Hội thảo Quốc gia về Khoa học Cây trồng lần thứ nhất

441

NGHIÊN CỨU CHỌN TẠO CÁC GIỐNG ĐẬU TƯƠNG BIẾN ĐỔI GEN KHÁNG RUỒI ĐỤC THÂN VÀ SÂU ĐỤC QUẢ

Trần Thị Cúc Hòa, Nguyễn Trần Hải Bằng, Trần Thanh Hải, Hồ Thị Huỳnh Như, Hà Minh Luân, Nguyễn Quang Vinh,

Trần Như Ngọc, Võ Thị Kiều Trang, Đoàn Thị Mến, Phạm Thị Hường và Nguyễn Đức Cương

Viện Lúa đồng bằng sông Cửu Long

SUMMARY

Studies on development of transgenic soybean varieties resistant to the lesser cornstalk borer and the pod borer

The lesser cornstalk borer (Elasmopalpus lignosellus) and pod borer (Etiella zinckenella) are insect pests causing severe damage to soybean, therefore the application of genetic transformation to develop transgenic soybean lines highly tolerant to these pests are needed. This study was undertaken to transfer the insect resistant genes, soycry1Ac from the vector pPTN791 and vip3A from the vector pHOA210 into the variety Williams 82. As a result, T2 transgenic soybean lines carrying the gene soycry1Ac or vip3A were developed and confirmed by the Southern blot analysis. ELISA analysis of T2 lines carring soycry1Ac showed the significant expression of the protein Cry1Ac ranging from 325.03 to 677.83 ng/g of green leaves. The insect resistant test in the net house under natural conditions showed that some transgenic lines having a very low infestation of the pod borer, as lowest as 7.98% compared to the check variety of 66.51%. To increase the materials for developing transgenic soybean lines resistant to the lesser cornstalk borer and pod borer, new vectors carrying the genes- cry2Aa, cry4A, cry2Aa+ soycry1Ac, cry4A+ soycry1Ac were constructed to continue transform into the soybean plants.

Keywords: Agrobacterium, genetic transformation, insect resistance, lesser cornstalk borer, soybean pod borer.

I. ĐẶT VẤN ĐỀ**

Sản lượng đậu tương nước ta hiện không đáp ứng đủ nhu cầu trong nước, hàng năm phải nhập khẩu số lượng lớn khô dầu đậu tương. Để tăng sản lượng đậu tương, tăng năng suất là giải pháp quan trọng và rất cấp thiết vì hiện nay năng suất đậu tương ở nước ta rất thấp, chỉ đạt 1,5 tấn/ha (Tổng cục Thống kê/website) so với năng suất bình quân thế giới 2,5 tấn/ha (FAOSTAT, 2011). Sâu hại là yếu tố quan trọng nhất hạn chế năng suất đậu tương. Tại Việt Nam, các sâu hại chính đậu tương gồm ruồi đục thân (Elasmopalpus lignosellus), sâu đục quả (Etiella zinckenella), sâu xanh da láng (Spodoptera exigua). Tỷ lệ cây đậu tương bị ruồi đục thân hại rất biến động, phụ thuộc vào mùa vụ, có thể từ vài phần trăm trong vụ Hè tới trên 70% trong vụ Đông, sâu đục quả gây giảm từ vài phần trăm đến 27,4 - 31% năng suất đậu tương. Các loài sâu hại chính như ruồi

Người phản biện: TS. Trần Ngọc Thạch.

đục thân, sâu đục quả, sâu khoang, sâu cuốn lá, rệp muội xanh có thể làm giảm năng suất đậu tương tới 74,3 - 81,2% (Lương Minh Khôi và Phạm Thị Vượng, 1989).

