laboratorio 1 para scrib

MICROBILOGÍA SANITARIA I UNI FIA 2015-1

CALIBRACIÓN DEL MICRÓMETRO OCULAR – MEDICIÓN DE MICROORGANISMOS

I. OBJETIVOS

Reconocimiento del equipo: micrómetro de ocular, micrómetro de platina y, microscopio.

Calibrar el micrómetro de ocular y el de platina de forma eficiente, en el menor tiempo posible y con el menor error.

Hallar los valores de calibración con los diferentes aumentos 10X, 43X. Medir microorganismos con la ayuda del micrómetro de ocular. Calcular el error en las mediciones y en las calibraciones.

II.FUNDAMENTO TEÓRICO

MICROMETRO DE OCULAR

Consiste en un disco de vidrio transparente en el cual se encuentra graduada una reglilla de 10 [mm] de longitud, dividida en 100 partes. Este disco graduado va inserto en el ocular del microscopio. Se utiliza para medir el tamaño de los microorganismos susceptibles de ser vistos por el microscopio óptico.

LABORATORIO N°1: CALIBRACIÓN DEL MICRÓMETRO OCULAR – MEDICIÓN DE MICROORGANISMOS

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MICROMETRO DE OBJETIVO (O PLATINA)

Consiste en una lámina de vidrio que contiene en su centro un segmento de recta de 1 [mm] de longitud, dividido en 100 partes iguales de 10 micrones (μ) cada una. Se coloca en la platina del microscopio, y se utiliza para calibrar la reglilla ocular y el ocular de Whipple respecto al ocular y al objetivo que se utilice en el microscopio.

CALIBRACION MICROMETRO

La calibración de un micrómetro es una operación propia de un sistema de calidad. El micrómetro es un instrumento de medida para el control


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dimensional de elementos. Se trata de un instrumento de medida con unas buenas prestaciones metrológicas respecto a su coste. Conseguir resoluciones de centésimas en cualquier otra magnitud física (temperatura, presión, fuerza,…) requieren de inversiones mucho más elevadas. Esto es debido, fundamentalmente, a que la tecnología en la magnitud dimensional está más desarrollada que en las demás.La calibración de un micrómetro debe ser una operación planificada y sus resultados deben ser verificados conformes a un criterio de aceptación/rechazo preestablecido

Calibrar micrómetros es comparar la medida de un patrón de referencia trazable con la medida del mensurando. Al calibrar los micrómetros estamos aportando niveles de fiabilidad y seguridad en los procesos donde la medición resultante del uso del instrumento tenga lugar. Igualmente, al calibrar los micrómetros podremos generar los registros pertinentes para poder documentar un Sistema de Gestión de la Calidad y tomar las medidas oportunas para poder asegurar la calidad de los productos y servicios.

Calibración micrómetro de ocular

Consiste en determinar la distancia real en mm, a que equivale cada una de las divisiones del micrómetro ocular.

III. MATERIALES UTILIZADOS


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Reglilla ocularRegilla micrometrica


MICROSCOPIO N°7

LÁMPARA

MUESTRA DE ALGAS


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MICRÓMETRO DE PLATINA

MICRÓMETRO DE OCULAR

IV. PROCEDIMIENTO

a. Colocar el micrómetro de platina, en la platina.b. Colocar el micrómetro del ocular en el ocularc. Superponer el micrómetro de ocular sobre el micrómetro de platina para

determinar el N° de divisiones equivalentes de ambos micrómetros.


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d. - Calibración del micrómetro del ocularDeterminar cuántas divisiones del micrómetro del ocular y coinciden con las divisiones del micrómetro de platina x .Con los objetivos de 10X y 43XNombramos: X = división de platina ; Y = división del ocularSe calcula: y

e. - Medición de los microorganismosCon el micrómetro del ocular, se realiza la medida de microorganismos; objetivo de 10X y 43X.

