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UNIVERSITE D’ANTANANARIVO FACULTE DES SCIENCES DEPARTEMENT DE CHIMIE ORGANIQUE Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles et de Chimie Organique Biologie (LCSN-COB) PROJET G/DHD RAPPORT DE STAGE en vue de l’obtention du diplôme Master 2 EXTRACTION, ISOLEMENT ET IDENTIFICATION DES PRINCIPES ACTIFS DE Vernonia trinervis Juin 2014 Octobre 2014 Présenté par : RAMANANTSOA Nambinina Joseph Patricia Encadrante : Dr Lovasoa RABESIAKA Directeur de laboratoire : Dr Herilala Léa RASOANAIVO

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UNIVERSITE D’ANTANANARIVO

FACULTE DES SCIENCES

DEPARTEMENT DE CHIMIE ORGANIQUE Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles et de Chimie Organique Biologie (LCSN-COB)

PROJET G/DHD

RAPPORT DE STAGE

en vue de l’obtention du diplôme Master 2

EXTRACTION, ISOLEMENT ET

IDENTIFICATION DES PRINCIPES

ACTIFS DE Vernonia trinervis

Juin 2014 – Octobre 2014

Présenté par :

RAMANANTSOA Nambinina Joseph Patricia

Encadrante : Dr Lovasoa RABESIAKA

Directeur de laboratoire : Dr Herilala Léa RASOANAIVO

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REMERCIEMENTS

Je tiens à exprimer mes sincères remerciements aux organismes et personnes, sans qui ce

stage n’aurait jamais abouti.

Au PNUD (Programme des Nations Unies pour le Developpement), qui, par le biais du

projet G/DHD (Gouvernance/ Développement Humain Durable), a contribué à l’appui

financier de ce stage. Votre soutien a permis de mener à bien toutes les activités durant

l’accomplissement de ce stage.

A l’UNESCO (United Nations Educational, Scientific and Cultural Organization),

pour avoir également contribué à l’appui financier de ce stage via le projet G/DHD. Votre

aide a été très bénéfique dans nos travaux de recherche.

Au Comité Scientifique du projet G/DHD pour avoir accordé l’octroi de l’appui

financier par le biais du projet G/DHD, pour les conseils et directives qu’il a émis tout au long

de l’accomplissement de ce stage.

A l’Université d’Antananarivo, notamment l’Equipe G/DHD dirigée par Monsieur le

VPFR pour l’appui et l’importance qu’elle a accordé à notre travail de recherche.

A Madame Herilala Léa RASOANAIVO, Maître de conférences au sein de la Faculté

des Sciences et Directeur du Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles et de Chimie

Organique biologie (LCSN-COB), pour m’avoir accueilli comme stagiaire dans son

laboratoire et pour m’avoir conseillé pendant le stage.

A Madame Lovasoa RABESIAKA, Maître de conférences au sein de la Faculté des

Sciences, mon encadrante et maître de stage, pour m’avoir guidé, conseillé et aidé tout au

long de ce stage.

A Monsieur Rivoarison RANDRIANASOLO, Maître de conférences au sein de la

Faculté des Sciences, pour son aide et son dévouement lors des manipulations.

A Madame Amélie RAHARISOLOLALAO, Professeur émérite au sein de la Faculté des

Sciences, pour avoir fait preuve de bienveillance à mon égard. Votre aide et votre appui ont

été essentiels à l’accomplissement de ce stage.

Je tiens également à remercier tous ceux qui, de près ou de loin, ont contribué à

l’accomplissement de ce stage.

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Sommaire

I. PRESENTATION DU LABORATOIRE ........................................................................... 2

II. STAGE G/DHD.............................................................................................................. 4

II.1. Objectifs du stage ............................................................................................. 4

II.2 Méthodologie et résultats attendus ....................................................................... 5

Enquête ethnobotanique et récolte .................................................................... 5

Extraction de la matière végétale...................................................................... 7

Criblage phytochimique.................................................................................... 9

Séparation, isolement et purification ................................................................ 9

Test d’activité antioxydante ............................................................................ 12

Détermination structurale ............................................................................... 11

Test d’activité antipaludique ........................................................................... 12

II.3. Bilan du stage : résultats obtenus et perspectives ................................................. 13