Trên thế giới, đậu tương biến đổi gen chiếm diện tích lớn nhất, với 80 triệu ha trong tổng diện tích 170,3 triệu cây trồng biến đổi gen trong năm 2012 (ISAAA, 2012). Việc nhập các giống đậu tương biến đổi gen kháng sâu từ nước ngoài vào Việt Nam bị lệ thuộc vào các công ty nước ngoài cũng như các rào cản về sở hữu trí tuệ. Vì vậy, cần có các nỗ lực trong nước để tự tạo giống đậu tương biến đổi gen kháng các được các sâu hại chính.

Từ yêu cầu nêu trên, Viện Lúa đồng bằng sông Cửu Long đã thực hiện đề tài cấp Nhà nước “Nghiên cứu chọn tạo các giống đậu tương biến đổi gen kháng ruồi đục thân và sâu đục quả”.

Mục tiêu của đề tài nhằm tạo ra giống đậu tương biến đổi gen mang gen kháng ruồi đục thân và sâu đục quả, có năng suất và chất lượng cao.

VIỆN KHOA HỌC NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM

II. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

2.1. Vật liệu

Giống đậu tương dùng cho chuyển nạp là Williams 82, đây là giống nhập nội được dùng phổ biến để chuyển nạp gen ở đậu tương trên thế giới. Các vector mang gen kháng sâu dùng chuyển nạp gen gồm:

- Vector pTN791 mang gen kháng sâu soycry1Ac và gen đánh dấu chọn lọc kháng thuốc diệt cỏ bar, mỗi gen nằm trên một T-DNA (hình 1).

- Vector pHOA210 (pPTN-vip3A) mang gen kháng sâu vip3A và gen đánh dấu chọn lọc bar, mỗi gen nằm trên một T-DNA (hình 1).

Hình 1. Vector pPTN791 mang gen soycry1Ac và vector pHOA210 mang gen vip3A

2.2. Phương pháp nghiên cứu

2.2.1. Thiết kế vector

Việc thiết kế gen kháng sâu dùng cho biến nạp cây đậu tương được tiến hành trên cơ sở của vector kép pUB14 mang 2 T-DNA trong đó một T-DNA mang gen bar được điều khiển bởi promoter 2X35S và terminator Tvsp. Cloning gen hữu dụng vào T-DNA thứ hai.. Các promoter và gen kháng sâu sẽ được thay thế trên vector này bằng các enzyme cắt giới hạn tương ứng.

2.2.2. Chuyển nạp gen

Quy trình chuyển nạp gen vào đậu tương bằng phương pháp Agrobacterium tumefaciens được thực hiện theo quy trình của Olhoft và ctv. (2003), Zeng và ctv. (2004) và Trần Thị Cúc Hòa (2008). Phương pháp lây nhiễm được cải tiến bằng cách dùng dao đặt vuông góc với trụ hạ diệp tạo 7 - 10 vết thương tại mặt trong của nốt lá mầm ngay trong dung dịch lây nhiễm có chứa vi khuẩn A. tumefaciens. Chuyển 50 mẫu tử diệp đã được gây vết thương vào 50ml môi trường lây nhiễm lỏng mới có chứa vi khuẩn A. tumefaciens. Mẫu được ủ ở nhiệt độ phòng thời gian 30 phút, lắc 50 - 70 vòng/phút. Mẫu được lây nhiễm ở 25oC thời gian 5 ngày (Trần Thị Cúc Hòa, 2008). Phương pháp trích DNA cơ bản dựa theo phương pháp của Dellaporta và ctv. (1983), phân tích

PCR, phân tích Southern blot theo quy trình của Southern (1975), phân tích ELISA: Nồng độ protein Cry1Ac của các dòng đậu nành biến đổi gen được đánh giá (định lượng) bằng phương pháp Sandwich ELISA sử dụng bộ kít Cry1Ac Quantiplate® kit (Envirologix, Portland, OR, USA). Đánh giá tính kháng sâu trong điều kiện tự nhiên (hoàn toàn không phun thuốc trừ sâu) trong nhà lưới.

III. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN

3.1. Thiết kế vector mới

Trên cơ sở plasmid pUB14 và tổng hợp hai gen cry2Aa và cry4A, bốn vector mới đã được thiết kế (hình 2) chuyển nạp tạo giống đậu tương ruồi đục thân và sâu đục quả, gồm:

(1) Vector pHOA40 (14.360 bp) chứa hai T-DNA, một T-DNA mang gen đánh dấu 2X35S-bar-Tvsp, một T-DNA mang gen kháng ruồi đục thân, E35S-cry4A-Tvsp.

(2) Vector pHOA60 (12.719 bp) chứa hai T-DNA, một T-DNA mang gen đánh dấu 2X35S-bar-Tvsp, một T-DNA mang gen kháng ruồi đục thân, E35S-cry2Aa-Tvsp.

(3) Vector pHOA100 (16.273 bp) chứa hai T-DNA, một T-DNA mang gen đánh dấu 2X35S-bar-Tvsp, một T-DNA mang hai gen kháng sâu, E35S-soycry1ac + 2A-cry4Aa-Tvsp.

442

Hội thảo Quốc gia về Khoa học Cây trồng lần thứ nhất

(4) Vector pHOA130 (14.632 bp) chứa 2 T-DNA, một T-DNA mang gen đánh dấu 2X35S-bar-Tvsp, một T-DNA mang hai gen

kháng sâu, E35S-soycry1ac + 2A-cry2Aa-Tvsp. Hình 2 trình bày sơ đồ của một vector mới, pHOA130.

Hình 2. Sơ đồ của 4 vector mới được thiết kế

3.2. Tạo dòng biến đổi gen kháng ruồi đục thân và sâu đục quả

3.2.1. Kết quả tạo dòng đậu tương mang gen soycry1Ac

Tạo dòng T0: Vector pPTN791 mang gen soycry1Ac và gen bar và được chuyển nạp vào giống

William 82. Bốn thí nghiệm được thực hiện với tổng số 800 mẫu lây nhiễm, kết quả thu được 4 dòng tái sinh T0. Các dòng tái sinh được phân tích Southern blot (hình 3) để xác định là dòng biến đổi gen mang gen soycry1Ac. Kết quả phân tích Southern blot xác định 3 dòng T0 mang gen soycry1Ac và gen bar. Tuy nhiên chỉ có 2 dòng mang gen soycry1Ac cho thấy tỷ lệ đồng chuyển nạp là 66,66%.

Hình 3. Phân tích Southern blot các dòng đậu tương T0 giống Williams 82 chuyển nạp gen soycry1Ac.

DNA được cắt đoạn bằng HindIII và SacI. Màng được lai với DNA có mang gen soycry1Ac. Phương pháp đánh dấu DIG. Mũi tên chỉ chiều dài 2985 bp mang gen soycry1Ac.

(-): đối chứng (không biến đổi gen) ; (+): pPTN791 plasmid DNA.

443

VIỆN KHOA HỌC NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM

Tạo dòng T1: Hạt dòng T0 (mang gen soycry1Ac và gen bar) được trồng để cho ra dòng T1. Khả năng mang gen của các dòng T1 gồm: mang cả hai gen soycry1Ac và bar; chỉ mang gen bar, chỉ mang gen soycry1Ac, không mang hai gen soycry1Ac và bar. Hình 4 cho

thấy qua phân tích Southern blot đối với gen soycry1Ac của 9 dòng T1 phát triển từ dòng T0- HCW4-1 cho thấy 7 dòng có gen soycry1Ac (hiện diện của băng 2.985 bp của gen soycry1Ac), 2 dòng không có soycry1Ac (không có băng 2.985 bp).

