4 karto, 3 val. po dezinfekcijos
- 1,9 karto (6 pav.).
6 pav. Bendras bakterijų skaičius grūdų saugyklos Nr. 2 aplinkoje prieš ir po dezinfekcijos
3.1.3 Saugyklose laikomų kviečių užterštumas
Du metus buvo imami ir kviečių mėginiai iš pirmosios ir antrosios grūdų saugyklos spalio,
gruodžio, vasario, balandžio mėnesiais ir vertinamas bakterinis užterštumas (1 priedas).
Lyginant pirmuosius grūdų sandėliavimo metus su antraisiais, kviečių užterštumas antraisiais
metais buvo didesnis 25 proc. Pirmaisiais metais kviečių, laikomų saugykloje Nr. 1, vidutinis
užterštumas buvo 71x10-5 KSV/g, o antraisiais – 94,75x10-5 KSV/g. Pirmaisiais metais kviečių
bakterinis užterštumas svyravo nuo 11x10-5 KSV/g iki 131x10-5 KSV/g, o antraisiais nuo 73x10-5
KSV/g iki 112x10-5 KSV/g. Atitinkamai tiek pirmaisiais, tiek antraisiais metais didžiausias
užterštumas buvo balandžio mėnesį, o mažiausias užterštumas pirmus metus buvo spalio mėnesį, o
antrus – vasario mėnesį (7 pav.).
0
10000
20000
30000
40000
50000
60000
Prieš1 val. po
3 val. po
55556
24109
18344
28302
20440
15199
Eteriniai aliejai Ūkininkų priemonės
Ben
dra
sbak
teri
jųsk
aiči
us
(KS
V/m
3)
Mėginių paėmimo laikas
24
7 pav. Bendras bakterijų skaičius kviečių mėginiuose, paimtuose iš grūdų saugyklos Nr. 1 (1A –
pirmieji sandėliavimo metai; 1B – antrieji sandėliavimo metai)
Kviečių, laikomų saugykloje Nr. 2, vidutinis užterštumas pirmaisiais grūdų sandėliavimo
metais buvo 22x10-5 KSV/g ir 25,75x10-5 KSV/g antraisiais. Antraisiais metais kviečių užterštumas
buvo 15 proc. didesnis, lyginant su pirmaisiais. Kviečių bakterinis užterštumas pirmaisiais metais
svyravo nuo 9x10-5 KSV/g iki 43x10-5 KSV/g, o antraisiais metais užterštumas svyravo nuo 11x10-5
KSV/g iki 60x10-5 KSV/g. Atitinkamai, tiek pirmaisiais, tiek antraisiais metais, mažiausias
užterštumas buvo spalio mėnesį, o didžiausias – gruodžio (8 pav.).
8 pav. Bendras bakterijų skaičius kviečių mėginiuose, paimtuose iš grūdų saugyklos Nr. 2 (2A –
pirmieji sandėliavimo metai; 2B – antrieji sandėliavimo metai)
0
20
40
60
80
100
120
140
SpalisGruodis
VasarisBalandis
11
51
91
131
105
89
73
112
1A 1B
Ben
dra
sbak
teri
jųsk
aiči
us
(x10
-5K
SV
/g)
Mėginių paėmimo laikas
0
10
20
30
40
50
60
SpalisGruodis
VasarisBalandis
9
43
11
2511
60
1715
2A 2B
Ben
dra
sbak
teri
jųsk
aiči
us
(x1
0-5
KS
V/g)
Mįginių paėmimo laikas
25
3.2. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius
3.2.1 Grūdų saugyklų aplinkoje
Kaip ir įvertinant grūdų saugyklų aplinkos bakterinį užterštumą, mėginiai gyvybingų
mikromicetų sporų tyrimams buvo imti dvejus metus. Pirmaisiais ir antraisiais grūdų sandėliavimo
metais buvo paimta po 4 mėginius (2 priedas).
Pirmaisiais sandėliavimo metais, vidutinis grūdų saugyklos Nr. 1 aplinkos užkrėstumas
gyvybingomis mikromicetų sporomis buvo 25681,25 KSV/m3, o antraisiais – 43763,25 KSV/m3.
Pirmaisiais metais gyvybingų mikromicetų sporų skaičius vyravo nuo 11006 KSV/m3 iki 37736
KSV/m3, antraisiais – nuo 35115 KSV/m3 iki 57128 KSV/m3. Atitinkamai, tiek pirmaisiais, tiek
antraisiais metais, mažiausias gyvybingų mikromicetų sporų skaičius buvo vasario mėnesį, o
didžiausias – balandžio. Lyginant dviejų metų užkrėstumą gyvybingomis mikromicetų sporomis,
antraisiais grūdų sandėliavimo metais jis buvo 41 proc. didesnis (9 pav.).
9 pav. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius grūdų saugyklos Nr. 1 aplinkoje (1A – pirmieji
sandėliavimo metai; 1B – antrieji sandėliavimo metai)
Grūdų saugyklų aplinkoje Nr. 2, gyvybingų mikromicetų sporų skaičius antraisiais grūdų
sandėliavimo metais buvo 43 proc. didesnis nei pirmaisiais. Pirmaisiais metais vidutinis jų skaičius
buvo 46121,5 KSV/m3, o antraisiais – 81368 KSV/m3. Ribos, kuriose vyravo gyvybingų mikromicetų
sporų skaičius, pirmais metais buvo nuo 35115 KSV/m3 iki 58700 KSV/m3. Atitinkamai mažiausias
užkrėstumas buvo gruodžio mėnesį, o didžiausias – spalio. Antraisiais metais gyvybingų
mikromicetų sporų skaičius vyravo nuo 62893 KSV/m3 iki 107967 KSV/m3. Mažiausias šis skaičius
buvo spalio mėnesį, o didžiausias – vasario (10 pav.).
0
10000
20000
30000
40000
50000
60000
SpalisGruodis
VasarisBalandis
2306130922
11006
37736
40881 41929
35115
57128
1A 1B
Gyv
ybin
gų
mik
rom
icet
ųsp
orų
skai
čius
(K
SV
/m3)
Mėginių paėmimo laikas
26
10 pav. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius grūdų saugyklos Nr. 2 aplinkoje (2A – pirmieji
sandėliavimo metai; 2B – antrieji sandėliavimo metai)
3.2.2 Grūdų saugyklų aplinkoje prieš ir po dezinfekcijos
Saugykloje Nr. 1, prieš dezinfekciją eteriniais aliejais, gyvybingų mikromicetų sporų skaičius
buvo 197589 KSV/m3. Praėjus 1 val. po dezinfekcijos, šis skaičius buvo sumažėjęs 2,7 karto, o 3 val.
po dezinfekcijos – 2,8 karto.
