evaluación de 3 clones de yuca (manihot esculenta...
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Universidad de Las Tunas “Vladimir Ilich Lenin”
Filial Universitaria Municipal “Haydée Santamaría Cuadrado”
Facultad de Ciencias Agrícolas
Título: Evaluación de 3 clones de yuca (Manihot esculenta Crantz) con la aplicación de diferentes dosis de estiércol
vacuno sobre un suelo pardo sialitizado cálcico en la UBPC “Las Marías”, Amancio, provincia Las Tunas.
Autor: Eduardo Agueda Alvarez
Tutor: Ing. Jorge Alfredo González Pérez.
Amancio, Julio del 2011.
“Año 53 de la Revolución
Pensamiento….
(...) el único camino abierto a
la prosperidad constante y fácil
es el de Conocer. Cultivar y
aprovechar los elementos
inagotables e infatigables de la
naturaleza (…)
José Martí….
Dedicatoria….
Dedico este trabajo: ⇒ A mis padres Eduardo Agueda Sánchez y a Clara
Elena Alvarez Tamayo a los que siempre supieron formar valores acorde a nuestros principios.
⇒ A mi esposa e hija por confiar en mí y apoyar cada
momento incondicional en la creación de este trabajo. ⇒ A mis profesores y compañeros de estudios por el
apoyo para continuar enriqueciendo mis conocimientos.
⇒ A mis compañeros de trabajo por compartir cada momento de la investigación y el apoyo para que logra el resultado final.
Agradecimientos…
⇒ Al sistema revolucionario guiado por nuestro
Comandante en Jefe Fidel Castro Ruz, por su
lucha incansable en pos de la superación de
cada ciudadano y la creación de la
Universalización de la cual soy fruto.
⇒ En especial a mi tutor Ing. Jorge Alfredo
González Pérez por su esfuerzo incondicional día
a día en la elaboración de este trabajo.
Resumen.
Se realizó un estudio en áreas de la UBPC Las Marías perteneciente a la Empresa
Azucarera Amancio Rodríguez del municipio Amancio en la provincia de Las Tunas,
con el objetivo de evaluar diferentes dosis de materia orgánica en diferentes clones
de yuca (Manihot esculenta Crantz) en un suelo Pardo Sialitízado calcico, bajo
condiciones de secano. Se utilizó un diseño experimental de bloques al azar
conformado por 9 tratamientos (Jagüey Dulce, selección Holguín y Señorita) y 3
réplicas. Los indicadores fisiológicos que se evaluaron fueron porcentaje de
brotación y altura de la planta, así como los parámetros del rendimiento que se
evaluaron fueron: número de raíces por plantas, diámetro medio de las raíces y
longitud de las raíces. El clon Selección Holguín fue el de mejor comportamiento en
sentido general, seguido del Clon Jagüey Dulce, por lo que se recomienda estudiar
sus comportamientos productivos en áreas con condiciones edafoclimáticas
semejantes al lugar donde se efectuó la investigación. El clon con peor
comportamiento fue el Señorita.
Palabras claves: yuca, (Manihot esculenta Crantz), clon, indicadores, crecimiento, estaca.
Abstract.
A study was conducted in areas belonging to UBPC Las Marias Company
Sugar Amancio Amancio Rodríguez municipality in the province of Las Tunas, in
order to evaluate different doses of organic matter in different clones of cassava
(Manihot esculenta Crantz) in a calcium Sialitízado Brown soil under rainfed
conditions. Experimental design was a randomized block consisting of 9 treatments
(Jagüey Dulce, selection and Ms. Holguin) and 3 replicates. Physiological indicators
that were evaluated were the percentage of germination and plant height and yield
parameters evaluated were: number of roots per plant, average diameter of roots and
root length. Clone Selection Holguin was the best performance in general, followed
by the Clone Jagüey Dulce, so it is recommended to study their behavior in areas of
productive soil and climatic conditions similar to where research was conducted. The
clone with the worst performance was Miss.
Keywords: cassava (Manihot esculenta Crantz) clone, indicators, growth pole.
Índice:
Índice Pág.I Introducción 1 II Revisión Bibliográfica 5
2.1. Indicios históricos de la agricultura sostenible 5 2.2. Generalidades del cultivo 7 2.3. Características de los clones utilizados 11 2.3.1 Condiciones climáticas y edáficas requiere el cultivo 13 2.3.2 Temperatura 14 2.3.3 Humedad 15 2.3.4 Humedad relativa 15 2.3.5 Luz 16 2.3.6 Vientos 17 2.4 Fisiología del cultivo 17
2.4.1 Ciclo de emisión foliar y de vida de la hoja 17 2.4.2 Acumulación de materia seca en las hojas 18 2.4.3 Acumulación de materia seca en los tallos 18 2.4.4 Acumulación de materia seca en las raíces tuberosas 19 2.4.5 Área foliar 19 2.4.6 Fotosíntesis 20 2.5 Labores de cultivo 21
2.5.1 Preparación del suelo 21 2.5.2 Control de malezas 21 2.5.3 Riego 22 2.5.4 Fertilización 23 2.6 Multiplicación 28 2.7 Plagas, enfermedades y su control 36
2.7.1 Principales plagas que afectan al cultivo de la yuca en cuba primavera
de la yuca (erinnyis ello (l.) lepidoptera, sphingidae). 36
2.7.2 Enfermedades que afectan el cultivo de la yuca 39 2.8 Cosecha 40
III. Materiales y métodos. 42 3.1 Condiciones de Experimento. 42 3.2 Suelo 45 3.3 Fertilización orgánica utilizada 47 3.4 Mediciones realizadas 47 3.5 Análisis económico 48 3.6 Métodos de análisis empleado para evaluar las mediciones 48 IV. Resultados y discusión. 49 4.1 Evaluación parámetros fisiológicos 49 4.2 Evaluación parámetros del Rendimiento 50 4.3 Resultados del Análisis Económico 59 V Conclusiones 61 VI Recomendaciones 62
VII. Bibliografía. 63
1
I. Introducción.
La yuca (Manihot esculenta Crantz) es originaria del continente Americano; ocupa
el noveno lugar entre los alimentos con más contenido de calorías en el mundo y el
cuarto lugar en las zonas tropicales (después del arroz, la caña de azúcar y el maíz).
Es un alimento básico de millones de habitantes en el trópico y en el mundo (Alves
de Mendoza et al., 2003).
El cultivo de la yuca es una importante fuente de energía en la alimentación humana
y animal en el trópico del mundo (Bertorelli et al. 2006). Aunque su comercialización
es muy reducida, a escala mundial este es uno de los cultivos más extendidos
(Cartay, 2004).
En la actualidad la yuca es el cuarto producto básico más importante a nivel mundial
después del arroz, el trigo y el maíz. Pese a que es uno de los cultivos mejor
adaptados a distintos ambientes tropicales y tolera suelos marginales de baja
fertilidad y regimenes de sequía, la rentabilidad del cultivo depende de un buen
manejo agronómico y una alta productividad (Matheus et al., 2004).
La yuca constituye la “raíz de la vida” en África, Asia y América Latina. En África, es
el alimento de más de 200 millones de personas y de casi 500 millones en el mundo.
La producción en 1960 fue de 70 millones de toneladas, mientras en 1999 se
incrementó a 165,7 millones de toneladas, de las cuales el 52,2% se produjo en
África, el 28,3% en Asia, el 19,4% en América Latina y el 0,12% en Oceanía. Los
rendimientos más elevados (16 - 20 t.ha-1) correspondieron a aquellos países donde
el área plantada de yuca es poco considerada (FAO, 2003).
La FAO (2003), estimó para el año 2005 una producción de unas 585.000 t, muy por
encima de lo reportado en el quinquenio anterior.
Son varios los factores que influyen negativamente en la producción de yuca, entre
estos la aplicación de medidas fitotécnicas deficientes, selección varietal inadecuada;
así como la incidencia de algunas plagas y enfermedades (Leal y Ojeda, 1987).
Se ha demostrado que a pesar de ser un cultivo adaptable a los ecosistemas influyen
en los rendimientos el tipo de suelo en el que plante, por lo que se debe siempre
2
tener en cuenta todo tipo de recomendación y de no ser así mantener un control
riguroso de su comportamiento, para poder tomar medidas al respecto.
En Cuba la producción de la yuca ha ido en aumento debido a las ventajas
agrotécnicas y económica que ofrece este cultivo. La yuca se caracteriza por su gran
variedad de usos. Tanto sus raíces como sus hojas pueden ser consumidas por
humanos y animales de maneras muy variadas. En la alimentación animal la yuca es
aprovechable en forma de harinas, forrajes, pelets o granulados y piensos. En
algunos países como Colombia, la yuca constituye un sustituto importante del maíz
en la alimentación de aves y cerdos (CORPOICA, 2006).
La yuca ostenta una amplia dispersión geográfica por varias causas, amplia
adaptabilidad edafoclimática a regiones secas y el elevado valor energético de sus
raíces, pero su comportamiento en Cuba puede ser diferente en las distintas
regiones donde se cultiva, debido fundamentalmente a los factores ambientales,
cultura de cultivos utilizada y las características propias de los genotipos (Rivero
2009)
Lograr una densidad óptima por hectárea en el cultivo, constituye una forma
económica de aumentar los rendimientos. Normalmente, la yuca se establece en
arreglos espaciales adaptados a la maquinaria que se emplea para realizar las
prácticas culturales y no se toma en cuenta la biología de la planta, por lo que
muchas veces no se utiliza todo el espacio agrícola al establecerla en monocultivo.
(Rivero 2009)
En Cuba, la yuca se utiliza principalmente en la alimentación humana; sin embargo,
en otros países más del 95 % de la producción se dedica a la alimentación del
ganado. Se plantea que el almidón de la yuca puede sustituir hasta en un 25% a la
harina de trigo en la fabricación del pan (López et al., 1995).
La producción que se vienen logrando en Cuba en este cultivo no rebasa la cifra de
las 10 t / ha, muy por debajo de lo alcanzado por otras regiones y países.
A lo largo de los años, el Instituto Nacional de Viandas Tropicales (INIVIT), se ha
dado a la tarea de producir e introducir nuevos clones de viandas para aumentar las
producciones y mejorar la alimentación de la población. Lo que se debe tener bien
3
claro las recomendaciones que realizan al respecto los investigadores que al mostrar
las nuevas variedades.
En el año 2005, el INIVIT obtuvo cuatro tecnologías para la introducción de nuevos
clones de boniato, yuca y plátano resistentes a factores adversos. El proyecto aportó
un valioso material divulgativo para productores. Los nuevos clones de yuca
obtenidos se plantan aproximadamente en 100 000 ha en todo el país (Prieto, 2005).
En la provincia Las Tunas y en el propio municipio Amancio, los rendimientos
históricos están alrededor de las 5,2 t / ha inferior al potencial de los principales
clones comerciales que actualmente se cultivan con predominio del clon Señorita
como el de más larga tradición entre los agricultores de la zona.
En la provincia de Las Tunas en los últimos años se han introducido múltiples clones
de los centros de investigación del país, pero las pruebas desarrolladas en las
diferentes regiones para evaluar sus resultados acordes a las condiciones de las
mismas, aún no abarcan a la mayoría de las localidades ni a los recomendados
como promisorios por dichos centros de investigación. (Rivero 2009)
En el territorio de Amancio muchas de las instituciones que producen este cultivo en
el mayor caso influyen sobre acciones negativas en cuanto a los rendimientos en las
mismas plantándolas en áreas sin el previo análisis del suelo, sin tener en cuenta
las recomendaciones de que emiten de la variedad por los investigadores.
Por todo lo desarrollado anteriormente y analizando la política actual referida a la
seguridad alimentaría, debemos de aumentar una mayor participación local en la
selección de semillas y variedades de los diferentes cultivos y realizar acciones de
mejoramientos de los suelos para lograr rendimientos superiores, el Problema del
presente trabajo se arraiga en las deficiencias nutricionales y los bajos rendimientos
del cultivo de la yuca en la UBPC “Las Marías”, en el municipio Amancio.
Con el objetivo general de: evaluación del comportamiento agroproductivo de tres
clones de yuca con diferentes dosis de materia orgánica en las condiciones
edafoclimáticas de la UBPC “Las Marías”, partiendo de la hipótesis de que si se
establece un adecuado mejoramiento de los suelos con la utilización de abonos
orgánicos, se podrán mejorar los rendimientos del cultivo.
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Teniendo en cuenta lo anterior, planteamos los objetivos específicos siguientes:
• Evaluar el comportamiento agroproductivo del suelo (composición
química) y su influencia en el desarrollo vegetativo en el cultivo de la yuca.
• Evaluar el comportamiento morfológico de cada Clon para cada dosis.
• Evaluar el comportamiento productivo de los Clones.
5
II. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA. 2.1. Indicios históricos de la Agricultura Sostenible.
Las primeras formas de agricultura se inician, probablemente, por la horticultura de
frutos y tubérculos en las áreas tropicales (Ribeiro, 1973).
El hombre no empezó a cultivar la tierra sino desde hace unos 8 000 a 10 000 años,
lo que originó una revolución en la producción de alimentos y una alteración de todo
el modo material y social de su existencia (Bernal, 1979).
Los estudios arqueológicos realizados en el Medio Oriente permiten hoy decir que la
agricultura aparece entre los años 8 000 y 5 000 antes de nuestra era (a.n.e.) en las
regiones de Mesopotámia, Egipto y Persia, no encontrándose entonces una
agricultura primitiva, sino bien avanzada (Garay, 1979).
El propio Garay dice, que la iniciación de la agricultura fue lo que determinó los
cambios más trascendentales de toda esa época y que su descubrimiento se debe
probablemente no al hombre sino a la mujer, pues mientras el hombre cazaba, ella
sembraba las simientes de hierbas silvestres.
La preponderancia del trabajo de las mujeres en la agricultura fue cuando menos
hasta la civilización de la azada tirada por un buey o arado (Bernal, 1979).
Sólo cuando la agricultura se fue convirtiendo en la base alimenticia de la población,
el hombre la tomó a su cargo y relegó la caza a un lugar secundario (Garay, 1979).
En este período, aparece la domesticación de los animales o ganadería y más tarde
el uso del arado en Mesopotámia y Egipto, lo que significó un gran adelanto para la
humanidad.
A partir de entonces y hasta el presente, la influencia de la agricultura en la vida de la
humanidad ha sido preponderante, estando relacionados con ella los diferentes
modos de producción, la filosofía, los grandes debates y principios económicos, los
avances en el comercio y los adelantos científicos y tecnológicos (Urbina et al.,
1996).
