gyvųjų organizmų architektūra: baltymai dr. zita naučienė · pdf file3 skiriami keturi...
TRANSCRIPT
1
Gyvųjų organizmų architektūra: baltymai
Dr. Zita Naučienė
Baltymai yra gausiausia biologinių makromolekulių klasė randama visose ląstelėse.
Baltymų įvairovė yra labai didelė, nei viena makromolekulių klasė negali lygintis su
baltymais pagal atliekamų funkcijų gausumą.
Baltymai (proteinai) didelės molekulinės masės organinės medžiagos, sudarytos iš
aminorūgščių, sujungtų peptidiniu ryšiu. Baltymo pavadinimas yra kilęs iš vokiečių kalbos
žodžio eiweiss, kuris reiškia kiaušinio baltymas. Kitas naudojamas baltymo vardas proteinas
yra kilęs iš graikų kalbos žodžio protos, reiškiančio - pirminis, svarbiausias.
Baltymai ląstelėse atlieka labai daug įvairių funkcijų. Pagrindinės yra šios:
1. katalizinė - tai yra viena svarbiausių baltymų funkcijų. Baltymai fermentai
katalizuoja ląstelėje vykstančias chemines reakcijas, todėl jos vyksta labai dideliais
greičiais ir švelniose sąlygose.
2. pernašos - baltymai organizme perneša įvairias medžiagas, nuo elektronų iki
makromolekulių. Hemoglobinas transportuoja deguonį iš plaučių į audinius,
žmogaus serumo albuminas perneša riebalų rūgštis kraujuje. Labai svarbi pernašos
baltymų klasė yra membranose lokalizuoti baltymai - nešikliai ir kanalai.
3. struktūrinė - baltymai susijungę su lipidais sudaro biologines membranas.
Pagrindinis jungiamojo audinio baltymas yra kolagenas, plaukai, nagai taip pat yra
baltymai.
4. hormoninė- jie reguliuoja medžiagų apykaitą. Pvz. insulinas mažina cukraus
koncentraciją kraujyje, somatotropinis hormonas reguliuoja augimą.
5. apsauginė - organizme sintetinami antikūnai apsaugo jį nuo bakterijų, pašalinių
baltymų. Virusinė infekcija žmogaus organizme iššaukia baltymo interferono
sintezę, kuris stabdo tolesnį virusų dauginimąsi.
6. energetinė - oksiduojantis baltymuose esančioms aminorūgštims, išsiskyrusi
energija panaudojama organizmo energetiniams poreikiams tenkinti.
7. motorinė - raumenys yra sudaryti iš aktino ir miozino, jų pagalba cheminė
energija yra paverčiama mechanine. Bakterijų baltymas flagelinas reikalingas jų
judėjimui.
8. toksinai - choleros, botulizmo, difterijos, gangrenos toksinai yra baltymai.
2
9. infekcinė medžiaga – baltymas prionas atsakingas už neurodegeneratyvinių ligų
išsivystymą tiek žmogaus, tiek gyvulių organizmuose.
10. receptorinė - baltymai receptoriai, išsidėstę ant membranų paviršiaus, sąveikauja
su hormonais, neuromediatoriais, šviesa ir kitomis medžiagomis ir perduoda
signalą per membraną.
11. reguliatorinė - baltymai gali prisijungti prie nukleorūgščių, kitų baltymų ir keisti
jų biologinį aktyvumą.
12. atsarginė maisto medžiaga - pieno kazeinas, kiaušinio baltymai yra medžiagos,
kuriose sukauptos organizmo vystymuisi reikalingos energetinės ir statybinės
medžiagos.
13. egzotiniai baltymai - antifrizinis baltymas pažemina šiaurėje plaukiojančių žuvų
kraujo užšalimo temperatūrą, baltymas monelinas yra kelis tūkstančius kartų
saldesnis už cukrų, jūrų kriauklės išskiria baltymus, kurie priklijuoja jas prie
įvairių paviršių.
Baltymų sudėtis
Baltymai, kurie sudaryti tiktai iš aminorūgščių, vadinami paprastaisiais baltymais arba
proteinais. Tačiau dažnai į baltymų sudėtį įeina įvairios organinės ar neorganinės
medžiagos. Tokie baltymai vadinami sudėtiniais baltymais arba proteidais. Sudėtiniai
baltymai gali sudaryti makromolekulines struktūras, dalyvauti įvairiose reakcijose. Sudėtinių
baltymų pavyzdžiai pateikti 1 lentelėje.
Baltymai labai skiriasi pagal molekulės dydį ir molekulinę masę. Citochrome c yra 104
aminorūgštys, kurios sudaro vieną polipeptidinę grandinę. Fermentas glutamino sintetazė
sudaryta iš dvylikos atskirų baltyminių subvienetų ir jo molekulinė masė siekia 620000.
Žinduolių raumenų baltymas titinas vienoje polipeptidinėje grandinėje turi beveik 27000
aminorūgščių.
Baltymų struktūra Baltymų bendrus bruožus lemia cheminė struktūra - tai makromolekulės, sudarytos iš
aminorūgščių, sujungtų peptidiniu -CO-NH- ryšiu. Nepriklausomai nuo organizmo rūšies ar
ląstelės tipo, visi baltymai sudaryti iš tų pačių 20-ties aminorūgščių, kurios (panašiai kaip 25
abecėlės raidės gali sudaryti daugybę skirtingų žodžių, sakinių ar knygų) besijungdamos
tarpusavyje skirtinga tvarka ir kiekiu sudaro begalinę įvairovę baltyminių molekulių.
3
Skiriami keturi baltymų struktūrinės sandaros lygiai, kurių kiekvienas turi savo ypatybes.
Visi baltymai yra linijiniai aminorūgščių polimerai, kurių seka nereguliari, tačiau savita
(specifinė). Aminorūgščių išsidėstymas polipeptidinėje grandinėje vadinamas baltymo
pirmine seka arba pirmine struktūra (1 pav, a). Unikali kiekvieno baltymo pirminė seka
koduojama genų DNR. Teoriškai iš 20 skirtingų monomerų galima sudaryti 20n skirtingų
polipeptidų, kur n yra aminorūgščių skaičius grandinėje. Daugelis polipeptidų sudaryti iš
daugiau nei 100 aminorūgščių, o kai kurių molekulėse jų yra virš 1000. Akivaizdu, kad
baltymų sudaromų pirminių sekų įvairovė yra astronominė. Tuo paaiškinama didžiulė
baltymų ir jų atliekamų biologinių funkcijų įvairovė.
Aukštesni baltymų struktūros lygmenys, kuriuos lemia pirminė seka, pavaizduoti 1 pav.
Pav.1. Baltymų struktūros lygiai.
Pirminė (a), antrinė (b), tretinė (c) ir ketvirtinė (d) baltymo struktūra
Sekantis baltymo struktūros lygis - antrinė struktūra (Pav. 1, b), yra polipeptidinės
grandinės išsidėstymas erdvėje. Tretinė struktūra yra antrinės struktūros elementų
išsidėstymas erdvėje vienas kito atžvilgiu (Pav. 1, c). Tretinė struktūra (sąlygota antrinės ir
pirminės) labai svarbi biologiniam baltymų aktyvumui pasireikšti. Kadangi šia struktūra
užtikrina didelis skaičius silpnų sąveikų, ji labai jautri įvairiems aplinkos poveikiams.