Prieš dezinfekciją ūkininkų priemonėmis, užkrėstumas gyvybingomis mikromicetų sporomis
buvo 111635 KSV/m3. Praėjus 1 val. po dezinfekcijos, gyvybingų mikromicetų sporų skaičius
sumažėjo 1,7 karto, o 3 val. – 1,9 karto. (11 pav.).
11 pav. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius grūdų saugyklos Nr. 1 aplinkoje prieš ir po
dezinfekcijos
0
20000
40000
60000
80000
100000
120000
SpalisGruodis
VasarisBalandis
58700
35115
49790
40881
62893 72851
107967
81761
2A 2B
Gyv
ybin
gų
mik
rom
icet
ų s
po
rų
skai
čius
(KS
V/m
3)
Mėginių paėmimo laikas
0
50000
100000
150000
200000
Prieš1 val. po
3 val. po
197589
7337569707
111635
6551458700
Eteriniai aliejai Ūkininkų priemonės
Gyv
ybin
gų
mik
rom
icet
ų s
po
rų
skai
čius
(KS
V/m
3)
Mėginių paėmimo laikas
27
Saugykloje Nr. 2, prieš dezinfekciją eteriniais aliejais, gyvybingų mikromicetų sporų skaičius
buvo 180294 KSV/m3. Praėjus 1 val. po dezinfekcijos, gyvybingų mikromicetų sporų skaičius buvo
sumažėjęs 2,6 karto, o 3 val. – 3 kartus.
Prieš dezinfekciją ūkininkų priemonėmis, gyvybingų mikromicetų sporų skaičius buvo 103250
KSV/m3. Praėjus 1 val. po dezinfekcijos šis skaičius buvo sumažėjęs 1,4 karto, o 3 val. – 1,5 karto
(12 pav.).
12 pav. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius grūdų saugyklos Nr. 2 aplinkoje prieš ir po
dezinfekcijos
3.2.3. Saugyklose laikomuose kviečiuose
Vertinant gyvybingų mikromocetų sporų skaičių saugyklose laikomuose kviečiuose, buvo
sudaryti 4 mėginiai pirmaisiais sandėliavimo metais ir 4 mėginiai antraisiais (2 priedas).
Iš grūdų saugyklos Nr.1 paimtuose kviečių mėginiuose, užkrėstumas gyvybingomis
mikromicetų sporomis pirmaisiais grūdų sandėliavimo metais buvo 73 proc. didesnis nei antraisiais.
Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius pirmaisiais metais vyravo nuo 12x10-3 KSV/g iki 51x10-3
KSV/g, o vidutinis užkrėstumas buvo 36x10-3 KSV/g. Antraisiais metais šis skaičius vyravo nuo
3x10-3 KSV/g iki 22x10-3 KSV/g , o vidutinis užkrėstumas buvo 10x10-3 KSV/g. Atitinkamai,
pirmaisiais metais mažiausiais užkrėstumas gyvybingomis mikromicetų sporomis buvo balandžio
mėnesį, o didžiausias – spalio. Antraisiais metais balandžio mėnesį užkrėstumas buvo didžiausias, o
vasario mėnesį – mažiausias (13 pav.).
0
50000
100000
150000
200000
Prieš1 val. po
3 val. po
180294
6813460273
103250
7599668658
Eteriniai aliejai Ūkininkų priemonės
Gyv
ybin
gų
mik
rom
icet
ų s
po
rų
skai
čiu
s (
KS
V/m
3)
Mėginių paėmimo laikas
28
13 pav. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius kviečių mėginiuose, paimtuose iš grūdų saugyklos Nr.
1 (1A – pirmieji sandėliavimo metai; 1B – antrieji sandėliavimo metai)
Kviečių mėginiuose, paimtuose iš saugyklos Nr. 2, vidutinis gyvybingų mikromicetų sporų
skaičius antraisiais sandėliavimo metais buvo 5x10-3 KSV/g, o pirmaisiais – 29,5x10-3 KSV/g, t.y. 83
proc. didesnis. Pirmųjų metų balandžio mėnesį buvo nustatytas didžiausias gyvybingų mikromicetų
sporų skaičius - 67x10-3 KSV/g, o spalio mėnesį mažiausias – 3x10-3 KSV/g. Antraisiais metais šis
skaičius vyravo nuo 2x10-3 KSV/g, t.y. gruodžio mėnesį, iki 7x10-3 KSV/g vasario ir balandžio
mėnesiais (14 pav.).
14 pav.Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius kviečių mėginiuose, paimtuose iš grūdų saugyklos Nr.
2 (2A – pirmieji sandėliavimo metai; 2B – antrieji sandėliavimo metai)
0
10
20
30
40
50
60
SpalisGruodis
VasarisBalandis
51
4437
12
11
43
22
1A 1B
Gyv
ybin
gų
mik
rom
icet
ųsp
orų
skai
čius
(x10
-3K
SV
/g)
Mėginių paėmimo laikas
0
10
20
30
40
50
60
70
SpalisGruodis
VasarisBalandis
3
16
32
67
62 7
7
2A 2B
Gyv
ybin
gų
mik
rom
icet
ųsp
orų
skai
čius
(x10-3
KS
V/g)
Mėginių paėmimo laikas
29
3.3. Vyraujančios mikromicetų gentys grūdų saugyklų aplinkoje
1 lentelės duomenimis, pirmuosius metus grūdų saugyklų aplinkoje Nr. 1 vyravo Fusarium,
Penicillium, Alternaria, Aspergillus ir Cladosporium gentys. Antruosius metus vyravo Fusarium,
Penicillium, Cladosporium, Aspergillus, Rhizopus gentys.
Saugykloje Nr. 2 pirmuosius grūdų sandėliavimo metus vyravo Alternaria, Fusarium,
Penicillium, Aspergillus, Cladosporium gentys. Antruosius sandėliavimo metus vyraujančios gentys
buvo Penicillium, Cladosporium, Rhizomucor, Fusarium, Aspergillus, Rhizopus.
1 lentelė. Vyraujančios mikromicetų gentys grūdų saugyklų aplinkoje.
Tyrimo
laikas
Saugykla Nr. 1 Saugykla Nr. 2
pirmi metai antri metai pirmi metai antri metai
Spalis
Alternaria spp.,
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizopus spp.,
Trichoderma spp.,
Ulocladium spp.
Alternaria spp.,
Aspergillus spp.,
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizopus spp.
Alternaria spp.,
Aspergillus spp.,
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizopus spp.,
Trichoderma spp.
Alternaria spp.,
Aspergillus spp.,
Cladosporium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizomucor spp.
Gruodis
Alternaria spp.,
Aspergillus spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.
Aspergillus spp.,
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Mucor spp.
Alternaria spp.,
Aspergillus spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.
Cladosporum spp.,
Penicillium spp.
Vasaris
Aspergillus spp.,
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizomucor spp.