6
Durante siglos el hombre practicó el sistema de la tala y la quema, consistente en
talar un pequeño espacio de bosque, rozarlo y quemarlo. Sembraba en la época
propicia y luego de agotado el suelo, emigraba a otra región y empezaba de nuevo.
Hoy en la actualidad no sé emigra a otras regiones, se degradan los suelos por usos
indiscriminados y malas aplicaciones de las atenciones culturales.
La Agricultura Intensiva Moderna se inició a escala mundial después de la
Revolución Industrial (Siglo XVIII), transformando gradualmente a la actividad
agropecuaria en Agricultura Industrial, o sea, dependiente de la industria. Esta tuvo
una vigorosa expansión liderada por los EE.UU
A principios del siglo XIX con el desarrollo de los fertilizantes químicos debido al
químico alemán Justus Von Leibig quien en 1940 constató que la aplicación de
ciertos elementos presentes en alta proporción en las plantas, incrementaba
notablemente el rendimiento de las cosechas. La agricultura moderna tomó gran
auge, que se ve sustentada, además, por la formulación por el propio Leibig de su
famosa “Ley del Mínimo” o del “Elemento Limitante”.
Paralelamente a las investigaciones de Leibig, comienza la Sanidad Vegetal o
Protección Química de las Plantas, se descubre el Caldo Bordelés (compuesto a
partir de cobre y cal) y comienza la aplicación de compuestos arsenicales como
insecticidas (Bravo, 1988; Faz, 1990).
En el año 1939 se establecen los poderes insecticidas del DDT y se inicia el
monstruoso desarrollo de la producción sintética de los plaguicidas y años más tarde,
1944, aparece la oferta agrícola de los fenoxiacéticos, precursores de los herbicidas
(Faz, 1990).
Por esta época, continúa señalando Faz, desarrolla Mendel (1822-1884) y Morgan
(1866-1945), sus experimentos científicos que dieron lugar al mejoramiento genético
de los cultivos.
Teniendo como base los adelantos científicos que se vienen produciendo en la
fertilización, control de plagas, enfermedades y malezas y mejoramiento genético de
las semillas, unido al desarrollo y uso de la pesada maquinaria agrícola necesaria
7
para la producción intensiva de cultivos, son los elementos bases de modo de
uso de la tierra conocido como “Revolución Verde” (Gamboa, 1994).
Este modelo tecnológico apoyado en la industria química y cargada de grandes
promesas para proteger los cultivos y erradicar las plagas agrícolas, con el tiempo
conformó el paradigma científico-tecnológico de la agricultura moderna, que se
caracteriza por el empleo de sistemas tecnológicos que demandan grandes insumos
industriales e inversiones, un alto consumo de energía convencional, un alto grado
de mecanización, concentración de la producción en grandes empresas
especializadas y el desarrollo de la monocultura como sistema agrícola dominante
(Busch, 1983; Baptista, 1985; Miyasaka, 1992).
El uso de estas técnicas, desarrolladas en regiones ecológicamente diferentes, hizo
más dependiente a la agricultura de la industria, pues solamente entre 1951 y 1966,
la producción mundial de alimentos se incrementó en 34%, sin embargo, en este
lapso, los tractores aumentaron un 63%, el uso de fosfatos (fertilizantes no
renovables) creció un 75%, los fertilizantes nitrogenados (obtenidos a partir de gas)
un 146% y los pesticidas 300% (Schnittman y Lernoud, 1992).
Gore, (1993), señala que a pesar de que la Revolución Verde produjo un importante
incremento en la producción alimentaría del Tercer Mundo, su política se basó en
técnicas ecológicamente nocivas: fuerte utilización de fertilizantes y pesticidas, uso
irracional del agua en sistemas de riego mal diseñados, explotación de la
productividad inmediata de los suelos (que conducirá en ocasiones al aumento de la
erosión), monocultivos (que acabaron con varias especies autóctonas) y aceleración
generalizada de la mecanización, favoreciendo a menudo a los grandes productores
en perjuicio de los más modestos.
2.2. Generalidades del cultivo. La yuca (Manihot esculenta Crantz) se conoce en muchos países por diferentes
nombres, entre ellos: yuca, manihot, mandioca, tapioca, manioca, mayaca, rogo,
cassava, rumu, kute, kaspe, agba, kacaimi, etc.
Está ubicada taxonomicamente:
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División: Macrophyllophyta
Subdivisión: Magnoliophytina
Clase: Magnoliatae
Orden: Euphorbiales
Familia: Euphorbiaceae
Género: Manihot.
El género Manihot tiene alrededor de 200 especies, de las cuales la más importante
en la escala comercial es Manihot esculenta Crantz (López et al., 1995).
En Cuba, los meses en que más cantidad de flores tiene la planta de yuca son
septiembre, octubre y noviembre. Cuando se planta en enero y febrero y la no se
realiza la cosecha en el período de 10 a 12 meses, ocurre una nueva floración
funcional que produce gran cantidad de frutos en los meses de abril, mayo, junio y
julio del siguiente año (López et al., 1995).
El pecíolo forma parte de la hoja y se encuentra ubicado entre el tallo y el limbo;. Por
su forma puede ser recto, sigmoideo o irregular; por su posición, inclinado hacia
arriba, inclinado hacia el suelo, u horizontal. Cuando está en su etapa de madurez
fisiológica, es tubular o hueco. El pecíolo puede presentar diversos colores según el
clon de que se trate, factor morfológico muy importante a la hora de clasificarlo. Los
colores son púrpura rojizo, rojo verdoso, verde rojizo, verde o amarillo. El pigmento
rojo se concentra, parcialmente, hacia los extremos o en la cara superior del pecíolo.
En algunos clones el pecíolo puede alcanzar más de 40 cm. de longitud (Quiñones y
Moreno, 1995).
Las hojas de este cultivo se encuentran en forma de espiral en relación con la
posición que ocupa en el tallo. El limbo se halla profundamente dividido en varios
lóbulos. En una misma planta se pueden observar limbos con lóbulos en número par
e impar. El número de lóbulos en una hoja es variable y por lo general impar,
fluctuando entre 3 y 9. Los lóbulos pueden alcanzar una longitud entre 4 y 20 cm,
aunque en algunos clones puede llegar a alcanzar los 40 cm de longitud y entre 1 y 6
cm de ancho; los centrales son de mayor longitud que los laterales. La forma de los
lóbulos, el color de las hojas y del pecíolo varían según el clon (Portillo, 1989;
9
Ceballos y de la Cruz, 2004).
La yuca es un arbusto con uno ó más tallos. Los tallos están formados por la
alternación de nudos y entrenudos. En las partes más viejas se observan unas
protuberancias que marcan en los nudos las posiciones que ocuparon inicialmente
las hojas. En nudo es el punto en el que una hoja se une al tallo, y el entrenudo es la
porción del tallo comprendida entre dos nudos (León, 1998).
En su base, el tallo, presenta mayor espesor, pero va decreciendo gradualmente
hacia arriba. El mayor peso de los tallos se alcanza entre los 8 y los 10 meses,
cuando el clon se cultiva por un período de 12 meses, según la variedad que se
trate. El grosor de la base del tallo puede llegar en 12 meses hasta 5 cm.
aproximadamente y la distancia entre nudos en la base de 0.8-1.2 cm. La estaca de
la parte inferior del tallo (con una longitud de 20 cm.) tiene de 12-16 yemas en
algunos clones ramificados y de 19-23 en los poco ramificados (López et al., 1995).
Los tallos pueden ser erectos, decumbentes o acostados, sin ninguna ramificación,
poco ramificados (de dos a tres ramas) o muy ramificados (de 4 a 5 ramas). El color
de los tallos está en dependencia del clon (Ceballos y Cruz, 2004).
El centro del tallo está ocupado por una médula prominente, compuestas de células
parenquimatosas. A medida que el diámetro del tallo aumenta, se acumulan grandes
cantidades de xilema que le dan al tallo maduro una consistencia leñosa, al generar
el súber o corcho en reemplazo de la epidermis (Girón y Alfonso, 2000).
La yuca es una planta monoica, presentando flores unisexuales masculinas y
femeninas en la misma planta. Las flores femeninas se abren una o dos semanas
antes que las masculinas en el mismo racimo floral. Sin embargo, es común que
abran al mismo tiempo en la misma planta pero en diferentes ramificaciones. Las
flores de la yuca se producen en inflorescencias en forma de racimo, en el que las
flores femeninas ocupan las posiciones basales y las masculinas las dístales (Cartay,
2004). Las flores son rosas rojas, amarillas o verdes (Torres et al., 2000).
Estos propios autores señalan que la cantidad máxima de flores masculinas se
forman aproximadamente a los 50 días después del comienzo de la floración; acto
seguido las flores comienzan a caerse. Al cuarto mes (300 días después de la
10
plantación) prácticamente todas las flores masculinas han desaparecido. El máximo
probable de flores femeninas que va a tener una planta está presente casi un mes
después de comenzada la floración.
La yuca tiene por fruto una cápsula drupácea, dehiscente y trilocular, provista de
seis alas en la maduración, que se forma a los 90 o 120 días de la floración; el color
del fruto es variable y puede llegar a alcanzar 1 cm. de diámetro por 1cm de longitud.
La formación del fruto se produce durante 25 o 30 días (FAO, 2003).
La semilla es el medio de reproducción sexual de la planta. No es importante en
reproducción y multiplicación habitual, pero tiene un incalculable valor para el
fitomejoramiento. La semilla es de forma ovoide-elipsoidal, testa dura, superficie lisa
y brillante, jaspeada de manchas negras sobre fondo gris o de manchas de color
pardo oscuro sobre fondo pardo claro. Su endospermo es muy abundante. Las
semillas que germinan mejor son precisamente las más brillantes y de color definido
en sus máculas (Montaldo, 1999).
La yuca tiene un sistema radical de tipo fibroso, que es el primer órgano que se
desarrolla en la planta entre 6 y 8 días de la plantación. El engrosamiento de las
raíces depende del clon de que se trate y la raíz engrosada constituye la principal
fuente de alimento humano. En los clones poco ramificados comienza como
promedio entre los 50 y los 60 días después de la plantación y en los muy
ramificados se produce la tuberización entre los 80 y los 90 días después. El número
de raíces comerciales varía por planta y según el clon. La longitud de las raíces es
variable y depende del tipo de clon y de la edad de la planta: puede ser de 15 a 50
cm. o más (López et al., 1995).
Existen dos tipos de raíces tuberosas, las sésiles, que inician la tuberización en la
base del tallo y las pedunculadas, que se forman a cierta distancia (2 -10 cm.) de la
base del tallo. En ocasiones en un mismo clon, pueden encontrase los dos tipos,
aunque con el predominio de uno. La raíz tuberosa puede presentar varias formas:
cilíndricas (la más predominante), cónica, fusiforme e irregular. La textura de la raíz
es lisa o rugosa y el color de su epidermis llega a ser pardo oscuro, pardo rojizo,
rojizo, rojizo amarillento, blanco rosáceo, castaño claro, castaño oscuro o amarillo. El
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mayor porcentaje de raíces tuberosas se encuentra desde 3 cm. hasta 15 o 20 bajo
la superficie del suelo (Portillo, 1989).
2.3. Características de los Clones utilizados.
Las características de los clones de yuca según datos recogidos (INIVIT, 2007), son
las siguientes:
Clon Jagüey Dulce
Ecotipo local. Planta de 1,5 a 2,5 m de altura o más, generalmente con 3 – 4
ramificaciones, porte inclinado, tallo carmelita claro, hojas con 5 - 7 lóbulos aovados,
follaje joven verde, nerviaciones de color verde por haz y envés. Las intersecciones
limbo-pecíolo y pecíolo-tallo de color verde. Pecíolos jóvenes verde-rojo y adultos
verdes. Presentan más de 8 raíces comerciales por planta, sésiles, rugosas, de
forma cónica, película externa castaño oscuro, subepidermis rosada y pulpa o xilema
blanca. Ciclo de cosecha de más de 10 meses. Se adapta bien a los suelos
afectados por salinidad en niveles bajos, pudiendo obtener altos rendimientos
agrícolas en suelos con rangos de 1100 a 2600 ppm de sólidos solubles totales.
Clon Selección Holguín
Ecotipo local. Planta de 1,5 a 2,5 m de altura, con 2 - 3 ramificaciones, de porte
inclinado, tallos carmelita claro-rojizo, hojas con 5 a 7 lóbulos lanceolados, hojas
jóvenes verde claro y adultas verde un poco más oscuro, con nervaduras verde
claro. Pecíolo amarillo por la parte superior y verde claro en la inferior tanto en hojas
jóvenes como adultas, crecen inclinados hacia arriba. Produce entre 6 - 8 raíces
comerciales por planta, rugosas, horizontales, cónicas-cilíndricas, con pedúnculo
corto, película externa de color castaño oscuro, epidermis rosado clara y pulpa de
color blanca. Ciclo de cosecha de más de 10 meses.
Clon Señorita.
Según (López et al., 1995), el clon Señorita es medianamente ramificada, alcanza
una altura de 1.50 a 2.50 m. El tallo es de color amarillo-rosado, muy vigoroso con
entrenudos cortos. Las hojas son de color verde con los nervios y pecíolos
ligeramente rosados en adultas, en hojas jóvenes los pecíolos son rojos por la parte
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superior y verde-rojo por la parte inferior. Las raíces crecen de forma oblicua y
bastante superficial, lo que facilita la cosecha. Son cortas, de color blanco y cada
planta produce un promedio de 8 – 12 raíces. El ciclo vegetativo es largo con más de
10 meses. Este último tomado como testigo, en la evaluación realizada.
Composición nutricional de la yuca.
Al examinar la composición nutricional de la yuca (tabla 1), comparándola con otros
alimentos alternativos de base, se encuentra que la yuca, la cocida o el casabe, a
pesar de no tener iguales valores proteínicos que el maíz, el trigo, el arroz o la papa,
representa en los demás elementos una opción interesante (Cartay, 2004).
13
Tabla 1. Comparación del valor nutricional de la yuca, la yuca cocida y el casabe con
otros alimentos de base, por 100 g de alimento (parte comestible).