Susidarant tretinei struktūrai, kai kurių baltymų molekulėse tarp Cys gali susidaryti
kovalentiniai 4 disulfidiniai tilteliai. Jie gali būti suardomi redukuojant, tuomet polipeptidinės
grandinės fragmentų išsidėstymas vienas kito atžvilgiu keisis. Disulfidinių tiltelių padėtys
priklauso nuo Cys užimamos padėties grandinėje.
Ketvirtinė struktūra būdinga baltymams, sudarytiems iš daugiau nei vienos polipeptidinės
grandinės (Pav. 1, d). Tokie baltymai vadinami oligomeriniais.
4
Antrinė baltymų struktūra
Tam tikros polipeptidinio ryšio savybės lemia polipeptidinės grandinės išsidėstymą
erdvėje (konformaciją). Žinomi dvi pagrindinės antrinės baltymų struktūros atmainos - α-
spiralė ir β-klostės.
1951 m. Amerikos mokslininkai Polingas ir Kori, įvertindami peptidinio ryšio savybes
(cheminių ryšių ilgiai, valentinių kampų dydžiai,vandenilinių ryšių ilgiai) bei rentgeno
struktūrinės analizės duomenis, pasiūlė antrinės baltymų struktūros modelį. Šie mokslininkai
baltymų struktūrą pradėjo tirti, analizuodami rentgeno spindulių difrakciją paprastų peptidų
(di- ir tripeptidų) kristaluose. Taip jie nustatė, kad peptidinė grupė baltyminiuose dariniuose
yra dalinai konjunguota, ryšys C-N gali būti viengubas ir dvigubas, peptidinė grupė gali
egzistuoti dviejose formose - neutralioje ir polinėje (Pav. 2,a). Jie pastebėjo, kad peptidinė
grupė yra plokščia ir nelanksti. Kadangi peptidinėje grupėje ryšys tarp C ir N yra dalinai
dvigubas, laisvas sukimasis apie ryšį tarp karbonilo grupės anglies imino grupės N atomų
negalimas (šie ryšiai Pav. 2. pavaizduoti plokštumoje). Peptidinėje grupėje (žr. Pav. 2, c)
ryšio C-N ilgis 1,32 Å (t.y. tarpinė reikšmė tarp C-N viengubo ryšio (1,49 Å) ir C=N
dvigubo ryšio (1,27 Å). Tai rodo, kad ryšys C-N peptidinėje grupėje dalinai (40%) dvigubas.
Dėl konjugavimo C=O ryšis tampa dalinai viengubas, ir todėl pailgėja: normaliai karbonilinė
grupėje grupėje ryšio ilgis 1,21 Å, o peptidinėje grupėje - 1,24 Å.
Pav. 2. Konjuguoti ryšiai tarp atomų, sudarančių peptidinę grupę (a); Cα atomo ryšiai (b); peptidinė
grandinė kaip plokštumų, kurias jungia lankstus fragmentas su išsikišusia šonine grupe, seka (c).
Taigi, visa peptidinė grupė yra dalinai konjuguota, jos sudaryme dalyvauja π elektronai,
todėl ją sudarantys atomai išsidėsto vienoje plokštumoje (tai vadinama koplanarumo
5
principu). Jų sudaromos plokštumos atžvilgiu imino grupės H atomas ir karbonilinės grupės
O užima trans padėtį. Todėl peptidinė grandinė gali būti vaizduojama, kaip seka nelanksčių
plokštumų, kurias skiria metileninė grupė su pakaitu R: CHR. Grandinėje sukimasis galimas
tik apie Cα atomo sudaromus ryšius, todėl kampai tarp šio atomo ryšių sutartinai žymimi φ
(fi) N-Cα ryšiui ir ψ (psai) Cα–C ryšiui (Pav. 2, b). Teoriškai jie gali įgauti bet kokią reikšmę
nuo –180o iki +180o, tačiau realiai tai neįmanoma, nes greta esantys atomai gali užimti tik
tam tikrą padėtį erdvėje, netrukdydami joje išsidėstyti kitiems atomams pvz., peptidinių
grupių sudaromos plokštumos negali persidengti). Kiekviena peptidinė grupė sudaro du
vandenilinius ryšius, kurių ilgis lygus 2,8 Å (Kiekvienos peptidinės grupės deguonis ir
vandenilis gali sudaryti du vandenilinius ryšius su kitų grupių vandenilio ir deguonies
atomais).
Pav. 3. Dešinio sukimo α-spiralės susidaro, peptidinių grupių plokštumoms išsidėstant lygiagrečiai
spiralės ašiai (a); reguliarūs vandeniliniai ryšiai tarp vijų sutvirtina spiralės struktūrą (b); α-spiralės
vaizdas “iš viršaus” (c).
Pagal šiuos principus L.Polingas (L.Pauling) ir R. Kori (R.Corey) pasiūlė taip vadinamąjį
α-spiralės modelį (Pav. 3). Pagal jį, baltymo išsidėstymui palankiausia struktūra, kurioje
polipeptidinė grandinė erdvėje susisuka į spiralę, sukimasis vyksta pagal laikrodžio rodyklę,
iš kairės į dešinę. Vienas α-spiralės žingsnis, t.y. atstumas tarp vijų lygus 5,4 Å. Viename
žingsnyje telpa 3,6 aminorūgštys - reiškia struktūra atsikartoja (identiškumo periodas) kas 5
žingsnius arba fragmentą iš 18 aminorūgščių. Cilindro, kuriame išsidėsto visi C atomai
6
diametras lygus 10,1 Å. Spiralę stabilizuoja vandeniliniai ryšiai, kuriuos kiekviena peptidinė
grupė sudaro su kita, nuo jos grandinėje ketvirta iš eilės peptidine grupe. Iš viršaus α-spiralė
atrodo lyg cilindro karkasas iš polipeptidinės grandinės, vidus tuščias, o į išorę nukreiptos
aminorūgščių šoninės grupės.
Polingas pasiūlė ir taip vadinamąją β klostytą struktūrą. Šiuo atveju polipeptidinė
grandinė nėra susisukusi į spiralę, bet yra ištempta, o vandeniliniai ryšiai susidaro ne tarp
grupių esančių toje pačioje polipeptidinėje grandinėje, tačiau tarp skirtingose polipeptidinėse
grandinėse esančių peptidinės grupės karbonilo ir imino atomų. Tokios polipeptidinės
grandinės gali išsidėstyti lygiagrečiai arba antilygiagrečiai (Pav.4). α- spiralė ir β- klostė yra
plačiausiai paplitusios antrinės struktūros įvairių tipų baltymuose. Be jų, dar sutinkami β
linkiai ar β kilpos. Jos būna tose polipeptidinės grandinės vietose, kur ji staigiai keičia savo
kryptį, dažnai net į priešingą. Linkiai, esant β-konformacijai, yra polipeptidinės grandinės,
kuri 180o kampu keičia kryptį, galuose. Tokį linkį dažnai sudaro 4 aminorūgštys, Pirmosios
aminorūgšties linkyje peptidinė grupė sudaro vandenilinį ryšį su ketvirtosios aminorūgšties
peptidine grupe. Šiuose linkiuse labai dažnai sutinkamos glicino ir prolino aminorūgštys.
(a) (b)
Pav. 4. β-klostyta struktūra gali susidaryti tarp antilygiagrečiai (a) ir lygiagrečiai (b) išsidėsčiųsių
polipeptidinių grandinių – pirmu atveju šalia yra gretimų grandinių C ir N-galai, antru – C-galas yra
greta kitos grandinės C-galo.
