Torregrosa Bueno, Melani. Martin Quiroga, Teresa Reina. Caparroz Martín, Eugenia Victoria. Tomás López, Estefanía.

Se realizó una búsqueda bibliográfica durante Enero-Abril de 2017 en bases de datos y en revistas especializas utilizando los descriptores de los tesauros correspondientes a las bases de datos y Descriptores en Ciencias de la Salud (DeCs). Las estrategias de búsqueda se expresan en la tabla 1.

Criterios de selección:

Criterios de inclusión: estudios observacionales transversales o revisiones sistemáticas que contuvieran los descriptores nombrados.

Criterios de exclusión: estudios que se centraban en una de las consecuencias de las diabetes o estudios cuya muestra solo incluyera gestantes o estudios in vitro

Tabla 1. Estrategia de búsqueda según los Sistemas de búsqueda

BASES DE DATOS CONSULTADA

ESTRATEGIA DE BÚSQUEDANº DE ARTÍCULOS

ENCONTRADOS

Nº ARTÍCULOS

RELEVANTES

CSICDiabetes Mellitus AND (Phenols

OR Phenolic Compounds)49 7

Dialnet Idem 8 2

Recolecta Idem 1 0

PubMed Idem 387 59

Cochrane Idem 7 4

SCIELO Idem 12 5

Web of Knowledge Idem 3 2

INTRODUCCIÓN OBJETIVOS

EXTRACTOS VEGETALES COMO ALTERNATIVA TERAPÉUTICA DE LA DIABETES MELLITUS TIPO II.

METODOLOGÍA

RESULTADOSNumerosos extractos naturales han demostrado tener efecto antidiabético y eficacia

en el metabolismo de la glucosa, gracias a sus componentes bioactivos que difieren

en el mecanismo de acción.

Fla

vo

no

ides

Abelmoschus Moschatus (Miricetina) Abroma Augusta (Miricetina, Quercetina y

Aperginina) Allium Cepa (Quercetina)

Bauhinia Forficata (Kaempferol) Bauhinia Monandra (Quercetina) Camellia Sinensis (Catequinas) Camellia Sinensis (Quercetina) Cassia Occidentalis (Apigenina) Pinus Roxburghii (Quercetina)

Disminuye la resistencia a la insulina Incrementa expresión de GLUT4

Inhibe a la G6Pase Inhibición de la α-amilasa.

Inhibición de la α-glucosidasa. Inhibición perioxidación lípidos

Protección de los islotes pancreáticos Reducción de la actividad de fructosa-1,6-bifosfatasa.

Regeneración de las Cél. β.

Ácido clorogénico

Acacia Arabica Caesalpinia Bonducella Cecropia Pachystachya

Estimulación de Cél. b Inhibición G6Pase

Otros compuestos

fenólicos

Combretum Dolichopetalum (Ácido elágico) Ocimum Gratissimum (Ácido cicórico)

Inhibición de la aldosa reductasa. Inhibición α-amilasa.

Regulación secreción y transporte insulina

Tioles Allium Cepa (Disulfuro de alilo propilo)

Allium Sativum (Súlfidos alílicos) Excitación de la producción pancreática de insulina.

Terp

en

os A. Aspera (Ác. oleanólico)

Astianthus vimunalis (Ác. oleanólico y ác. ursólico) Brucera Javanica (Quasinoides)

Lagerstromia speciosa (Ác. corosólico) Psidium Guajava (Ác. psidiumoico)

Aumento de glucógeno hepático. Estimulación GLUT4.

Inhibición de la α-glucosidasa.

Fit

oeste

role

s

Butea monosperma Kuntza (Estigmasterol) Chrozophora Plica (β-sitosterol)

Inhibición de la α-glucosidasa. Inhibición G6Pase.

Reducción de la grasa visceral. Regeneración de las Cél. β.

Sap

on

inas

Astragalus membranaceus (Astragalósidos) Dioscorea polygonoides y Trigonella foenum-

graecum (Dioscina) Platycodi radix (Ác. Platiconico)

Terminalia arjuna (Ác. Arjunólico)

Atenuación de la resistencia a la insulina. Estimula los islotes de Langerhans.

