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1. EXTRACCIÓN DE TEJIDO PARA ANÁLISIS DE ADN
L -
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o buenhacer del personal encomendado a la extracción y transporte de esta. Se ha
admitida como prueba en un tribunal, por lo que se han de elaborar una serie de
en algunos supuestos el juez instructor del caso pueda requerir la colaboración de
adecuada para el desempeño de estas funciones, por lo que es recomendable el
1.1. Zonas de extracción de la muestra
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Extracciones de tejidos, prótesis, marcapasos y otros dispositivos contaminantes del cadáver
1.1.1. Muestras en personas vivas
Sangre.
Pelos con raíz.
1.1.2. Muestras en personas transfundidas
1.1.3. Muestras en cadáveres en buen estado de conservación
1.1.3.1. Sangre post mortem
procediendo a pinchar en la yema del dedo con lo cual se puede extraer unas 3-4 gotas de aproximadamente 0,1 cm3
la muestra debe ser similar a una moneda.
Esta muestra se debe dejar secar al menos durante 1 hora al aire libre sin exponer a la luz solar.
La
palpar el tercero y el cuarto, y a esta altura, a 2 centímetros del reborde intercostal punzar con aguja raquídea 18 G. Ir retirando y aspirando hasta que la sangre comience a entrar en la jeringa.
Si la sangre aún no se ha coagulado, se debe añadir anticoagulante EDTA en una
Ambas muestras se recogen en tubos o jeringas perfectamente rotulados con tinta
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posible al laboratorio para su procesamiento.
1.1.3.2. Músculo-esquelético
No existe preferencia a la hora de escoger el músculo o músculos que son los idóneos para la toma de muestra. Se elige este tipo de tejido por ser, junto con el músculo
piezas dentales, si es posible molares, y siempre que no se le haya practicado una
C) Pelos
el bulbo o raíz, por lo que para su recogida se deben arrancar y nunca deben ser cortados; lo idóneo es recoger al menos 20 pelos con bulbo. Estos se introducen
D) Muestras vaginales o anales
que el resto de muestras. Debido a la cantidad de contaminantes presentes en esta
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Extracciones de tejidos, prótesis, marcapasos y otros dispositivos contaminantes del cadáver
1.1.4. Muestras en cadáveres carbonizados
A pesar de lo que la apariencia externa pueda indicar, y en contra de la creencia
de zonas profundas, debido a que el fuego y las altas temperaturas eliminan las bacterias causantes de la putrefacción; así pues, los tejidos se esterilizan
de zonas profundas y de la sangre semisólida que permanece
Si la carbonización es total, lo recomendable es ponerse en contacto con el
1.1.5. Muestras en cadáveres en avanzado estado de putrefacción o esqueletizados
1.1.5.1. Hueso
de húmero de unos 10-20 cm, ya que los huesos de elección son los huesos largos.
realizarse inmediatamente.
ambiente durante al menos un día y colocar los restos en una bolsa o un recipiente
Si no es posible disponer de esta muestra, lo recomendable es ponerse en contacto
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1.1.5.2. Dientes
Se seleccionan al menos cuatro piezas dentales, si es posible molares, que no
1.1.6. Muestras en cadáveres embalsamados
1.1.7. Otras muestras de referencia en personas fallecidas
es posible analizar
obtención de resultados.
es posible analizar muestras que contengan restos biológicos del fallecido, tales como sobres
maquinillas de afeitar, peines, cepillos, etc.
que puede ser parte interesada en el proceso judicial.
1.2. Materiales
Guantes.
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Mascarilla.
Bata.
Papel Whatman 3 mm o similar.
Jeringas, 2 ml, 3 ml, 5 ml y 10 ml.
Agujas.
EDTA.
Sobres de papel.
Sobres acolchados.
Marcador indeleble.
Etiquetas.
1.3. Embalaje refrigerado para el traslado de la muestra
al laboratorio es fundamental, ya que los indicios biológicos, especialmente los
de los indicios al laboratorio sea correcto.
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El número de referencia de la muestra.