7
Kai kurie svarbūs struktūriniu požiūriu fibriliniai baltymai sudaro spiralinę antrinę
struktūrą, tačiau tai kitoks spiralės tipas, nei α- spiralė. Kolagenas yra fibrilinis baltymas,
sudarantis per 25% visų baltymų žinduolių organizmuose. Tris susipynusios kolageno
grandinės sudaro molekulę, vadinamą tropokolagenu, kurio molekulinė masė yra apie 285
kD. Tiriant kolageno aminorūgščių sudėtį, pasirodė, kad baltymo molekulėje yra apie 1000
aminorūgščių, ir jų tarpe labai daug glicino bei prolino. Kolageno molekulėje randamos dvi
kituose baltymuose labai retai sutinkamos aminorūgštys 4-hidroksiprolinas Hyp (I) ir 5-
hidroksilizinas(II). Kolagene yra 35% Gly, 11% Ala, 21% Pro ir Hyp.
N
OH
COOH H2N-CH2-CH-CH2-CH2-C-COOH
OH NH2
(I) (II) Vykstant kolageno sintezei, į polipeptidinę grandinę įjungiamos aminorūgštys prolinas ir
lizinas. Prolino hidroksilinimą baltymo molekulėje katalizuoja fermentas prolilo hidroksilazė,
į kurio aktyvų centrą įeina Fe2+jonas. Fermento aktyvumui reikalinga askorbo rūgštis, kuri
palaiko aktyviame centre geležį redukuotame būvyje. Todėl sergant skorbutu, sutrinka
kolageno sintezė, tuo pačiu – jungiamojo audinio funkcijos.
Elektroninės mikroskopijos ir rentgeno struktūrinės analizės duomenimis parodyta, kad
tropokolageno molekulė yra pailgo stulpelio (kurio ilgis 3000 Å ir skersmuo 15 Å) formos.
Ši molekulė yra vienas iš ilgiausių žinomų baltymų. Kiekviena iš trijų polipeptidinių
grandinių sudaro spiralę kuri skiriasi nuo klasikinės α-spiralės. Polipeptidinės grandinės
sukasi viena apie kitą (dešinio sukimo spiralė), taip susidaro trigubos superspiralės struktūra.
Grandinės tarpusavyje sudaro vandenilinius ryšius ir išsidėsto viena kitos atžvilgiu taip, kad
tarpuose atsiduria Gly (turintis mažiausią R), tai leidžia spiralėms susipakuoti glaudžiausiu
būdu. Kolageno skaidulos stabilizuojamos ir kovalentinių ryšių, kurie susidaro tarp skirtingų
tropologeno molekulių lizino ir hidroksilizino grupių. Taip sutvirtinta triguba superspiralė
suteikia kolagenui ypatingą mechaninį tvirtumą. Tropokolageno molekulės tvarkingai
išsidėstydamos sudaro kolageno skaidulas. Viena 1 mm skersmens kolageno skaidula gali
išlaikyti 10 kg svorį.
Keratinai yra baltymų, kuriems būdinga panaši sudėtis ir biologinė funkcija, grupė. Šią
grupę sudaro α-keratinai irβ-keratinai.
α-keratinai yra pagrindiniai plaukų, nagų bei gyvūnų odos baltymai. Jie įeina į citoskeleto
elementų (tarpinių filamentų) sudėtį. Plaukų α-keratino molekulės yra ilgos (apie 300
aminorūgščių ilgio) α-spiralės, kurios po dvi susisuka į kairiojo sukimo superspiralę. Tkią
8
savybę šioms spiralėms suteikia tai, kad jų sudėtyje kas ketvirta (t.y., esanti kiekviename
spiralės žingsnyje) aminorūgštis hidrofobinė, jų šoninės grupės sulimpa tarpusavyje ir tvirtai
sulipina dvi grandines. Tokią struktūrą sutvirtina įvairus kiekis disulfidinių tiltelių (jų daug
nagų keratine, mažiau – plaukų keratine). Plaukų “cheminis garbanavimas” pagrįstas
disulfidinių tiltelių suardymu (redukuojant) ir jų susidarymu kitose padėtyse (vėl
oksiduojant).
β-keratinai įeina į paukščių plunksnas ir roplių odą, jie sudaryti pagrinde iš β-klostytos
struktūros.
Tretinė baltymų struktūra (globuliniai baltymai)
Ilga polipeptidinė grandinė, kuriai būdinga tam tikra antrinė struktūra, erdvėje susisuka į
kompaktišką globulę. Šis baltymo molekulės antrinės struktūros elementų išsidėstymas
erdvėje vadinamas tretine baltymo struktūra. Polipeptidinė grandinė erdvėje sudaro struktūrą,
kurios vidinė energija yra minimali, aminorūgščių šoninės grupės tarpusavyje ar su vandeniu
sudaro daugiausiai galimų ryšių. Baltymai, turintys tą pačią aminorūgščių seką, įgauna tą
pačią erdvinę struktūrą, t.y., baltymo konformaciją nulemia aminorūgščių pirminė seka.
Tretinė struktūra dažniausiai lemia baltymo funkcijas. Pavz., aktyviame fermento centre
aminorūgščių šoniniai radikalai, esantys skirtingose polipeptidinės grandinės vietose, suartėja
erdvėje ir kartu dalyvauja katalizėje.
Tretinę struktūrą palaiko įvairūs cheminiai ryšiai tarp aminorūgščių šoninių radikalų.
Dažniausiai tai silpni nekovalentiniai ryšiai, kurie lengvai suyra, pakitus temperatūrai, terpės
pH, joninei jėgai. Šis antrinės ir tretinės struktūros suardymas vadinamas denatūracija.
Tretinę struktūrą stabilizuoja ir kovalentiniai disulfidiniai ryšai, susidarantys tarp dviejų
cisteino molekulių, esančių toje pačioje polipeptidinėje grandinėje. Tretinę struktūrą
stabilizuoja šie nekovalentiniai ryšiai:
1) hidrofobinė sąveika tarp nepoliarinių aminorūgščių (Leu, Ile, Phe, Ala) šoninių
radikalų,
2) elektrostatinė sąveika tarp aminorūgščių turinčių priešingą krūvį, pvz. tarp Lys ir Glu,
Arg ir Asp,
3) vandeniliniai ryšiai tarp aminorūgščių šoninių radikalų, pvz. Ser ar Thr -OH ir Asp ar
Glu CO,
4) vandeniliniai ryšiai tarp aminorūgščių šoninių grupių ir polipeptidinės grandinės
peptidinės grupės CO ir NH,
5) vandeniliniai ryšiai tarp peptidinės grupės CO ir NH, susidarant β-klostytai struktūrai,
9
6) sąveika tarp aminorūgščių šoninių grupių ir kofaktorių.
Tiriant daugelio baltymo globulėje esančių aminorūgščių išsidėstymą, buvo pastebėta, kad
• nepolinių aminorūgščių Met, Val, Leu, Ile, Phe šoninės grupės paprastai nukreiptos į
baltymo molekulės vidų ir nekontaktuoja su vandeniu. Hidrofobinė sąveika tarp šių grupių
didele dalimi lemia baltymo tretinės struktūros stabilumą.
• aminorūgščių Lys, Arg, His, Asp, Glu įkrautos grupės išsidėsto baltymo paviršiuje ir su
vandeniu sudaro vandenilinius ryšius. Būdamos baltymo molekulės viduje, jos dažniausiai
atlieka specifines chemines funkcijas - įeina į fermento aktyvų centrą, suriša metalo jonus,
kofermentus.