Incrementa expresión GLUT 4 Inhibe digestión y absorción de hidratos de carbono. Inhibe glucógeno fosforilasa, G6Pase, α-glucosidasa

y α-amilasa. Mejora señalización de insulina

Otr

os

po

life

no

les

Curcumina Marsupina con epicatequina

Polifenoles del Aceite de oliva extra Resveratrol

Regulación de la secreción de insulina Inhibición de la α-amilasa.

Reducción del tamaño de los adipocitos. Expresión adecuada de los marcadores de

señalización de la vía de insulina. Reducción de la expresión de los PDE.

1. Gil IE. Alternativas naturales a los fármacos para la prevención de los procesos patológicos asociados a la diabetes mellitus.

Universidad Católica San Antonio de Murcia. 2016.

2. Aranceta-Bartrina, J., Pérez-Rodrigo, C., Alberdi-Aresti, G., Ramos-Carrera, N., Lázaro-Masedo, S. Prevalencia de obesidad

general y obesidad abdominal en la población adulta española (25–64 años) 2014–2015: estudio ENPE. Rev Esp Cardiol.

2016;69:579-87 - Vol. 69 Núm.06 DOI: 10.1016/j.recesp.2016.02.010.

3. C. Santangelo CF, R. Varì, B. Scazzocchio, T. Filardi, V. Fogliano, M. D’Archivio, C. Giovannini, A. Lenzi, S. Morano, R. Masella.

Consumption of extra-virgin olive oil rich in phenolic compounds improves metabolic control in patients with type 2 diabetes

mellitus: a possible involvement of reduced levels of circulating visfatin. J Endocrinol Invest. 2016.

4. Fernandes, J., Ogurtsova, K, Linnenkamp, U., Guariguata, L.,Seuring, T., Zhang, P., Cavan, D., Makaroff, L.E. IDF Diabetes Atlas

estimates of 2014 global health expenditures on diabetes. diabetes research and clinical practice. 2016; 117: 48 – 54

5. Fukuda T, Fukui M, Tanaka M, Senmaru T, Iwase H, Yamazaki M, et al. Effect of Brazilian green propolis in patients with type 2

diabetes: A double-blind randomized placebo-controlled study. Biomed Rep. 2015;3(3):355-60.

6. Mário C.L. Neto CFBdV, Valerium N. Thijan, Germana F.R. Caldas, Alice V. Araújo, João H. Costa-Silva, Elba L.C. Amorim,

Fabiano Ferreira,, Antonio F.M. de Oliveira AGW. Evaluation of antihyperglycaemic activity of Calotropis procera leaves extract on

streptozotocin-induced diabetes in Wistar rats. Rev Bras Farmacogn. 2013;23:913-9.

7. Helison de Oliveira Carvalho BSFeS, Igor Victor Ferreira dos Santos, Rafael Lima Resque , Hady Keita, Caio Pinho Fernandes,

José Carlos Tavares Carvalho. Hypoglycemic effect of formulation containing hydroethanolic extract of Calophyllum brasiliense in

diabetic rats induced by streptozotocin. Revista Brasileira de Farmacognosia. 2016;26:634-9.

8. Berná GO-L, M.J.; Jurado-Ruíz, E.; Tejedo, J.; Bedoya, F.; Soria, B.; Martín, F. Nutrigenetics and Nutrigenomics Insights into

Diabetes Etiopathogenesis. Nutrients. 2014;6:5338-69.

9. Martin MA, Goya L, Ramos S. Antidiabetic actions of cocoa flavanols. Mol Nutr Food Res. 2016;60(8):1756-69.

10. Rakesh K. Joshi WNS, Valdir F. da Veiga Junior. Aromatic and medicinal plants with anti-diabetic potential from India: A review.

AJEONP. 2015;2(4):22-8.

11. Makwana A R1 SKD, Rao S K. A Review on Medicinal Plants of Gujarat with Anti-diabetic assal. International Journal of

Pharmacognosy and Phytochemical Research. 2016;8(1):167-73.

