separación de inmunoglobulinas (1)
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InmunologInmunolog íía a ClClíínicanica
T.P.NT.P.Nºº44
20092009
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““ SeparaciSeparaci óón n de de
InmunoglobulinasInmunoglobulinas ””
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SeparaciSeparaci óón de Inmunoglobulinasn de Inmunoglobulinas
• Métodos basados en la diferencia de solubilidad
• Métodos basados en el tamaño molecular
• Métodos basados en la carga eléctrica
• Métodos basados en especificidad de ligandos
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*Cromato*Cromatografgrafíía de a de afinidadafinidad*Western *Western
blotblot*RIA, *RIA,
ELISA, ELISA, IFIF
*Electroforesis: *Electroforesis: de zona; de de zona; de
disco; enfoque disco; enfoque isoelisoelééctricoctrico
*Cromatograf*Cromatograf íía a de intercambio de intercambio
iióóniconico
*Di*Di áálisis (con lisis (con membrana membrana
semipermeable)semipermeable)*Filtraci*Filtraci óón en n en
gelesgeles*Ultracentrifuga*Ultracentrifuga
cicióónn*Electroforesis *Electroforesis
en gel en gel SDSSDS--PAGEPAGE
*Precipitaci*Precipitaci óón n isoelisoelééctricactrica
** SaltingSalting in y in y saltingsalting outout
*Fraccionamien*Fraccionamiento del solventeto del solvente*Temperatura*Temperatura
EspecificiEspecificidad de dad de uniunióónn
CargaCargaTamaTamaññooSolubilidadSolubilidad
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MMéétodos basados en la todos basados en la diferencia de solubilidaddiferencia de solubilidad
• Precipitación isoeléctrica
Gel de poliacrilamida (PAGE) con gradiente de pH .
Proteínas migran hastala zona del gel dondepH=pI de la proteína
Prot A pI=6Prot B pI=7
+ +pH 2(ácido)
+
-pH 10(básico)
GRADIENTE DE pH
A B
0 +
+
-
A B0
0
+
-
pH 6
pH 7
A
B
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• Fraccionamiento salino
H2O
H2O
H2O
H2O
Prot. B:+ polar, hidrofílica
H2O
H2O
Prot. A:+ apolar, hidrofóbica
+ sal (NaCl) (poca)
H2O
H2ONa
Cl
Na
Cl
INSOLUBLE SOLUBLE
sobrenadanteProt. B
precipitadoProt. A
Se usa mucho en los primeros pasosde la purificación de proteínas.
Deshidratación � precipitación deproteínas (salting-out).
Sales: Sulfato amónico (NH4)2SO4
Cloruro sódico NaCl
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MMéétodos basados todos basados en el tamaen el tama ñño molecularo molecular
• Diálisis y ultracentrifugación
Membrana semipermeable (poros)moléculas < poro � fueramoléculas > poro � dentro
Desalar muestras por diferencia de presión osmótica dentro y fuera del saco de diálisis.
sal � fuera (< poro)proteínas � dentro (> poro)
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• Centrifugación en gradiente de densidad
Se basa en la separación de las partículas en función de su densidad de flotación.
Muestra + sacarosa o de cloruro de cesio. Al centrifugar cada componente se desplazará hacia arriba o hacia abajo hasta que alcance una posición en la que su densidad sea igual a la de su entorno (situación de flotabilidad neutra).
Como consecuencia se producirán una serie de bandas discretas, las más próximas al fondo del tubo contendrán las
partículas con mayor densidad de flotación.