• polinės aminorūgštys Tyr, Ser, Thr, Asn, Gln paprastai būna baltymo molekulės
išorėje, tačiau gali būti sutinkamos ir molekulės viduje. Jos tarpusavyje sudaro vandenilinius
ryšius.
Tretinės struktūros sudėtyje sutinkami pagrindiniai antrinės struktūros elementai - α
spiralė, β-klostytos struktūros, kilpos, linkiai, superantrinės struktūros elementai.
Baltymų domenai
Taigi, tretinę struktūra lemia kovalentiniai disulfidiniai ryšiai, vandeniliniai ryšiai,
elektrostatinė sąveika tarp šoninių radikalų įkrautų funkcinių grupių, van der Vaalso sąveika,
taip pat labai svarbi hidrofobinė sąveika. Skirtumas tarp antrinės ir tretinės struktūrų yra gana
santykinis, skiriamos tarpinės formos, taip vadinamos viršantrinės struktūros: motyvai ir
domenai. Motyvas - struktūra, sudaryta iš keleto antrinės struktūros elementų ir turinti
būdingą erdvinį išsidėstymą. Domenai - sudaryti iš motyvų - kai kuriems baltymams
būdingos tam tikros stabilios struktūros (kurios gali daug kartų pasikartoti molekulėje). Tai
dažnai būna kompaktinė sritis (sudaryta iš 40-400 amino rūgščių), kuri išsiskiria bendroje
grandinėje, kaip atskiras elementas, turintis stabilią tretinę struktūrą. Tai diskretiški,
nepriklausomai susisukantys baltymų tretinės struktūros funkciniai ir struktūriniai elementai.
Baltymų judrumas
Baltymo molekulėje yra organizuotos ir neorganizuotos struktūros. Labai svarbu
pažymėti, kad šios organizuotos ir tvarkingos struktūros juda ir dažnai labai greitai. Vyksta
momentinės osciliacijos apie vieną, labai stabilią konformaciją. Baltymai yra dinaminės
struktūros. Judėti gali atskiri atomai, aminorūgščių šoniniai radikalai, net atskiri domenai.
Atomų vibracijos vyksta labai greitai (10-15-10-11 s) ir nedideliais atstumas (~0,05nm).
10
Atomų grupės ar domenai juda žymiai lėčiau ir didesniais atstumais. Dideli konformaciniai
pakitimai vyksta reaguojant antigenui su antikūnu, fermentui su substratu, receptoriui su
ligandu. Judėjimo greitis gali būti 10-9-10-3s ir grupės gali judėti per kelis nm.
Ketvirtinė baltymų struktūra
Gamtoje sutinkama daug oligomerinių baltymų sudarytų iš kelių polipeptidinių grandinių,
vadinamų subvienetais, sujungtų nekovalentiniais ryšiais. Šių subvienetų erdvinis
išsidėstymas vadinamas baltymo ketvirtine struktūra. Dauguma baltymų, kurių molekulinė
masė >100kDa sudaryti iš vieno ar skirtingų tipų subvienetų. Ketvirtinę struktųrą palaiko
vandeniliniai, elektrostatiniai, hidrofobiniai ryšiai. Subvienetus lengva atskirti vienus nuo
kitų pakeitus tirpalo pH ar joninę jėgą.
Fermentų sąveika ir metabolinis tuneliavimas
Vienas iš baltymų tarpusavio sąveikos pavyzdžių yra fermentų tarpusavio sąveika.
Medžiagų tiesioginis perdavimas ferment-fermentiniu kanalu nuo vieno aktyvaus centro į
kitą vadinamas tuneliavimas. Jos neišeina į supančią erdvę ir nepasiskisto pusiausvyroje su
analogiškom molekulėm bendrame erdvės skyriaus tūryje. Angliškų terminų gausa
(channeling, coupling, processivity, direct transfer, vectorial transfer) tam pačiam reiškiniui
aprašyti būdinga pradiniam tyrimo etapui, kuomet dar nesusiformavusi vieninga
terminologija. Tuneliavimas ląstelei naudingas ląstelės t\“tirpiklio” kiekį. Juk daugybė
metaboliniuose keliuose vaizduojamų metabolitų turi būti ištirpę tame pačiame tirpiklyje,
vandenyje, kurio kiekis yra ribotas.
Tuneliavimas gali vykti keliais būdais: kovalentiškai jungiant tarpinius metabolitus
aktyviuose fermentų centruose (1); nejungiant jų kovalentiškai (2).
Atitinkamai, tuneliavimas gali būti įvairiaus laipsnio - kietas (angl. k. - tight) arba pilnas,
kuomet tarpiniai metabolitai visai nepasirodo tunelio išorėje, būdingas mechanizmui (1) ir
laidus (angsl. k. - leaky) arba nepilnas, kai metabolitai tam tikru laipsniu išeina iš tunelio,
būdingas mech. (2).
Kietas tuneliavimas naudingas, kai tarpiniai tam tikros fermentų sekos produktai nėra
reikalingi (naudojami) kitose sekose. Pvz., tarpiniai baltymo sintezės produktai yra nebaigti
beprasmiai baltymai. Jie jungiami kovalentiškai, nes svarbu, kad į ląstelę patektų tik galutinis
produktas. Tačiau glikolizės tarpiniai produktai G6P ir DHAP reikalingi ir kituose keliuose,
todėl labiau pagrįstas laidus tuneliavimas. Riebalų rūgščių β-oksidacijos tarpiniai produktai
ilgos grandinės acil-KoA stipriai inhibuoja daugelį mitochondrijų fermentų. Juos svarbu
tuneliuoti kietai, kad nepasireikštų žalingas poveikis.
11
Viename ląstelės erdvės skyriuje esantys nuoseklios fermentų sekos nariai tarpusavyje
sudaro kompleksus ar bent išsidėsto erdvėje neatsitiktine tvarka. Kai kuriose sekose nustatyti
stabilūs multifermentiniai kompleksai: du labai panašūs α-ketorūgščių oksidacijos
kompleksai (piruvato dehidrogenazė ir 2-oksiglutarato dehidrogenazė), riebalų rūgščių
sintezės kompleksas. Baltymų ar fermentų kompleksai angliškai vadinami įvairiai - protein
machines, clusters, supramolecular complexes, aggregates, metabolons. Multifunkciniai
baltymai yra ribinis fermentų aktyvumo suliejimo atvejis, kuomet vienoje polipeptidinėje
grandineje yra keli domenai, pasižymintis skirtingų fermentų aktyvumu. Toks pavyzdys yra
Neurospora Crassa kompleksas AROM (shikimo rūgšties kelias), kurio vienoje
polipeptidineje grandineje yra penki fermentiniai aktyvumai. Kituose mikroorganizmuose,
pvz., E.coli Lys, Met, Thr ir Ile sintezės iš L-Asp kelias reakcijas atlieka vienas polipeptidas
- tetrameras α4, kurio kiekvieno subvieneto N-gale yra domenas su asparto kinazės
aktyvumu, o C-gale - homoserino dehidrogenazės domenas. Aukštesniųjų organizmų
ląstelėse tris pirmąsias pirimidinų biosintezės stadijas katalizuoja fermentų kompleksas
karbamoilfosfato sintazė, aspartat-karbamoilo transferazė ir dihidroorotazė, kurie greičiausiai
yra vienoje polipeptidinėje grandinėje.