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LISTE DES FIGURES

Figure 1 : Vernonia trinervis

Figure 2 : Photographie d’un évaporateur rotatif du LCSN-COB

Figure 3 : Photographie d’un évaporateur rotatif du LCO-SM

Figure 4 : Traitement de l’extrait brut par l’hexane

Figure 5 : Profil CCM de l’extrait acétate d’éthyle

Figure 6 : Chromatographie sur colonne de l’extrait acétate d’éthyle

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LISTE DES TABLEAUX

Tableau 1 : Liste des produits et réactifs

Tableau 2 : Matériels usuels et verreries courantes

Tableau 3 : Résultats du criblage phytochimique

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INTRODUCTION

La phytothérapie est un des moyens les plus utilisés par les Malgaches pour se soigner ou

prévenir une maladie [w1]. Toutefois, les plantes locales sont encore mal exploitées et leur

valorisation reste un défi majeur pour les scientifiques. C’est dans ce cadre que nous avons

choisi de mener une étude chimique approfondie sur Vernonia trinervis qui est une plante

endémique de la Grande Ile et utilisée traditionnellement dans le traitement du paludisme, des

fièvres et du diabète.

Les travaux de recherche menées sur Vernonia trinervis ont été effectués lors d’un stage

intitulé : « Extraction, isolement et identification des principes actifs de Vernonia trinervis»,

en vue de l’obtention du Diplôme Master. Ce stage s’est déroulé du mois de Juin au mois

d’Octobre 2014, au Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles et de Chimie Organique

Biologie (LCSN-COB). L’objectif principal de ce stage a été de nous initier aux travaux de

laboratoire, notamment aux techniques et matériels utilisés dans les laboratoires de chimie

organique. Pour cela, notre mission était d’isoler un ou plusieurs constituant(s) chimiques de

la plante, les identifier et éventuellement de déterminer une activité biologique des produits

obtenus.

Ainsi, afin de mieux comprendre le déroulement de ce stage, le présent rapport sera divisé en

deux grandes parties :

Une première partie traite sur la présentation du laboratoire, son secteur d’activité ainsi

que ses objectifs.

La seconde partie sera consacrée au descriptif du stage, aux méthodes utilisées et

résultats attendus, les problèmes rencontrés ainsi que les solutions apportées, et le bilan du

stage notamment les résultats obtenus et les perspectives.

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I. PRESENTATION DU LABORATOIRE et du stage

L’Université d’Antananarivo est la plus grande université publique à Madagascar. Elle

comprend trois Grandes Ecoles et quatre Facultés dont la Faculté des Sciences. Cette dernière

est composée de douze Départements parmi lesquels le Département de Chimie Organique

qui est composé à son tour par sept laboratoires de recherche. Parmi ces laboratoires figure le

Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles et de Chimie Organique Biologie ou LCSN-

COB. Le diagramme à la page suivante permet de situer le laboratoire au sein de la hiérarchie

[w2].

Compte tenu de la richesse de la biodiversité de la Grande Ile et de ses nombreuses

utilisations traditionnelles, le laboratoire s’est fixé comme objectif de valoriser la faune et la

flore malgache du point de vue chimique en isolant leurs constituants, et de valoriser par la

suite les produits isolés par leurs activités biologiques. Les recherches au sein du laboratoire

sont donc axées sur l’étude chimique des animaux ou plantes malgaches, notamment

l’extraction, l’isolement et l’identification des molécules organiques qu’ils contiennent.

Toutefois, l’étude des animaux reste très limitée à cause de leur rareté ou du problème

d’extinction d’espèce.

Le laboratoire est actuellement dirigé par le Docteur Herilala Léa RASOANAIVO, Maître de

conférences au sein de la Faculté des Sciences. L’équipe de recherche permanente est

composée d’un Professeur émérite et de trois Maîtres de conférences qui sont également

membres de l’équipe pédagogique de la mention « Chimie » au sein de la Faculté. Cependant,

des stagiaires de tous niveaux s’ajoutent à ce nombre : actuellement, deux stagiaires en

Doctorat et quatre stagiaires en Master, dont je fais partie, dans le parcours « Chimie des

Substances Naturelles » y font leurs stages. LCSN-COB peut également accueillir des

stagiaires de niveau Licence, BTS ou des stagiaires qui désirent uniquement approfondir leurs

connaissances.