Elementos Yuca Yuca Cocida
Casabe Maíz blanco
Pan de Trigo
Arroz blanco cocido
Papa cocida
Calorías (Kcal.) 148 126 343 98 283 111 71
Humedad (g) 61.6 65.3 12.5 74.1 32.2 73.1 81.2
Proteínas (g) 1.1 0.8 1.3 3.4 9.2 2.2 2.0
Grasas (g) 0.2 0.2 0.6 1.0 3.0 0.1 0.1
Glúcidos (g) 35.5 32.7 83.0 19.7 53.6 24.4 15.6
Fibras (g) 1.0 0.6 1.7 1.0 0.5 0.1 0.5
Cenizas (g) 0.6 0.4 0.9 0.8 1.5 0.2 0.6
Calcio (mg) 29 20 60 15 32 2 6
Fósforo (mg) 53 38 78 111 99 27 40
Hierro (mg) 0.7 0.5 3.1 0.5 0.7 0.3 0.7
Tiamina (mg) 0.06 0.04 0.08 0.2 0.09 0.01 0.1
Riboflavina (mg) 0.03 0.02 0.05 0.08 0.06 0.02 0.0
Niacina (mg) 0.60 0.4 0.7 2.00 1.10 0.20 1.10
Acido asc (mg) 35.00 8.00
Así aporta más calorías, grasas, glúcidos, Ca, P y similar cantidad de cenizas y Fe
que la papa cocida; más calorías, glúcidos, Ca, Fe y ácido ascórbico que el maíz,
aunque es pobre en proteína respecto a todos los demás en la tabla comparativa.
2.3.1 Condiciones climáticas y edáficas del cultivo .
Suelo
14
Respecto a la exigencia a los tipos de suelos se plantea que la yuca crece muy bien
en suelos pobres. Bajo condiciones de extrema acidez crece bien y da rendimientos
razonables (López et al., 1995; Cock y Howeler, 1978). La tolerancia a pH muy bajos
es debido a su habilidad para crecer en suelos con muy altas niveles de saturación
de aluminio (superior a 80 %) sin disminuir su producción (CIAT, 1978), pero es muy
susceptible a la salinidad. Al igual que otros cultivos, la yuca se desarrolla mucho
mejor en suelos fértiles y profundos con más de 20 cm de capa vegetal, con un buen
drenaje exterior e interior y con ausencia de elementos tóxicos para la planta (INIVIT,
2004).
Acidez del suelo
La yuca es un cultivo que se adapta a un pH que puede oscilar entre 5.5 y 7.0 Sin
embargo, hay estudios que indican que la yuca se adapta en suelos con pH de 3.5,
por lo tanto se puede decir que el cultivo se desarrolla en suelos ácidos hasta
suelos medianamente alcalinos.
En la zona del Atlántico Sur de Nicaragua (Nueva Guinea), el cultivo de la yuca
no encuentra problemas de acidez debido a que el pH superficial es 5.3 a 5.7 y en
las capas más profundas tienen un pH de 5.1 a 5.6.
(INTA. 2003)
2.3.2 Temperatura
La temperatura óptima para el normal desarrollo del cultivo fluctúa entre los 20 y 32
ºC, aunque las nocturnas entre 20 y 24 ºC favorecen la tuberización, las mínimas no
deben ser inferiores a los 15 ºC durante los primeros seis meses después de la
plantación, pues esto afecta el desarrollo vegetativo de la planta (López et al., 1995).
Las bajas temperaturas retardan la brotación de las yemas en las estacas de la yuca.
Cuando la temperatura del suelo es de 18 a 20ºC y la yuca se cubre con cinco o 10
cm de suelo, la brotación demora de 10 a 15 días, en comparación con lo que tarda
la brotación cuando existen temperaturas de 24 a 26 ºC, independientemente del
Clon de que se trate (López et al., 1995).
15
La planta de la yuca se ve muy favorecida en su desarrollo vegetativo cuando se
presentan temperaturas de 24 y 28ºC y alcanza mayor longitud de hojas si dichas
temperaturas están acompañadas de una alta humedad relativa (López et al., 1995),
todo ello características del trópico, por lo que es un cultivo muy favorable para esa
región.
2.3.3 Humedad
El período más favorable para la yuca en relación con la humedad en el suelo, es el
comprendido desde la formación del tubérculo hasta el máximo desarrollo vegetativo
(segundo período). Aunque se ha dicho que la yuca puede resistir terrenos secos,
está demostrado que para lograr una alta brotación es necesario que el suelo se
encuentre ligeramente húmedo. El cultivo de la yuca se planta en áreas con
precipitaciones bajas (750 mm por año) y sobrevive en áreas con períodos secos de
5-6 meses. La falta de humedad puede ocasionar pérdidas grandes en la brotación,
si ésta ocurre durante los primeros 20 días de la plantación de las estacas (López et
al., 1995; INIVIT, 2004).
Un mecanismo de defensa de la planta al déficit de agua es reducir su pérdida por
unidad de área; esto lo logra incrementando la resistencia al flujo de agua en el
trayecto entre el suelo y la atmósfera, reduciendo la conductancia estomática, lo que
disminuye también la pérdida de agua por transpiración; es aquí donde los estomas
juegan un papel importante en la economía del agua, pues a diferencia de la pérdida
de hojas, el cierre estomático no incluye el sacrificio de las reservas ya asimiladas y
elaboradas como potencial para la producción de nuevo follaje (López et al., 1995;
Ceballos y de la Cruz, 2004).
2.3.4 Humedad relativa
La yuca es muy sensible a la humedad relativa del aire. Ensayos realizados en el
CIAT demostraron que los estomas se cierran cuando el aire está seco, y que la
absorción de CO2 y la pérdida de agua disminuye cuando el potencial hídrico
disminuye, aun cuando el suelo tenga un buen contenido de agua; esto conduciría a
una disminución progresiva de la conductancia estomática desde las horas de la
mañana hasta el mediodía, con la consecuente disminución de la tasa de fotosíntesis
16
(El-Sharkawy y Cock, 1984; El-Sharkawy et al., 1984; Cock et al., 1985; El-
Sharkawy, 1990; Mejía de Tafur et al., 1997a).
La yuca cierra sus estomas cuando el aire está seco, lo cual es favorable
especialmente cuando este cultivo es sometido a largos períodos de sequía, ya que
al disminuir la transpiración el agua del suelo puede ser consumida lentamente y
maximizar la eficiencia en el uso del agua (El-Sharkawy y Cock, 1984).
2.3.5 Luz
La luz es un factor indispensable en el crecimiento de las plantas. De que proviene
del sol, los vegetales sólo utilizan el toda la radiación espectro entre las longitudes de
onda de 350 a 725 nanómetros, lo que representa 45% ó 49% del total de la
radiación recibida por la planta, llamada radiación fotosintética útil (Mejía de Tafur,
2004).
Los trabajos realizados en yuca en el Centro Internacional de Agricultura Tropical
(CIAT) en 1978, demostraron que el sombreo no solo hizo disminuir la tasa de
crecimiento, sino también la proporción de materia seca en las raíces (López et al.,
1995). En el cultivo de la yuca se ha podido comprobar que los clones cuyos
pecíolos están en un ángulo de 60º con el tallo, producen mayor rendimiento que los
que presentan un ángulo de inserción menor de 40º. Las hojas de estás últimas
plantas producen un autosombreo que evita que la luz llegue a todas las hojas, y
trae, como consecuencia, que las hojas elaboren pocos nutrientes (López et al.,
1995).
Las plantas presentan dos puntos conocidos como punto de compensación y punto
de saturación de luz. El punto de compensación es la intensidad de luz mínima que
la planta requiere para que los fotosintatos producidos sólo alcancen para ser
utilizados en el proceso de la respiración, sin que resulten sobrantes para el
crecimiento; por tanto, la tasa de fotosíntesis neta es igual a cero. El punto de
saturación es la intensidad de luz máxima que la planta puede recibir para saturar su
aparato fotosintético (Mejía de Tafur, 2004).
Trabajos realizados en el CIAT demostraron que el punto de saturación de luz en la
yuca, cuando crece en ambientes húmedos, es mayor de 1800 mmol m-2 s-1 (El-
17
Sharkawy et al., 1993); sin embargo, cuando se presentan condiciones de estrés
hídrico, el punto de saturación de luz es menor (Cock et al., 1987).
2.3.6 Vientos
El tallo de la yuca es poco resistente al viento cuando las plantas han florecido y
tienen una edad de cuatro a seis meses. El efecto del viento es más notable cuando
se presenta acompañado por lluvias que tienden a causar la inclinación de las
plantas en algunos clones, fundamentalmente en los ramificados (López et al., 1995).
Al producirse la caída de las plantas, las raíces tuberosas quedan fuera de la
superficie y son afectadas por los rayos solares y otros elementos, con su
consiguiente deterioro (López et al., 1995).
2.4 Fisiología del cultivo
Al sembrar las estacas de yuca brotan de la parte superior una o más yemas; las
raíces salen, por lo general, del callo que se forma en la base de la estaca (raíces
basales) y de los nudos inferiores (raíces nodales). Durante las primeras semanas, la
planta forma raíces fibrosas; 2 ó 3 meses después de la siembra, algunas de las
raíces fibrosas comienzan a acumular almidón, proceso que continúa hasta la
cosecha final (Cock y Rosas, 1975, López et al., 1995).
2.4.1 Ciclo de emisión foliar y de vida de la hoja
Durante los 3 primeros meses del cultivo, la formación de hojas tiene prioridad sobre
la formación de las raíces de almacenamiento; después, la planta continúa formando
hojas, a la vez que almacena almidón en las raíces. Se ha comprobado que una vida
foliar larga es ventajosa para la obtención de altos rendimientos. Según López et
al., (1995), la prolongación de la vida foliar hasta 120 días provoca un incremento en
el rendimiento de un 25%, aproximadamente. Argumenta que la tasa fotosintética de
las hojas viejas es ligeramente inferior a la de las hojas jóvenes hasta la edad de 90
a 100 días, lo que indica que las hojas más viejas continúan haciendo contribuciones
muy útiles a la fotosíntesis total de la planta.
La tasa de formación de las hojas presenta poca variabilidad genética; en todos los
clones la tasa de formación foliar disminuye a medida que la planta envejece. La
18
formación de hojas es también una característica de los clones, las primeras hojas
surgen generalmente entre los 8 y los 12 días después de hecha la plantación; el
crecimiento de los lóbulos y el pecíolo es más intenso en los primeros cinco días de
iniciado el desarrollo foliar, alcanzando su máximo crecimiento entre 12 y 14 días
(López et al., 1995; Mejía de Tafur, 2004).
Al principio del ciclo vegetativo mueren muy pocas hojas de la planta: un 4 % en los
clones poco ramificados y un 6% en los muy ramificados. Después del séptimo mes
aumenta rápidamente la muerte de las hojas y en el octavo mes del ciclo, los clones
poco ramificados en porcentaje de las hojas secas es de 95% aproximadamente
(López et al., 1995).
2.4.2 Acumulación de materia seca en las hojas
En valor de la materia seca e las hojas depende del clon, la longevidad, la inclinación
de la estaca utilizada para la plantación, la procedencia de la estaca, es decir de que
parte del tallo proviene, y de las condiciones ambientales (López et al., 1995).
La cantidad de materia seca de las hojas comienza a aumentar de modo acelerado a
partir de los 60 hasta los 120 días aproximadamente. Después continuará
aumentando ligeramente hasta los 180 días más o menos, momento en que alcanza
su máximo valor.
Posteriormente va disminuyendo a causa de la acelerada caída de las hojas (López
et al., 1995; Mejía de Tafur, 2004).
La longitud de las estacas influye en la acumulación de materia seca de las hojas.
Las estacas muy largas, hasta 80 cm plantadas horizontalmente presentan varias
yemas, lo que ocasiona la brotación de varias plantas de la misma estaca y el
incremento de la materia seca en la hoja la que disminuye a medida que las estacas
son más pequeñas (20 cm) y presentan menos brotes (López et al., 1995).
2.4.3 Acumulación de materia seca en los tallos
El contenido de materia seca en el tallo se eleva de modo continuo hasta los 120
días. Generalmente, hasta esta edad se produce un violento incremento del
contenido de la materia seca hasta los 240 días. También este contenido en los
19
tallos se encuentra en función del clon, la longitud y la inclinación de las estacas de
plantación. Existe gran diferencia del contenido entre materia seca de tallos de
plantación de 80 cm y de otros de menores longitudes. Siendo mayor en los tallos
provenientes de estacas de mayor longitud. El efecto producido por la longitud de la
estaca provoca un gran consumo de sustancia de reserva de la planta en la
formación de tallos, lo que afecta considerablemente el desarrollo de las raíces
tuberosas (López et al., 1995; Mejía de Tafur, 2004).
2.4.4 Acumulación de materia seca en las raíces tuberosas
El contenido de materia seca en las raíces tuberosas depende de los mismos
factores que el de las hojas y el tallo. Sin embargo, en las plantas se muestran
contenidos muy altos de materia seca en el follaje, se producen valores muy bajos de
materia seca en las raíces tuberosas, lo cual indica que los factores que favorecen
un follaje exuberante son desfavorables para el desarrollo de las raíces tuberosas.
Es decir, la materia seca en las raíces tuberosas de las plantas procedentes de
estacas de 20 cm de longitud plantadas horizontalmente es más que en las raíces
tuberosas procedentes de estacas de 60 a 80 cm plantadas de forma horizontal
(López et al., 1995).
2.4.5 Área foliar
El área foliar de la planta se incrementa hasta el sexto o séptimo mes del ciclo
vegetativo; después comienza a aumentar la caída de las hojas, lo que provoca la
disminución de dicha área. El Índice de Área Foliar (IAF) se define como el área total
de la planta por el área ocupada en el suelo por la planta y es independiente de la
orientación de las hojas (López et al., 1995; Mejía de Tafur, 2004).
El desarrollo y crecimiento de la planta están determinados por la relación IAF y por
la producción y distribución de biomasa total a la cosecha final. A medida que el IAF
aumenta, la tasa de rendimiento tiende a incrementarse hasta que ésta alcanza un
nivel de 4 a 5, lo que corresponde a una intercepción de luz del 95% (Cock y El-
Sharkawy, 1988; López et al., 1995).
20
En la yuca, el IAF máximo oscila entre 4 y 8, dependiendo del clon y de las
condiciones atmosféricas y edáficas que prevalecen durante el crecimiento del
cultivo (El-Sharkawy y Cock, 1987b; López et al., 1995; Mejía de Tafur, 2004).
