experimentocon rabanito

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndeg1 Ene-Jun 2007 11-18

Articulo original

Respuestas fisio16gicas de Raphanus sativus L frente a

tres concentraciones de Mg +2

Physiological responses of Raphanus sativus L to three

concentrations of Mg +2

(llHenri Bai16n (2lIrma Castillo (3lMiriam Pablo (4lYeny Topifio (5

lM6nica Velasquez amp

(6lRafael La Rosa

Laboratorio de Ecofisio1ogia Vegetal Facultad de Ciencias Naturales y Maternatica Universidad

Naciona1 Federico Villarreal Calle San Marcos 351 Pueblo Libre Lima 21 Te1eFax 4600930(I)araquis11yahooes (2)hellen_brugmansiayahoocom rniriamppngryahooes (4)yeny_thais2004yahooes

(5)monika _bio2002yahoocom (6)rafo1arosayahooes

ABSTRACT

Magnesium is main component of chlorophyll and is involved in many important reactions for plants

Effects of three levels of magnesium in hydroponics culture of Raphanus sativus L var Grimson Giant

(Brassicaceae) were analyzed Three treatments were used T1 (0214 gL 50 Mg+2)T2 (0429 gL100 Mg+

2) and T3 (0214 gmiddotC 200 Mg+

2)with 16 repetitions in order to observe changes in

photosynthesis growth protein concentration and carbohydrates Results shown significant differences

in chlorophyll foliar area and foliage length nevertheless protein concentration percentage of dry matter

of roots and stems not showed significant difference We concluded that as excess as deficiency are

detrimental for growing of plant

Keywords hydroponics magnesium Raphanus sativus

RESUMEN

El magnesio es el componente principal de la clorofila y participa en muchas reacciones vitales para laplanta Se analizaron los efectos de diferentes niveles de magnesio en cultivos hidrop6nicos deRaphanus

sativus L var Grimson Giant (Brassicaceae) Se utilizaron tres tratamientos T1 (50 Mg+2) T2 (100

Mg+2)Y T3 (200 Mg+2)con 16 repeticiones con el fin de observar cambios producidos en la fotosintesis

crecimiento concentraci6n de proteinas y carbohidratos Los resultados mostraron diferencias

significativas en clorofila area foliar y longitud aerea Sin embargo la concentraci6n de proteinas

porcentaje demateria seca tanto de la raiz como de la parte aerea no presentaron diferencias significativas

Se concluye que tanto el exceso como la deficiencia demagnesio son perjudiciales para el buen desarrollo

de la planta

Palabras claves Raphanus sativus L var Grimson Giant magnesio hidrop6nico

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

INTRODUCCION

Raphanus sativus L (Brassicaceae) es una

planta oriunda del Asia que crece en zonas

tropicales y subtropicales se cultiva todo el afio y

se consume generalmente el hipoc6tilo que

contiene hidratos de carbono y fibras con un bajo

aporte cal6rico y alto contenido de agua Los

minerales mas abundantes en su composici6n son

el potasio y el yodo que aparece en mayor cantidad

que en las demas hortalizas Ademas contiene

cantidades significativas de calcio y f6sforo

(Zarraga 2005)

EI magnesio es esencial en la nutrici6n de

las plantas permite la asimilaci6n de otros

nutrientes se combina con el ATP (permitiendo

que participe en muchas reacciones) y activa

muchas enzimas necesarias para la fotosintesis

respiraci6n sintesis de carbohidratos formaci6n

de grasas y aceites formaci6n de ADN y ARN

(Agarwala amp Mehrotra 1984 Fink et al 2000

Pedleretal 2004 Saiki et al 2004)

La deficiencia de magnesio se manifiesta

por la perdida del color verde que comienza en las

hojas maduras y continua hacia las inmaduras

pero las venas conservan su color los tallos se

forman debiles y las raices se ramifican y se alargan

excesivamente las hojas se tuercen a 10 largo de los

bordes EI exceso de magnesio puede inducir la

carencia de potasio La asimilaci6n de algunos

elementos quimicos es afectada por la presencia de

otros esto se conoce como antagonismo

(Agarwala amp Mehrotra 1984) asi el exceso de

calcio puede interferir la asimilaci6n de magnesio

el exceso de sodio produce deficiencia de calcio y

magnesio (Morales 2005)

EI objetivo del presente trabajo fue

conocer las respuestas de R sativus L var

Grimson Giant frente a tres concentraciones de

magnesio en cultivos hidrop6nicos

MATERIALES Y METODOS

EI presente trabajo se llev6 a cabo en las

instalaciones del invemadero hidrop6nico y del

Laboratorio de Ecofisologia Vegetal de la Facultad

de Ciencias Naturales y Matematica de la

Universidad N acional Federico Villarreal

Se emplearon tres soluciones nutritivas

con diferentes concentraciones de magnesio T1

(Mg2) T2 (Mg) Y T3 (2 Mg) (Tabla 1)