J’ai choisi d’intégrer cette équipe pour faire mon stage pour l’obtention du Diplôme Master.

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UNIVERSITE

D’

ANTANANARIVO

Faculté de

Droit, de

Gestion et

de

Sociologie

Faculté des

Lettres et

des

Sciences

Humaines

Faculté

de

Médecine

Faculté

des

Sciences

Ecole

Normale

Supérieure

Ecole

Supérieure

Polytechnique

Ecole

Supérieure des

sciences Agronomiques

Département de Biochimie

Fondamentale et

Appliquée

(DBFA)

Département de Biologie

Animale

(DBA)

Département de Biologie

et Ecologie Végétale

(DBEV)

Département de Chimie

Minérale et Chimie

Physique

(DCMCP)

Département de Chimie

Organique

(DCO)

Département

d’Entomologie

(Dent)

Département de

Mathématique et

Informatique

(DMI)

Département de

Paléontologie et

Anthropologie Biologique

(DPAB)

Département de

Physiologie Animale et

Pharmacologie

(DPAP)

Département de Physique

(DPhy)

Département des Sciences

de la Terre

(DST)

Département de

DIdactique et

COmmunication en

Sciences

DiCoS

Laboratoire de Chimie des

Substances Naturelles et

de Chimie Organique

Biologie

(LCSN-COB)

Laboratoire de Chimie

Organique-Spectre de

Masse

(LCO-SM)

Laboratoire de Chimie et

de Valorisation des

Produits Naturels

(LCVPN)

Laboratoire de Chimie

Appliquée aux Substances

Naturelles

(LaCASN)

Laboratoire des Produits

Naturels et de

Biotechnologie

(LPNB)

Laboratoire de Chimie

Moléculaire

(LCM)

Laboratoire International

Associé

(LIA)

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II. STAGE G/DHD

Le thème de mon mémoire porte sur la « Contribution à l’étude

phytochimique de Vernonia trinervis » qui est une plante

utilisée traditionnellement dans le traitement du paludisme, des

fièvres et du diabète. En effet, ces trois maladies, surtout le

paludisme, concernent de nombreux cas dans les pays en voie

de développement comme Madagascar ou d’autres pays

africains: selon l’OMS, le paludisme tue un enfant africain

toutes les 30 secondes [w3]. Pourtant, les traitements restent

encore inaccessibles pour la plupart de la population faute de

moyens financiers.

C’est pourquoi nous avons choisi d’effectuer des recherches sur Vernonia trinervis afin de

valoriser cette plante sur le plan chimique et éventuellement biologique. Mon stage, intitulé :

« Extraction, isolement et identification des principes actifs de Vernonia trinervis » a pour

mission d’extraire, isoler et identifier quelques produits issus de cette plante. Le thème a été

choisi car il met en avant la recherche de principes actifs éventuels qui pourrait servir à la

lutte contre le paludisme en plus de valoriser la flore malgache. Cette démarche est située

dans le domaine de Gouvenance/ Developpement Humain durable. C’est dans ce cadre qu’il a

bénéficié de l’appui financier octroyé par le PNUD et l’UNESCO en partenariat avec

l’Université d’Antananarivo, par le biais du projet G/DHD.

II.1. Objectifs du stage

L’objectif principal de ce stage a été de me familiariser avec les matériels et différentes

techniques utilisés en laboratoire de chimie organique des substances naturelles. Plus

précisément, les missions qui m’ont été assignées durant le stage étaient de :

Savoir exploiter les données bibliographiques pour les travaux expérimentaux,

Acquérir les techniques d’extraction à partir d’un matériel végétal,

Maîtriser les techniques de séparation, d’isolement et de purification de produits,

Etre capable d’identifier la structure d’une molécule à partir de spectres RMN.

Figure 1 :

Vernonia trinervis

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II.2 Méthodologie et résultats attendus

Pour atteindre les objectifs fixés précédemment, la méthodologie adoptée s’est déroulée en 5

étapes :

Enquête ethnobotanique et récolte

L’enquête ethnobotanique a débuté vers la fin du mois de Mai. Elle a consisté à poser des

questions sur l’utilisation traditionnelle de la plante [w4]. Elle a été faite sur des guérisseurs,

des paysans, des marchands de « tapa-kazo » et de simples citoyens. Un questionnaire sous

forme de tableau a été établi pour faciliter la collecte des informations et à chaque donnée, il

suffisait de cocher la case correspondante. Un nombre total de dix personnes a été soumis au

questionnaire et les informations reçues ont permis de déterminer le lieu où la récolte serait

effectuée. En effet, il fallait prendre en compte de tous les paramètres : les parties utilisées, les

saisons de récolte, l’éloignement des lieux de récolte et surtout de l’accessibilité des lieux de

récolte.