Aspergillus spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizomucor spp.,
Rhizopus spp.
Alternaria spp.,
Aspergillus spp.,
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizomucor spp.,
Rhizopus spp.
Aspergillus spp.,
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rizomucor spp.,
Rhizopus spp.,
Trichoderma spp.
Balandis
Alternaria spp.,
Acremoniella spp.,
Aspergillus spp.,
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizopus spp.
Cladosporium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizomucor spp.,
Rhizopus spp.
Alternaria spp.,
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizopus spp.
Cladosporium spp.,
Fusarium spp.,
Penicillium spp.,
Rhizopus spp.,
Rhizomucor spp.
3.4 Išorinis ir vidinis kviečių užkrėstumas mikromicetų gentimis
Remiantis 2 lentelės duomenimis, grūdų,laikomų saugyklojeNr. 1 išoriniame grūdų sluoksnyje
pirmus metus vyravo Alternaria ir Fusarium mikromicetų gentys. Alternaria genties vidutiniškai
aptikta 64 proc., Fusarium – 50 proc. Alternaria genties mikromicetų didžiausias nustatytas kiekis
30
buvo 100 proc, o mažiausias – 20 proc. Fusarium genties mikromicetų atitinkamai nustatyta 93,3
proc. ir 3,3 proc.
Antruosius grūdų sandėliavimo metus, išoriniame grūdų sluoksnyje Alternaria genties
mikromicetų vidutiniškai aptikta 50 proc., Fusarium ir Cladosporium genties 37 proc.
Saugykloje Nr. 2, pirmuosius sandėliavimo metus, išoriniame grūdų sluoksnyje vyraujančios
mikromicetų gentys buvo Alternaria, Fusarium ir Cladosporium. Alternaria genties mikromicetų
vidutiniškai aptikta 79 proc., Fusarium – 65 proc., o Cladosporium – 21 proc. Didžiausi aptikti
Alternaria ir Fusarium genčių mikromicetų kiekiai buvo 90 proc., Cladosporium genties – 26,6 proc.
Mažiausias aptiktas Alternaria genties mikromicetų kiekis buvo 66,6 proc, Fusarium – 43,3 proc., o
Cladosporium – 13,3 proc.
Antraisiais sandėliavimo metais išoriniame grūdų sluoksnyje vyraujančios mikromicetų gentys
buvo Alternaria ir Fusarium. Alternaria genties vidutiniškai aptikta 50 proc., o Fusarium - 47 proc.
Didžiausias aptiktas Alternaria genties mikromicetų kiekis 66,6 proc.,o mažiausias – 30 proc.
Fusarium genties mikromicetų atitinkamai aptikta 80 proc. ir 26,6 proc.
2 lentelė. Išorinis kviečių užkrėstumas mikromicetų gentimis.
Tyrimų
laikas
Išorinis kviečių užkrėstumas
Mikromicetų gentys
Saugykla Nr.1 Saugykla Nr. 2
pirmi metai,
proc.
antri metai,
proc.
pirmi metai,
proc.
antri metai,
proc.
Spalis
Alternaria spp.
Cladosporium spp.
Fusarium spp.
Ulocladium spp.
Penicillium spp.
66,6
23,3
20
-
-
50
26,6
20
-
23,3
80
13,3
50
-
-
60
13,3
46,6
33,3
10
Gruodis
Alternaria spp.
Aspergillus spp.
Cladosporium spp.
Fusarium spp.
Ulocladium spp.
Penicillium spp.
70
-
40
93,3
-
3,3
56,6
3,3
76,6
23,3
3,3
6,6
66,6
-
23,3
76,6
-
-
66,6
-
23,3
26,6
10
70
Vasaris
Alternaria spp.
Cladosporium spp.
Fusarium spp.
Ulocladium spp.
Penicillium spp.
100
53,3
83,3
-
3,3
73,3
40
56,6
10
13,3
90
26,6
90
-
-
30
40
36,6
13,3
6,6
Balandis
Alternaria spp.
Cladosporium spp.
Fusarium spp.
Ulocladium spp.
Penicillium spp.
20
-
3,3
-
90
20
3,3
50
6,6
100
80
20
43,3
-
70
43,3
46,6
80
30
30
31
3 lentelės duomenimis, saugykloje Nr. 1 pirmaisiais sandėliavimo metais laikytų grūdų
vidiniame sluoksnyje Alternaria genties mikromicetų vidutiniškai aptikta 61 proc., Fusarium – 27
proc. Didžiausias aptiktas Alternaria genties mikromicetų kiekis buvo 93,3 proc., o mažiausias – 16,6
proc., Fusarium genties atitinkamai 40 proc. ir 6,6 proc.
Antraisiais sandėliavimo metais, vidiniame grūdų sluoksnyje Alternaria genties mikromicetų
vidutiniškai aptikta 44 proc., Fusarium –57 proc. Didžiausi aptikti Alternaria ir Fusarium genčių
mikromicetų kiekiai atitinkamai buvo 56,6 proc. ir 83,3 proc., mažiausi – 26,6 proc. ir 30 proc.
Saugykloje Nr. 2, pirmuosius metus sandėliuotų grūdų vidiniame sluoksnyje Alternaria genties
mikromicetų vidutiniškai aptikta 64 proc., o Fusarium 44 proc. Didžiausias aptiktas Alternaria
genties mikromicetų kiekis buvo 73,3 proc, o mažiausias - 50 proc. Fusarium genties mikromicetų
atitinkamai aptikta 46,6 proc. ir 20 proc.
Antraisiais sandėliavimo metais užkrėstumas Alternaria genties mikromicetais vidutiniškai
buvo 43 proc. Didžiausias aptiktas kiekis buvo 60 proc, o mažiausias- 20 proc. Fusarium genties
mikromicetų vidiniame grūdų sluoksnyje vidutiniškai aptikta 28 proc. Didžiausias aptiktas kiekis
53,3 proc., o mažiausias – 3,3 proc.
3 lentelė. Vidinis kviečių užkrėstumas mikromicetų gentimis.
Tyrimų
laikas
Vidinis grūdų sluoksnis
Mikromicetų
gentys
Saugykla Nr. 1 Saugykla Nr. 2
pirmi metai,
proc.
antri metai,
proc.
pirmi metai,
proc.
antri metai,
proc.
Spalis
Alternaria spp.
Cladosporium spp.
Fusarium spp.
Ulocladium spp.
Penicillium spp.
70
20
23,3
-
-
56,6
20
30
16,6
-
73,3
26,6
80
-
-
53,3
6,6
20
13,3
-
Gruodis
Alternaria spp.
Cladosporium spp.
Fusarium spp.
Ulocladium spp.
Penicillium spp.