Se emplearon 48 recipientes de plastico de 1 L de

capacidad llenados con sustrato de arena fina en

sus partes previamente lavada y desinfectada

con hipoclorito de sodio (5 ) Se dej6 reposarpor

3-4 dias y fueron lavadas nuevamente hasta

eliminar el desinfectante

Para la siembra se utilizaron 10 semillas de

R sativus L var Crimson Giant rabanito por

cada envase que fueron regados con agua potable

interdiariamente por una semana

Despues del periodo de germinaci6n

fueron elegidas tres plantulas de cada envase por

sus caracteristicas en tamafio color y vigor y se

descartaron las plantulas restantes Se aplic6 un

disefio completamente ramdomizado los

resultados se procesaron mediante ANVA y la

prueba de Tukey (SPSS versi6n 120) con tres

tratamientos y 16 repeticiones cada uno los cuales

fueron regados con soluci6n nutritiva (30 mL)

altemando con agua potable durante 34 dias Se

midi6 el pH y conductividad electrica de cada

soluci6n nutritiva preparada (Tabla 2) Las

principales condiciones de temperatura Humedad

relativa e irradiaci6n del ensayo se realizaron con

una frecuencia de 7 dias y siempre alrededor de las

1000 h (Tabla 3) Para determinar el efecto del

magnesio se realizaron analisis semanales

utilizando los siguientes seis parametres

Porcentaje materia seca (actividadfotosintetica)

Para el analisis se tom6 un envase de cada

tratamiento seleccionandose en dos fracciones

parte aerea (hojas e hipocotilo) y raiz y se

determin6 el peso fresco en una balanza analitica

Luego se coloc6 en una estufa a 70deg C por cinco

dias al termino de las cuales se volvi6 a pesar

Longitud de la plantaSe midi6 la longitud de la parte aerea y de

la raiz en ern

Determinacion del area foliarSe traz6 el borde de las hojas en papel

milimetrado y se calcul6 el area en em

Determinacion de clorofilaSe pes6 19 de hojas de cada tratamiento

para obtener una pulp a fina homogenizando con

acetona en un mortero se filtr6 y enras6 a 10 mL en

una probeta luego se extrajo 1 mL de la soluci6n

para nuevamente diluirlo en 9 mL de acetona Se

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Tabla 1 Soluciones nutritivas empleadas en la evaluaciones de Raphanus sativus

T1 T2 T3

NUTRIENTES(gLl) (gLl) (gLl)

(Mgl2) (Mg) (2 Mg)

Macronutrientes

Nitrato de calcio 0256 0256 0256

Nitrato de potasio 0616 0616 0616

Sulfato de magnesio 0214 0429 0858

Fosfato monoam6nico 0231 0231 0231

Sulfato de potasio 0171 0171 0171

Micro nutrientes

Acido b6rico 124 124 124

Sulfato de cobre 027 027 027

Sulfato de zinc 025 025 025

Molibdato de amonio 003 003 003

Sulfato de hierro 71 71 71

Sulfato de manganeso 073 073 073

Tabla 2 Valores de pH y Conductividad electrica (CE) de las soluciones empleadas en el riego

2411105 051205 1412 05

TRATAMIENTO

pH CE pH CE pH CE

mmohs mmohs mmohs

T1 (Mgl2) 69 09 55 15 58 16

T2 (Mg) 56 22 57 28 56 26

T3 (2Mg) 59 02 58 18 60 19

Tabla 3 Condiciones climaticas de temperatura Humedad relativa e irradiaci6n semanales a

las que se realizaron las evaluaciones en Raphanus sativus

rHOJA rAlRE HR IRRADIACION

eq eC) () (Ix)

22 249 56 45645

206 22 55 53700

246 275 59 56385

22 234 72 24165

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60

50

~ 40

c = 2 300 IIICJ)

20 laquo

10

0

2 3 4

Semanas

- - - + - T1 (50 Mg)

_ T2 (100 Mg)

____ T3 (200 Mg)

Figura 1 Area foliar versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

16

14

12~E

c = 10III - - - + - T1 (50 Mg)CJ )

8 _ T2 (100 Mg)CJ)

laquoc

6____ T3 (200 Mg)

c

0_J

4

2

0

0 2 3 4

Semanas

Figura 2 Longitud aerea versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

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oto) 05tnQ)- = 04o

g 03Q

U 02e n

E 01

o

- - - + - T1 (50 Mg)

____ T2 (100 Mg)

____ T3 (200 Mg)

06

1 2 3 4

Semanas

Figura 3 Clorofila total versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