Ensuite, après analyse de tous les paramètres, la plante a été récoltée dans le fokotany de

Mandrangobato, Commune rurale d’Alasora. La partie aérienne a été coupée à l’aide de

couteaux et de ciseaux, puis transportée dans des sacs en plastique. Elle a été sechée et les

feuilles ont été réduites en poudre dans un laboratoire partenaire : LaCASN (Laboratoire de

Chimie Appliquée aux Substances Naturelles). Parallèlement à cela, un échantillon a été

emmené au Parc Botanique et Zoologique de Tsimbazaza (PBZT) pour l’identification de la

plante. Cette poudre de plante constitue le matériel végétal utilisé lors des recherches

postérieures.

Outre le matériel végétal, de nombreux produits chimiques et réactifs ont été utilisés pendant

les travaux de laboratoire en plus des matériels non consommables tels que les matériels

usuels et les verreries courantes. La liste exhaustive des produits et réactifs [1] employés

durant les travaux de laboratoire est rapportée dans le tableau 1 et celle des matériels non

consommables [1] dans le tableau 2.

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Tableau 1 : Liste des produits et réactifs

DESIGNATION UTILISATION

P

R

O

D

U

I

T

S

Gel de Silice Kieselgel 60 Chromatographie sur colonne ou CLBP

Gel de Silice 60 sur support en aluminium

Chromatographie sur couche mince CCM

Hexane, acétate d’éthyle, éthanol 80%, acétone

Solvants

Iode Révelateur

R

E

A

C

T

I

F

S

HCl 12%, HCL 2N

Réactif de Wagner

Réactif de mayer

Réactif de Dragendorff

Screening des alcaloides

HCl concentré

Graines de tournure de magnésium

Alcool isoamylique

Screening des flavonoides et leucoanthocyanes

NaCl 10%

Gélatine à 1%

Gélatine salée

FeCl3 à 10% dans MeOH

Screening des tanins et polyphenols

Anhydride acétique

H2SO4 concentré

Acide picrique

FeCl3 10% dasn H2O

Screening des steroides et terpénoides

EtOH Screening des polysaccharides

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Tableau 2 : Matériels usuels et verreries courantes

APPAREILS FONCTION

Balance de précision de marque KERN 770/GS/GJ (portée maximale : )

Pesée

Evaporateurs rotatifs (rotavapor) de marque

BUCHI Evaporation des solvants

Lampe UV (254 et 365 nm) Révélation des plaques CCM

Etuve Séchage

Plaque chauffante Chauffage

VERRERIES

baguettes de verre

ballons à fond rond et à fond rodé

cristallisoirs

éprouvettes graduées

erlenmeyers

entonnoirs

flacons

tubes à essais

béchers

réfrigérants à boules

ampoule à décanter

Extraction de la matière végétale

Cette extraction s’est faite en 3 étapes :

La macération : il s’agit de laisser séjourner à température ambiante les végétaux

finement divisés dans un liquide pour extraire les composés solubles. Cette macération a

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été effectuée dans un mélange EtOH/H2O 80/20 (V/V). Un mélange solide-liquide a été

obtenu à l’issu de ces 10 jours.

La filtration : Le mélange a été filtré sur coton pour séparer la phase solide et la solution

hydroalcoolique.

L’évaporation : la solution hydroalcoolique a été évaporée sous pression réduite à l’aide

d’un évaporateur rotatif (figure 2) pour obtenir l’extrait brut. L’évaporateur rotatif du

laboratoire n’était pas fonctionnel, alors l’évaporation a été faite dans le Laboratoire de

Chimie Organique et Spectrométrie de Masse (LCO-SM) appartenant au même

Département de Chimie Organique. Cet extrait, autrement appelé extrait hydroalcoolique

servirait pour l’isolement et l’identification de produits. En effet, il renferme en principe

tous les composants chimiques que la partie aérienne de la plante contient.