El Índice de Área Foliar (IAF) aumenta entre los 3 y 6 meses de edad del cultivo y
luego baja gradualmente a medida que las hojas más viejas caen, debido a la falta
de luz en la parte basal del dosel y a que la tasa de formación de hojas disminuye
(Rosas et al., 1976; Cock y El-Sharkawy, 1988). Sin embargo, el IAF varía de
acuerdo con el clon y con la disponibilidad de agua (Mejía de Tafur et al., 1997b).
Durante un período de sequía, el cultivo reduce su IAF, produce menos hojas y éstas
son más pequeñas, y aumenta la retención de las hojas ya expandidas (Mejía de
Tafur, 1994; Mejía de Tafur et al., 1997b).
La reducción del área foliar durante un período de sequía puede considerarse como
un mecanismo de la planta para disminuir la pérdida de agua por transpiración (El-
Sharkawy y Cock, 1987b). Sin embargo, una reducción del IAF durante un período
prolongado de sequía también reduce la tasa de crecimiento del cultivo, siendo esa
disminución más pronunciada en la parte aérea de la planta (El-Sharkawy y Cock,
1987b; Mejía de Tafur, 1994; Mejía de Tafur et al., 1997b)
2.4.6 Fotosíntesis
Estudios realizados (El-Sharkawy y Cock, 1987a; El-Sharkawy y Cock, 1990; Cock et
al., 1987) indican que la yuca tiene un ciclo fotosintético intermedio entre las plantas
C3 y C4, sin la típica anatomía C4. Sin embargo, ésta cuenta con características
morfológicas y fisiológicas que favorecen su supervivencia en ambientes adversos,
como son su capacidad de reciclar porciones considerables de CO2 respiratorio en
presencia de la luz, la presencia de la mayoría de los estomas en el envés de sus
hojas, entre otros (Indira, 1989; Cerqueira, 1989; El-Sharkawy y Cock, 1990).
El máximo valor de la fotosíntesis de la yuca se alcanza alrededor de 40 mg/cm.2/h
de CO2 fijado. Se ha comprobado que las hojas maduras no ofrecen mucha
diferencia en la actividad fotosintética que las hojas jóvenes, hasta que la planta
llegue a la edad de 100 días, porque antes de esa fecha aún no se presentan
limitaciones por sombreo mutuo (López et al., 1995; Mejía de Tafur, 2004).
21
La asimilación neta de la planta está muy influida por el IAF. A medida que este
aumenta por encima de 4 se produce generalmente una disminución en la
asimilación neta, que se atribuye al mutuo sombreo de las hojas con la limitación
considerable de la fotosíntesis.
Con un IAF elevado las plantas invierten gran cantidad de elementos nutritivos en la
valoración del follaje; por otra parte, la mayor superficie foliar ocasiona un alto valor
de la respiración total que en este caso no puede ser totalmente compensado por un
proceso fotosintético deficiente (López et al., 1995).
2.5 Labores de cultivo
2.5.1 Preparación del suelo
En función de las exigencias agrotécnicas del cultivo se plantea que una adecuada
preparación de suelos es la base para la obtención de incrementos en los
rendimientos de los tubérculos, por lo que es necesario realizar esta labor con el
máximo de exigencia en cuanto a profundidad y mullición. Se debe garantizar un
suelo mullido de 20-25 cm de profundidad, permitiendo de esta forma una buena
aireación e irrigación (López et al., 1995). Santos (1967), citado por López et al.,
(1995) encontró que el método de preparación de la tierra influía significativamente
en el porcentaje de brotación y enraizamiento. No obstante, esta debe hacerse con
toda la precaución para evitar afectaciones al suelo y la erosión.
2.5.2 Control de malezas
El cultivo de la yuca, el problema de las malezas es tal magnitud que a veces
representa 30% o más del costo de producción. Las malezas representan un
incremento sustancial en los costos de producción (Quiñónez y Moreno, 1995;
Marcano et al., 2000).
Estas labores están determinadas por las condiciones del terreno, siendo necesario
realizar cuantas se requieran con el objetivo de mantener libre el cultivo de plantas
indeseables (INIVIT, 2004). Según Marcano et al., (2000), Báez et al., 1998 y Calle
(2004), existen varios métodos para el control de malezas en el cultivo de la yuca:
Método cultural
22
Este método engloba prácticas específicas que logran hacer el cultivo más
competitivo que las malezas. La selección adecuada del cultivar, el uso de semilla de
buena calidad, la correcta densidad de siembra y la protección del cultivo son las
prácticas culturales recomendadas, entre otras.
Método manual
Como consecuencia del lento crecimiento inicial de la planta de yuca, es necesario
llevar a cabo varias limpias con implementos manuales hasta que el cultivo cierre
completamente.
Esta modalidad es utilizada en pequeñas áreas cuando existe mano de obra
disponible y los costos de la misma no sean muy elevados.
Método mecánico
Generalmente utilizado en combinación con el control manual o el químico. Este
método consiste en la utilización de herramientas (ganchos, cultivadoras, rotativas)
tiradas por tractores o animales entre las hileras, cuando el cultivo tenga entre 15 y
20 días de plantado y hasta que la cobertura del mismo lo permita.
Este método elimina las malezas que crecen entre las hileras, pero no elimina las
que crecen entre plantas, teniendo que recurrir al uso de herramientas menores para
su control.
Método químico
Este control se realiza a través de herbicidas preemergentes y generalmente
previene el crecimiento de las malezas por un lapso que puede estar alrededor de
45 a 50 días, período durante el cual el follaje de la yuca aún no ha cerrado. Esta
situación de insuficiencia del control químico en relación con el crecimiento y
desarrollo de la yuca hace necesario que el productor tenga que utilizar deshierbes
posteriores.
2.5.3 Riego
La información sobre los requerimientos hídricos de la yuca, en general es escasa.
La experiencia actual sugiere que la planta requiere humedad para la brotación y el
establecimiento del cultivo, incrementando su demanda entre el cuarto y quinto mes
23
después de sembrado. También se ha estimado que el riego demasiado frecuente
puede producir un crecimiento excesivo de la parte aérea, reduciéndose la
producción de biomasa radical (Caraballo de Silva et al., 2001)
El Instituto Nacional de Investigaciones de Viandas Tropicales (INIVIT, 2004)
recomienda un riego antes de la plantación (mine) y otro posterior a ésta (vivo) con
norma que puede variar entre 200 - 300 m³/ha en dependencia del tipo de suelo y
continuando con intervalos de 12 - 15 días en suelos negros y de 10 a 12 días en
suelos rojos e igual norma hasta completar 4 ó 5 riegos, son suficientes para una
eficiente brotación. En caso de poder continuar regando el área, debe hacerse con
los mismos intervalos y normas hasta los 120 -135 días de realizada la plantación.
2.5.4 Fertilización
Dentro de las alternativas viables para recuperar, sostener y aumentar la fertilidad y
productividad de los suelos dedicados al cultivo de la yuca para aumentar su
rendimiento y la calidad de la cosecha, está la fertilización tanto química como
orgánica.
Varios autores han realizados investigaciones relacionadas con la aplicación de
fertilizantes en el cultivo de la yuca.
El-sharkawy y Cadavid, (2000) comprobaron el efecto de aplicaciones de potasio
sobre la calidad de las raíces tuberosas, en términos de contenido de ácido
cianhídrico total. Fue notorio el efecto positivo al reducir el contenido a medida que
se incrementa la tasa de aplicación de potasio. Concluyendo que el potasio es un
elemento esencial y limitante en la producción de yuca. Se ha comprobado además,
que las aplicaciones fosfóricas (75 Kg. P/ha) también influyen positivamente sobre
los rendimientos del cultivo, aunque algunos clones tienen altos rendimientos con y
sin aplicación de fósforo (Cadavid, 2000; Cadavid, 2004).
El Azotobacter y la Fosforina deben aplicarse con humedad en el suelo y en horas de
poca incidencia de los rayos solares. Se recomienda como fertilización química la
fórmula Completa en dosis de 0,7 - 0,8 t/ha (8 – 10 t/cab) antes de la plantación o a
los 60 - 70 días después en bandas a ambos lados del cantero, con una relación de
2:1:3 (N- P2 05 - K20) (INIVIT, 2004).
24
Según INIVIT (2004) la fertilización se puede realizar con aplicaciones de materia
orgánica a razón de 2.2 a 3.3 Kg. /planta, localizada en el surco (15 a 20 t-1ha).
Pueden utilizarse diferentes fuentes como la cachaza, gallinaza, humus de lombriz,
compost, etc. según se disponga. Además se pueden utilizar biofertilizante. Las
Micorrizas a razón de 100 g/planta en la plantación debajo de la estaca; 20 L/ha de
azotobacter en la plantación e igual dosis a los 50 ó 60 días con la solución final de
400 L/ha y la fosfórina a razón de 20 L/ha en la plantación con una solución final de
200 L/ha.
Estiércol.
Características físico-químicas del Estiércol.
Evaluaciones efectuadas aportan datos sobre las características físico-químico del
estiércol a diferentes profundidades de almacenamiento o en pilas sujetas a
tratamientos para su descomposición con 1.0 m de alto en análisis realizados a
diferentes profundidades de la pila (de 0 a 60 cm.), donde el promedio de estos
valores arrojan los resultados de las características físicas y químicas del estiércol
vacuno mostrados en las tabla No. 2 y Tabla No. 3.
Tabla No. 2 Características físicas del estiércol vacuno 2003.
Profundidad cm. Temperatura ºC
Densidad aparente g/cm3 P. S. %
Humedad
0 – 60 41.25 0.4625 32.475
Como el estiércol en su composición no solo lleva la parte sólida que se desecha
al animal, sino también otras sustancia como la orina, paja, etc. Es importante
tener una referencia lo mas completa posible de todos los elementos solubles e
intercambiables y así estar en condiciones de explicar los posibles cambios físicos,
químicos, y biológicos que ocurrirán en el suelo después de la aplicación de
estiércol .Por ejemplo el por ciento de Sodio intercambiable es extremadamente alto
y rebasa los limites permisibles del suelo (15%). Otro factores la conductividad
25
eléctrica la cual esta en un rango de 5.52 a 7.72 Dsm-1, que rebasa también los
limites permisibles del suelo, esto indica que la concentración salina del estiércol es
alta debido a las dietas que se les da a los animales la cual es muy rica en sales .
Esto justifica aun mas el estudio porque dosificar y observar la biodegradación del
estiércol es ya una necesidad en la laguna, ya que el productor de leche lo esta
aplicando en cantidades muy altas hasta mas de 200 ton ha-1 y esto salinaza al
suelo pero lo mas crítico es que lo sodifica, contaminando este recurso con efectos
reversibles pero de recuperación costosa. (Salazar Sosa E. et al. 2004)
Debemos de tener claro cada elemento que interviene en las aplicaciones de
materias orgánicas que puedan aportar intercambiablemente con el suelo, de
manera que pueda analizar cada nutriente aportado. Como se muestra en la tabla
No. 3. (Salazar Sosa E. et al. 2004)
Tabla No. 3. Características químicas (intercambiable) del estiércol 2003.
Total
N
%
P
%
K
%
Ca
%
Mg
%
1,3675 0,3615 3,3225 3,3925 0,725
Na
%
Mn
Ppm
Fe
Ppm
Zn
Ppm
Cu
Ppm
Bo
Ppm
Profundidad
0 – 60
1,01 592,5 11427,5 200,5 48,5 412,5
Simbología N = Nitrógeno Ca. = Calcio . Mg .= Magnesio Cu = Cobre P = Fósforo Mn =Manganeso Na = Sódio Bo = Boro K = Potasio Fe = Hierro Zn =Zinc
26
No se recomienda añadir en los campos estiércol animal no tratado (sin proceso de
transformación en abono) durante el periodo de cultivo Tratamientos activos.
Los tratamientos activos son aquellos en los que las pilas de materia son tratadas en
condiciones que aceleraron el proceso de transformación de los desechos en abono.
El tratamiento activo para transformar materia orgánica en abono es el tratamiento
más ampliamente utilizado por los agricultores. (Salazar Sosa E. et al. 2004)
Con los tratamientos activos, las pilas de materias son removidas con frecuencia o
bien se les suministra otro tipo de aeración con miras a mantener condiciones
adecuadas de oxígeno (aeróbicas) dentro de la pila. Se controlan los niveles de
temperatura y humedad y se añaden suplementos si es necesario para obtener una
humedad óptima y una tasa adecuada de carbono-nitrógeno que complete el
proceso de transformación en abono, Dicho proceso está completa cuando la pila
cesa de estar caliente. Bajo condiciones adecuadas, la elevada temperatura
generada durante el proceso de fermentación destruye la mayor parte de los
patógenos en un período de tiempo relativamente corto. (Salazar Sosa E. et al. 2004)
Se puede entonces proceder al análisis microbiano del abono para determinar si el
procedimiento fue eficaz y eliminó las bacterias patógenas. La presencia de E. coli y
Salmonella suele ser utilizada como indicador, puesto que si están presentes en el
abono, el fertilizante orgánico no deberá ser añadido al suelo y será necesario
proceder a tratamientos adicionales del fertilizante.
Estiércol animal no tratado
El uso de estiércol animal no tratado (sin proceso de formación de abono) en la
producción de productos vegetales comestibles da lugar a un mayor riesgo de
contaminación que el uso de estiércol tratado y, por lo tanto, NO se recomienda.
A pesar de que el estiércol no tratado nunca está recomendado para su uso como
Fertilizante, en algunas regiones se utiliza. En este caso, deberá ser añadido a la
tierra durante la preparación del suelo y antes de la siembra. Los microorganismos
en el suelo pueden reducir el número de organismos patógenos en el estiércol. No
obstante, el tiempo transcurrido es un factor importante. El estiércol ha de ser
27
incorporado al suelo y la tierra industrializados que han fijado las pautas para los
productores nacionales y para la exportación.
La normatividad de la agricultura orgánica comprende el establecimiento de
estándares para la producción y el procesamiento de los productos orgánicos, así
como los instrumentos que posibilitan el cumplimiento de los sistemas de regulación.
Tratamientos para reducir los riesgos asociados con el estiércol
Para transformar los desechos orgánicos en fertilizantes seguros (abono), es preciso
seguir un método que reduzca la presencia de bacterias patógenas. La creación de
abono es un proceso natural, biológico, mediante el cual el material orgánico se
degrada y descompone.