Be tokių lengvai nustatomų tvirtų sąveikų, galima savita sąveika tarp fermentų, kurie
tradiciškai laikomi tirpiais. Pvz., žiuželinių pirmuonių Tripanosoma brucei, tripanosoma
cruzi ir Critidia fasciculata citoplazmoje glikolizės fermentai sukaupti specifinėje
peroksisomoje, vadinamoje glikosoma. Šie kraujuje parazituojantys organizmai visą energiją
gauna glikolizės būdu, ir glikosoma užtikrina pakankamai didelį jos greitį. Fermentų
tarpusavio sąveika glikosomoje tokia stipri, kad kompleksas išlieka, net pašalinus membraną.
Kitais atvejais tirpūs fermentai nėra jungiami membraninių struktūrų, tačiau tarp jų
egzistuoja įvairaus stiprumo dinaminė sąveika
Apibendrinant, galima abejoti, ar apskritai ląstelėje įmanoma laisva fermento būsena.
Sąveika su polimerinėmis molekulėmis gali keisti fermentų kinetines savybes - pvz.,
susirišimas su DNR aktyvina nukleorūgščių metabolizmo fermentus. Kai kurie fermentai yra
dinaminėje pusiausvyroje tarp surištos ir laisvos būsenų, toks reiškinys vadinamas jų būsenos
dviprasmiškumu (angl. k. - ambiquity). Pusiausvyra tarp tokių formų reguliuojama. Savo
ruožtu, tokia dinaminė asociacija arba dinaminis tuneliavimas svarbus reguliaciniu požiūriu.
Pvz., heksokinazės susirišimas su mitochondrijų membrana keičia jos kinetines savybes
(didina Km), o padidėjus gliukozės koncentracijai citozolyje heksokinazės sąveika su
mitochondrijomis suyra.
12
Tuneliavimo privalumai
Viduląstelinės difuzijos greičiai nėra pakankami gyvybinių procesų užtikrinimui, todėl
tuneliavimas yra labai svarbus. Kokie yra multifermentinių kompleksų egzistavimo, arba
tuneliavimo teikiami privalumai?
1) Suartinimo efektas. Tuneliavimo dėka bendras sistemos veikimo greitis žymiai
padidėja, nes:
a) substratai tiesiogiai perduodami nuo vieno fermento aktyvaus centro į kitą.
b) substrato koncentracija antrojo aktyvaus centro aplinkoje yra žymiai didesnė, nei tuo
atveju, jei jie pasiskirstytų po visą citozolio tūrį (bulk phase), taigi, aukšta substrato
koncentracija pasiekiama nedidelio kiekio substrato molekulių sąskaita (5 pav.).
(a) (b)
5 pav. Tarpiniam metabolitui išeinant į aplinką, jis tolygiai pasiskirsto, joje ištirpdamas (a) todėl
aplinkoje susidaro mažesnė substrato sekančiam fermentui koncentracija, nei tuo atveju (b), kai
metabolites aplinkoje nepasirodo ir visas jo kiekis yra “tarpfermentiniame tunelyje”.
c) sumažėja tarpinių metabolitų difuzijos laikas. Kai praskiestame tirpale matuojamas
sistemos iš kelių atskirai veikiančių fermentų bendras greitis paprastai būtinas tam
tikras laikas stacionariai būsenai pasiekti. Šis laikas mažėja ir net visai išnyksta,
jeigu, didinant fermentų koncentracija tirpale, fermentai sudaro kompleksus. Tada
tarpiniai metabolitai perduodami tiesiogiai iš vieno aktyvaus centro į kitą.
d) taupomas ląstelės tirpiklis (H2O);
e) tarpiniai metabolitai apsaugomi nuo terpės poveikio ar joje esančių degraduojančių
fermentų (fosfatazių, hidrolazių) poveikio;
f) ląstelė apsaugoma nuo žalingo kai kurių metabolitų poveikio (aldehidų, ilgos
grandinės acil-KoA).
Dėl heksokinazės sąveikos su mitochondrijomis sintezuotas ATP greičiau “patenka”
heksokinazei, nei pridėtas iš išorės, o ADP greičiau “grąžinamas” mitochondrijoms. Mažėja
13
galimybė, kad oksidacinis fosforilinimas bus inhibuotas ATP. ATP panaudojamas
“nesusimaišęs” su citozoline ATP sankaupa.
2. Papildomos reguliacinės galimybės, kurias suteikia sąveika tarp nuoseklios fermentų
sekos narių. Tai gali būti alosterinio pobūdžio reguliacija, kai efektoriaus susirišimas su
vienu iš sekos fermentų veikia kitus fermentus (koordinuota reguliacija). Fermentų sąveikos
metu gali būti palankiai keičiama kitų fermentų konformacija ir kinetines savybes. Įdomus
fermentų tarpusavio sąveikos pavyzdys yra laisvai triptofano sintazei būdingas triptofano
hidrolazinis aktyvumas, kuris inhibuojamas, jai susirišus su kitais fermentais.
Kadangi baltymų koncentracija ląstelėje ir jos erdvės skyriuose tokia didelė, sąveikaudami
tarpusavyje, jie suteikia ląstelei supramolekulinės struktūros bruožų, matomų elektroniniu
mikroskopu.. Šiuos ląstelės struktūros bruožus lemia baltymų sąveika. Galima sakyti, kad
fermentų ir kitų baltymų tarpusavio sąveika lemia aukštesnį ląstelės struktūrinės
organizacijos lygį.
Matematinis baltymų struktūros modeliavimas
Kritinė baltymų savybė yra gebėjimas įgauti teisingą erdvinę struktūrą, kuri nulemia baltymo
funkcijas. Dauguma ligų, kaip pavyzdžiui Alzheimer’io liga, yra susijusių su neteisingą erdvinę
struktūrą turinčiais baltymais [1]. Baltymo struktūros identifikavimas yra svarbus žingsnis bandant
paaiškinti jo biologinę funkciją ir įtaką sveikatai. Struktūros nustatymas yra sunki užduotis,
reikalaujanti daug laiko ir lėšų. Todėl mokslininkai ėmėsi nuspėti baltymo struktūrą remiantis jo
seka, pasitelkdami kompiuterių pagalbą.
Tradiciškai baltymų erdvinė struktūra nustatoma naudojantis Rentgeno-struktūrine analize arba
branduolio magnetinio rezonanso metodu (BMR). Pirmasis metodas paprastai nesuteikia
informacijos apie vandenilio atomų padėtį, juo naudojantis negalima patikimai atskirti azotą nuo
deguonies ar nuo anglies. Tai reiškia, kad naudojantis Rentgeno struktūrine analize asparto rūgšties,
glutamino ir treonino šoninių grandinių atomų cheminė sudėtis nustatoma nepatikimai ir yra
nuspėjama pagal baltyminę aplinką, supančią šias amino rūgštis. BMR metodo trūkumą sudaro tai,
kad šiuo metodu galima tirti baltymus nedidesnius nei 30 kD. Nustatant baltymo struktūrą svarbus
matas yra skiriamoji geba (angl. – resolution), kuris nusako nustatytos struktūros detalumą, kokybę.
Skiriamoji geba išreiškiama angstremais (Å), kuriais matuojamas atstumas. Kuo mažesnė jo
reikšmė, tuo aukštesnė skiriamoji geba. Baltymo struktūra yra nustatoma pagrindinai skiriamosios
gebos intervale tarp 1.7 Å ir 3.5 Å. Reikšmės žemesnės nei 2.0 Å nurodo aukštą skiriamąją gebą.