Figure 2 : Photographie d’un évaporateur rotatif au LCSN-COB

Figure 3 : Photographie d’un évaporateur rotatif au LCO-SM

La mission principale de cette étape était de maîtriser les différentes techniques liées à

l’extraction ainsi que tous les matériels de laboratoire utilisés tels que l’évaporateur rotatif.

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Criblage phytochimique

Le criblage phytochimique est un ensemble de tests permettant de détecter les principales

familles de substances naturelles présentes dans un végétal. Ces tests sont généralement basés

sur des réactions de précipitation et/ou de coloration [2].

Une partie de l’extrait brut obtenu précedemment est prélevée et le criblage des alcaloïdes,

des flavonoïdes et leucoanthocyanes, des tanins et polyphénols, des stéroïdes et terpénoïdes,

des saponines et des polysaccharides a été effectué sur cet extrait par le biais de divers tests. A

l’issu de ces différents tests, les produits naturels présents dans le matériel végétal devraient

être détectés et mis en évidence.

Séparation, isolement et purification

A partir de l’extrait hydroalcoolique, j’ai procédé à une série d’extraction

liquide-liquide avec un solvant apolaire : l’hexane et un solvant

moyennement polaire : l’acétate d’éthyle. Une extraction avec de

l’hexane a été effectuée sur l’extrait brut dans une ampoule à decanter,

puis la solution hexanique est récupérée et concentrée dans un

évaporateur rotatif. Ensuite, la même opération est reprise avec le résidu

d’extraction en utilisant cette fois de l’acétate d’éthyle. Deux extraits ont

été ainsi obtenus appelés : « extrait hexanique » et « extrait acétate

d’éthyle ». Par exemple, la figure 3 ci-contre nous montre le traitement

par l’hexane de l’extrait brut dans une ampoule à décanter. Cette

technique utilisant l’ampoule à décanter est appelée : partage liquide-

liquide.

Les manipulations sont assez simples, de plus, les principes ont déjà été acquis auparavant

lors des séances de travaux pratiques durant les enseignements.

Chaque extrait est soumis à des analyses en chromatographie sur couche mince pour savoir

ses constituants et voir lequel est le plus intéressant du point de vue chimique.

D’après les données bibliographiques et les résultats de la chromatographie sur couche mince

(CCM), c’est l’extrait acétate d’éthyle qui présenterait les composants chimiques intéressants

(figure 5). Cet extrait acétate d’éthyle a donc été soumis à une chromatographie sur colonne

Figure 4 : Traitement de l’extrait brut

par hexane

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ou chromatographie liquide à basse pression dans le but de séparer davantage ou même

jusqu’à isoler ses constituants. Le choix du solvant à utiliser a été fait après en avoir essayé

plusieurs en chromatographie sur couche mince ou CCM. Durant cette manipulation, la

première colonne présentait une surface non plane, ce qui rendait la séparation très difficile,

voire impossible. Une autre colonne a dû être de nouveau montée afin de régler ce problème

et pour éviter de gaspiller le solvant. J’ai ainsi pu acquérir les techniques

chromatographiques : CCM et chromatographie sur colonne. La figure 6 montre par exemple

la photographie de la chromatographie sur colonne de l’extrait acétate d’éthyle.

Figure 5 : Profil CCM de l’extrait acétate d’éthyle

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Figure 6 : Chromatographie sur colonne de l’extrait acétate d’éthyle

174 fractions ont été obtenues par la chromatographie sur colonne. Certaines de ces fractions

présentent, après analyse en CCM, des constituants chimiques similaires. Elles ont été

regroupées et notées Pa, Pb et Pc. Ces dernières ont été choisies pour être purifiées.

En effet, les fractions Pa et Pb ont été dépigmentées par traitement à l’acétate d’éthyle : elles

ont été ajoutées d’un petit volume d’acétate d’éthyle puis celui-ci est retiré à l’aide d’une

pipette pasteur, pour laisser respectivement les produits purs P1 et P2. La fraction Pc a été

soumise à une CCM préparative pour en isoler un composant purifié noté P3. De ce fait, j’ai

pu maîtriser les méthodes de purification telles que la dépigmentation et la CCM préparative.