El proceso de transformación en abono es llevado a cabo por bacterias y hongos
que fermentan el material orgánico y lo reducen a un humus estable. Debido a que el
proceso de fermentación genera mucho calor, reduce o elimina los riesgos biológicos
en la materia orgánica. (Lamkin, 1998 y Kéller Andreas, 2002). Los tratamientos de
transformación en abono pueden ser divididos en dos grupos, tratamientos pasivos y
tratamientos activos.
Tratamientos pasivos
Los tratamientos pasivos se basan en el mantenimiento de los desechos orgánicos
bajo condiciones naturales. No se remueven las pilas de abono y el oxígeno libre
presente en ellas es utilizado con rapidez, dando lugar a condiciones anaeróbicas,
que retrasan el proceso de transformación en abono. Sin embargo, los factores
ambientales tales como la temperatura, la humedad y la radicación ultravioleta, si
actúan con un tiempo suficiente, inhiben el crecimiento de organismos patógenos y,
eventualmente, los destruyen.
El mayor obstáculo con que se enfrenta este método es que toma demasiado tiempo
para reducir de manera significativa el número de patógenos en la materia y resulta
difícil determinar el tiempo necesario para que este proceso tenga lugar. La cantidad
de tiempo que se necesita depende del clima, de la región y de la estación del año,
así como del origen y el tipo de estiércol y de materia orgánica utilizada. Debido a
estas incertidumbres, la transformación pasiva en abono no está recomendada.
28
2.6 Multiplicación
La yuca se multiplica de tres formas: por semilla botánica y agamicamente por
pedazos del tallo o estacas, así como por cultivo de tejido de las estacas o de las
hojas. La multiplicación, reproducción o propagación por semilla botánica es muy
lenta y poco productiva; se emplea solamente con el fin de obtener nuevos clones
que luego fijan sus caracteres por vía vegetativa (López et al., 1995; INIVIT, 2004).
Propagación por estacas
La forma de propagación por estacas exige una serie de requisitos como son: parte
del tallo de donde procede, longitud, edad, corte, almacenamiento, profundidad a la
que se debe plantar y labores culturales posteriores. Cuando empleamos la estaca
de la planta de yuca para lograr altos rendimientos hay que tener presente el clon
utilizado, así como la posición que ocupa en el tallo de la planta (López et al., 1995).
Preparación de las estacas
El tamaño y calidad de la semilla son de importancia para lograr rendimientos
óptimos en cualquier sistema de producción. De acuerdo con López et al. (1995), la
calidad de la semilla de yuca está determinada por la edad del tallo empleado como
material de propagación, el número de nudos por estacas, el espesor y la longitud de
la estaca, las diferencias entre clones en cuanto a los porcentajes de brotación y
enrraizamiento, la duración al almacenamiento y el grado de daños mecánicos que
sufre la estaca durante la preparación, transporte, almacenamiento y siembra.
Parte del tallo de donde procede la estaca Se pueden distinguir tres o más tipos de
estacas cuando se trata de clones pocos ramificados. Estas estacas proceden de la
base, del centro o de la parte superior del tallo primario o principal. Las estacas
jóvenes brotan con más lentitud, en menor número y con mayor longitud de las
raíces tuberosas que de las estacas viejas. Las yemas de las estacas brotan entre
los 10 y los 20 días y dan origen a un tallo con hojas y raíces (López et al. 1995)
La máxima brotación y vigor del tallo se logra cuando utilizamos estacas procedentes
de la base del tallo principal de la planta. Cuando se emplean estacas de la parte
extrema (apical) debe preverse que tiene pocas reservas. La parte basal del tallo
producen más brotes que la parte joven, ya que coinciden factores internos y
29
externos que favorecen este efecto, como son: mayor reserva nutritiva, edad de la
yema, menor contenido de agua y un mayor periodo de reposo (López et al. 1995).
Tamaño de las estacas y número de yemas
Es posible tener una planta de yuca a partir de una estaca muy corta que solo tenga
una yema, pero las posibilidades de que esta germine y enraíce bajo condiciones de
campo son muy escasas. Por otra parte, las estacas de 50 ó más cm de largo tienen
mejores probabilidades de enraizamiento y germinación, pero seria muy costoso el
manejo y transporte, así como que se produciría un menor número de estacas por
planta. Además, en estacas de mucha longitud puede presentarse dominancia apical
como encontró Ayala (1984) en plantaciones de King grass. Esto podía significar una
pérdida innecesaria de propágulos. Por otro lado, estacas muy cortas reducen la
disponibilidad de nutrientes de las yemas emergentes y son presumiblemente
mayores los riesgos de disecación si falta la humedad del suelo (Ayala, 1984; López
et al., 1995).
Se ha comprobado que cada nudo del tallo tiene una yema axial que teóricamente
puede producir una planta. Sin embargo, las estacas de 1-3 nudos enraízan poco y
su germinación es pobre. Por estas razones se ha establecido como longitud más
favorable a 20-25 cm y que tenga como mínimo de 7-9 yemas. En estudios
realizados por el CIAT (1978) comparando longitudes de 20, 40 y 60 cm, obtuvieron
rendimientos significativamente mayores en las de 20 cm (INIVIT, 2002; INIVIT,
2004).
Edad del tallo Se plantea que cuando las estacas proceden de plantas jóvenes son
altamente susceptibles al ataque de agentes patógenos y de insectos. Además,
dichas estacas se deshidratan rápidamente debido a su alto contenido de agua. Las
plantas de edad avanzada tienen inconvenientes pues tienden a presentar gran parte
de su tallo altamente lignificado. Debe agregarse, según Ayala (1984), que las
estacas procedentes de plantas muy adultas, además de menor cantidad de
humedad, su nivel de auxinas es menor que en plantas más jóvenes. Por lo que
teniéndose en cuenta ésta se deben tomar plantas que tengan de 10-15 meses de
edad. Respecto a esto Conceicao y Sampallo (1973) citados por López et al., (1995)
30
utilizaron estacas provenientes de 12 meses de edad en un área brasileña
obteniéndose buenos resultados por lo tanto puede analizarse que se deben utilizar
de 10 a 15 meses de edad. En caso de tallos almacenados se debe observar al
hacer el corte la emisión de látex, si este demora en aparecer, el material debe ser
descartado independientemente de la edad que haya tenido la planta del que
procede (López et al., 1995; INIVIT, 2004).
Número de nudos
Este factor está muy relacionado con la variedad. Estacas de 20 cm y tallos de igual
edad y de la misma parte de la planta, pero provenientes de dos clones distintos,
pueden tener diferentes números de nudos. Como se mencionó anteriormente se
pueden emplear estacas con un solo nudo pero los riesgos bajo condiciones de
campo son grandes. En dos experimentos efectuados en la zona de bosque de
Ghana, bajo condiciones adecuadas de precipitación (1080 mm), se evaluaron
estacas con 2-8 nudos (CIAT, 1978).
El rendimiento aumentó con el número de nudos hasta 5, los incrementos
subsiguientes en el número de nudos no afectaron los rendimientos. Las estacas
más largas tenían más nudos enterrados que las otras, presumiblemente esto daría
más tallos y hojas que a su vez producirían rendimientos más altos (López et al.,
1995; INIVIT, 2004).
Almacenamiento de las estacas
Después de cortadas, las estacas se pueden plantar inmediatamente o conservarse
a la sombra por algún tiempo, pero nunca más de 20 días. Generalmente los
agricultores almacenan los tallos mientras terminan de preparar el suelo o hasta que
exista humedad para poder plantar. Si se prolonga el tiempo de almacenamiento y
conservación de los tallos, ocurren brotaciones de las yemas de la parte apical,
contaminación por agentes e insectos y deshidrataciones del material. La
consecuencia final de un largo almacenamiento será una disminución del número de
plantas por unidad de superficie que se acentuará a medida que el almacenamiento
se prolongue (López et al., 1995; INIVIT, 2004).
31
Las estacas serán colocadas de forma horizontal sobre el suelo y cubierta totalmente
con tierra para rellenar los espacios entre los tallos e impedir el contacto del aire con
los tejidos del vegetal. La superficie de la tierra debe quedar convexa para facilitar el
escurrimiento del agua (López et al., 1995; INIVIT, 2004).
Daños físicos de las estacas
Cualquier daño físico que sufra una estaca puede disminuir su calidad. Los daños
físicos, tanto de la epidermis como de las yemas, pueden ocurrir durante la
preparación, transporte, almacenamiento y la plantación de las estacas, debido a
golpes o a fricción.
Cada herida puede ser una nueva entrada para microorganismos que causarán
pudriciones en las estacas durante el almacenamiento o después de la plantación.
Se deben evitar los golpes fuertes durante el corte y transporte de los tallos o ramas
seleccionadas como material de propagación (López et al., 1995).
Plantación El proceso de plantación debe realizarse con mucho cuidado para lograr
que la planta se desarrolle perfectamente y se pueda alcanzar altos rendimientos.
Según INIVIT (2004) existe un grupo de factores que se deben tener en cuenta a la
hora de la plantación:
Época de plantación.
Métodos de plantación (cantero, plano, surco).
Formas de plantación (vertical, horizontal, inclinada).
Sistema de plantación (manual, mecanizado, semimecanizado).
Distancia de plantación.
Profundidad de plantación.
Época de plantación
La época de plantación es uno de los factores más importantes para el cultivo de la
yuca, ya que sus rendimientos dependen en gran medida de esta. La época de
plantación adecuada puede disminuir la incidencia de plagas y enfermedades en el
cultivo. La época de plantación también depende de algunos factores como el clima,
32
los suelos y el ciclo vegetativo de los clones. Por lo tanto, en Cuba, se plantea que la
época de plantación debe extenderse desde el 1 de noviembre al 30 de abril, aunque
por sus condiciones hay regiones en Cuba que se planta de mayo - agosto, pero su
período óptimo se desarrolla del 15 de noviembre al 30 de diciembre, pues la planta
recibirá suficiente agua cuando más lo necesita (entre los 4 y 6 meses de edad).
Además, este período le permitirá realizar eficientemente las labores de cultivo hasta
que cierre la plantación (López et al., 1995; INIVIT, 2002; INIVIT, 2004).
Métodos de plantación
Según López et al., (1995) los métodos de plantación dependen fundamentalmente
del tipo de suelo y de los medios con que se cuente para formar el lecho de suelo
donde se plantará las estacas. Existen diversos métodos los cuales se describirán a
continuación:
En surco: Las estacas se sitúan en el fondo del surco y se tapa con 5 ó 10 cm de
tierra.
En cantero: Se construyen con el empleo de un arado de doble vertedera u otro
similar.
En su parte superior es de 15-20 cm y en la base de 90-110-120 cm
aproximadamente.
En plano: Se emplea en suelos ligeros o sueltos con buen drenaje, se planta la
estaca de formas manual o mecanizada con relativa facilidad y se tapa con tierra.
El establecimiento desde hace algunos años del sistema colombiano (cantero) de
plantación en nuestro país, ha contribuido significativamente al aumento de los
rendimientos en el cultivo de la yuca.
En otros países los criterios sobre los métodos de plantación son variados,
dependiendo mucho del lugar y de sus condiciones edafoclimáticas. Según Toro et
al. (1984) citado por INIVIT, (2004) los estudios llevados a cabo por el CIAT en los
llanos orientales demostraron que la plantación en plano es ventajosa durante la
estación de seca, mientras que la plantación en camellones es más aconsejable
durante la estación húmeda. Lulofs, (1980) citado por López et al., 1995, indicó que
33
la plantación en plano en Malasia era satisfactoria, pero que los camellones
permitían obtener un establecimiento más uniforme, que facilitaban la cosecha y
controlaban mejor la erosión, en tanto Harper (1993) citado por López et al., 1995,
afirmó que en Tailandia la plantación en camellón daba menores rendimientos que la
plantación en plano.
Formas de plantación
La variedad y los efectos edafoclimáticos influyen también en alto grado en la
posición de siembra. Antes de hacer cualquier recomendación, es necesario
experimentar en diferentes zonas ecológicas para determinar la posición más
adecuada. En el cultivo de la yuca existen tres formas de colocación de las estacas:
inclinada, horizontal y vertical (López et al., 1995).
Forma inclinada: consiste en introducir las estacas en el cantero con un ángulo
variable de 20-45 grados con respecto al fondo. La parte más vieja de la estaca
queda introducida en el suelo hacia la mayor profundidad; generalmente se planta
por completo con tierra o se deja una pequeña porción fuera de la superficie del
suelo. Es importante que las semillas no queden con las yemas invertidas, ya que
esto retarda considerablemente la brotación.
Método horizontal: consiste en plantar las estacas de 20 cm de longitud, acostadas
en el cantero o surco y cubiertas con 5 ó 10 cm de tierra porque es fundamental que
se tenga cuidado que las semillas no queden muy profundas.
Método vertical: consiste en plantar las estacas verticalmente en el cantero y
dejando la parte más joven hacia arriba, con una yema casi afuera de la superficie
del suelo.
De las tres formas de plantación mencionadas, la inclinada y la horizontal son las
más utilizadas. La forma vertical presenta ventajas sobre la horizontal como son:
mayor brotación, cierre más temprano del campo y brotación más uniforme. Sin
embargo, la forma horizontal presenta una ventaja sobre la inclinada y es que la
estaca puede ser plantada y cosechada en forma mecanizada. Por lo demás, no
existen diferencias considerables en cuanto a los rendimientos de las raíces
34
tuberosas obtenidas en ambas formas. La vertical ha sido eliminada ya que es difícil
de cosechar y el rendimiento es menor que las otras (INIVIT, 2004).
La posición de plantación depende principalmente de las condiciones
edafoclimáticas. La plantación horizontal generalmente se efectúa en la estación de
seca (octubre-noviembre) para preservar la humedad. Este método da un porcentaje
de brotación y un rendimiento mayor, debido a que las raíces se forman en más
puntos de crecimientos. Las raíces también tienden a crecer más cerca de la
superficie del suelo, lo cual facilita la cosecha.
La plantación inclinada o vertical se utiliza donde las precipitaciones son altas y
durante la estación húmeda (mayo-octubre), o donde las estacas horizontales
pueden pudrirse como en las regiones con un alto contenido de humedad del suelo,
como en los lugares donde se acumule agua (INIVIT, 2004).
Sistema de plantación
Según López et al., (1995), existen dos sistemas de plantación en el cultivo de la
yuca; manual y mecanizado. El manual consiste en regar las estacas en el fondo del
surco (aproximadamente a 15 cm de profundidad) o sobre el cantero, después son
cubiertas con una capa de tierra con 5 cm de espesor. La plantación mecanizada se
puede realizar con una transplantadora o sembradora. Las estacas para este método
deben presentar una longitud de 20-40 cm.