V. RESULTADOS

SEMANA 1 CALIBRACIÓN

Para 10x

Dato x= 0.1mm

1 división de platina <> 7 divisiones de ocular

1X <> 7Y

Y <> 0.17mm

Y <> 0.01428mm

Y <> 14.28 μm

Para 43x

Dato x= 0.1mm

1 división de platina <> 25 divisiones de ocular


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1X <> 25Y

Y <> 0.125mm

Y <> 0.004mm

Y <> 4 μ m

SEMANA 2 MEDICIÓN DE MICROORGANISMOS

Para 10x

Y <> 14 μm

Largo = 3.5 divisiones de ocular = 3.5y = 49.98μm

Ancho = 1.5 divisiones de ocular = 1.5y = 21.42μm

Para 43x

Y <> 4 μ m

Largo = 12.5 divisiones de ocular = 12.5y = 50μm

Ancho = 5.5 divisiones de ocular = 5.5y = 22μm

Errores de medición

error .medición=[e(10 x )−e( 43 x )] x 100 %

e( 43 x )

error de mediciónLARGO=|49.98−48|

48∗100 %=4.125 %


7


error de mediciónANCHO=|21.42−22|

22∗100 %=2.63 %

Gráfica división del ocular vs medida (en micras)

0 50 100 150 200 250 3000

5

10

15

20

25MEDICIÓN DE MICROORGANISMOS

10x

43x

dimension real (µm)

divi

sion

es d

el o

cula

r

CUADRO DE DATOS


8

ancho largo ancho largo ancho largox=25y y=4µ

N°7 x=7y Y=14.28µ 1.5y=21.42 3.5y=49.98 5.5y=22 12y=48 2.63% 4.125%

microscopiocalibracion del micrometro ocular medicion de microorganismos

error de medicionobjetivo 10x objetivo 43x

objetivo 10x objetivo 43x



9

ancho largo ancho largo

y=4µ

ancho largo ancho largo ancho largoN°11 x=7y Y=14.28u x=31y y=3.22u 1y=14.28u 4y=57.12u 5y=16.1u 17y=54.7u 11.30% 4.17%

Obj 10x Obj 43x Largo Ancho Largo Ancho Largo Ancho3X<>20Y X<>27.5Y 5y= 1y= 20.5y= 4y<> 0.51% 3.14%Y=15 µm Y=3.64 µm 75 µm 15 µm 74.62 µm 14.56 µm

Obj 10x Obj 43x Largo Ancho Largo Ancho Largo Ancho

X<>8Y X<>26 Y 4.5y= 1.5y= 14.5y= 5y<> 0.76% 2.60%

Y=12.5 µm Y=3.85 µm 56.25µm 18.75 µm 55.825 µm 19.25µm

Obj. 10x Obj. 43x Ancho Largo Ancho Largo Largo Ancho1x < > 6y 1x < > 27Y 1.3y 4y 6y 17.8y 1.21% 2.41%

Y = 16.67um y = 3.7um 21.66um 66.68um 22.2um 65.86um

ancho largo ancho largo ancho largo

6x=6.5y

Y=0.0153846x=26.5y

y=0.0037735 1.5y=0.02307 5y=0.076923 6y=0.02264 20.5y=0.07735 0.56% 1.89%

Obj. 10x Obj. 43x Ancho Largo Ancho Largo Largo Ancho1x < > 6y 1x < > 27Y 1y 4.5y 4.5y 20y 1.37% 0.12%

Y = 16.67um y = 3.7um 16.67um 75.015um 16.65um 74um

ancho largo ancho largoN°9

ancho largo ancho largo2 1x < > 7y 1x < > 27y 1.5y 4y 6y 15y

y= 14.3 um y= 3.7 um 21.45um 57.2um 22.2um 55.5um


N° 01 1y=16.7um 5y=83.5um 4.5y=17.1um 22y=83.6um 2.340% 0.120%

ANCHO LARGO ANCHO LARGO


N° 6 1.26% 0.498%

N°7 x=7y Y=14.28µ 1.5y=21.42 3.5y=49.98 5.5y=22 12y=48 2.63% 4.125%

Error de medición

Error de medición

Error

Error de medición

6

MicroscopioCalibración del micrómetro del ocular

Medición objetivo 10x

medicion de microorganismos error de medicionobjetivo 10x objetivo 43x objetivo 10x objetivo 43x


MICROSCOPIOCalibración Medición

Obj. 10x Obj. 43x

microscopio objetivo 10x objetivo 43xerror de medicioncalibracion del micrometro ocular medicion de microorganismos



Medición objetivo 10x Medición objetivo 43x Error de medición

2

Microscopio

Calibración del micrómetro del ocular

Medición objetivo 10x Medición objetivo 43x

7

MICROSCOPIOCalibración

MediciónObj. 10x Obj. 43x

2

microscopiocalibracion del micrometro ocular



10

Obj 10x Obj 43x Largo Ancho Largo Ancho Largo Ancho1X<>6Y X<>27Y 5y= 1.5y= 23y= 6.7y<> 1.92% 0.84%Y= 16.67µm Y=3.7 µm 83.5µm 25 µm 85.1µm 24.79µm