Hình 4. Phân tích Southern blot các dòng đậu tương T1 giống Williams 82 chuyển nạp gen soycry1Ac

(pPTN791) phát triển từ T0 - HCW4-1. DNA được cắt đoạn bằng HindIII và SacI. Màng được lai với DNA có mang gen soycry1Ac. Phương pháp đánh dấu DIG. Mũi tên chỉ chiều dài 2985 bp của gen soycry1Ac

-: đối chứng (không biến đổi gen); +: pPTN791 plasmid DNA

Kết quả của dòng đậu tương cho phản ứng kháng hoặc nhiễm khi lá được phết thuốc trừ cỏ Liberty cung cấp thông tin sơ khởi dòng đậu tương đó có mang gen bar hay không.

Kết quả phân tích Southern blot 21 dòng T1 phát triển từ 2 dòng T0 (HCW3-2, HCW4-1) đối với gen bar và gen soycry1Ac (bảng 1) ghi nhận 13 dòng mang cả hai gen soycry1Ac và

gen bar, 3 dòng chỉ mang gen soycry1Ac, 5 dòng không mang gen soycry1Ac và gen bar. Kết quả này cho thấy ở thế hệ T1 đã có sự phân ly gen bar khỏi gen soycry1Ac, tạo điều kiện chọn dòng chuyển gen chỉ mang gen soycry1Ac mà không mang gen chọn lọc bar, đây là ưu điểm của chuyển gen bằng vector kép chứa hai T-DNA.

Bảng 1. Phân tích Southern blot các dòng T1 chuyển nạp gen với vector pPTN791 mang gen bar và gen soycry1Ac vào giống Williams 82

Kết quả phân tích Southern blot (số dòng T1)

TT

Dòng T0

mang gen

bar và soycry1Ac

Số

dòng

T1

Kết quả phết

Liberty

(K/N)

Có gen bar và soycry1Ac

Có gen soycry1Ac

Có gen bar Không có gen bar

và soycry1Ac

1 HCW3-2 12 7/5 7 2 0 3

2 HCW4-1 9 6/3 6 1 0 2

Tổng 21 13 3 0 5

Ghi chú: K/N: Số dòng kháng Liberty/số dòng nhiễm Liberty (thuốc diệt cỏ).

Tạo dòng T2: Tổng số 34 dòng T2 phát triển từ 3 dòng T1 HCW3-2-12, HCW3-2-8 và HCW4-1-8 được phân tích Southern blot. Hình 5 cho thấy qua phân tích Southern blot đối với gen soycry1Ac của 9 dòng T2 phát triển từ dòng T1 HCW3-2-12 có 7 dòng mang gen soycry1Ac, 2 dòng không

mang gen nào (soycry1Ac và bar). Kết quả phân tích Southern blot của 34 dòng T2 đối với gen soycry1Ac và gen bar ghi nhận (bảng 2) 10 dòng mang cả hai gen soycry1Ac và bar, 19 dòng mang gen soycry1Ac và 5 dòng không mang gen soycry1Ac và bar.

444

Hội thảo Quốc gia về Khoa học Cây trồng lần thứ nhất

Hình 5. Phân tích Southern blot các dòng đậu tương T2 giống Williams 82 phát triển từ dòng T1 (HCW 3-2-12) chuyển nạp gen soycry1Ac

Mũi tên chỉ chiều dài 2.985bp của gen soycry1Ac. (-): đối chứng (không biến đổi gen).

(+): pPTN 791 plasmid DNA, K: Kháng Liberty, N: Nhiễm Liberty

Bảng 2. Phân tích Southern blot các dòng T2 chuyển nạp gen với vector pPTN791 mang gen bar và gen soycry1Ac vào giống Williams 82

Kết quả phân tích Southern blot (số dòng T2)

TT

Dòng T1

mang gen

bar và soycry1Ac

Số

dòng

T2

Kết quả phết Liberty

(K/N) Có gen bar và

soycry1Ac Có gen

soycry1Ac Có gen bar

Không có gen bar và soycry1Ac

1 HCW3-2-12 9 0/9 0 7 0 2

2 HCW3-2-8 12 10/2 10 0 0 2

3 HCW4-1-8 13 0/13 0 12 0 1

Tổng 34 10 19 0 5

3.2.2. Kết quả tạo dòng đậu tương mang gen vip3A

Tạo dòng T0: Vector pHOA210 mang gen vip3A và gen bar và được chuyển nạp vào giống Williams 82 với 12 thí nghiệm trên tổng số 2.400

mẫu lây nhiễm. Kết quả thu được 15 dòng tái sinh T0. Các dòng tái sinh được phân tích Southern blot (hình 6) để xác định là dòng biến đổi gen mang gen vip3A.