66,6
-
36,6
-
-
50
10
83,3
16,6
-
73,3
13,3
30
-
-
60
-
3,3
20
23,3
Vasaris
Alternaria spp.
Cladosporium spp.
Fusarium spp.
Ulocladium spp.
Penicillium spp.
93,3
30
40
-
3,3
43,3
16,6
63,3
16,6
-
50
23,3
46,6
-
-
20
13,3
36,6
13,3
-
Balandis
Alternaria spp.
Cladosporium spp.
Fusarium spp.
Ulocladium spp.
Penicillium spp.
16,6
-
6,6
-
23,3
26,6
3,3
50
33,3
6,6
60
6,6
20
-
3,3
40
6,6
53,3
30
3,3
32
3.5 Mikotoksinų koncentracijos kviečiuose
Pirmaisiais ir antraisiais grūdų sandėliavimo metais paimtuose kviečių mėginiuose buvo
nustatytos zearalenono, deoksinivalenolio, aflatoksino B1 ir T-2 toksino koncentracijos (3 priedas).
Saugykloje Nr. 1 laikytuose grūduose, pirmaisiais sandėliavimo metais didžiausia aflatoksino
B1 koncentracija buvo 7 μg/kg, mažiausia – žemiau aptikimo ribos. Zearalenono didžiausia aptikta
koncentracija buvo 600 μg/kg, o mažiausia – 130 μg/kg. Deoksinivalenolio didžiausia nustatyta
koncentracija 900 μg/kg, mažiausia – žemiau aptikimo ribos. Didžiausia T-2 toksino koncentracija
buvo 80 μg/kg, o mažiausia – žemiau aptikimo ribos (15 pav.). Vidutinė aflatoksino B1 koncentracija
kviečiuose aptikta 3 μg/kg, zearalenono - 318 μg/kg, deoksinivalenolio - 538 μg/kg, o T-2 toksino -
45 μg/kg.
15 pav. Mikotoksinų koncentracijos kviečiuose, laikytuose saugykloje Nr. 1 pirmaisiais
sandėliavimo metais
Antraisiais sandėliavimo metais, iš saugyklos Nr. 1 paimtuose kviečių mėginiuose, didžiausia
aptikta aflatoksino B1 koncentracija buvo 7 μg/kg, zearalenono –530 μg/kg, deoksinivalenolio – 750
μg/kg, T-2 toksino – 50 μg/kg. Mažiausios šių mikotoksinų koncentracijos buvo nustatytos žemiau
aptikimo ribos (16 pav.). Vidutinė aflatoksino B1 koncentracija kviečių mėginiuose nustatyta 3 μg/kg,
zearalenono - 273 μg/kg, deoksinivalenolio – 338 μg/kg, o T-2 toksino – 43 μg/kg.
0
200
400
600
800
1000
Spalis Gruodis Vasaris Balandis
7 0 5 0
270 270
600
130
900
750
500
050
080 50
AFL B1
ZON
DON
T-2
μg/k
g
Mėginių paėmimo laikas
33
16 pav. Mikotoksinų koncentracijos kviečiuose, laikytuose saugykloje Nr. 1 antraisiais
sandėliavimo metais
17 paveikslo duomenimis, iš saugyklos Nr. 2 paimtuose kviečių mėginiuose, pirmaisiais
sandėliavimo metais didžiausia nustatyta aflatoksino B1 koncentracija buvo 3 μg/kg, mažiausia –
žemiau aptikimo ribos. Zearalenono didžiausia nustatyta koncentracija 1000 μg/kg, mažiausia – 100
μg/kg. Deoksinivalenolio didžiausia koncentracija buvo 500 μg/kg, mažiausia – 150 μg/kg. T-2
koncentracija nustatyta žemiau aptikimo ribos. Vidutinė aflatoksino B1 koncentracija nustatyta 2
μg/kg, zearalenono – 650 μg/kg, deoksinivalenolio – 300 μg/kg.
17 pav. Mikotoksinų koncentracijos kviečiuose, laikytuose saugykloje Nr. 2 pirmaisiais
sandėliavimo metais
0
100
200
300
400
500
600
700
800
Spalis Gruodis Vasaris Balandis
2 7 1 0
290270
0
530
600
0
750
030 50 50
AFL B1
ZON
DON
T-2
μg/k
g
Mėginių paėmimo laikas
0
200
400
600
800
1000
Spalis Gruodis Vasaris Balandis
0 1 3 3
100
800
700
1000
500
150
300250
0
AFL B1
ZON
DON
T-2
Mėginių paėmimo laikas
μg/k
g
34
Antraisiais grūdų sandėliavimo metais, saugykloje Nr. 2 laikytuose kviečiuose, didžiausia
aflatoksino B1 koncentracija buvo 3 μg/kg, mažiausia – žemiau aptikimo ribos. Zearalenono
didžiausia aptikta koncentracija buvo 530 μg/kg, o mažiausia – 130 μg/kg. Deoksinivalenolio
didžiausia nustatyta koncentracija 500 μg/kg, mažiausia – žemiau aptikimo ribos. Didžiausia T-2
toksino koncentracija buvo 80 μg/kg, o mažiausia – žemiau aptikimo ribos (18 pav.). Vidutinė aptikta
aflatoksino B1 koncentracija kviečiuose buvo 1 μg/kg, zearalenono - 340 μg/kg, deoksinivalenolio -
374 μg/kg.
18 pav. Mikotoksinų koncentracijos kviečiuose, laikytuose saugykloje Nr. 2antraisiais
sandėliavimo metais
0
100
200
300
400
500
600
Spalis Gruodis Vasaris Balandis
1 0 0 3
130
400
300
530500 500
0
500
80
0 0
AFL B1
ZON
DON
T-2
μg/k
g
Mėginių paėmimo laikas
35
4. REZULTATŲ APIBENDRINIMAS
Kadangi grūdų saugyklų aplinkos ir kviečių mėginiai imti skirtingais metų mėnesiais, tai
įvertinus gautus duomenis nematyti tendencijos, kad nuo sandėliavimo trukmės priklauso ir bakterijų
bei gyvybingų mikromicetų sporų skaičius. Ūkininkų saugyklose, iš kurių buvo imti mėginiai, vidaus
temperatūra yra artima lauko temperatūrai. Šaltesnėmis dienomis mikroorganizmų medžiagų
apykaita sulėtėja ir dėl to sulėtėja jų dauginimasis, o 2 oC temperatūroje dauguma mikroorganizmų
išvis nustoja vystytis. Tačiau orams atšilus gyvybiniai organizmo procesai vėl tampa normalūs ir
mikroorganizmų skaičius padidėja [7]. Taigi šiuos skaičius įtakoja klimatinės sąlygos, vyravusios
mėginių paėmimo dieną.