Distancia de plantación
La distancia de plantación está en función de varios factores, tales como el hábito de
crecimiento del clon (erecto o ramificado), la fertilidad del suelo, si es en riego o en
secano, tipo de plantación (manual o mecanizado), método de plantación, etc.
Según instructivo técnico del INIVIT (2004), en nuestras condiciones las distancias
de plantación que se establecen son las siguientes (tabla 4):
35
Tabla 4. Distancias de plantación del cultivo de la yuca.
CON RIEGO
Clones MARCO DE PLANTACIÓN
Erecto 1.20 x 0.70 m 1.40 x 0.70 m 1.20 x 0.80 m
Ramificado
DE SECANO
Erecto 0.90 x 0.90 m
Ramificado 0.90 x 0.90 m
Se encuentran en estudio los marcos de 90 x 50 cm, 90 x 60 cm, 80 x 50 cm.
Profundidad de plantación
La profundidad de plantación es también un factor agrotécnico que influye sobre el
desarrollo de las raíces tuberosas. Un aspecto que debe tenerse en cuenta lo
constituye el tipo de suelo, si es arenoso se han de tapar las estacas con mayor
cantidad de tierra que si fuese arcilloso pesado y húmedo o que se empleará riego.
Tan y Berttran, (1982) creen que la profundidad de plantación debería regularse de
acuerdo con las condiciones ambientales. Una exposición excesiva de las estacas
en áreas donde la humedad del suelo es inferior a la óptima podría dar como
resultado establecimientos bajos y en consecuencia menor rendimientos. Celis y
Toro, (1974) afirman que las estacas se pueden sembrar superficialmente o
profundamente en varias posiciones. Los criterios que deben tenerse en cuenta son:
para suelos secos, arenosos, las estacas se deben plantar a mayor profundidad,
mientras que en los suelos húmedos, pesados se debe hacer superficialmente. Sin
embargo, en el primer caso debe recordarse de que la plantación profunda dificulta la
cosecha (Ribeiro, 1990) y aumenta los costos de producción cuando ésta última se
efectúa manualmente.
Normanha y Pereira (1964) citados por González, J. (2002) evaluaron tres
profundidades (5, 10, 15 cm) y dos estaciones de plantación en un período de tres
36
años bajo condiciones cálidas y secas. Las estacas sembradas a 15 cm de
profundidad brotaron más rápidamente y en un período más corto de tiempo que las
que se sembraron más superficialmente, tal vez debido a la mayor humedad.
Cuando la temperatura y la humedad fueron adecuadas ocurrió exactamente lo
contrario. Los rendimientos fueron de 18.2, 16.5, 13.2, t/ha para las plantas
provenientes de estacas plantadas a 5, 10 y 15 cm de profundidad respectivamente.
Este aumento de la profundidad de tapado provocó una disminución gradual de los
rendimientos hasta de 5 t/ha. La profundidad de plantación de 5 cm es bastante
ventajosa, pero para prevenir el desenraizamiento de las plantas debido a la erosión
y para que la planta se establezca de forma tal que soporte el volcamiento, se
recomienda una profundidad de 10 cm. Edad de la cosecha Según INIVIT (2004),
para las principales clones comerciales se plantean las siguientes edades de
cosecha (tabla 5):
2.7 Plagas, enfermedades y su control
2.7.1 Principales plagas que afectan al cultivo de la yuca en Cuba Primavera de la yuca (Erinnyis ello (L.) Lepidoptera, Sphingidae)
La primavera de la yuca es la plaga más importante de este cultivo en Cuba y en el
neotrópico (Bellotti et al., 2004) debido a su alta capacidad de consumo foliar, ya que
en su estado larval (12-15 días) puede ingerir 1,1 m2 de follaje. Además, pueden
presentarse altas poblaciones porque el total de huevos que la hembra oviposita
durante su vida (19 días) pueden llegar a 1 850, con un promedio superior a 440
huevos (INIVIT, 2004).
Según INIVIT, (2004) y Bellotti et al., (2004), para reducir los daños provocados por
la primavera de la yuca después de la plantación, debemos poner en práctica lo
siguiente:
1) Control Cultural
Eliminación de malezas en la plantación o alrededores (especialmente las
euforbiáceas:
Euphorbia heterophylla (hierba lechosa), Chamaesyce prostrata (hierba de la niña)
que pueden servir como hospederas a la plaga; arar inmediatamente después de la
37
cosecha, para eliminar las pupas del insecto y practicar la rotación de cultivos para
desaparecer el hospedante más prolífero, aunque también se ha reportado atacando
plantas económicas como tomate, tabaco y fruta bomba, debe señalarse que estas
malezas son espontáneas muy comunes en los campos de Cuba (López et al., 1995;
INIVIT, 2004).
2) Control Mecánico
Cuando se presentan ataques no muy intensos se puede realizar la recolección
manual de las larvas y su destrucción inmediata o inmersión en cualquier sustancia
que las destruya.
La recolección manual de larvas y pupas es muy efectiva para reducir las
poblaciones de la primavera de la yuca en plantaciones pequeñas. Esta práctica es
más aplicable en campos donde apenas se inician los ataques del insecto. Cuando
se practican labores de desyerba del cultivo, basta sacar las pupas a la superficie
del suelo donde mueren por exposición a la radiación solar o son destruidas con el
azadón (Bellotti et al., 2004).
3) Control Biológico
Se han identificado más de 40 especies de parásitos, predadores y patógenos de
huevos, larvas y estados pupales de la primavera de la yuca (Bellotti et al., 1999).
Es útil las liberaciones del parásito de huevos, Trichogramma spp, desde que
aparecen los primeros huevos de la plaga, independientemente de la edad de la
planta, y mantenerse hasta que el porcentaje de parasitismo sea superior al 90 %.
Se dispersan cada 25 m los parásitos contenidos en los sobres, preferiblemente se
utilizan dosis inundativas (30 000 individuos/ha). Las liberaciones deben hacerse en
horas frescas del día y a favor del viento para facilitar la distribución y evitar las altas
temperaturas. Si se producen lluvias intensas debe reiniciarse el ciclo de liberación
del parásito (INIVIT, 2002; INIVIT, 2004
Tanto para los muestreos de la plaga como para las liberaciones de Trichogramma,
debe recorrerse más del 50 % del área, para evitar que queden focos sin detectar o
aplicar. El muestreo debe realizarse en sentido cruzado hasta que la altura de las
38
plantas y las ramificaciones permitan la entrada al área y/o alrededor del campo
cuando los clones ramifiquen e impidan entrar al área (INIVIT, 2004).
También se recomiendan aplicaciones del biopreparado Bacillus thuringiensis a
razón de 10 litros/ha (cepa LBT-24). Se efectuarán hasta que la altura de la
plantación permita su realización de forma preventiva y con una frecuencia semanal;
pero si aparecen los primeros huevos de la plaga serán cada 4 días. A partir del
momento en que la altura de la plantación impida la entrada al campo, se realizarán
con igual carácter y frecuencia, alrededor del campo (Herrera, 1999; INIVIT, 2004).
Es necesario un manejo adecuado del parásito de larvas Apanteles americanus
(algodón de la yuca). Esto consiste en recoger los algodones recién formados y
conservarlos en frascos apropiados hasta que comiencen a emerger las avispitas,
momento en que se llevan al campo, se liberan y se destruyen los algodones (INIVIT,
2004).
El taladrador del cangre de la yuca (Lagochirus araneiformis (L.) Coleoptera:
Cerambicidae) La hembra adulta de L. araneiformis oviposita en los tallos y ramas,
aproximadamente a 2.5 mm por debajo de la corteza. Abre primero con sus
mandíbulas una pequeña perforación, de un diámetro aproximado de 0.72 mm, en la
corteza de las yemas y entrenudos, y deposita en ella el huevo en posición horizontal
u oblicuó a una profundidad 1.02 mm, en promedio (Bellotti et al., 2004),
La larva es apoda, de color crema, mide 0.3 mm en el primer instar y llega a 37 mm
en el sexto instar. El ciclo de vida de L. araneiformis dura, en condiciones de campo,
de 86 a 194 días, siendo el promedio de 128.2 días. La longevidad del adulto es de
89.7 días, si es hembra, y 91.6 días si es macho (Bellotti et al., 2004),
Las larvas de L. araneiformis se mueven dentro del tallo empleando las mandíbulas
y haciendo contracciones con su cuerpo. En el campo, la plaga puede atacar tanto
las estacas recién plantadas como las plantas ya desarrolladas o el material de
siembra almacenado durante mucho tiempo. Cuando el ataque ocurre en las estacas
recién plantadas, puede producirse la muerte de la plántula o una mala emisión de
brotes.
39
Cuando ocurre en plantas ya desarrolladas, el daño se localiza, generalmente, en la
base del tallo y, si el ataque es severo, propicia el volcamiento de la planta; en las
plantas caídas se han hallado hasta 30 larvas por planta. Las larvas atacan además
las raíces, horadando en ellas galerías por donde penetran microorganismos que
causan pudriciones secundarias y disminuyen el rendimiento. Las plantas atacadas
por L. araneiformis se reconocen fácilmente en el campo por el aserrín de color
pardo claro o pardo rojizo, de textura gruesa, que expulsa la larva a medida que
barrena el tallo (Bellotti et al., 2004).
Control
Según INIVIT, (2004) y Bellotti et al., (2004), el control químico es difícil para éste y
para todos los barrenadores. Se recomiendan, por tanto, las siguientes prácticas de
cultivo:
Recolectar y quemar los residuos de cosecha porque son una fuente de
propagación del insecto.
No se ha encontrado aún un control biológico de este insecto; por tanto, un método
de regulación de su población de adultos sería colocar paquetes trampa de estacas
frescas en el campo para atraerlos y capturarlos.
Hacer una buena selección de las estacas que se usarán en la plantación.
Desinfectar las estacas antes de efectuar la plantación.
2.7.2 Enfermedades que afectan el cultivo de la yuca
Pudrición radical y marchitez de la yuca (Phytophthora spp). Esta enfermedad,
según Álvarez y Llano (2004) se ha encontrado en África y América tropical
causando pérdidas en el rendimiento que llegan hasta el 80% de la producción total.
El patógeno ataca las plantas jóvenes o maduras especialmente cuando están cerca
de zanjas de drenaje o de zonas mal drenadas, causando marchitez repentina en la
planta y severa pudrición blanda en las raíces. En estacas infestadas y plantas
jóvenes se manifiesta por necrosamiento de los brotes al germinar y una marchitez
similar al estrés causado por la sequía.
40
En las plantas adultas afecta la raíz y provoca pudrición acuosa y blanda con olor
fétido. En casos extremos llega a podrir internamente el tocón sin presentar
síntomas en el follaje. El hongo Phytophthora es un habitante natural del suelo, que
puede afectar el cultivo en cualquier etapa; su desarrollo es favorecido en suelos de
mal drenaje y con bajos contenidos de nutrientes (Álvarez y Llano, 2004; INIVIT,
2004). Control INIVIT (2004) y Álvarez y Llano (2004) recomiendan entre las
medidas de control para esta enfermedad:
Selección de suelos apropiados, con buen drenaje y medianamente profundos.
Selección de plantas vigorosas y sanas para ser usadas como semilla.
Evitar el transporte de estacas para ser usadas como semilla desde zonas afectadas
por la enfermedad.
Erradicar y quemar las plantas afectadas.
Rotación de cultivos y siembra en canteros.
Tratamiento a las estacas con mezclas de fungicidas sistémicos e insecticidas
autorizados en la lista oficial de plaguicidas.
El control biológico con algunos aislamientos de Trichoderma sp ha mostrado
resultados promisorios (Bedoya et al., 2000).
2.8 Cosecha
Aunque la yuca no tiene un período específico para madurar, hay uno óptimo de
cosecha, que depende fundamentalmente de las características del clon y de las
condiciones agroclimáticas donde se desarrolla el cultivo. Si la yuca se cosecha
antes de su periodo óptimo, los rendimientos serán bajos; si se cosecha más tarde,
el contenido de almidón y de materia seca pueden ser bajos (CLAYUCA, 2003b).
Para realizar esta labor, ha de tenerse presente que exista un grado de humedad
óptimo que facilite la extracción de la raíz tuberosa, evitándose desgarraduras en la
corteza de la misma. Es importante recordar que la eficiencia en la práctica de la
cosecha se refleja en la rapidez con que el producto se mueve del campo a su lugar
de almacenamiento, y en adecuado manejo para reducir daños.
41
Es importante destacar que los tallos según se van cortando y seleccionando, se
irán colocando en pequeñas filas en forma vertical evitando que permanezcan en el
campo por un tiempo mayor de 24 horas.
Una vez realizada la cosecha, deben efectuarse como mínimo un resaque con arado
de una vertedera, pasándolo en doble sentido.
42
III. MATERIALES Y MÉTODOS.
3.1. Condiciones de Experimento.
La experimentación se produjo
en las áreas de autoconsumo de
la UBPC Las Marías
perteneciente a la Empresa
Azucarera Amancio Rodríguez,
situada en el Noroeste del
municipio Amancio, al Sur de la
provincia de las Tunas, sobre un
suelo Pardo Sialitízado cálcico
(Hernández Jiménez A. et al.
2002).
Las condiciones de suelo y clima
que se presentaron durante la realización del experimento aparecen reflejadas en
las tablas 5 y 6.
El experimento se realizó de la manera siguiente:
Se prepararon las diferentes parcelas experimentales a través del uso de la
maquinaría con buena calidad del suelo preparado, buscando la soltura del mismo
con el objetivo de lograr un mejor desarrollo del sistema radical de los clones a
experimentar.
Se surcó con el uso de la maquinaría, y a la hora de la plantación se realizó con la
utilización de la tracción animal, para buscar la frescura del suelo en horarios
tempranos del día.
La plantación se realizó de la manera siguiente:
La semilla a plantar fue bien seleccionada y preparada el día anterior a la plantación.
Se aplicó estiércol vacuno como materia orgánica con las siguientes dosis :
2,17 Kg. , 3,25 Kg. y 4,30 Kg.
43
En cada nido o plantón a tener se aplicó primero la dosis (cantidad a evaluar) de
materia orgánica, encima la semilla o estaca, se le añade mediante una vasija
cubicada de capacidad de 2.5 Litros, la cantidad de agua y se le aplica una cubierta
no mayor de 10 a 15 cm. de capa vegetal, para lograr que existe una buena
brotación.