Nombre de la persona a la que se realiza la toma o código elegido para
un frasco con etanol se tapa y se procede agitarlo; tras esto el etanol debe ser
temperatura ambiente durante 7 días.
Dejar secar a temperatura ambiente durante, al menos, un día y colocar
que desprenden estas piezas, se recomienda congelar a las temperaturas anteriormente descritas.
A modo general, las muestras que en el momento de su recolección han sido refrigeradas
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Extracciones de tejidos, prótesis, marcapasos y otros dispositivos contaminantes del cadáver
Las que no fueron ni refrigeradas ni congeladas deben trasladarse a temperatura
así el contacto con otros líquidos que pudieran perturbar la muestra.
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UNIDAD FORMATIVA 2: ENUCLEACIÓN DEL GLOBO
OCULAR PARA BANCO DE CÓRNEAS
2.1. Anatomía del globo ocular2.2. Desinfección e hidratación2.3. Extracción del globo ocular
2.4. Recipiente húmedo para colocación del globo y su
2.5. Embalaje refrigerado para traslado al banco de córneas2.6. Colocación de prótesis ocular
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2. ENUCLEACIÓN DEL GLOBO OCULAR PARA BANCO DE CÓRNEAS
2.1. Anatomía del globo ocular
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Proteger y proporcionar soporte de fotorreceptores.
que la componen se encuentran desorganizadas; se encarga de proteger el contenido intraocular y proporciona cierta resistencia al globo ocular.
delante sobrepasando el ecuador del ojo.
Esta porción se conoce como coroides por su parecido macroscópico con el corion placentario.
Cuerpo ciliar
acuoso en los procesos ciliares.
Iris
central, la pupilaa la intensidad de luz ambiental.
Coroides, cuerpo ciliar e iris forman una capa conocida como
La
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ENUCLEACIÓN DEL GLOBO OCULAR PARA BANCO DE CÓRNEAS
compuesto fundamentalmente por agua, libremente intercambiable con retina
permite el paso de la luz hacia esta.
media de la zónula de Zinn que transmite la contracción o relajación muscular
El
El es la piel que recubre el frontal y el maxilar, que al llegar al reborde
, la cual se repliega en la profundidad de ambos
de la esclerótica, hasta el limbo corneoescleral donde termina.
La
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2.2. Desinfección e hidratación
de Pterigion que comprometa parte de la córnea, etc.
Para realizar una adecuada desinfección e hidratación, se han de abrir cuidadosamente
retirando todos los restos de secreciones y material extraño del saco corneal y
extraños bajo los parpados, así como la contaminación microbiana.
No debe entrar sustancia alguna en contacto con el ojo, ya que podría dañar la córnea.
En el caso de proceder a la enucleación, deben estar preparados dos recipientes
Si se realiza la escisión
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ENUCLEACIÓN DEL GLOBO OCULAR PARA BANCO DE CÓRNEAS
2.3. Extracción del globo ocular
2.3.1. Criterios
Las peculiaridades anatómicas de la córnea, especialmente la ausencia
corneal sea diferente a otros con el objeto de trasplante.
cualidad y calidad endotelial del tejido corneal.
Muerte de causa desconocida.
Ingestión de una sustancia tóxica o exposición a ella, que pueda ser transmitida en una dosis tóxica a los receptores del tejido.
Exclusión de córneas sometidas a IQ por miopía.
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Se excluyen las córneas de donantes con 6-8 horas horas
Diabetes mellitus incontrolable, con afección ocular secundaria.
Neoplasmas.
Ictericia escleral.
Hemorragia escleral.
de este tipo de cirugía, así como proteger de enfermedades al posible receptor.
causa de la muerte.
2.3.2. Edad del donante
para el trasplante independientemente de su edad, aunque en algunos hospitales solo son aceptadas las de donantes menores de 60 años por protocolo.
córnea donante para trasplante.
idóneas para la donación.
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2.3.3. Donación y obtención de tejido ocular
donante potencial.
en la historia clínica del donante.
la autorización de la autoridad legal competente antes de la extracción.
ajeno al equipo de trasplante.
procedente de la donación.