Détermination structurale

Les produits P1, P2 et P3 ont été envoyés dans un laboratoire étranger pour être analysés par

spectroscopie de RMN (Résonance Magnétique Nucléaire). Néanmoins, leur envoi n’a pas été

facile car le laboratoire d’analyse avait demandé à ce que les produits arrivent chez eux avant

la fin du mois de septembre. Or, les transitaires ont exigé des papiers attestant que les produits

sont non toxiques et non dangereux. L’établissement de ces documents nécessitait environ

deux semaines alors que je n’avais qu’une semaine pour expédier les produits. J’ai donc pris

l’initiative d’aller voir les responsables au sein du Ministère de l’élevage et de l’IMRA pour

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leur demander les pièces justificatives nécessaires. Mes investigations ont porté ses fruits car

j’ai pu obtenir les papiers en quelques jours.

Une partie des spectres RMN (spectres RMN de proton 1H et COSY) des produits P1, P2 et

P3 sont arrivés au début du mois d’Octobre et Le reste, notamment les spectres RMN de

carbone 13C et les spectres de corrélation en deux dimensions ont été obtenus vers le début du

mois de Novembre. L’identification des produits a été faite en partenariat avec tous les

membres du laboratoire LCSN-COB.

Test d’activité antioxydante

Les extraits hexanique et acétate d’éthyle ont été choisis pour effectuer un test d’éventuelles

activités antioxydantes. Pour ce faire, ils sont soumis à un test DPPH•, le seul disponible au

laboratoire.

Le protocole est le même pour les deux extraits : ils sont d’abord développés en

chromatographie sur couche mince dans un système hexane/AcOEt 80/20 (V/V) pour l’extrait

hexanique et dans un système hexane/AcOEt 10/90 (V/V) pour l’extrait acétate d’éthyle. Une

solution de DPPH est préparée en dissolvant 6mg de DPPH dans 3 ml de Méthanol. Cette

solution est ensuite pulvérisée sur les plaques CCM des extraits et le changement de

coloration de la solution est observé après 5 mn. Le test est positif pour un produit lorsque la

couleur de la tache correspondante s’est transformée en jaune [3].

Test d’activité antipaludique

Il était prévu que les produits isolés seraient soumis à des tests d’activité antipaludique.

Pourtant, à cause de leur faible quantité, la totalité de ces produits a été envoyée pour

l’analyse spectroscopique. Ce serait donc les extraits souches, extraits hexanique et acétate

d’éthyle, qui seront choisi pour être soumis au test à la place de ces produits. Ces extraits

devraient être envoyés dans un laboratoire partenaire pour effectuer les tests. Cependant, seuls

deux laboratoires sont capables de faire ce test à Madagascar. Pour l’un de ces laboratoires, le

délai pour effectuer le test est très long, il peut s’étendre sur plusieurs mois. Pour l’autre, le

matériel nécessaire pour effectuer le test vient d’être livré, il faut donc attendre jusqu’à la fin

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de l’année en cours pour assurer la mise en marche du matériel. J’ai opté pour cette seconde

option.

II.3. Bilan du stage : résultats obtenus et perspectives

Résultat de l’extraction

L’extraction a permis d’obtenir un extrait sec hydroalcoolique de masse égale à 34,5065 g.

Le rendement de cette extraction est de 13,8 %

Résultat du criblage phytochimique

Les principaux produits naturels présents et mis en évidence dans le matériel végétal sont

rapportés dans le tableau 3 suivant :

Tableau 3 : Résultats du criblage phytochimique

Familles chimiques à détecter Résultats

Alcaloïdes Absence d’alcaloïdes

Flavonoides

et

Leucoanthocyanes

Présence de flavonols

Présence de flavones

Absence de leucoanthocyanes

Absence d’anthocyanes

Tanins

et

Polyphénols

Présence de polyphénols

Présence de tanins

Présence de tanins hydrolysables (galliques ou ellagiques)

Steroides

et

Terpénoides

Présence de stéroides

Absence de stérols insaturés

Absence de stéroides lactoniques

Présence de desoxy-2-sucre

Saponines Absence de saponines

Polysaccharides Absence de polysaccharides

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Résultat de la séparation, isolement et purification

Cette étape a permis d’obtenir un extrait hexanique de masse 4,7150 g et un extrait acétate

d’éthyle de masse 15,0060 g. Les rendements correspondants à chaque extrait sont

respectivement de 1,8% et de 6,0%.