Obj 10x Obj 45x Largo Ancho Largo Ancho Largo Ancho1X<>7Y 1X<>28Y 5y= 0.7y= 25y= 5y<> 22.20% 45%Y=14 µm Y=3.6 µm 70 µm 9.8 µm 90 µm 18 µm

ancho largo ancho largo ancho largoN°9 x=6y Y=16.6u x=27y y=3.70u 1y=16.6u 4.2y=69.72u 4.8y=17.76u 17.5y=64.75u 6.98% 7.67%

ancho largo ancho largo Largo Ancho2 1x < > 7y 1x < > 27y 1.5y 4y 6y 15y 2.970% 3.380%

y= 14.3 um y= 3.7 um 21.45um 57.2um 22.2um 55.5um


N° 01x=6y

Y=16.7umx=26y

y=3.8um1y=16.7um 5y=83.5um 4.5y=17.1um 22y=83.6um 2.340% 0.120%

ANCHO LARGO ANCHO LARGO ANCHO LARGOX=6y

y=16 µm

Largo Ancho Largo Ancho Largo Ancho

1X <> 8Y 1X<> 29Y

Y=12.5 u Y=3.4


N° 6x=6.428y

Y=15.557umx= 27.5y

y=3.636um1.5y =23.336um5y=77.785um6.5y=23.634um21.5y=78.174um 1.26% 0.498%

Obj 10x Obj 43x Largo Ancho Largo Ancho Largo Ancho7X<>45Y X<>27Y 4y= 1.5y= 17y= 6.5y<>

Y=15.556 µm Y=3.7 µm 62.223 µm 23.334 µm 62.9 µm 24 µm

error de medicion

MEDICIÓN DE MICROORGANISMOSERROR DE MEDICIÓN

OBJETIVO 10X OBJETIVO 43XOBJETIVO 10X OBJETIVO 43X

Error de medición

objetivo 10x objetivo 40xMICROSCOPIO

microscopiocalibracion del micrometro ocular medicion de microorganismos error de medicion

objetivo 10x objetivo 40x objetivo 10x objetivo 40x

MICROSCOPIOCALIBRACIÓN DEL MICRÓMETRO OCULAR

calibracion del micrometro ocular


medicion de microorganismos

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10

Error de mediciónMicroscopio

Calibración del micrómetro del ocular

Medición objetivo 10x Medición objetivo 45x





17y=62.9 µm 7.50% 1.72%

Nro De Microscopio

Calibración Medición (mm) ERROR DE MEDICIÓN (%)

10X 43X10X 43X

N°6 x=26.5y y=3.7µm 1y=16 µm 4Y=64 µm 4Y=14.8 µm

4.1 8.3




12 75 18.7 78.2 20.4

6 1.076% 2.775%

MicroscopioCalibración del micrómetro del

ocularMedición objetivo 10x Medición objetivo 43x

Error de medición(%)


VI. CONCLUSIONES

Para medir el tamaño de microorganismos lo hicimos por comparación de dimensiones (a cuantas divisiones del micrómetro de ocular equivale) posteriormente se determinan las dimensiones reales (en micras o milimetros) con la calibración echa anteriormente.

Se encontró errores de 4.125% Y 2.63% en el largo y ancho respectivamente, valores ligeramente mayores del recomendado debido a un error en la calibración.

Las algas filamentosas presentan hilillos que al ser observadas con el microscopio se ven segmentados lo que facilita su medición.

VII.RECOMENDACIONES

Tener cuidado en el manejo del microscopio, asegurarse de que el ocular y micrómetros estén limpios, de no ser así proceder con la limpieza.

Realizar varias veces la calibración con el microscopio elegido, en caso de obtenerse un error muy grande (>2%) en la medición del microorganismos se deberá iniciar de nuevo desde la calibración.

Se debe realizar la calibración de manera rápida debido a la escasez de micrómetros de platina del laboratorio.

VIII. CUESTIONARIO


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1. Señalar el tamaño relativo de los m.o.: bacterias, hongos, protozoarios, algas y virus.

BACTERIAS: Miden de 1 a 6 micras (aunque existen de mayor tamaño 40-50 micras)

HONGOS: Los hongos macroscópicos se miden en cm, en tanto que los microscópicos se miden en micras, sus tamaños van entre 2 y 200 micras.