Revisión de la historia clínica
Causa de muerte y factores asociados.
Tiempo aceptable de extracción. Se consideran aceptables para proceder
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Extracciones de tejidos, prótesis, marcapasos y otros dispositivos contaminantes del cadáver
sido refrigerado.
Preparación del donante
estado es muy pequeña.
desecación del epitelio antes de la enucleación.
contacte entonces la gasa con el epitelio corneal.
Acciones antes de la extracción
Establecer el consentimiento.
Completar todos los requisitos legales.
con el nombre del fallecido.
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ENUCLEACIÓN DEL GLOBO OCULAR PARA BANCO DE CÓRNEAS
encuentren intactos.
Extracción
10 en la tapa y luego usar unas pinzas mosquito para colocar dos gasas de algodón de 5 x 5 como protector acolchado en cada uno.
posible en los 360 grados alrededor de la córnea cuidadosamente, ya que una gran tracción puede causar pliegues y sufrimientos de la córnea, por lo que se aconseja se realice con la menor tensión posible. En donantes con órbitas pequeñas, como en los niños o muy ancianos, usar un blefarostato
cuatro cuadrantes para facilitar el acceso a los músculos oculares.
rectos y se seccionan cerca de su inserción.
En caso de no cortar el recto lateral, tomar con una pinza mosquito cerca de su inserción y utilizarlo para guiar el globo, localizar el oblicuo mayor y el menor y separarlos como los otros músculos en el caso en el que no se hubieran cortado ya con los músculos rectos.
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arriba y dejando un remanente de 3-6 mm unido al globo con cuchara.
Debe tenerse cuidado de no tocar la córnea con ningún instrumento y mantenerse la forma del globo ocular sin alterar la presión intraocular.
globo de la órbita, cortando los tejidos residuales con la tijera de enucleación. Hay que ser cuidadoso para no cortar ninguna pestaña en este momento.
procedimiento se ha terminado y se puede irrigar. Irrigar con solución
nunca el ojo sumergido en el líquido.
2.4.1. Registros del donante
Formulario de consentimiento de la donación.
Resultados de las pruebas de laboratorio y otras pruebas realizadas si las hubiera.
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expediente.
a cabo.
comienzo de refrigeración, y hora de traslado al lugar de extracción.
Lugar de extracción, equipo que la realiza y persona encargada.
Grado de asepsia.
el lote, la fecha de expiración, la temperatura, la cantidad, la concentración
Injertos obtenidos y características pertinentes.
Destino del tejido.
2.4.3. Empaquetado y distribución
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Características del tejido.
Número de lote.
Datos morfológicos y funcionales.
Fecha de distribución del tejido.
Determinaciones serológicas realizadas al donante y sus resultados.
Recomendaciones para el almacenamiento.
manipulación necesaria
Fecha de expiración tras la apertura o la manipulación.
2.4.4. Contenedor
Es tejido humano.
2.4.5. Distribución
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a su distribución.
2.4.6. Transporte
adecuadas.
2.5. Embalaje refrigerado para traslado al banco de córneas
2.5.1. Método de conservación a corto plazo: cámara húmeda
de la córnea.
2.5.2. Métodos de conservación a mediano plazo
Implican la necesidad en todos los casos de practicar la extracción completa de la córnea con un margen escleral de 1 mm a partir del globo ocular del donante.
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Extracciones de tejidos, prótesis, marcapasos y otros dispositivos contaminantes del cadáver
2.6. Colocación de prótesis ocular
su totalidad o parte de este, en personas que han sufrido algún traumatismo,
su fabricación se realiza a partir de un
su espesor es delgado. Son usadas en hundimientos oculares, puesto que en estos casos el ojo permanece, aunque retraído.
se usan de manera transitoria hasta la colocación de una
La toma de medidas se puede realizar mediante
si se requiere un resultado satisfactorio.
, haciendo una
la consistencia necesaria para mantener la forma del globo ocular que falta.