Kết quả phân tích Southern blot xác định 7 dòng T0 mang gen vip3A và gen bar.

Hình 6. Phân tích Southern blot các dòng đậu tương T0 giống Williams 82 chuyển nạp gen vip3A.

DNA được cắt đoạn bởi EcoRI. Màng được lai với DNA có mang gen vip3A. Phương pháp đánh dấu DIG. Mũi tên chỉ chiều dài 1,8kb mang gen vip3A.

(-): đối chứng (không biến đổi gen) ; (+): pPTN-Vip3A plasmid DNA.

445

VIỆN KHOA HỌC NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM

Tạo dòng T1: Từ 7 dòng T0 mang gen vip3A và gen bar đã phát triển 39 dòng T1 để phân tích Southern blot. Hình 7 cho thấy kết quả phân tích Southern blot của 13 dòng T1 phát triển từ dòng T0- HVW5-8 có 10 dòng mang gen vip3A, 3

dòng không mang gen vip3A (tên dòng nằm trong khung hình 7). Kết quả phân tích Southern blot đối với gen vip3A của 17 dòng T1 phát triển từ 5 dòng T0đ.ã ghi nhận 14 dòng mang gen vip3A (bảng 3).

Hình 7. Phân tích Southern blot các dòng đậu tương T1 giống Williams 82 chuyển nạp gen vip3A.

DNA được cắt đoạn bởi EcoRI. Mũi tên chỉ chiều dài 1,8 kb của gen vip3A (-): đối chứng (không biến đổi gen) (+): pHOA (pPTN-Vip3A) plasmid DNA, K: Kháng Liberty, N: Nhiễm Liberty

Bảng 3. Phân tích Southern blot các dòng T1 chuyển nạp gen với vector pH OA210 mang gen bar và gen vip3A vào giống Williams 82.

Kết quả phân tích Southern blot* (số dòngT1)

TT

Dòng T0

mang gen

bar và soycry1Ac

Số

dòng

T1

Kết quả phết

Liberty

(K/N) Có gen soycry1Ac

1 HVW4-4 1 0/1 1

2 HVW6-1 1 0/1 1

3 HVW5-2 1 1/0 1

4 HVW5-8 13 9/4 10

5 HVW5-6 1 0/1 1

Tổng 17 14

Ghi chú: *: Chưa phân tích gen bar.

Trong nghiên cứu này bước đầu chúng tôi chọn một số dòng/cây T1 nhiễm Liberty để phân tích Southern blot trước nhằm tìm ra dòng biến đổi gen không mang gen bar nhưng có mang gen kháng sâu soycry1Ac tức loại gen đánh dấu (marker gene) ra khỏi dòng biến đổi gen, đây là hướng khắc phục sự lo ngại về tính an toàn của cây biến đổi gen do gen đánh dấu chọn lọc gây ra.

Tạo dòng T2: Tổng số 19 dòng T2 phát triển từ 2 dòng T1 (HVW5-8-1, HVW5-2-2) được phân tích Southern blot. Hình 8 cho thấy kết quả phân tích Southern blot đối với gen vip3A của 6 dòng T2 phát triển từ dòng T1 HVW5-2-2 có 5 dòng mang gen vip3A, 1 dòng không mang gen vip3A và bar (tên dòng nằm trong khung). Phân tích Southern blot 19 dòng T2 đối với gen vip3A và gen bar ghi nhận (bảng 4) có 15 dòng mang gen vip3A và 5 dòng không có gen vip3A và gen bar.