PROTOZOARIOS: La mayoría de las especies tienen menos de 250 de longitud;μ pero Spirostomun (ciliado) crece hasta 3mm, y Porospora gigantea (esporozoo) hasta 16mm. Algunos solo tienen 2 ó 3 de longitud.μ

ALGAS: Su tamaño va desde unas micras hasta unos 100 mt de largo.

VIRUS: Su tamaño oscila entre los 24 nanómetros del virus de la fiebre aftosa a los 300 nanómetros de los poxvirus.

2. describa las principales características de bacterias, hongos, protozoarios, algas, virus, rotiferos y microorganismos.

Bacterias

*El primer nombre de una bacteria corresponde al género y el segundo l a especie.

* son organismos procariotas.

*Se caracterizan porque carecen de un núcleo con una membrana.

*Se clasifican por su forma en cocos, bacilos y espiroquetas, según la estructura de la pared celular.

*Son microorganismo unicelular, de forma diferente y hábitat variable.

*Las bacterias aeróbicas son las que necesitan oxigeno las anaeróbicas les resulta nocivo.

*Las bacterias son capaces de generar mutantes.

Hongos

*Son organismos uni o pluricelulares inmóviles con paredes celular-semejantes en cuanto a la composición química, espesor y estructura.

*Pueden crecer como células únicas.

*No poseen clorofila

*Están ampliamente difundidas en la naturaleza, especialmente sobre el suelo.


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*Interviene en el despoblamiento de la materia orgánica.

*Son útiles para la reproducción de antibióticos, de enzima.

Virus

*Entidad infecciosa microscópica que solo puede multiplicarse dentro de las células vivas de otros organismos.

*Infecta todos los tipos de organismos.

*Son considerados submicroscopicos.

*Los virus contiene ADN o ARN lo que les permite la reproducción.

* No tienen nutrición, ni reproducción y no lo hacen porque no tienen metabolismo.

Protozoarios

*Unicelulares, algunos coloniales , algunos con etapas de vida multicelulares.

*mayormente microscópicos

*todo tipo de simetría

*sin capas germinativas

*Eucariontes con orgánulos especializados

*De vida libe y todo tipo de simbiosis (mutualismo, comensalismo, parasitismo)

*digestión intracelular

*reproducción asexual (por fision, gemación, quistes). Sexual ( singamia, autogamia, etc)

Rotiferos

*El nombre rotíferos, que significa ‘portadores de ruedas’, proviene precisamente de ese aparato rotador.

*Son de las primeras formas de vida microscópicas que se estudiaron, y se les conocía como animálculos rueda. Oscilan entre 40 µm y 3mm y comprenden unas 1.500 especies.

*Los rotíferos son muy numerosos en todo el mundo y se encuentran principalmente en ecosistemas dulceacuícolas, como charcas o lagos de agua dulce, aunque también hay algunas especies marinas o terrestres.


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*Se alimentan de otros microorganismos y unas pocas especies son parásitas. *Los rotíferos presentan sexos separados, aunque los machos son escasos y salvo en condiciones adversas se desarrollan por partenogénesis.

*Clasificación científica: los rotíferos constituyen el filo Rotíferos (Rotifera), formado por 3 clases: Seisonáceos, Bdeloideos y Monogonontos.

3. ¿porque es importante conocer el tamaño de los m.o.? Explique

Para poder estudiarlo, básicamente como vas a estudiar y analizar algo que no puedes ver, ni conoces alguna característica. Ya de ahí, para conocer su morfología, como se mueve, que reacciones presenta ante estímulos físicos y químicos, también para conocer datos de su ecología, como la abundancia, como interactúa con otros organismos, etc.

A su vez, el tamaño de los microorganismos es importante para los filtros que los logran retener por medio del tamaño separándolos unos de otros, por medio de poros que permiten el paso.

4. Describa las aplicaciones prácticas referente a la informacion sobre la medicion de los microorganismos

a. proceso de filtración de tratamiento de agua

En general, se considera la filtración como el paso de un fluido a través de un medio poroso que retiene la materia que se encuentra en suspensión. En las principales instalaciones de filtración, los filtros sueles ser abiertos, mientras los filtros cerrados suelen utilizarse para instalaciones pequeñas (menor de 40m3/h).

En las instalaciones de filtración de las estaciones de tratamiento de agua, el medio poroso suele ser generalmente arena, arena + antracita o bien carbón activo en grano, y la materia en suspensión está constituida por flóculos o microflóculos procedentes de la etapa anterior de decantación o bien formados expresamente cuando se sigue el proceso conocido como "microfloculación sobre filtro" o filtración directa". Los filtros de estas instalaciones, generalmente son abiertos, con velocidades de filtración entre 6 y 15 m/h, empleándose los filtros cerrados a presión en instalaciones pequeñas (menores de 50 m3 /h).