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• Cromatografía de exclusión molecular
Moléculas GRANDES ���� RÁPIDASAvanzan con mayor velocidad a través de los espacios intersticiales
Moléculas PEQUEÑAS ���� LENTASSon retenidas por las fibras de las micropartículas y avanzan con menosvelocidad
1 2 4 5 6 7 8 93
respuesta del detector
fracción
PERFIL DE ELUCIÓN
grandepequeña
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MMéétodos basados todos basados en la carga elen la carga el ééctricactrica
• Electroforéticos
• Migración de partículas coloidales en el seno de un campo eléctrico
Se mueven las partículas en base a:– Su carga neta– Tamaño– Estructura tridimensional
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Las tLas t éécnicas electroforcnicas electrofor ééticas ticas son utilizadas para:son utilizadas para:
•• Separaciones efectivasSeparaciones efectivas– Ácidos nucleicos– Proteínas– Otras biomoléculas•• Control de purezaControl de pureza•• Separar mezclas complejasSeparar mezclas complejas•• DeterminarDeterminar– El PM de una proteína– pI– Número de cadenas polipeptídicas de una
proteína
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AplicacionesAplicaciones
Electroforesis de proteínas en:
• suero (proteinograma),• orina (uroproteinograma),
• y otros fluidos biológicos: LCR, líquido sinovial
Electroforesis de isoenzimas: LDH, CK
Electroforesis de lipoproteínas (lipidograma)
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Las Las biomacromolbiomacromol ééculasculas : :
– pH del medio– La interacción con otras pequeñas moléculas de iones– La interacción con otras macromoléculas
– El pH influye en la migración de una molécula– En el pI, la proteína no migra
• Por debajo del pI migra hacia el cátodo• Por encima del pI migra hacia el ánodo
La carga neta de una molLa carga neta de una mol éécula cula depende de:depende de:
– Poseen carga eléctrica– Grupos catiónicos y aniónicos disociables
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El enlace peptEl enlace pept íídicodico
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Estructura de un aminoEstructura de un amino áácidocido
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Equipo de electroforesisEquipo de electroforesis
• Fuente de alimentación• Soporte para las tiras de acetato de celulosa
– Aplicador– Cubeta– Puente– Reactivos
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Tiras de acetato de celulosaTiras de acetato de celulosa(Cellogel 2,5 x 17 cm)
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ReactivosReactivos
• Solución tampón: Buffer Veronal-Veronal sódico (pH 8,6): Veronal sódico (10,30 g), Veronal (1,34 g), Agua destilada (h/1 L)
• Colorante: Amidoschwartz 10 B (0,5 mg), Metanol (35 mL), Agua destilada (45 mL), Acido acético glacial (10 mL)
• Decolorante: Acido acético al 5% en agua
• Solución trasparentizadora: Metanol (87 mL), Acido acético (12 mL), Glicerina (1 mL)
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Cubeta y puenteCubeta y puente• Las tiras sobre el puente y en la cubeta• Con tampón• Con la tapa para crear una atmósfera saturada
• Con los cables para conectar a la fuente
puente soporte de 11 cm x 8,5 cm
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Fuente de alimentaciFuente de alimentaci óónn
• 0-400 voltios• 0-50 mA• Temporalizador• Inversor de corriente• Varias tomas• Cable rojo y negro
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AplicadorAplicador
• Macro• Semi-micro • Micro
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ColocaciColocaci óón de la tira y de la n de la tira y de la muestramuestra
Hacer pasar una corriente de 200 V fijos y 2,5 mA/tira de acetato de celulosa. Tiempo de corrida óptimo de 55’
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MigraciMigraci óónn
• Protocolo de la técnica para la migración
• Colorear• Decolorar• Transparentizar
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Resultado finalResultado final
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globulinasglobulinasalbúmina α1 α2 β γ-globulinas
+ -
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ProteProteíínas del Sueronas del Suero
14,03,51,50,03
trazas
IgGIgAIgMIgDIgE
γ-globulinas
3,01,0
transferrinalipoproteína de baja
densidadβ-globulinas
2,02,60,35
haptoglobinasα-2-macroglobulina
ceruloplasminaα-2-globulinas
2,91,0
α-1-antitripsinaα-1-glicoproteína ácida
α-1-globulinas
0,2540
prealbúminaalbúmina
Concentración normal sérica (g/L)
ProteínaClase
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FotodensFotodens íímetrometro
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• Cromatografía de intercambio iónico
Moléculas MENOR CARGA (+) ���� RÁPIDASSon desplazadas más fácilmente por la fase móvil.