14
Pavyzdžiui, kai skiriamoji geba yra 5.0 Å, bendras baltymo susilankstymas yra aiškus, tačiau
nesuteikta jokios informacijos apie tikslesnį amino rūgščių išsidėstymą. Esant 2.5 Å skiriamajai
gebai nustatomas tikslesnis atomų išsidėstymas, įskaitant amino rūgščių šoninių grandinių
išsidėstymą. 1.2 Å skiriamoji geba nurodo aukštos kokybės struktūros nustatymą, kuris suteikia
informacijos ne tik apie tikslų amino rūgščių išsidėstymą, bet ir nusako kai kurių vandenilio atomų
buvimo vietą.
Baltymo pirminė amino rūgščių seka yra pagrindinis veiksnys, nulemiantis jo galutinę
struktūrą. Šiuo metu dėka genų sekvenavimo kartu sparčiai gausėja informacijos apie baltymų,
kuriuos koduoja tie genai, amino rūgščių sekas. Nors eksperimentinis tretinės baltymų struktūros
nustatymas tampa vis efektyvesnis, žinomų sekų skaičius vis dar žymiai didesnis nei žinomų
struktūrų. Matematinis baltymų struktūros modeliavimas turėtų šį skaičių sulyginti. Taikomi keturi
būdai antrinės baltymų struktūros spėjimui:
1. Empiriniai statistiniai metodai, naudojantys žinomų erdvinių struktūrų parametrus.
2. Metodai, paremti fizikocheminėmis amino rūgščių savybėmis, tokiomis kaip dydis, grupių
išsidėstymas, hidrofobiškumas, krūvis, vandenilinių ryšių sudarymo galimybė ir panašiai.
3. Metodai paremti spėjimo algoritmais, kurie naudoja žinomas homologiškų baltymų struktūras
nustatant antrinę norimo baltymo struktūrą.
4. Molekulinės mechanikos metodai, naudojantys jėgų lauko parametrus modeliuojant ir nustatant
antrinę struktūrą.
Teigiama, kad baltymai, kurių amino rūgščių sekos atitinka bent 30 %, turės tą patį erdvinį
susilankstymą ir greičiausiai atliks panašias funkcijas [2]. Todėl baltymų homologija yra svarbi
savybė identifikuojant giminingus baltymus su vienodu erdviniu susilankstymu. Taigi, tiriamo
baltymo seka gali būti palyginama su žinoma homologiško baltymo erdvine struktūra taikant vieną
iš dviejų pagrindinių strategijų. Pirmu metodu, tiriamo baltymo seka yra palyginama su žinomos
erdvinės struktūros baltymais modeliais. Kiekvienas iš šių palyginimų turi jam priskirtą reikšmių
rinkinį. Reikšmių rinkiniai yra klasifikuojami ir išrenkama geriausia reikšmė. Pagal šią geriausią
reikšmę tiriamai sekai ir priskiriama erdvinė struktūra. Antru metodu tiriamo baltymo seka
sutapatinama su žinoma baltymo struktūra ir skaičiuojama tiriamo baltymo sekos energija. Šis
metodas naudojamas kai nerandama esminių panašumų tarp tiriamo baltymo sekos ir žinomos
struktūros baltymų sekos.
Žinomas baltymų struktūras galima rasti internetinėse duomenų bazėse. Egzistuoja dviejų tipų
duomenų bazės: pirminės (archyvinės) ir antrinės. Pirminėse duomenų bazėse galima rasti
eksperimentinius rezultatus ir šiek tiek interpretacijos, pavyzdžiui DNR, RNR ar baltymų sekas.
15
Antrinėse duomenų bazėse surenkama išanalizuota informacija. Išskiriamos trys jungtinės duomenų
bazių paieškos sistemos – Entrez, EBI ir DBGet.
Svarbus baltymų struktūros ir funkcijų suvokimui yra kompiuterinės grafikos taikymas
biomolekulių vaizdavimui ir manipuliavimui. Kompiuterio pagalba gaunamas baltymų struktūros
vaizdas atskleidžia santykinį daugumos ar net visų atomų makromolekulėje išsidėstymą. Sukurtas
vaizdas taip pat atskleidžia baltymo fizikines, chemines ir elektrines savybes ir suteikia
įsivaizdavimą apie jo funkcijas organizme. Egzistuoja trys molekulių grafinio vaizdavimo lygiai:
1D formulė arba struktūrinė formulė (1 paveikslas); 2D cheminė struktūra (2 paveikslas); 3D
molekulinė struktūra (3 paveikslas). Tipiškai duomenys makromolekulių erdvinės struktūros failų
įrašuose yra atomų koordinatės (x, y, z), taip pat duomenys apie ryšių ilgius bei ryšių tipus
kiekvienai įmanomai sujungtų atomų porai. Šiuo aprašo būdu paremtas Baltymų duomenų banko
(PDB – Protein Data Bank) failo formatas, aprašantis biomolekulių erdvines struktūras. Baltymų
duomenų banke (PDB) (http://www.rcsb.org/pdb/) galima rasti įvairiausių laisvai prieinamų
baltymų, nukleorūgščių ir kitų biologinių makromolekulių struktūrų. Kitas būdas, paremtas
standartiniu amino rūgščių likučių žodynu, apimančiu visus biomakromolekulių atomus ir ryšius,
taikomas tokių duomenų bazių įrašuose kaip Molekulinio modeliavimo duomenų bazė (MMDB –
Molecular Modeling Database).
Jau dabar yra nemažai sukurtų kompiuterinių programų, leidžiančių turimus duomenis
analizuoti ir taikyti juos tolimesniem tyrimams. Tokių programų panaudojimas turi nemažai
privalumų, svarbiausios iš jų yra laiko ir pinigų taupymas. Dalis šių programų ne tik palengvina
tyrimus, tačiau gali būti panaudotos mokymo tikslais. Pavyzdžiui, naudojantis įvairiomis
programomis galima vaizdžiai pademonstruoti baltymų struktūrą, sukonstruoti baltymą,
sumodeliuoti sąveika tarp baltymo ir ligando. Tokiu būdu, matematinis baltymų struktūros
modeliavimas padėtų geriau įsivaizduoti ir suvokti baltymų savybes, jų funkcijas, veikimo
mechanizmus.
Baltymų raiška
Baltymų raiška, dar vadinama genų raiška, – tai procesas, kurio metu genuose esanti
informacija paverčiama į baltymų struktūras ir funkcijas. Baltymų raiška yra daugiapakopis
procesas, kuris prasideda tanskripcija, transliacija, toliau seka pagaminto baltymo erdvinės
struktūros įgavimas, po-transliacinė modifikacija ir nukreipimas į paskirties vietą. Baltymo kiekis,
kurį gamina ląstelė priklauso nuo audinio tipo, organizmo išsivystymo stadijos ir ląstelės
metabolinės bei fiziologinės būsenos.
16
Netiesiogiai tam tikro baltymo raiška gali būti įvertinama taikant DNR mikrokomplekto
technologiją, kuri leidžia grubiai nustatyti skirtingų mRNR koncentraciją ląstelėje. DNR
mikrokomplektas – mikroskopinių DNR taškelių, prisitvirtinusių prie kieto paviršiaus, rinkinys.
Tačiau daugumos baltymų ekspresija yra reguliuojama po transkripcijos, todėl mRNR
koncentracijos padidėjimas ne visuomet reiškia padidėjusią baltymų raišką. Polimerazinė
grandininė reakcija (PGR) yra tikslesnis metodas baltymų raiškos nustatymui. Polimerazinė
grandininė reakcija (PGR) – tai greitas specifinio DNR segmento padauginimas (amplifikavimas) in
vitro. Šis metodas leidžia iš turimos DNR paprastos fermentinės reakcijos metu susintetinti didelius
kiekius DNR fragmentų. Po PGR seka padaugintų DNR fragmentų analizė gelyje, kuriame lyginami
tiriami DNR fragmentai su žinomo dydžio fragmentais.