446

Hội thảo Quốc gia về Khoa học Cây trồng lần thứ nhất

Hình 8. Phân tích Southern blot các dòng đậu tương T2 giống Williams 82 phát triển từ dòng (HVW5-2-2) chuyển nạp gen vip3A

DNA được cắt đoạn bởi EcoRI. Mũi tên chỉ chiều dài 1,8 kb của gen vip3A (-): đối chứng (không biến đổi gen) (+): pHOA (pPTN-Vip3A) plasmid DNA, K: Kháng Liberty, N: Nhiễm Liberty

Bảng 4. Phân tích Southern blot các dòng T1 chuyển nạp gen với vector pHOA210 mang gen bar và gen vip3A vào giống Williams 82

Kết quả phân tích Southern blot* (số dòng T1)

TT

Dòng T1

mang gen

bar và soycry1Ac

Số

dòng

T2

Kết quả phết Liberty

(K/N) Có gen bar

và soycry1Ac Có gen

soycry1Ac Có gen bar

Không có gen bar và soycry1Ac

1 HVW5-8-1 13 0/13 0 10 0 3

2 HVW5-2-2 6 6/0 0 5 0 1

Tổng 19 0 15 0 4

3.3. Kết quả phân tích ELISA các dòng đậu tương mang gen soycry1Ac

Phân tích ELISA các dòng T2 mang gen soycry1Ac cho thấy có sự biểu hiện đáng kể của protein Cry1Ac (hình 9). Phân tích định lượng hàm lượng protein Cry1Ac, số liệu ghi nhận như

sau: Trong tổng số 25 dòng được phân tích, có 19 dòng có hàm lượng protein được xác định. Hàm lượng protein Cry1Ac các dòng biến đổi gen dao động từ 325,03 đến 677,83 ng/g lá tươi. Dòng có hàm lượng protein Cry1Ac cao nhất là dòng T2 HCW3-2-3-1 (bảng 5).

Hình 9. Kết quả phân tích ELISA các dòng đậu tương mang gen soycry1Ac (A)

Các giếng ELISA của cây chuyển gen đổi sang màu xanh sau khi thêm substrate (B) Giếng ELISA của cây chuyển gen đổi sang màu vàng sau khi thêm HCl 1N. Các giếng trong khung là đối chứng theo thứ tự từ trên

xuống gồm 1 giếng trống (blank), 1 giếng đối chứng dương (antibody), 2 giếng đối chứng cây không chuyển gen.

447

VIỆN KHOA HỌC NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM

Bảng 5. Hàm lượng protein cry1Ac (ng/g lá tươi) trên lá của các dòng đậu tương chuyển gen mang gen soycry1Ac

TT Dòng đậu tương Hàm lượng

protein TT Dòng đậu tương

Hàm lượng protein

1 T3HCW4-1-6-11-1 372,25 11 T3HCW4-1-2-20-3 527,82

2 T3HCW4-1-2-6-2 500,04 12 T3HCW4-1-2-20-4 608,38

3 T2HCW3-2-2-1 325,03 13 T3HCW4-1-6-1-7 552,82

4 T2HCW3-2-2-2 558,38 14 T3HCW4-1-6--1-8 475,04

5 T2HCW3-2-2-3 455,59 15 T3HCW4-1-1-21-4 655,61

6 T2HCW3-2-3-1 677,83 16 T3HCW4-1-5-9-1 419,48

7 T2HCW3-2-3-3 663,94 17 T3HCW4-1-5-9-2 466,70

8 T2HCW3-2-1-3 608,38 18 T3HCW4-1-3-14-1 575,05

9 T2HCW3-2-1-4 658,39 19 T3HCW4-1-3-14-2 625,05

10 T2HCW3-2-1-2 641,72

3.4. Thử nghiệm tính kháng sâu đục quả của các dòng đậu tương biến đổi gen

Thời gian tiến hành thí nghiệm từ ngày 12/12/2012 đến ngày thu hoạch đậu 13/03/2013. Ghi nhận kết quả kháng sâu đục trái của 20 dòng biến đổi gen T2 và T3 chuyển nạp với vector pHOA210 mang gen vip3A vào giống Williams 82 được trồng trong điều kiện tự nhiên (nhà lưới Viện Lúa ĐBSCL) như sau:

Tỷ lệ bị sâu đục quả của các dòng biến đổi gen dao động từ 7,8 - 61,39% so với đối chứng Williams 82 là 66,51% (hình 10). Dòng T3 HVW4-1-7-12 có tỷ lệ bị sâu đục quả thấp nhất (7,8%). Các dòng có tỷ lệ sâu đục quả tương đối thấp so với đối chứng dao động từ 16,77 - 19,42% gồm: T3HVW4-1-17-17, T2HVW5-6-2, T2HVW5-8-5. Đây là các dòng kháng sâu triển vọng. Hình 11 cho thấy sự khác biệt về mức độ sâu hại trên quả của dòng đậu tương biến đổi gen T2 HVW5-2-1 so với giống đối chứng không chuyển gen Williams 82.

Hình 10. Biểu đồ tỷ lệ sâu đục quả các dòng đậu tương biến đổi gen mang gen vip3A (pHOA 210) trồng tại nhà lưới Bộ môn Công nghệ sinh học, Viện Lúa ĐBSCL

Ngày thu hoạch: 13/03/2013

448

Hội thảo Quốc gia về Khoa học Cây trồng lần thứ nhất

IV. KẾT LUẬN

Nghiên cứu chọn tạo giống đậu tương kháng ruồi đục thân và sâu đục quả đã thu được các kết quả:

- Đã thiết kết 4 vector mới mang gen kháng sâu cry2Aa, cry4A, cry2Aa+soycry1Ac, cry4A+soycry1Ac.

- Đã tạo được các dòng biến đổi gen từ giống Williams đến thế hệ T2 được xác định qua phân tích Southern blot mang gen soycry1Ac hoặc vip3A. Phân tích ELISA các dòng T2 mang gen soycry1Ac ghi nhận sự biểu hiện đáng kể của protein Cry1Ac. Thí nghiệm tính kháng sâu đục quả của các dòng T2, T3 mang gen vip3A trong điều kiện tự nhiên trồng trong nhà lưới cho thấy một số dòng biến đổi gen có tỷ lệ sâu hại rất thấp so với giống đối chứng không biến đổi gen.

TÀI LIỆU THAM KHẢO

1. Dellaporta SL, Wood J and Hicks JB (1983). A plant DNAminipreparation: Version II. Plant Mol. Biol. Rep. 4:19 - 21.

2. FAOSTAT(2011). http://faostat.fao.org/site/567/DesktopDefault.aspx?PageID=567#ancor

3. ISAAA (2012). Report on Global Status of Biotech/GM Crops.

4. www.isaaa.org/resources/publications/briefs/44/pptslides/Brief44slides.pd

5. Olhoft PM, Flagel LE, Donovan CM and Somers DA (2003). Efficient soybean transformation using hygromycine B selection in the cotylendonary-node method. Planta 216: 723 - 735.

6. Southern E M (1975). J. Mol. Biol. 98, 503 - 517.

7. Trần Thị Cúc Hoà (2008). Tối ưu hóa quy trình chuyển nạp gen đậu tương bằng cải tiến phương pháp lây nhiễm với Agrobacterium tumefaciens. Tạp chí Khoa học - Công nghệ của Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn. 9: 8 - 11.

8. Tổng cục Thống kê: http://www.gso.gov.vn/default.aspx?tabid=230&ItemID=9997.

9. Zeng P, Vadnais D, Zhang Z andPolacco J (2004). Refined glufosinate selection in Agrobacterium-mediated transformation of soybean [Glycine max (L.) Merr.]. Plant Cell Rep 22:478 - 482.

449