Moléculas MAYOR CARGA (+) ���� LENTASSon retenidas por los grupos cargados iónicamente de la f. estacionaria.
•Gradiente de pH•Gradiente salino
1 2 4 5 6 7 8 93
resp
uest
a de
l det
ecto
r
fracción
PERFIL DE ELUCIÓN
+
-
Na+
q+Q+
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PurificaciPurificaci óón de n de IgGIgG por por CromatografCromatograf íía en DEAEa en DEAE --celulosacelulosa
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MMéétodos basados todos basados en especificidad de en especificidad de ligandosligandos
• La proteína A es un polipéptido de 42.000 Da constituyente habitual de la pared celular de S. aureus.
• Se ha estudiado con gran detalle la interacción entre la proteína A y los anticuerpos.
• La afinidad de la proteína A depende de las regiones Fcdel anticuerpo, dependientes de la subclase (IgG1,IgG2y IgG4).
• La proteína A tiene alta afinidad por los anticuerpos humanos y de otros animales.
• La proteína A se ha empleado en métodos cromatográficos unida a resinas pudiéndose purificar anticuerpos IgG.
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ProducciProduccióón y purificacin y purificaci óón de n de sueros antiofsueros antiofíídicosdicos
En la producciEn la producci óón industrial de los antivenenos se n industrial de los antivenenos se
llevan a cabo las siguientes etapas:llevan a cabo las siguientes etapas:
•• Primera etapaPrimera etapa : Obtenci: Obtenci óón de venenon de veneno
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•• Segunda etapaSegunda etapa : Producci: Producci óón del antisueron del antisuero
•• Tercera etapaTercera etapa : Fraccionamiento del plasma : Fraccionamiento del plasma equinoequino
SangrSangr ííaaPlasmaPlasma
PrecipitaciPrecipitaci óón salinan salina
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FiltraciFiltraci óónn
DiDiáálisislisis
FiltraciFiltraci óón estn est éérilril
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Envasado del Envasado del producto finalproducto final
Control de Control de CalidadCalidad
Etiquetado y Etiquetado y empaquetadoempaquetado
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ObtenciObtencióón de antisuerosn de antisueros(anticuerpos (anticuerpos policlonalespoliclonales) )
•• Uso diagnUso diagnóósticostico
•• En terapia antisueros antitetEn terapia antisueros antitetáánicosnicos
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Que vamos Que vamos hacer en el hacer en el prpr ááctico???ctico???
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Primera etapa Primera etapa ……PrecipitaciPrecipitaci óón de inmunoglobulinasn de inmunoglobulinas5 mL de suero + 5 mL de sulfato de amonio vortex
Medir pH y ajustar a 7,8 heladera 10’
Centrifugar 4000 rpm durante 25’
Eliminar el sobrenadante y agregar igual cantidad de sulfato de amonio (1:2) límpido
Precipitado + 5 mL de PBS o agua destilada
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Segunda etapa Segunda etapa ……DesionizaciDesionizaci óónn
SF
Cambiar cada 2 hs.
Reposar toda la noche
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Tercera etapa Tercera etapa ……Control por electroforesisControl por electroforesis
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![Page 45: Separación de inmunoglobulinas (1)](https://reader035.vdocuments.net/reader035/viewer/2022081715/54a329b7ac79599b728b45e2/html5/thumbnails/45.jpg)
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TinciTinci óón: n: ••Azul de CoomassieAzul de Coomassie••Negro Negro amidoamido••Rojo Rojo PonceauPonceau
Luego se procede a Luego se procede a transparentizartransparentizar con una con una mezcla de metanol + mezcla de metanol + áácido accido ac ééticotico
1:10 o 1+91:10 o 1+9
Es aplicable a:Es aplicable a:••suerosuero••orina orina ••LCRLCR
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