Baltymų raiška gali būti kontroliuojama įvairiuose lygiuose:
1. Chromosomų aktyvaciją ar deaktyvacija.
2. Transkripcijos iniciacijos kontrolė.
3. RNR transporto kontrolė.
4. MRNR degradacijos kontrolė.
5. Transliacijos iniciacijos kontrolė.
6. Po-transliacinė modifikacija.
Baltymų paskirties vieta ir funkcijos dažnai būna užkoduotos amino rūgščių sekoje. Baltymo
paskirties vietą taip pat apsprendžia ir po-transliacinės modifikacijos, o tiksliam funkcijos atlikimui
reikalingas teisingos erdvinės struktūros įgavimas. Biomakromolekulių struktūros-funkcijos sąryšio
supratimui svarbūs makromolekulių ir jų ligandų ar substratų sąveikos tyrimai. Šie tyrimai suteikia
nemažai informacijos apie makromolekulių atliekama funkciją. Dauguma fiziologinių procesų yra
efektoriaus sąveikos su biomakromolekule pasekmė. Tiriant fermentų funkcijas, jų sąveikos su
substratais mechanizmus, remiamasi fermentinės kinetikos teorija. Matuojant klasikinių fermentinių
reakcijų greičius, galima rankiniu būdu apskaičiuoti reakcijos greitį žinant pradines fermento ir
substrato koncentracijas, bei atitinkamų konstantų reikšmes. Tačiau skaičiuojant sudėtingesnių
sistemų procesus reikalinga kompiuterio pagalba. DynaFit yra kompiuterinė programa skirta
statistinei analizei ir pusiausvyrinių ligando surišimo duomenų modeliavimui. Programa atlieka
ligando-receptoriaus surišimo ir fermentinės kinetikos duomenų analizę taikant netiesinę mažųjų
kvadratų regresiją.
Tokios programos kaip AutoDock, DOCK, Gold ir kitos yra naudojamos
makromolekulių ir ligandų, fermentų ir substratų sąveikos modeliavimui. AutoDock programa
skirta nuspėjimui kaip maža molekulė – efektorius – rišasi su žinomos struktūros receptoriumi.
Modeliavimo metu yra randamas sąveikos tarp substrato ir makromolekulės energijos minimumas.
17
AutoDock programa naudoja Baltymų duomenų banko failo formatą, aprašantį makromolekulių
struktūras. Ligando struktūras galima taip pat surasti įvairiose duomenų bazėse arba sumodeliuoti
reikiamos molekulės-ligando struktūrą, pasinaudojant tam skirtomis programomis. Sąveikos
skaičiavimų rezultatas yra įvairūs ligando išsidėstymo variantai, kurių kiekvienam yra priskirta
atitinkama energetinė reikšmė. Žemiausia energija pasižymintis išsidėstymo variantas yra
priimamas kaip labiausiai tikėtinas. Specialių molekulinių grafinių programų pagalba įmanomas
sumodeliuotos sąveikos vizualizavimas, kas palengvina gautų modeliavimo rezultatų analizę.
Naujausi proteomikos metodai
Proteomika apima ne tik baltymų identifikaciją ir įvertinimą, bet ir jų lokalizacijos,
modifikacijos, sąveikos, funkcijos nustatymą. Proteomika nagrinėja baltymus, kurie yra koduojami
organizmo ar ląstelės genų. Pilnas rinkinys baltymų, kuriuos gali sintetinti organizmas, yra
vadinamas proteomu. Proteomas yra žymiai didesnis už genomą, kadangi vienas genas gali būti
atsakingas už kelių baltymų sintezę. Baltymų įvairovę nulemia po-transliacinės modifikacijos ir
daugybė kitų faktorių.
Vienas naujausių proteomikos technologijų taikymas yra susijęs su vaistų kūrimo ir tobulinimo
procesais. Proteomika leidžia įvertinti naujų cheminių preparatų terapeutinį arba toksinį poveikį
tikrinant baltymų atsaką žmogaus audinių kultūroje, naujai paimtuose žmogaus audinių mėginiuose
ar fiziologiniuose skysčiuose. Tokiu būdu sudaroma galimybė sėkmingai atrinkti farmacinius
preparatus ankstyvoje jų kūrimo etape, identifikuoti terapeutiškai naudingus junginius baltymų
lygyje ir pašalinti toksinius. Baltymų tyrimo procesas apima baltymų išgavimą iš audinių ir jų saugų
laikymą. Išskirtų baltymų identifikavimui taikomas jų atskyrimas naudojantis dvikrypte
elektroforeze. Šis metodas leidžia atskirti baltymus pagal jų izoelektrinį tašką ir kartu pagal jų masę.
Taip pat baltymų atskyrimui yra naudojamas HPLC metodas. Šio metodo trūkumas yra baltymo
dydis, kuris gali būti tiriamas (<20 000 Da), ir labai hidrofobinių peptidų netirpumas. Toliau
atskirtų peptidų frakcijos tiriamos mass-spektroskopijos metodu ir yra sudaromi taip vadinami
peptidų žemėlapiai. Lyginant ligos atveju pažeistų peptidų žemėlapį su kontrolinio mėginio peptidų
žemėlapiu galima sėkmingai nustatyti su liga susijusius baltymų markerius. Vienas naujausių
baltymų atskyrimo metodų yra baltymų čipų (ProteinChip) panaudojimas. Tai metalinės plokštelės,
ant kurių išdėstytos įvairaus giminingumo terpės.
Baltymo amino rūgščių sekos nustatymas apima keletą žingsnių:
1. Atskiros polipeptidinės grandinės atskyrimas ir išgryninimas iš baltymo turinčio subvienetus.
2. Vidumolekulinių disulfidinių ryšių skėlimas.
18
3. Išgrynintos polipeptidinės grandinės amino rūgščių sudėties nustatymas.
4. N- ir C-galinių amino rūgščių analizė.
5. Specifinis polipeptidinės grandinės skėlimas į mažesnius fragmentus, šių fragmentų gryninimas.
6. Peptidinių fragmentų sekos analizė.
7. 5 ir 6 žingsnių kartojimas naudojantis skirtingais skėlimo metodais. Sudaromas skirtingų ir
persidengiančių peptidinių fragmentų rinkinys, analizuojama jų seka.
8. Visos baltymo amino rūgščių sekos atkūrimas iš sekų persidengiančiuose fragmentuose.
9. Disulfidinių ryšių vietos nustatymas.
Praktinis darbas
Lina Rimkutė
Pažintis su bioinformatikos taikymu baltymų struktūrai ir sąveikoms tirti, vyks kompiuterių
klasėje.
1. Pažintis su jungtinėmis duomenų bazių paieškos sistemomis. (Trukmė 20 min.)
Entrez (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Entrez/), EBI (Europos Bioinformatikos Institutas)
(http://www.ebi.ac.uk/) bei DBGet (http://www.genome.ad.jp/dbget/), suteikia priėjimą prie DNR,
baltymų sekų, genomo ir chromosomų kartografinių duomenų, erdvinių molekulinių struktūrų.
Reikiamų duomenų paiešką galima vykdyti pagal autoriaus vardą, žurnalo pavadinimą,
identifikacinį numerį (pvz., baltymo, geno ar cheminės medžiagos pavadinimas) ir kita, suvedant
reikiamą raktinį žodį į paieškos laukelį. taip pat suteikia priėjimą prie įvairiausių duomenų.