La transportación de la materia orgánica desde el almacenaje al área de plantación
se realizó mediante la utilización de carretones de tracción animal y así se fue
incorporando en cada lugar de plantación, utilizándose el mismo método para la
transportación y plantación de la semilla.
Se utilizó para la plantación dos carretones con tracción animal y en cada uno de ellos
un equipo compuesto por: el Boyero, dos obreros aplicando la dosis de materia
orgánica y dos plantando, presionando con el pie y tapando la semilla.
Para el riego se utilizó la aplicación del mismo auxiliado de pipas de agua, donde con
un equipo de cuatros obreros con vasijas taradas, aplicaban este en cada lugar de la
semilla plantada.
La plantación se ejecutó de forma manual ubicándose las estacas horizontalmente,
no se realizaron aplicaciones de productos químicos para el control de las plagas,
enfermedades (no existiendo estas en el ciclo del cultivo) y malezas; esta última se
realizó de forma manual garantizándose mantener al cultivo libre de plantas
indeseables, incidiendo en mayor medida el cultivo con tracción animal y la limpia
con azadas.
La brotación comenzó a partir de los 9 días.
Los clones de Yuca (Manihot esculenta cranz) utilizados fueron: Jagüey Dulce, Selección Holguín y señorita. Obteniéndose la semilla o estacas de la finca de
semilla de la granja Agropecuaria de la empresa Azucarera de Amancio, en el propio
territorio.
Los datos climáticos fueron tomados de los registros de la Estación Meteorológica
del municipio Amancio. (CITMA, 2007). Tabla No. 6.
44
Tabla No. 6. Datos de las variables climáticas.
Variables Climáticas.
MESES Precipitaciones
(mm)
Evaporación
(mm)
Temperatura
(oC)
Humedad
Relativa (%)
Febrero /2010 14.0 4.29 22.0 81
Marzo 18.6 5.01 28.6 83
Abril 37.6 3.46 30.9 72
Mayo 42.0 5.05 31.3 78
Junio 100.0 6.82 30.2 81
Julio 112.0 6.01 31.5 85
Agosto 364.0 6.64 33.4 87
Septiembre 58.0 5.61 32.9 84
El experimento se plantó en febrero del 2010 y se finalizó su cosecha en septiembre
del 2010, siguiendo un diseño de bloques al azar con 9 tratamientos y 3 réplicas lo
que produjo 27 parcelas de observaciones experimentales.
Se tomó en cuenta la los siguientes parámetros para los análisis estadísticos del
experimento.
1. El experimento ocupó un área total de 486.0 m2
2. Se conformaron 27 parcelas.
3. Cada parcela ocupó un área de 18 m2
4. Largo de la parcela 5.0 m.
5. Ancho de la parcela 3.60 m.
6. Número de surcos por parcelas 4.
7. Número de plantas por surcos 6.
8. Número de plantas por parcelas 22.
9. Número de plantas en el experimento 594.
45
10. Marco de plantación utilizado 0.90 x 0.90 m.
11. Área de cálculo 6.48 m2. (5.0 m de largo y 3.6 m de ancho) 36% del área de la
parcela.
12. Número de plantas en el área de cálculo 22.
13. Distancia entre tratamientos 0.6 m.
14. Distancia entre réplicas 1.0 m.
Para establecer el área de cálculo se excluyeron las plantas que se hallaban en los
surcos exteriores y las 2 plantas de los extremos, para así evitar el efecto de borde.
Tanto las labores de preparación del suelo como las restantes, se realizaron según el
Instructivo Técnico del Cultivo de la Yuca (MINAGRI, 2004).
3.2. SUELO
El muestreo del suelo para su caracterización química se realizó antes de la
plantación a una profundidad de 30.0 cm. y el análisis se llevó a cabo siguiendo las
técnicas convencionales por el Laboratorio Provincial de Suelo de la provincia
Granma (MINAGRI, 2010).
Tabla No. 5. Composición Química del Suelo.
pH P205 Ca Mg K Na K2O M. OAgrupamiento
kcl H2O Mg/100g. Meq / 100g
V 6.2 6.10 4.12 28.89 5.57 9.53 0.15 27.6 2.65
El coeficiente agroproductivo del suelo (CP) de 0.60 – 0.65
Composición Química minorológica del suelo. (Según Cairo C P. 2007)
Esta compuesta por:
Fe2 O3 (Oxido de Hierro) al 11.2 %
Al2 O3 (Oxido de Aluminio) al 24.6 %
46
S1 O2 (oxido de silicio) al 60.4%
El suelo donde se realiza el experimento al presentar alto contenido de oxido de
silicio actúa como sustancia sementante, la que produce compactación,
empobrecimiento y disminución de la fertilidad del suelo, actividad perjudicial al
desarrollo del cultivo decisivos en los rendimientos, los otros elementos en
correlación a la tolerancia del cultivo sin afectación son bajos.
El suelo utilizado mostró capacidad productiva con un coeficiente de 0.65 a 0.60 y su
categoría del grupo V, determinado como suelo algo bueno (según Cairo 2007),
presentando los factores limitantes siguientes:
Topografía ondulada.
Erosión
Pedregosidad
Exceso de carbonato.
Presencia de concreciones.
Todo lo anterior trae como consecuencia deficiencias nutricionales, clorosis y
deficiencias de magnesio al suelo, presentando los efectos siguientes.
Disminución de la capacidad de agua.
Formación de capas endurecidas.
Disminución de la adsorción del hierro.
Empobrecimientos de suelo.
Estas deficiencias pueden contrarrestarse con las soluciones posibles como:
Correcta orientación de los surcos.
Enmienda orgánica.
Para el exceso de carbonato debería aplicarse riego al área, del cual no
contamos con la solución y debemos de depender de la lluvia.
47
3.3. Fertilización orgánica utilizada.
Estiércol.
El estiércol empleado fue curado en un estercolero por más de cinco meses y la
composición química en cuanto a concentración de macro y micro nutrimentos,
determinada según la metodología sugerida por la Asociación Oficial de Químicos
Agrícolas (AOAC 1965.), era similar a las reportadas por Overcash y colaboradores
(1983), citados después por Eghball y Power (1994), posteriormente por Jiménez,
Larreal y Noguera (2004) a los valores promedios y reportados por la FAO (1984).
Sobre los elementos de la composición del estiércol vacuno utilizado podemos
plantear que según las muestras del laboratorio Provincial de Suelo de la provincia
Granma (MINAGRI, 2010).
Nitrógeno (%) -------- 2,84
Fósforo (%) ---------- 0,88
Potasio (%) ----------- 2,55
Calcio (%) ------------- 2,45
Magnesio (%) ------- 0,89
Sodio (%) ------------- 0,87
3.4. Mediciones realizadas.
Conteo de brotación:
Esta se realizó a los 30 días después de la plantación de forma visual y por
conteo directo de las plantas existentes en el área de cálculo en cada parcela
en el experimento
Número de raíces comerciales:
Realizando el conteo promedio por planta, medidos al instante de la cosecha.
Partiendo de los 20cm de longitud y 5cm de diámetro.
Diámetro medio de las raíces:
48
Esta medición se realizo con cinta métrica en la parte media de la longitud total
de la raíz al instante de la cosecha.
Longitud de las raíces:
Se midieron determinando el promedio por planta al instante de la cosecha
Rendimiento:
Este es expresado en t. ha –1, es determinado partiendo del peso de las raíces
tuberosas y obtenidas en el instante de la cosecha según calidad comercial.
3.5. Análisis económico.
Teniendo en cuenta el Rendimiento (t.ha-1), el Costo de Producción ($) para llevar a
cabo cada uno de los tratamientos en una hectárea y el Valor de la Producción
($/ha), se determinó:
Ganancia ($/ ha) = Valor de la Producción (VP) – Costo de Producción (CP).
El costo por peso = Costos de producción (CP) / Valor de la producción (VP).
3.6. Métodos de análisis empleado para evaluar las mediciones.
Todos los datos obtenidos producto de las mediciones fueron sometidos al
análisis de varianza y las medias se compararon utilizando Duncan para el
0.05 % de significación, mediante el software InfoStat versión 1.0 de Estadística
y Biometría de la Facultad de Ciencia Agropecuarias de la Universidad Nacional
de Córdoba actualizado en diciembre del 2001. Empleándose el análisis de
varianza para diseño Bloque al Azar y comprobándose las medias donde se
encontró significación entre los tratamientos a través de la prueba de Duncan.
(Lerch.1997).
49
IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN.
4.1. Evaluación parámetros fisiológicos.
Al realizar el análisis de la brotación de las plantas en los tratamientos plantados, la
que se fue controlando y realizándole el control del conteo cada 10 días, posterior a
la fecha plantada, mostrándose los mejores resultados en el clon Selección Holguín,
la cual mantuvo una brotación a partir de los ocho días, seguido del clon Jagüey
Dulce que comenzó a brotar a los nueve días y la Señorita a los once días.
En el por ciento de brotación obtenido a los 30 días de la plantación, mostró los
mejores resultados en el tratamiento referido al clon selección Holguín con una dosis
de aplicación de 4.30 Kg. de materia orgánica por planta, a un 92% seguido de los
tratamientos en el orden Jagüey Dulce con un 85% y los menores valores de la
señorita con un 80%, donde no se encontró diferencia significativa con el clon
señorita mostrado en la tabla 7
En ninguno de los tratamientos referidos al clon Selección Holguín existió diferencia
significativa entre las dosis aplicadas, ni existió diferencia significativas para los
tratamientos del clon Jagüey Dulce con dosis a 3.25 Kg. De materia orgánica en las
tres replicas así como tampoco mostró diferencias significativas con el Clon señorita
se aplicó dosis a 4.30 Kg. de materia orgánica en ninguna de las replicas.
Tabla No. 7. Análisis del por ciento de brotación.
Tratamiento. Brotación promedio por parcelas de estudio X
C2 D3 R3 22.81 a
C2 D3 R1 22.59 ab
C2 D3 R2 22.59 ab
C2 D2 R3 21.81 abc
C2 D2 R1 21.59 abcd
C2 D2 R2 21.59 abcd
C2 D1 R3 19.81 abcde
50
C2 D1 R2 19.59 abcde
C2 D1 R1 19.59 abcde
C1 D2 R3 16.81 abcdef
C1 D2 R1 16.59 abcdef
C1 D2 R2 16.59 abcdef
C3 D3 R3 16.48 abcdef
C3 D3 R2 16.26 abcdef
C3 D3 R1 16.26 abcdef
C1 D3 R3 15.81 bcdef
C1 D3 R1 15.59 bcdef
C1 D3 R2 15.59 bcdef
C3 D1 R3 14.81 bdef
C3 D1 R1 14.59 bef
C3 D1 R2 14.59 bef
C3 D2 D3 14.15 bef
C3 D2 R2 13.93ef
C3 D2 R1 13.93ef
C1 D1 R3 12.48f
C1 D1 R2 12.26f
C1 D1 R1 12.26f Cv 11.63 Es 3.94
Letras distintas indican diferencias significativas (p<=0.05) 4.2. Evaluación parámetros del Rendimiento.
51
Para la evaluación de este parámetro se tuvo en cuenta diversos análisis
primeramente.
Se realizó el análisis referido a la altura de la planta y al número de raíces, los
resultados mostrados donde existió diferencia significativa alguna entre los
tratamientos se muestran en la tabla No. 8.
La altura de la planta mostró los valores más bajos en el clon Jagüey Dulce donde se
aplicó dosis a 2.17 Kg en las replicas uno y dos, manteniendo la misma semejanza
para este clon cuando se aplica dosis a 3.25 Kg en todas las replicas así como en el
clon Señorita a dosis de 2.17 y 3.25 Kg en todas las replicas.
Los mejores resultados se mostraron en el clon Selección Holguín, que no encontró
diferencia significativa en ninguna de las dosis aplicadas en las diferentes replicas,
tampoco se mostró diferencia significativa en el clon Jagüey Dulce en ningunas de
las replicas donde se aplicó dosis de 2.17 y 3.25 Kg al igual que con el clon Señorita
donde so aplicó dosis de 4.30 Kg en ninguna de las replicas.
Los valores medios se mostraron en los clones Jagüey Dulce con dosis aplicada a
2.17 Kg en la replica tres y con dosis a 3.25 Kg en las tres dosis no mostrando
diferencia entre estos tratamientos, tampoco con el clon Señorita donde se aplicó
dosis de 2.17 y 3.25 Kg en todas sus replicas.
Los valores mostrados se corresponden con los rangos planteados por el Instituto
Nacional de Viandas Tropicales (INIVIT) segunda edición 2008.
Tabla No. 8. Análisis de los resultados de la Altura de la Planta y Número de raíces.
Tratamiento. Altura de la planta (m.) X
Número de raíces X
C2 D1 R3 1.68 a 6.19 abcdef
C2 D1 R2 1.67 a 6.07 abcdef
C2 D3 R3 1.67 a 5.85 cdef
C2 D1 R1 1.66 a 5.74 cdef
C2 D3 R2 1.66 a 5.74 cdef
52
C2 D3 R1 1.65 a 5.41 def
C1 D3 R3 1.62 a 5.19 ef
C1 D3 R2 1.61 a 5.07 ef
C2 D2 R3 1.60 a 5.85 cdef
C1 D3 R1 1.60 a 4.74 f
C2 D2 R2 1.59 a 5.74 cdef
C3 D3 R3 1.59 a 9.19 a
C2 D2 R1 1.58 a 5.41 def
C3 D3 R2 1.58 a 9.07 a
C3 D3 R1 1.57 ab 8.74 a
C3 D1 R3 1.50 abc 7.55 abcd
C3 D2 R3 1.50 abc 8.19 ab
C1 D2 R3 1.50 abc 4.52 f
C3 D1 R2 1.49 abc 7.41 abcd
C1 D2 R2 1.49 abc 4.41 f
C3 D2 R2 1.49 abc 8.07 ab
C3 D1 R1 1.48 abc 7.07 abcde
C1 D2 R1 1.48 abc 4.07 f
C3 D2 R1 1.48 abc 7.74 abc
C1 D1 R3 1.33 bc 4.52 f
C1 D1 R2 1.32 c 4.41 f
C1 D1 R1 1.31 c 4.07 f
Cv 4.54 10.26
Es 0.0049 0.3981
*Medias con letras diferentes difieren significativamente, p < 0.05.