Literatūros duomenimis, sandėliuojant grūdus, susidaro sandėlių mikroflora ir aplinkoje ima
vyrauti Aspergillus, Penicillium, Rhizopus, Mucor genčių mikroskopiniai grybai [4].Nustatyta, jog
tiriamų saugyklų aplinkoje vyravo Alternaria, Fusarium, Cladosporium, Aspergillus, Penicillium,
Rhizopus gentys.
Lietuvoje javai dažniausiai užkrečiami Alternaria, Aspergillus, Cladosporium, Fusarium ir
Penicillium mikroskopinių grybų gentimis [4]. Atlikus tyrimus tirtuose kviečiuose vyravo Alternaria,
Fusarium, Cladosporium, Penicilium, Ulocladium mikroskopinių grybų gentys.
Remiantis komisijos reglamentu (EB) Nr. 1881/2006 2006 m. gruodžio 19 d. nustatančiu
didžiausias leistinas tam tikrų teršalų maisto produktuose koncentracijas (4 priedas) [36], įvertintos
mikotoksinų koncentracijos, aptiktos tirtuose kviečiuose.
Pirmus sandėliavimo metus, saugykloje Nr. 1 laikytuose kviečiuose, aflatoksino B1
koncentracija leistiną 2 μg/kg koncentraciją viršijo spalio ir vasario mėnesiais, o antraisiais metais
gruodžio mėnesį. Saugykloje Nr. 2 laikytuose kviečių mėginiuose, pirmaisiais sandėliavimo metais
aflatoksino B1 koncentracija leistiną normą viršijo vasario ir balandžio mėnesiais, o antruosius metus
balandžio mėnesį. Tiriant vyraujančias mikromicetų gentis kviečiuose, išoriniame grūdo sluoksnyje
Aspergillus spp. buvo aptikta tik viename mėginyje, tačiau tiriant saugyklų aplinkoje vyraujančias
mikromicetų gentis nustatyta, kad saugykloje Nr.1 Aspergillus genties grybų aptikta 75 proc.
mėginių, o saugykloje Nr. 2 – 62,5 proc. mėginių. Kadangi orui judant grybų sporos išnešiojamos po
visą patalpą ir nusėda ant įvairių paviršių [2], tai galima teigti, jog Aspergillus spp. mikromicetų
sporos, nusėdusios ant grūdų paviršiaus pažeidė juos [4] ir produkavo aflatoksiną B1.
Zearalenonas pirmaisiais sandėliavimo metais, saugykloje Nr. 1 laikytuose kviečių mėginiuose,
leistiną 75 μg/kg koncentraciją viršijo visais tirtais mėnesiais. Ji vyravo nuo 130 μg/kg iki 600 μg/kg
. Antraisiais metais norma viršyta gruodžio ir balandžio mėnesiais. Saugykloje Nr. 2 tiek pirmus, tiek
antrus metus zearalenono koncentracija viršyta visais tirtais mėnesiais ir atitinkamai ji vyravo nuo
100 μg/kg iki 1000 μg/kg ir nuo 130 μg/kg iki 530 μg/kg.
36
Lietuvoje auginamuose javų grūduose dar lauko sąlygomis labai dažnai aptinkami Fusarium
genties įvairių rūšių mikromicetai, kurių produkuojamais mikotoksinais būna užteršta apie 90 proc.
grūdų ėminių, paimtų nuimant derlių [5]. Šiame tyrime mėginiai buvo imti iš mažų ūkių saugyklų, o
Lietuvoje atliktų tyrimų duomenimis, zearalenonu labiausiai užteršti kviečiai, sandėliuoti mažų ūkių
saugyklose [37]. Atliktų tyrimų duomenimis nustatyta, kad saugyklos Nr. 1 ir saugyklos Nr. 2
aplinkoje Fusarium genties mikromicetų aptikta 87,5 proc. ir 75 proc. mėginių. Kviečių mėginiuose,
paimtuose iš saugyklos Nr. 1, pirmais ir antrais grūdų sandėliavimo metais, išoriniame grūdo
sluoksnyje Fusarium spp.vidutiniškai aptikta 43,7 proc., o saugykloje Nr. 2 – 46 proc. Vidiniame
grūdo sluoksnyje atitinkamai nustatyta 41,6 proc. ir 36 proc. Toks Fusarium genties aptikimo
procentas ir lėmė viršytus zearalenono kiekius kviečiuose.
Deoksinivalenolio koncentracija leistiną 750 μg/kg koncentraciją pirmus metus saugykloje Nr.
1 viršijo tik spalio mėnesį – 900 μg/kg. Antraisiais metais vasario mėnesį ši koncentracija buvo lygi
leistinai 750 μg/kg koncentracijai, o kitais mėnesiais buvo žemiau aptikimo ribos. Saugykloje Nr. 2
laikytuose kviečių mėginiuose tiek pirmais, tiek antrais metais deoksinivalenolio koncentracija
neviršijo leistinos koncentracijos.
Po pirmųjų grūdų sandėliavimo metų, saugyklose buvo vykdoma dezinfekcija čiobrelio
(Thymus vulgaris) ir raudonėlio (Origanum vulgare) eteriniais aliejais. Lyginant mikroorganizmų
skaičių prieš dezinfekciją ir praėjus 3 val. po dezinfekcijos, abiejose saugyklose šis skaičius buvo
sumažėjęs 3 kartus.
Siekiant įvertinti, ar ūkininkų naudojamos dezinfekcijos priemonės veikia ir aplinkoje esančius
mikroorganizmus, po antrųjų grūdų sandėliavimo metų buvo vykdoma dezinfekcija ir mėginiai paimti
prieš ir po jos. Atlikus tyrimus nustatyta, jog praėjus 3 val. po dezinfekcijos, mikroorganizmų skaičius
abiejų grūdų saugyklų aplinkoje sumažėjo 2 kartus. Lyginant čiobrelio ir raudonėlio eterinių aliejų
efektyvumą su ūkininkų dezinfekcinėmis priemonėmis, nustatyta, kad eterinių aliejų efektyvumas
buvo didesnis 1,5 karto.
Tiek ūkininkų priemonėms, tiek eteriniams aliejams veikiant aplinkos mikroorganizmus,
saugyklų dezinfekcijai galima pasirinktinai naudoti vieną arba kitą priemonę. Tačiau žinant vartotojų
poreikį cheminius preparatus pakeisti natūraliomis alternatyvomis, saugyklų dezinfekcijai galima
naudoti čiobrelio (Thymus vulgaris), raudonėlio (Origanum vulgare) ir kitus eterinius aliejus, kurių
poveikis buvo įrodytas moksliniais tyrimais [23-26].