El espesor de la capa de arena suele oscilar entre 0,7 y 1 m. y la talla efectiva entre 0.8 y 1mm con un coeficiente de uniformidad entre 1,5 y 1,7. En el caso de lechos bicapa, el espesor de arena es 1/3 del total y sobre ella una capa de antracita de 2/3 del espesor total y talla efectiva entre 1,2 y 2,5mm.


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Realmente, el espesor y granulometría depende de la velocidad de filtración, del tamaño y naturaleza de las partículas que van a ser retenidas y de la pérdida de carga disponible.

b. proceso de filtracion mediante membrana (tratamiento de agua)

La filtración con membranas es una técnica empleada para separar partículas de un líquido para purificarlo.

En la filtración con membranas, un disolvente atraviesa una membrana semipermeable. La permeabilidad de la membrana está determinada por el tamaño de los poros de la membrana y actúa como barrera para las partículas que son más grandes que los poros, mientras que el resto del disolvente puede pasar libremente a través de la membrana. El resultado es un fluido limpio y filtrado a un lado de la membrana, con la solución eliminada al otro.

Existen tres procesos de filtración con membranas:

Microfiltración [MF] - La MF es un proceso a baja presión [hasta 100 psi (7 bares)] para separar los solutos de mayor tamaño de las soluciones acuosas por medio de una membrana semipermeable. Este proceso se realiza a través de un caudal de solución del proceso que fluye a través de la superficie de una membrana a presión. Los solutos retenidos (como las partículas sólidas) saldrán del caudal del proceso y no se acumularán en la superficie de la membrana. Los poros oscilan entre 0,1 - 3 µm (micras).

Aplicaciones:

La aclaración de zumos oscuros, por ejemplo la clarificación de los zumos de vino y zumos oscuros, la MF sirve para separar los sólidos en suspensión del zumo para producir un zumo de turbidez baja al tiempo que permite el paso del color y el sabor.

Tratamiento de aguas residuales.

Ultrafiltración [UF] - La UF es un proceso a baja presión [hasta 150 psi (10 bares)] para separar los solutos de las soluciones acuosas por medio de una membrana semipermeable. La UF proporciona sobre todo una completa barrera contra las partículas más grandes que el tamaño del poro, bacterias y los abundantes y pequeños virus que normalmente se encuentran en el suministro de agua.


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La UF funciona con un mecanismo de eliminación en superficie parecido a un colador fino con un tamaño de los poros muy uniforme. Se rechaza cualquier partícula que sea más grande que el tamaño del poro. Esta característica hace que las membranas de UF sean ideales para cumplir los requisitos de calidad de una filtración absoluta.

Además, para una eliminación eficaz y un índice de eliminación absoluto, las membranas de UF tienden a ser más compactas, lo que permite una automatización más alta con funcionamiento sin atención y usar en menor medida productos químicos.

El tamaño del poro es aproximadamente de 0,02 µm (micras).

Aplicaciones:

Eliminación de contaminantes macrobióticos [rechazo de Cryptosporidium]

Pre-tratamiento de osmosis inversa [reducción de SDI y TOC (carbono orgánico total)]

Reducción de turbidez [coloides, proteínas, moléculas orgánicas grandes]

Tratamiento de aguas residuales.

Nanofiltración [NF] – la NF es un proceso de una alta presión de baja a moderada [hasta 450 psi (31 bares)]. El tamaño de los poros oscila entre la UF y la RO. Los poros de las membranas de NF no se han observado nunca al microscopio, pero el agua puede pasar a través de la membrana y las sales multivalentes y los orgánicos con bajo peso molecular son retenidos. Es difícil predecir el rendimiento de las membranas de NF ya que el rechazo de la membrana se ve influido por el tamaño, la estructura y la carga de los componentes de la solución. Como resultado, el pilotaje es altamente recomendado en aplicaciones con NF, incluso si está disponible un análisis detallado del agua del suministro.

Aplicaciones:

Ablandamiento del agua.

Reducción general de TDS (sólidos totales disueltos).

Color y TOC (carbono orgánico total).

Separación de materia orgánica de materia inorgánica (en especial, en aplicaciones alimentarias y de aguas residuales).