12. Sharifuddin Y, Chin YX, Lim PE, Phang SM. Potential Bioactive Compounds from Seaweed for Diabetes Management. Mar

Drugs. 2015;13(8):5447-91.

13. Marisa F. Mendes IDLB. Evaluation of the Effects and Mechanisms of Bioactive Components Present in HypoglycemicPlants.

International Journal of Chemical and Biomolecular Science. 2015;1(2):167-78.

14. Jimenez-Gomez Y, Mattison JA, Pearson KJ, Martin-Montalvo A, Palacios HH, Sossong AM, et al. Resveratrol improves adipose

insulin signaling and reduces the inflammatory response in adipose tissue of rhesus monkeys on high-fat, high-sugar diet. Cell

Metab. 2013;18(4):533-45.

15. Rivas-Alpizar E, Zerquera-Trujillo G, Hernández-Gutiérrez C, Vicente-Sánchez B. Manejo práctico del paciente con diabetes

mellitus en la Atención Primaria de Salud. Revista Finlay [revista en Internet]. 2011 [citado 2017 Ene 5]; 1(3):[aprox. 22 p.].

Disponible en: http://www.revfinlay.sld.cu/index.php/finlay/article/view/69.

16. Emami-Riedmaier A, Schaeffeler E, Nies AT, Morike K, Schwab M. Stratified medicine for the use of antidiabetic medication in

treatment of type II diabetes and cancer: where do we go from here? J Intern Med. 2015;277(2):235-47.

17. GROCHANKE BSG, I.T.S.; GOETTEMS-FIORIN, P.B.; BRUXEL, M.A.; BASSO, E.G.P.; HECK, T.G.; LUDWIG, M.S. Compostos

fenólicos da casca de Handroanthus heptaphyllus (Mart.) Mattos e efeitos do extrato aquoso no perfi lipídico, glicêmico e na

lipoperoxidação em ratos diabéticos. Rev Bras Pl Med, Campinas. 2016;18(1):264-72.

18. P.T. Kanellos M.Sc. ACKPD, N.K. Tentolouris M.D., Ph.D., V. Argiana M.D., D. Perrea Ph.D., N. Kalogeropoulos Ph.D., A.M.

Kountouri Ph.D., V.T. Karathanos Ph.D. A pilot, randomized controlled trial to examine the health outcomes of raisin consumption

in patien ts with diabetes. Nutrition. 2014;30:358-64.

19. Lic. Carlos Jonnathan Castro Juárez DCNVR, Dr. C. Sergio Alberto Ramírez García, Dr. C. Clemente Mosso González. Uso

medicinal de plantas antidiabéticas en el legado etnobotánico oaxaqueño. Revista Cubana de Plantas Medicinales.

2014;19(1):101-20.

20. Om Prakash RK, Ritika Srivastava, Pragya Tripathi, Shradha Mishra, Ajeet. Plants Explored with Anti-diabetic Properties: A

Review. American Journal of Pharmacological Sciences. 2015; 3(3):55-66.

21. Kaushik P, Singh G, Khokra SL, Kaushik D (2015) Bioassay Guided Fractionation and α-Amylase Inhibitory Activity of Flavanoid

Isolated from Pinus roxburghii Sarg. Nat Prod Chem Res 3: 179. doi:10.4172/2329-6836.1000179

22. Cersosimol, E., Solis-Herreral, C., Trautmann, M.E., Malloy, J., Triplitt, C.L. Assessment of Pancreatic beta-Cell Function: Review

of Methods and Clinical Applications. Current Diabetes Reviews; 2014, 10 (1): 2-42.

23. Mittermayer, F., Caveney, E., De Oliveira, C., et. al. Addressing Unmet Medical Needs in Type 2 Diabetes: A Narrative Review of

Drugs under Development. Current Diabetes Reviews; 2015, 11: 17-31

24. Harlev, E., Nevo, E. , Mirsky, N., Ofir, R. Antidiabetic Attributes of Desert and Steppic Plants: A Review. Planta Med 2013; 79:

425– 436.

REFERENCIAS