37
IŠVADOS
1. Saugykloje Nr. 1, pirmaisiais grūdų sandėliavimo metais, vidutinis bakterinis grūdų saugyklos
aplinkos užterštumas nustatytas 45466,25 KSV/m3 (min – 15723 KSV/m3, max – 63417 KSV/m3),
antraisiais metais – 50183,5 KSV/m3 (min – 35115 KSV/m3, max – 91719 KSV/m3). Saugykloje
Nr. 2, pirmaisiais grūdų sandėliavimo metais, vidutinis bakterinis grūdų saugyklos aplinkos
užterštumas nustatytas 116745,3 KSV/m3 (min – 49790 KSV/m3, max – 191300 KSV/m3),
antraisiais metais – 73244 KSV/m3 (min – 15199 KSV/m3, max – 135220 KSV/m3).
2. Saugykloje Nr. 1, pirmaisiais grūdų sandėliavimo metais vidutinis užkrėstumas gyvybingomis
mikromicetų sporomis nustatytas 25681,25 KSV/m3 (min – 11006 KSV/m3, max – 37736
KSV/m3), antraisiais metais – 43763,25 KSV/m3 (min – 35115 KSV/m3, max – 57128 KSV/m3).
Saugykloje Nr. 2, pirmaisiais grūdų sandėliavimo metais vidutinis užkrėstumas gyvybingomis
mikromicetų sporomis nustatytas 46121,5 KSV/m3 (min – 35115 KSV/m3, max – 58700 KSV/m3),
antraisiais metais – 81368 KSV/m3 (min – 62893 KSV/m3, max – 107967 KSV/m3).
3. Įvertinus visus pirmaisiais ir antraisiais metais iš saugyklų paimtus kviečių mėginius, nustatyta,
kad tiek išoriniame, tiek vidiniame kviečių grūdų sluoksniuose vyravo Alternaria, Fusarium ir
Cladosporium gentys.
4. Saugykloje Nr. 1 laikytuose kviečiuose, pirmaisiais grūdų sandėliavimo metais AFL B1
koncentracija svyravo 0 – 7 μg/kg (CV=1,19), ZON - 130-600 μg/kg (CV=0,63), DON - 0 – 900
μg/kg (CV=0,73), T-2 toksino – 0 – 80 μg/kg (CV=0,74). Antraisiais metais AFL B1 koncentracija
svyravo 0 – 7 μg/kg , ZON – 0 - 530 μg/kg , DON - 0 - 750 μg/kg, T-2 toksino – 30 – 50 μg/kg.
Saugykloje Nr. 2 laikytuose kviečių mėginiuose, pirmaisiais grūdų sandėliavimo metais AFL B1
koncentracija svyravo 0-3 μg/kg (CV=0,86), ZON –100-1000 μg/kg (CV=0,6), DON – 150-500
μg/kg (CV=0,49). Antraisiais metais AFL B1 koncentracija svyravo 0-3μg/kg (CV=1,41), ZON –
130-530 μg/kg (CV=0,5), DON – 0-500 μg/kg (CV=0,67), T-2 toksinas – 0-80 μg/kg.
5. Čiobrelio (Thymus vulgaris) ir raudonėlio (Origanum vulgare) eterinis aliejus, saugykloje Nr.1 ir
saugykloje Nr. 2, bendrą bakterijų skaičių 1 m3 sumažino 3 kartus, o gyvybingų mikromicetų sporų
skaičių 2 kartus. Ūkininkų naudojamos dezinfekcinės priemonės, bendrą bakterijų skaičių 1 m3
sumažino 2 kartus. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius, saugykloje Nr. 1 sumažėjo 2 kartus, o
saugykloje Nr. 2 – 1,5 karto.
6. Ūkininkų naudojamos priemonės veikia grūdų saugyklų aplinkoje esančius mikroorganizmus,
tačiau atsižvelgiant į vartotojų poreikius, siūloma saugyklų aplinkos dezinfekcijai naudoti
natūralias priemones, t.y. čiobrelio (Thymus vulgaris) ir raudonėlio (Origanum vulgare) eterinius
aliejus.
38
LITERATŪROS SĄRAŠAS
1. Lugauskas A., Krasauskas A., Repečkienė J. Ekologinai veiksniai, lemiantys mikromicetų
paplitimą ant javų grūdų ir sojų sėklų. Ekologija. 2004; 2:21-32.
2. Šiugždaitė J. Veterinarinės mikrobiologios pagrindai. 2012.
3. Hartung J., Wathers C. M., Charles D. R. Environment and animal health. Livestock housing.
CAB International. Wallingford. 1994; P. 25-48.
4. Bakutis B. Mikotoksinai gyvulių pašaruose. 2004
5. Lugauskas A., Selskienė A., Butkienė R., Kemzūraitė A., Railienė M., Zvicevičius E.
Mikromicetai grūduose ir jų perdirbimo produktuose. Maisto chemija ir technologija. 2009;
43(2):57-65.
6. Raila A., Novošinskas H., Lugauskas A., Zvicevičius E. Micromycete control in storages of
succulent agricultural produce by organic technological means. Ekologija. 2006; 3:96-104.
7. Raila A. J. Saugaus grūdų ir rapsų laikymo trukmė įvairių tipų sandėliuose bei grūdų ir grūdų
produktų užkrėtimo vabzdžiais ir kenkėjais mažinimo priemonės ekologinių ūkių sandėliuose ir
ekologinio perdirbimo objektuose. Tyrimo ataskaita. Kaunas. 2012.
8. http://www.foodqualityandsafety.com/article/the-microbiology-of-cereals-and-cereal-
products/(Prieiga per Internetą vasario 13 dieną)
9. Oliveira P. M., Zannini E., Arendt E. K. Cereal fungal infection, mycotoxins and lactic acid
bacteria mediated bioprotection: From crop farming to cereal products. Food Microbiology.
2014; 37:78-95.
10. Hocking A. D. Microbiological facts and fictions in grain storage. Food science Australia. 2003.
P. 55-58
11. Roige M. B., Aranguren S. M., Riccio M. B., Pereyra S., Soraci A. L., Tapia M. O. Mycobiota
and mycotoxins in fermented feed, wheat grains and corn grains in Southeastern Buenos Aires
Province, Argentina. Revista Iberoamericana de Micologia. 2009. 26(4). P. 233-237.
12. Abd El-Aziz A. R. M., Mahmoud M. A., Al-Othman M. R., Al-Gahtani M. F. Use of Selected
Essential Oils to Control Aflatoxin Contaminated Stored Cashew and Detection of Aflatoxin
Biosynthesis Gene. The Scientific World Journal. 2015.
13. El-Nekeety A.A., Mohamed S. R., Hathout A. S., Hassan N. S., Aly S. E., Abel-Wahhab M. A.
Antioxidant properties of Thymus vulgaris oil against aflatoxin-induce oxidative stress in male
rats. Toxicon. 2011. 57:984-991.