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c. proceso biologico de tratamiento de aguas residuales FILTRO PERCOLADOR, WETLAND

Plantas de filtros percoladores

El concepto del filtro percolador nació del uso de los filtros de contacto, que eran estanques impermeables rellenos con piedra machacada. En su funcionamiento, el lecho de contacto se llenaba con el agua residual desde la parte superior y se dejaba que se pusiese en contacto con el medio durante un corto período de tiempo. El lecho se vaciaba a continuación y se le permitía que reposase antes de que se repitiese el ciclo. Un ciclo típico exigía 12 horas de las cuales había 6 horas de reposo. Las limitaciones del filtro de contacto incluyen una posibilidad relativamente alta de obturaciones, el prolongado período de tiempo de reposos necesario, y la carga relativamente baja que podía utilizarse.

En el filtro percolador el agua residual es roseada sobre la piedra y se deja que se filtre a través del lecho, este filtro consiste en un lecho formado por un medio sumamente permeable al que los microorganismos se adhieren y a través del cual se filtra el agua residual. El tamaño de las piedras de que consta el medio filtrante está entre 2.5 – 10cm de diámetro, la profundidad de estas varía de acuerdo al diseño particular, generalmente de 0.9 – 2.4m con un promedio de profundidad de 1.8m. Ciertos filtros percoladores usan medios filtrantes plásticos con profundidades de 9 – 12m.

- Wetland

La importancia de los wetland ha variado con el tiempo. Los wetland son zonas de transición entre el medio ambiente terrestre y acuático y sirven como enlace dinámico entre los dos. El agua que se mueve arriba y abajo del gradiente de humedad, asimila una variedad de constituyentes químicos y físicos en solución, ya sea como detritus o sedimentos, estos a su vez se transforman y transportan a los alrededores del paisaje.

Los wetland proveen sumideros efectivos de nutrientes y sitios amortiguadores para contaminantes orgánicos e inorgánicos. Esta capacidad es el mecanismo detrás de los wetland artificiales, también denominados wetland, para simular un humedal natural con el propósito de tratar las aguas residuales de empresas y municipios.

La solución biotecnológica consiste en la instalación de wetland artificiales que actúan como filtros naturales. Ubicados entre la planta y los recursos acuáticos (ríos, lagos, lagunas), estos sistemas, además de no necesitar mantenimiento ni consumir energía eléctrica, cuestan menos que la cuarta parte de un sistema de tratamiento tradicional.


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*Las plantas pueden ser utilizadas como bombas extractoras de bajo costo para depurar aguas contaminadas.

*Algunos procesos degradativos ocurren en forma más rápida con plantas que con microorganismos.

*Es un método apropiado para descontaminar superficies grandes o para finalizar la descontaminación de áreas restringidas en plazos largos.

d. metodo de filtrado de membrana (determinacion de coliformes)

Consiste en determinar el número de coliformes totales, fecales y streptos fecales mediante la filtración de volúmenes determinados del agua a analizar, enfiltros de membrana, e incubación sobre medios de cultivo a temperaturas adecuadas.

El número de coliformes totales presentes en el agua se determina mediante la filtración de volúmenes específicos de la muestra a través de filtros de membrana. Por lo general, están compuestos de ésteres de celulosa, típicamente con poros de 0,45 mm de diámetro que retienen los coliformes totales y otras clases de bacterias presentes en la muestra. Después se incuban las membranas vueltas hacia arriba en un medio selectivo. En la práctica, la técnica de filtración de membrana ofrece resultados comparables a los que se obtienen con el método de tubos múltiples.

Una de las ventajas del método de filtración a través de membrana es la prontitud con que pueden obtenerse los resultados y, en consecuencia, se pueden llevar a cabo rápidamente acciones correctivas y operar en la planta de agua de nuevo en forma normal. Esta técnica puede aplicarse en el análisis de casi todos los tipos de agua, tambien se utiliza en el análisis de leche y otros alimentos líquidos.


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IX. BIBLIOGRAFÍA

1. http://www.buenastareas.com/ensayos/Medici%C3%B3n-De-Microorganismos-Calibraci%C3%B3n-Del/4041625.html

2. http://www.leica-microsystems.com/fileadmin/downloads/Leica%20S6/User%20Manuals/Leica_Measuring_Manual_ES.pdf

3. http://es.algenfrei.com/es/algas-cloroficeas-algas-filamentosas-en-el-agua.html

4. http://www.mailxmail.com/curso-microscopio/partes-microscopio-optico


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laboratorio 1 para scrib

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