Résultat de la détermination structurale

Les spectres RMN (Annexe 1, 2 et 3) ont permis de déterminer les structures des produits

purs. Après analyse des spectres obtenus, il a été conclu que les produits P1 et P2 sont les

mêmes et le produit P3 n’a pas été identifié à cause de la complexité des spectres

correspondants. La structure des produits P1 et P2 a été élucidée donnant ainsi le 2-(3,4-

dihydroxyphényl)-5,7-dihydroxy-6-méthoxychromèn-4-one qui est une molécule déjà conue

sur le marché international.

Résultat du test antioxydant

Le test antioxydant effectué sur les extraits hexanique et acétate d’éthyle a permis de

déterminer que certains produits non distincts à l’œil nu pour l’extrait hexanique et un produit

constituant de l’extrait acétate d’éthyle possèdent en effet une activité antioxydante, mise en

évidence par l’absorption de la coloration violette sur les taches correspondant aux produits.

Bilan du stage et perspectives

Ce stage m’a permis de mettre en pratique tous les acquis durant les enseignements antérieurs,

notamment les techniques utilisées dans les travaux de laboratoire en chimie organique. Plus

particulièrement, il m’a permis de maîtriser les méthodes d’extraction, d’isolement, de

purification et d’identification de produits à partir d’une plante.

Personnellement, je trouve les travaux en laboratoire très enrichissants mais les produits

chimiques et réactifs sont encore très coûteux, surtout pour des pays en voie de

développement comme Madagascar. Nous avons eu la chance de bénéficier de l’appui

financier octroyé par le PNUD et l’UNESCO pour mener à bien ce stage. Pour la suite des

activités, l’accomplissement du test d’activité antipaludique est encore à prévoir pour

compléter les résultats déjà obtenus. De plus, les recherches peuvent aller plus loin avec les

autres produits contenus dans le matériel végétal, notamment leur isolement, leur

identification ainsi que l’étude de leurs activités biologiques.

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CONCLUSION

Mon stage au sein du Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles et de Chimie

Organique Biologie LCSN-COB a commencé en Juin 2014. Ma mission principale a été

d’extraire, isoler et identifier quelques constituants chimiques de Vernonia trinervis. Une

majeure partie de mes objectifs a été atteinte car j’ai pu mettre en application les méthodes

théoriques d’extraction, de séparation et de purification que j’ai apprises lors des

enseignements théoriques et lors de mes recherches bibliographiques. Dans l’attente des

derniers résultats d’analyse spectroscopique et les analyses biologiques, je m’active à la

détermination structurale et à la rédaction de mon mémoire de Master 2.

En bref, je peux dire que ce stage m’a été très bénéfique car j’ai pu acquérir toutes les

techniques mises en œuvre durant les travaux de laboratoire. J’ai également appris à

m’adapter à chaque situation et trouver une solution aux différents problèmes que j’ai

rencontrés. Cependant, la détermination structurale et les tests d’activité antipaludique restent

encore à voir pour la finalisation du stage.

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REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES

1. RAHARINIRINA Harisoa Armandine, 2013, Dihydronaphthoquinone-1,4 isolé des

feuilles de Dianella ensifolia (L.) Redouté (LILIACEAE)-Activité antioxydante des

extraits de la plante.

2. Yemoa A.L.Gbenou J.D.Johnson R.C.Djego J.G.Zinsou C. Moudachirou M.Quetin-

Leclercq J.Bigot A. Portaels F, Identification et étude phytochimique de plantes utilisées

dans le traitement traditionnel de l’ulcère de Buruli au Bénin.

3. Hariliva RAMIARISON, 2013, Caractérisations, identification des constituants de l’huile

essentielle des feuilles de Calea urticifolia Mill. D.C. (Asteraceae) et travaux biologiques.

REFERENCES WEBOGRAPHIQUES

w1- http://sante-medecine.commentcamarche.net/contents/805-phytotherapie-principes-et-

precautions

w2- http://www.univ-antananarivo.mg/Departements-Laboratoires

w3- http://www.who.int/mediacentre/news/releases/2003/pr33/fr/

w4- http://www.jdmmontagnes.org/?page=demarche

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ANNEXE 1 : Spectres RMN du produit P1

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ANNEXE 2 : Spectres RMN du produit P2

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ANNEXE 3 : Spectres RMN du produit P3