14. Kocic-Tanackov S. D., Dimic G. R., Tanackov I. J., Pejin D. J., Mojovic L. V., Pejin J. D.
Antifungal activity of oregano (Origanum vulgare L.) extract on the growth of Fusarium and
Penicillium species isolated from food. Hem. Ind. 2012; 66(1):33-41.
39
15. Milani J. M., Ecological conditions affecting mycotoxin production in cereals: a review.
Veterinarni Medicina. 2013; 58 (8):405-411.
16. Magan, N., Sanchis, V., Aldred, D. Role of spoilage fungi in seed deterioration. Fungal
Biotechnology in Agricultural, Food and Environmental Applications. 2004;28:311-323.
17. Zvicevičius E., Raila A., Novošinskas H., Krasauskas A. Mycotoxin producents in the grain
layer. Ekologija. Vilnius. 2006; 3:105-111.
18. Petruševičius V., Raila A. Augalininkystės produktų džiovinimas storame nejudančiame
sluoksnyje: monografija. Lietuvos žemės ūkio universiteto Leidybos centras. 2009. P. 262.
19. Lugauskas A., Raila A., Zvicevičius E.; Railienė M., Novošinskas H. Factors determining
accumulation of mycotoxin producers in cereal grain during harvesting. 71 Annals of
Agricultural And Environmental Medicine. 2007; 14(1):173-186.
20. Villers P., Navarro S., De Bruin T. New applications of hermetic storage for grain storage and
transport. 10th Internatinal Working Conference on Stored Product Protection. 2010. P. 446-451.
21. Magan N., Aldred D. Post-harvest control strategies: minimizing mycotoxins in the food chain.
International Journal of Food Microbiology. 2007; 119(1-2):131-139.
22. Varga J., Kocsube S., Peteri Z., Vagvolgyi C., Toth B. Chemical, Physical and Biological
Approaches to Prevent Ochratoxin Induced Toxicoses in Humans and Animals. Toxins. 2010;
2:1718-1750.
23. De Lira Mota K. S., de Oliveira Pereira F., de Oliveira W. A., Oliveira Lima I., de Oliveira Lima
E. Antifungal Activity of Thymus vulgaris L. Essential Oil and Its Constituent Phytochemicals
against Rhizophus oryzae: Interaction with Ergosterol. Molecules. 2012; 17:14418-14433
24. Sokovic M. D., Vukojevic J., Marin P. D., Brkic D. D., Vajs V., van Grievsven L. J. L. D.
Chemical composition of essential oils of Thymus and Mentha species and their antifungal
activities. Molecules. 2009; 14:238-249.
25. Mitchell T. C., Stamford T. L. M., de Souza E. L., Lima E. O., Carmo E. S. Origanum vulgare
L. essential oil as inhibitor of potentially toxigenic Aspergilli. Ciencia e Technologia de
Alimentos. 2010; 30(3):755-760.
26. Imelouane B., Amhamdi H., Wathelet J. P., Ankit M.,Khedid K., El Bachiri A. Chemical
Composition and Antimicrobal Activity of Essential Oil of Thyme (Thymus vulgaris) from
Eastern Morocco. International journal of agriculture & biology. 2009; 11(2):205-208.
27. Golmakani M.T., Rezaei K. Comparison of microwave-assisted hydrodistillation with the
traditional hydrodistillation method in the extraction of essential oils from Thymus vulgaris L.
Food Chemistry. 2008; 109:925-930.
28. http://domin.dom.edu/faculty/jbfriesen/chem254lab/03_Essential.pdf( Prieiga per Internetą 2016
kovo 6 dieną)
40
29. Bimbiraitė K. Vaistinės juozažolės (Hyssopus officinalis L.) eterinio aliejaus analizė. Magistro
baigiamasis darbas. Kaunas. 2008.
30. Vainauskaitė E. Eterinių aliejų įtaka mikromicetams, išskirtiems iš grūdų. Magistro baigiamasis
darbas. Kaunas. 2013.
31. Razzaghi-Abyaneh M., Shams-GhahfarokhiM., Rezaee M. B., Jaimand K., Alinezad S., Saberi
R., Yoshinari T. Chemical composition and antiaflatoxigenic activity of Carum carvi L., Thymus
vulgaris and Citrus aurantifolia essential oils. Food control. 2009; 20:1018-1024.
32. Fachini-Queiroz F. C., Kummer R., Estevao-Silva C. F. Effects of thymol and carvacol,
constituents of Thymus vulgaris L. essential oil on the inflammatory response. Evidence-Based
complementary and alternative medicine. 2012.
33. Dambrauskienė E., Viškelis P., Rubinskienė M. Biological and biochemical evaluation of wild
majoram subspecies Origanum vulgare L. and Origanum vulgare subs.hirtum. Vytauto Didžiojo
universiteto Botanikos sodo raštai. 2006; 11:76-85.
34. Pinto E., Pina-Vaz C., Salgueiro L. ir kt. Antifungal activity of the essential oil of Thymus
pulegioides on Candida, Aspergillus and dermatophyte species. Journal of Medical
Microbiology. 2006; 55:1367-1373.
35. Mickienė R., Springorum A., Bakutis B., Hartung J. Eterinių aliejų antimikrobinis aktyvumas.
Gyvulininkystė: mokslo darbai. 2008; 52:86-93.
36. Komisijos reglamentas (EB) Nr. 1881/2006 2006 m. gruodžio 19 d. nustatantis didžiausias
leistinas tam tikrų teršalų maisto produktuose koncentracijas.
37. Bakutis B., Baliukonienė V. Kviečių ir miežių mikotoksikologinis ir mikrobiologinis vertinimas
sandėliavimo metu. Veterinarija ir zootechnika. 2002; 17(39).