53
Al evaluar el número de raíces por planta, tabla No. 8, mostraron diferencia
significativa los tratamientos donde se aplicó dosis a 2.17 y 3.25 Kg de en todas las
replicas de estas dosis aplicadas en el clon Jagüey Dulce mostrando los resultados
mas bajos, aunque no difieren significativamente con ninguna de las tres dosis
aplicadas en las replicas del clon Selección Holguín y mostrando los mejores
resultados en el clon Señorita con dosis aplicada de 4.30 Kg en las distintas
replicas.
Beovides et al., (2002), en una evaluación morfoagronómica de clones de (Manihot
esculenta Cranz) por cultivo in vitro, alcanzaron índices de hasta 11 raíces por
planta, superiores a los logrados en el presente trabajo.
Por otro lado, Rodríguez et al., (2005), en el estudio de nuevos clones de Yuca
(Manihot esculenta Cranz) en la provincia de Holguín, de los que se incluye el
Cultivar Señorita aquí presente en este trabajo, con resultado superior a los
obtenidos en Holguín, con valores de hasta 9 raíces por planta.
Bhat y Leela , 1999 y Avilán et al., (2005), observaron que la densidad de plantación
influenció una marcada variación de la producción total de raíces por unidad de
volumen de suelo, así como también la proporción de raíces finas y gruesas, lo cual
sugiere una gran utilización del espacio aprovechable en las plantaciones de alta
densidad. Plantaciones muy densas tienen la tendencia a explorar las capas más
profundas del suelo, a diferencia de cuando son plantadas más espaciadamente.
Cock et al., (2002), señalan que existen diferencias en cuanto al óptimo de población
para las diferentes variedades, así como también, que el número de raíces tiende a
ser constante entre 5.000 y 10.000 pi/ha y luego declina con el incremento de la
población.
Estos resultados son superiores a los señalados por Mojena y Pascual, (2004), en
Costa Rica, quienes evaluando diferentes marcos de plantación en dos clones de
yuca (CMC – 40 y Señorita), obtuvieron en esta última valores inferiores en los
diferentes arreglos a los alcanzados por este clon comercial en el presente trabajo
(8.46 por 5.45). Resultados similares reportan los trabajos de Rodríguez, (1987),
Rodríguez et al., (1994), Fernández et al., (2000) y Cevallos, (2003).
54
Otros de los electos analizados fueron el diámetro y longitud de las raíces donde se
muestran los resultados en la tabla No. 9.
En el análisis del diámetro de las raíces tuberosas, mostraron los menores valores
en los tratamientos del clon Señorita donde se aplicó dosis de 2.17 y 3.25 Kg de
materia orgánica en las diferentes replicas, mostró mejor resultado el clon Selección
Holguín en los tratamientos donde se aplicó dosis de 4.30 y 3.25 kg de materia
orgánica en orden de resultados, seguido del clon Jagüey Dulce difiriendo
significativamente entre los mismos con valores 18.74 con dosis de 4.3 kg.
Los resultados alcanzados y su comparación con los obtenidos por otros autores en
diferentes condiciones edafoclimáticas corroboran lo expresado por Rodríguez,
(1982), quien señaló que a pesar de crecer la planta de yuca en diversidad de
condiciones climáticas, su adaptación está relacionada con la temperatura del medio,
los suelos, su pH, la textura, la lluvia y la radicación solar, por lo que existen
genotipos mejor adaptados que otros.
Tabla 9. Resultados del análisis del Diámetro y Longitud de las Raíces por Planta.
Tratamiento. Diámetro de las raíces
(m.) X
Longitud de las raíces (m) X
C2 D1 R3 16.63 bc 37.37 b
C2 D1 R2 17.07 abc 37.37 b
C2 D3 R3 18.30 ab 40.37 a
C2 D1 R1 16.30 c 37.26 b
C2 D3 R2 18.74 a 40.37 a
C2 D3 R1 17.96 abc 40.26 a
C1 D3 R3 11.30 de 24.04 e
C1 D3 R2 11.74 d 24.04 e
C2 D2 R3 17.30 abc 38.70 ab
55
C1 D3 R1 10.96 def 23.93 e
C2 D2 R2 17.74 abc 38.70 ab
C3 D3 R3 9.63 efghi 32.37 c
C2 D2 R1 19.96 abc 38.59 ab
C3 D3 R2 10.07efgh 32.37 c
C3 D3 R1 9.30 fghij 32.26 c
C3 D1 R3 7.30 kl 30.04 d
C3 D2 R3 7.96 ijkl 31.37 cd
C1 D2 R3 10.30 defg 23.37 e
C3 D1 R2 7.74 jkl 30.04 d
C1 D2 R2 10.74 defg 23.37 e
C3 D2 R2 8.41 hijkl 31.37 cd
C3 D1 R1 6.96 l 29.93 d
C1 D2 R1 9.96 efgh 23.26 e
C3 D2 R1 7.63 jkl 31.26 cd
C1 D1 R3 9.30 fghij 22.37 e
C1 D1 R2 9.74 efghi 22.37 e
C1 D1 R1 8.96 ghijk 22.26 e
Cv 4.45 2.07
Es 0.2870 0.4120
*Medias con letras diferentes difieren significativamente, p < 0.05.
Al mostrar en la tabla anterior No.9, los resultados de la longitud de las raíces, se
observa diferencias significativas entre los clones, mostrando el mejor resultados el
clon Selección Holguín aunque presenta diferencia significativa entre las dosis
56
aplicadas, mostrándose la dosis (a 4.30, 3.25 y 2.17Kg) en el orden de resultados
con buenos resultados, con valores de 40.37, 37.37 y 32.37 cm. de longitud
respectivamente, difiriendo de los clones Jagüey Dulce y Señorita esta ultima
mostrando los menores resultados (22.26 cm.).
Los resultados obtenidos guardan correspondencia con los logrados por Rodríguez,
et al., (2005), al evaluar nuevos clones de yuca en la provincia Holguín, pues son
resultados con poca diferencia en cuanto al clon Señorita (testigo) (37.4/37.8), el
mostrado en el presente trabajo 32.33 cm. Tabla No. 9.
Lo anterior concuerda además con lo ya señalado por Rodríguez, (1982), referido al
comportamiento y adaptabilidad de los genotipos.
Otros autores como Greacen et al., (1989), Avilán e Hidalgo, (1995), Godofrey-San-
Agrey, (1998), Montaldo, (1999), Enyi, (2002), Olivera et al., (2003) y Neyi et al.,
(2003), coinciden en señalar que la longitud de las raíces de la planta de yuca
pueden alcanzar diferentes longitudes en dependencia no solo del clon sino también
de su adaptación a las diferentes condiciones edafoclimáticas.
Al evaluar el rendimiento, tabla No. 10, se puede observar que entre los clones
evaluados existieron diferencias significativas, el clon Selección Holguín mostró el
mejor resultado (8.08 t.ha-1) donde se aplicó dosis de 4.30 Kg de materia orgánica,
seguido del clon Jagüey Dulce (6.58 t.ha-1) donde se aplico dosis de a 4.30 y 3.25 kg
respectivamente menos en el tratamiento donde se aplicó dosis de 3.25 Kg en la
replica número tres y el resultado más bajo lo muestra el Cultivar Señorita con (3.08
t.ha-1) en los tratamientos que se aplicó dosis de 3.25 y 2.17 Kg respectivamente,
existiendo diferencia significativa entre los clones.
Las consecuencias en esta variable guardan correspondencia con los evaluados en
las restantes variables: diámetro, longitud y número de raíces.
Estos resultados sitúan de manifiesto que la situación de suelo y clima que aparecen
reflejadas en las tablas 5 y 6 fueron propicias para el desarrollo del cultivo,
reconociendo los clones según su adaptación a las características predominantes en
estos parámetros.
Tabla No. 10. Resultado del análisis del Rendimiento.
57
Tratamiento. Rendimiento (t.ha-1)
C2 D1 R3 4.34 ghi
C2 D1 R2 4.38 ghi
C2 D3 R3 8.08 a
C2 D1 R1 4.08 i
C2 D3 R2 8.11 a
C2 D3 R1 7.81 a
C1 D3 R3 6.58 b
C1 D3 R2 6.61 b
C2 D2 R3 6.14 bc
C1 D3 R1 6.31 bc
C2 D2 R2 6.18 bc
C3 D3 R3 5.34 de
C2 D2 R1 5.88 cd
C3 D3 R2 5.38 de
C3 D3 R1 5.08 ef
C3 D1 R3 2.81 j
C3 D2 R3 4.44 fghi
C1 D2 R3 4.84 efgh
C3 D1 R2 3.11 j
C1 D2 R2 4.88 efg
C3 D2 R2 4.48 fghi
C3 D1 R1 3.08 j
C1 D2 R1 4.58 efghi
58
C3 D2 R1 4.18 hi
C1 D1 R3 3.34 j
C1 D1 R2 3.38 j
C1 D1 R1 3.08 j
Cv 3.94
Es 0.0396 *Medias con letras diferentes difieren significativamente, p < 0.05.
En el análisis de esta tabla, es preciso tener en cuenta los resultados que aparecen
en las tablas 7, 8 y 9, como parámetros esenciales como componentes de la
producción final en la valoración de los clones de yuca objeto de estudio:
a) número de raíces /planta,
b) diámetro de las raíces y
c) longitud de las raíces; los que permiten apreciar su incidencia en el resultado final
pero sin descuidar que hay otros factores que también influyen en el rendimiento.
Los rendimientos alcanzados por los clones objetos de estudio en comparación con
los obtenidos por Rodríguez et al., (2005), tuvieron el siguiente comportamiento.
Ninguno de los Clones evaluados tuvo resultados similares a los alcanzados por
estos autores, mostrándose por debajo de los mismos.
Como se muestra fueron los clones a evaluar bajo las condiciones edafoclimáticas
del municipio Amancio los que tuvieron un comportamiento por debajo de lo
alcanzado en las condiciones de la provincia de Holguín.
Bhat y Leela. (1999), señalan que la cantidad de raíces (peso) por unidad de
volumen de suelo se incrementa con el aumento de la densidad de plantación.
Torres, (1999), también señala que el total del número de raíces y el peso de las
mismas, obtenidos respectivamente por los métodos de la "trinchera" y "monolito",
59
permiten establecer que a menor distancia entre plantas mayor el número de raíces y
menor el peso total del sistema radical en la planta.
Los valores que se muestran en los rendimientos de los clones, se sustentan en
principios de ensayos sobre régimen de riego en la yuca realizados durante varios
años en el Instituto de Investigaciones de Viandas Tropicales (INIVIT), en el
municipio de Santo Domingo en la provincia de Villa Clara, que han concluido en
afirmar que aplicando a este cultivo riegos del 80% de la capacidad de campo, se
garantiza una buena brotación, base para un adecuado desarrollo y crecimiento del
cultivo.
Lo anterior explica que tanto la evapotranspiración diaria como el coeficiente
bioclimático - continúan señalando estos autores -, alcanza sus máximos valores en
la fase de tuberización y acumulación de reservas.
Las consecuencias alcanzados al garantizar durante toda la etapa del desarrollo del
presente trabajo, la falta de humedad adecuada al cultivo sobe la base de lo antes
expuesto, justifican los resultados mostrados en la presente tabla objeto de análisis.
Los suelos donde se realizó el presente estudio se caracterizan por presentar una
mediana a elevada fertilidad natural, recibiendo solo la aplicación del fertilizante
orgánico (estiércol vacuno) en el momento de la siembra.
Cada ambiente donde se cultiva la yuca tiene su propia lista de factores limitante de
la producción, pero la poca disponibilidad de agua es el principal factor abiótico
limitante de la productividad. (Ceballos, 2003).
4.3. Resultados del Análisis Económico
Tratamientos Costo del
cultivo $/ ha
Rendimientos
t/ha-1 Ingresos $/ ha Utilidades $
Jagüey Dulce 480.52 6.5 5 550.70 5 070.18
Selección
Holguín 480.52 8.0 7 250.34 6 769.82
Señorita 480.52 5.3 4 320.22 3 839.70
Total 1 441.56 17 121.26 15 679.70
60
Al realizar el análisis económicos de la investigación quedó demostrado que el
mejor comportamiento en cuanto a los rendimientos es el clon Selección Holguín en
comparación con el clon Señorita quien obtuvo los rendimientos más bajos, pues a
pesar que el costo de la producción en los tratamientos es el mismo, al obtener las
producciones y se multiplican por el valor de las ventas que por precios establecidos
en acopio equivale a 0.50 centavos la libra de yuca, puede plantarse que es
económico el costo empleado para plantar los tratamientos evaluado, presentando
rendimientos en todos los caso mayores a la media de rendimiento promedio
histórico en el territorio de Amancio, presentando buenas utilidades.
61
V. CONCLUSIONES.
El suelo utilizado su capacidad productiva se clasifica su categoría en el grupo V
suelo algo bueno, con un coeficiente agroproductivo de un 0.65 a un 0.60, con
elementos que intervienen negativamente en el desarrollo del cultivo como el
Oxido de Silicio el cual se encontraba en por cientos alto.
De los Clones de yuca evaluados el clon Selección Holguín obtuvo el mejor
resultado con diferencias estadísticas en comparación con los clones Jagüey
Dulce y el Señorita.
El Clon Señorita mostró mejor resultado respecto a la cantidad de raíces
tuberosas por plantas, aunque mostró los resultados de menor diámetro, con
relación a los demás clones.
De las dosis evaluadas la de mejor efectividad en los 3 clones fue donde se
aplicó a razón de 4.30 kg de materia orgánica /plantas, aunque con diferencias
estadísticas entre los mismos.
62
VI. RECOMENDACIONES.
Mantener el estudio del suelo, donde periódicamente se debe trabajar en acciones
que propicien su mejoramiento, como las aquí mostradas.
Recomendamos prolongar el estudio de esta experiencia de estos clones en otras
condiciones de suelo.
Evaluar el clon Selección Holguín bajo las mismas condiciones edafoclimáticas en
otras campañas, por sus altos rendimientos y valor económicos ya que presentó
diferencias estadísticas en cuanto el rendimiento con respecto a la señorita y a la
Jagüey Dulce.
63
VII. BIBLIOGRAFÍA.
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Memorias del Programa Colaborativo de Fitomejoramiento Participativo en
Mesoamérica. Fondo Noruego de Desarrollo y CIPRES, ed. Managua
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