Užduotis: surasti baltymo (žmogaus albumino) seką iš kiekvienos duomenų bazių paieškos
sistemos – Entrez, EBI, DBGet – ir palyginti jų įrašus.
2. Pažintis su baltymų amino rūgščių sekos palyginimo programa (Trukmė 10 min.)
BLAST (The Basic Local Alignment Search) yra programa skirta baltymų homologijų, sekų
panašumų nustatymui. BLAST veikimas paremtas tiriamosios sekos palyginimu su žinomomis
sekomis įvairiose duomenų bazėse.
Užduotis: atlikti sekų panašumo tyrimą baltymo, kurio seka:
MSQDENIVKAVEESAEPAQVILGEDGKPLSKKALKKLQKEQEKQRKKEERALQLEAEREAREKKAA
AEDT
AKDNYGKLPLIQSRDSDRTGQKRVKFVDLDEAKDSDKEVLFRARVHNTRQQGATLAFLTLRQQASL
IQGL
19
VKANKEGTISKNMVKWAGSLNLESIVLVRGIVKKVDEPIKSATVQNLEIHITKIYTISETPEALPI
LLED
ASRSEAEAEAAGLPVVNLDTRLDYRVIDLRTVTNQAIFRIQAGVCELFREYLATKKFTEVHTPKLL
GAPS
EGGSSVFEVTYFKGKAYLAQSPQFNKQQLIVADFERVYEIGPVFRAENSNTHRHMTEFTGLDMEMA
FEEH
YHEVLDTLSELFVFIFSELPKRFAHEIELVRKQYPVEEFKLPKDGKMVRLTYKEGIEMLRAAGKEI
GDFE
DLSTENEKFLGKLVRDKYDTDFYILDKFPLEIRPFYTMPDPANPKYSNSYDFFMRGEEILSGAQRI
HDHA
LLQERMKAHGLSPEDPGLKDYCDGFSYGCPPHAGGGIGLERVVMFYLDLKNIRRASLFPRDPKRLR
PCGV
PSFPPNLSARVVGGEDARPHSWPWQISLQYLKDDTWRHTCGGTLIASNFVLTAAHCISNTWTYRVA
VGKN
NLEVEDEEGSLFVGVDTIHVHKRWNALLLRNDIALIKLAEHVELSDTIQVACLPEKDSLLPKDYPC
YVTG
WGRLWTNGPIADKLQQGLQPVVDHATCSRIDWWGFRVKKTMVCAGGDGVISACNGDSGGPLNCQLE
NGSW
EVFGIVSFGSRRGCNTRKKPVVYTRVSAYIDWINEKMQL
• Interneto adreso laukelyje įvesti www.expasy.ch/tools
• Skyrelyje “Similarity searches” surasti programą BLAST Network service on ExPASy ir
paspausti ant užrašo BLAST.
• Atsidariusiame dokumente, į programos lauką nukopijuoti užduotyje pateiktą baltymo seką.
Paspausti Run BLAST.
• Išnagrinėti gautus rezultatus.
3. Pažintis su cheminių struktūrų piešimo programa ISIS/Draw. (Trukmė 15 min.)
Užduotis: nupiešti cheminę struktūrą (gliciną) naudojantis ISIS/Draw programa. Peržiūrėti
nupieštą struktūrą trimatėj erdvėje naudojantis WebLabViewerPro4 grafine programa.
1. Atidaryti ISIS/Draw programą. Atsidariusiame lange kairėje ir viršuje yra mygtukų juostos.
Kairėje esantys mygtukai skirti molekulių paišymui ir peržiūrėjimui. Viršuje esantys
20
mygtukai atidaro kai kurių molekulių pavyzdžius. Dažniausiai naudojami mygtukai:
2. Paspausti Single Bond mygtuką ir nupiešti keturių anglies atomų grandinę, sujungtų
viengubu ryšiu. Paspauskit ant trečio anglies atomo, kad pridėti dar vieną anglies atomą.
3. Dabar kelis anglies atomus keisime į kitus atomus. Paspauskite Atom mygtuką. Dabar
spustelkite ant galinio dešinio anglies atomo. Atsiras langelis, į kurį reikia įrašyti NH2 ir
paspausti Enter. Pridėtą anglies atomą pakeiskit į deguonį “O”, galinį kairį anglies atomą – į
OH.
4. Pasirinkus mygtuką Single Bond paspausti ant viengubo ryšio, jungiančio anglies atomą su
deguonimi: viengubas ryšys tampa dvigubu.
5. Išsaugoti nupieštą molekulę.
6. Atidaryti WebLabViewerPro4 programą. Per File → Open susirasti ir atidaryti išsaugotą
failą.
4. Pažintis su internetine baltymų duomenų baze ir molekuline grafine programa (Trukmė 15
min.)
PDB paieškos laukelyje galima suvesti visą reikiamos molekulės pavadinimą arba indeksą,
pvz., 1LYZ, kuris žymi vištos kiaušinio baltymą lizocimą. Pirmasis simbolis nurodo versijos
numerį. Jeigu indeksas prasideda simboliu 0, tai reiškia, kad įrašas yra grynai bibliografinis. pdb
failas yra tekstinis failas su paaiškinamąja antrašte ir atomų koordinačių rinkiniu. PDB formatas
apima informaciją apie struktūros nustatymą, bibliografijos nuorodas, atomų koordinates. Dauguma
molekulinių grafinių programinių įrangų ar kitos kompiuterinės analizės programos nuskaito PDB
formato failus, turinčius išplėtimus .pdb arba .ent.
Užduotis: surasti PDB 3D baltymo struktūrą ir naudojantis WebLabViewerPro4 grafine
programa išmokti vizualizuoti ir manipuliuoti.
1. Interneto adreso laukelyje įvesti http://www.rcsb.org/pdb/
2. Paieškos laukelyje įvesti indeksą 1LYZ. Atsidariusio dokumento lange paspausti
Download/Display File. Lentelėje Download the Structure File pasirinkti PDB none formatą.
Atsidariusiame dialogo lange spausti Save.
3. Atidaryti WebLabViewerPro4 programą. Per File → Open susirasti ir atidaryti išsaugotą failą.
21
Paveikslai
Pav. 1. Arginino struktūrinė formulė
N
ON
NN
Pav. 2. Arginino 2D cheminė struktūra
Pav. 3. Arginino 3D struktūros vaizdavimas
Literatūros sąrašas
1. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/About/primer/molecularmod.html
2. C.S. Tsai “An Introduction to Compiutational Biochemistry”, 2002, A John Wiley & Sons, Inc.
3. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/About/primer/molecularmod.html
4. A. Fiser, A. Sali “Comparitive protein structure modeling”, Pels Family Center for
Biochemistry and Structural Biology The Rockefeller University
5. S.Vajda, I.A.Vakser, M.J.E. Sternberg, J. Janin “Modeling of Protein Interactions in Genomes”,
2002, PROTEINS: Structure, Function and Genetics 47: 444-446
6. . H. Garret C. M. Grisham. Biochemistry. Saunders College Publishing. NY. 1995.
7. Ovadi J, Srere PA.Macromolecular compartmentation and channeling. Int Rev Cytol.
2000;192. p. 255-80.
8. V. Mildažienė, J. Kadziauskas, R. Jaugelavičius, V. Laurinavičius, Z. Naučienė, D.
Bironaitė. Struktūrinė Biochemija. VDU 1999..
NH2 CNH
NH
(CH2)2 CH2 CHNH2
COOH