41
PRIEDAI
1 priedas
1 lentelė. Grūdų saugyklų aplinkos bakterinis užterštumas
Bendras bakterijų skaičius, KSV/m3
saugykla Nr. 1 saugykla Nr. 2
pirmi metai antri metai pirmi metai antri metai
Spalis 53459 35115 191300 15199
Gruodis 63417 91719 143606 111635
Vasaris 15723 36164 49790 135220
Balandis 49266 37736 82285 30922
n
Xv
Xmax
Xmin
S
CV
4
45466,25
63417
15723
20697,93
0,46
4
50183,5
91719
35115
27711,27
0,55
4
116745,3
191300
49790
63114,78
0,54
4
73244
135220
15199
59091,08
0,81
p duomenys statistiškai patikimi duomenys statistiškai nepatikimi
2 lentelė. Kviečių bakterinis užterštumas
Bendras bakterijų skaičius KSV/g
saugykla Nr. 1 saugykla Nr. 2
pirmi metai antri metai pirmi metai Aantri metai
Spalis 11 105 9 11
Gruodis 51 89 43 60
Vasaris 91 73 11 17
Balandis 131 112 25 15
n
Xv
Xmax
Xmin
S
CV
4
71
131
11
51,64
0,73
4
94,75
112
73
17,40
0,18
4
22
43
9
15,71
0,71
4
25,75
60
11
22,97
0,89
p duomenys statistiškai patikimi duomenys statistiškai patikimi
42
2 priedas
1 lentelė. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius grūdų saugyklų aplinkoje
Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius, KSV/m3
saugykla Nr. 1 saugykla Nr. 2
pirmi metai antri metai pirmi metai antri metai
Spalis 23061 40881 58700 62893
Gruodis 30922 41929 35115 72851
Vasaris 11006 35115 49790 107967
Balandis 37736 57128 40881 81761
n
Xv
Xmax
Xmin
S
CV
4
25681,25
37736
11006
11474,77
0,45
4
43763,25
57128
35115
9400,01
0,21
4
46121,5
58700
35115
10332,51
0,22
4
81368
107967
62893
19335,00
0,24
p duomenys statistiškai nepatikimi duomenys statistiškai nepatikimi
2 lentelė. Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius kviečiuose
Gyvybingų mikromicetų sporų skaičius, KSV/g
saugykla Nr. 1 saugykla Nr. 2
pirmi metai antri metai pirmi metai antri metai
Spalis 51 11 3 6
Gruodis 44 4 16 2
Vasaris 37 3 32 7
Balandis 12 22 67 7
n
Xv
Xmax
Xmin
S
CV
4
36
51
12
16,99
0,47
4
10
22
3
8,76
0,88
4
29,5
67
3
27,67
0,94
4
5,5
7
2
2,38
0,43
p duomenys statistiškai nepatikimi duomenys statistiškai nepatikimi
43
3 priedas
1 lentelė. Aflatoksino B1 koncentracija kviečiuose
Aflatoksinas B1, μg/kg
saugykla Nr. 1 saugykla Nr. 2
pirmi metai antri metai pirmi metai antri metai
Spalis 7 2 0 1
Gruodis 0 7 1 0
Vasaris 5 1 3 0
Balandis 0 0 3 3
n
Xv
Xmax
Xmin
S
CV
4
3
7
0
3,56
1,19
4
2,50
7
0
3,11
1,24
4
1,75
3
0
1,5
0,86
4
1
3
0
1,41
1,41
p duomenys statistiškai patikimi duomenys statistiškai nepatikimi
2 lentelė. Zearalenono koncenctracija kviečiuose
Zearalenonas, μg/kg
saugykla Nr. 1 saugykla Nr. 2
pirmi metai antri metai pirmi metai antri metai
Spalis 270 290 100 130
Gruodis 270 270 800 400
Vasaris 600 0 700 300
Balandis 130 530 1000 530
n
Xv
Xmax
Xmin
S
CV
4
317,5
600
130
199,56
0,63
4
272,5
530
0
216,7
0,80
4
650
1000
100
387,30
0,6
4
340
530
130
168,72
0,5
p duomenys statistiškai patikimi duomenys statistiškai nepatikimi
44
3 lentelė. Deoksinivalenolio koncentracija kviečiuose.
Deoksinivalenolas, μg/kg
saugykla Nr. 1 saugykla Nr. 2
pirmi metai antri metai pirmi metai antri metai
Spalis 900 600 500 500
Gruodis 750 0 150 500
Vasaris 500 750 300 0
Balandis 0 0 250 500
n
Xv
Xmax
Xmin
S
CV
4
537,5
900
0
394,49
0,73
4
337,5
750
0
394,49
1,17
4
300
500
150
147,20
0,49
4
375
500
0
250
0,67
p duomenys statistiškai nepatikimi duomenys statistiškai patikimi
4 lentelė. T-2 toksino koncentracija kviečiuose.
T-2 toksinas, μg/kg
saugykla Nr. 1 saugykla Nr. 2
pirmi metai antri metai pirmi metai antri metai
Spalis 50 30 0 80
Gruodis 0 50 nt nt
Vasaris 80 nt nt 0
Balandis 50 50 nt 0
n
Xv
Xmax
Xmin
S
CV
4
45
80
0
33,17
0,74
3
43,3
50
30
11,55
0,27
1
0
0
0
0
0
3
26,6
80
0
46,19
1,74
p duomenys statistiškai patikimi duomenys statistiškai nepatikimi
*nt - netirta
45
4 priedas
1 lentelė . Didžiausios leistinos tam tikrų teršalų maisto produktuose koncenctracijos (pagal
Komiijos Reglamentą (EB) Nr. 1881/2006) [36]
Eil.
Nr. Mikotoksinas Maisto produktai
Didžiausia leistina
koncentracija (µg/kg)
1. Aflatoksinas B1
1.1 Visi grūdai ir visi grūdų išvestiniai produktai,
įskaitant perdirbtus grūdų produktus 2,0
1.3 Kūdikiams ir mažiems vaikams skirti perdirbti
grūdiniai maisto produktai ir kūdikių maistas 0,10
1.4 Tik kūdikiams skirti specialiosios medicininės
paskirties dietiniai maisto produktai 0,10
2. Ochratoksinas A
2.1 Neperdirbti grūdai 5,0
2.2 Visi neperdirbtų grūdų produktai, įskaitant
perdirbtus grūdų produktus ir grūdus, skirtus
tiesiogiai žmonėms vartoti
3,0
2.3 Kūdikiams ir mažiems vaikams skirti perdirbti
grūdiniai maisto produktai ir kūdikių maistas 0,50
2.4 Tik kūdikiams skirti specialiosios medicininės
paskirties dietinio maisto produktai 0,50
3. Deoksinivalenolis
3.1 Neperdirbti grūdai, išskyrus kietuosius
kviečius, avižas ir kukurūzus 1250
3.2 Neperdirbti kietieji kviečiai ir avižos 1750
3.3 Grūdai, skirti tiesiogiai žmonėms vartoti, grūdų
miltai (įskaitant kukurūzų miltus, kukurūzų
rupinius ir kukurūzų kruopas), sėlenos, kaip
galutinis produktas parduodamas tiesiogiai
žmonėms vartoti, ir gemalai, išskyrus 3.6
punkte išvardytus maisto produktus
750
3.6 Kūdikiams ir mažiems vaikams skirti perdirbti
grūdiniai maisto produktai ir kūdikių maistas 200
4. Zearalenonas
4.1 Neperdirbti grūdai, išskyrus kukurūzus 100
4.3 Grūdai, skirti tiesiogiai žmonėms vartoti, grūdų
miltai, sėlenos, kaip galutinis produktas,
parduodamas tiesiogiai žmonėms vartoti, ir
gemalai
75
4.5 Kūdikiams ir mažiems vaikams skirti perdirbti
grūdiniai maisto produktai (išskyrus perdirbtus
kukurūzų maisto produktus) ir kūdikių maistas.
20