Figura 4 Comparaci6n de hipocotilos en Raphanus sativus de los tres tratamientos (Tl T2 T3)

en la ultima evaluaci6n

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midi6 la absorbancia de esta soluci6n a longitudes

de onda de 645 y 663 nm

Determinacion de proteinas

Se pes6 5 g de hojas por cada tratamiento que

fueron homogenizados con suero fisio16gico

filtrandose hasta llegar a un volumen de 10mL Se

centrifug6 a 4000 rpm por 40 (4 veces) Se tom6 1

mL del sobrenadante y se llev6 a 5mL con el

reactivo de Biuret Ademas se construy6 una curva

de calibraci6n para determinar la concentraci6n de

proteinas utilizando un stock de ovoalbumina

(1) La Iectura de absorbancia fue a 540 nm

Determinacion de carbohidratos

En la ultima evaluaci6n se extrajeron los

hipoc6tilos de cada tratamiento se tritur6 en un

mortero con acido sulfurico (H2S04) y fenol a15

y luego el filtrado se diluy6 en 1 6 La Iectura de

absorbancia fue a 490 nm Se construy6 una curva

de calibraci6n utilizando soluciones con diferentes

concentraciones de glucosa para determinar la

concentraci6n de carbohidratos

Las plantas de los diferentes tratamientos

fueron fotografiadas con la camara digital

Olympus D-545 ZOOM

RESULTADOS Y DISCUSION

Area foliar

Se caIcu16los promedios del area foliar del

T1 (X=1888 plusmn 658 em) T2 (X= 3438 plusmn 1523

em) y T3 (X=1452 plusmn 733 em) segun el analisis

de varianza (AN VA) mostr6 diferencias

significativas (F=I191 g11=2 g12=33 u=005)

Los valores de la prueba de Tukey se muestran a

continuaci6n

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 1888 A

T2 3438 B

T3 1452 A

Los tratamiento T3 (2 Mg) Y T1 (Mg2)

presentaron medias similares a comparaci6n del

tratamiento T2 (Mg) que obtuvo el mayor

promedio Tanto la deficiencia y el exceso de

magnesio reduce el area foliar que esta

relacionado con la capacidad fotosinteticaAdemas el exceso de magnesio produce

deficiencia de potasio el cual interviene en la

activaci6n de mas de 60 sistemas enzimaticos en

las plantas (Bidwell 1990)(Fig 1)

Longitud de la parte aerea

Se caIcu16 el promedio de la longitud de la

parte area para cada tratamiento T1 (X=958 plusmn

248 cm) T2 (X= 1157 plusmn211 em) y T3 (X=844 plusmn

246 em) mostraron una diferencia significativa

(F=655 g11=2g12=33u=005) y por la prueba de

Tukey se obtuvieron los siguientes resultados

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 958 AB

T2 1157 B

T3 844 A

Los tratamientos T2 (100 Mg+2)Y T3

(200 Mg+

2

) presentan medias diferentes Sinembargo T 1(50 Mg+2)presenta medias similares

a T2 y T3 En este caso el exceso de magnesio fue el

que afect6 principalmente el crecimiento de la

parte area El exceso de magnesio disminuye la

concentraci6n de potasio (Morales 2005) 10 que

produce estres generando una reducci6n del

crecimiento vegetativo de las plantas sobre todo la

porci6n area quiza debido a un incremento de la

sintesis del acido abscisico y un descenso del

contenido de citoquininas (Azcon-Bieto amp Talon

1996) Esto se manifiesta por la reducci6n del

crecimiento caulinar el debilitamiento del tallo y la

baja resistencia a pat6genos (Bidwell 1990) (Fig

2)

Concentracirin de clorofila

Los promedios de la concentraci6n de

cIorofila total para los tratamientos fueron Tl

(X=O11 plusmn 013 mg Clig peso fresco) T2 (X= 016

plusmn 003 mg Clig peso fresco) y T3 (X=O13 plusmn 028

mg Clig peso fresco) cuyo resultado mostr6 una

diferencia significativa (F=041 g11=2 g12=9

u=005) por la prueba de Tukey se obtuvieron los

siguientes valores

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MediasSubconjuntosTratamiento (mg CIIg

peso fresco)homogeneos

T1 011 A

T2 016 B

T3 013 AB

Se observ6 que el tratamiento T2 y T3

presenta una mayor concentraci6n de clorofila ya

que el magnesio es un componente esencial para la

formaci6n de este pigmento (Fernandez ampGarcia

1982) y su deficiencia afecta directamente a la

clorofila (Fig 3)

Analisis de carbohidratos

En el analisis de carbohidratos se obtuvo

una mayor concentraci6n de azucares para T1

(Mg2) Y T2 (Mg) Y una menor concentraci6n para

T3 (2 Mg) Como se sabe el Magnesio es

importante para el ingreso de carbohidratos en el

floema (Bidwell 1990) por 10 que no se ve un

efecto notable en este parametro es decir las

concentraciones de Magnesio que se usaron no

tuvieron efecto sobre la carga del floema

Tratamiento Concentracion de azucar(mgvml)

T1 (Mg 50)

T2 (Mg 100)

T3 (Mg 200)

008

009

0056

Porcentaje demateria seca

Se calcu16 el promedio del porcentaje de

materia seca de la parte aerea para cada tratamiento

T1 (X= 2111 plusmn 1030 ) T2 (X= 2044plusmn 1074)Y T3 (X=1750 plusmn 1087) no presentaron una

diferencia significativa (F=039 g11=2 g12=33

u=005) De igual manera el promedio del

porcentaje de materia seca de la raiz para cada

tratamiento fue T1 (X= 2654 plusmn 1561) T2 (X=

2610 plusmn 2261 ) y T3 (X=2450 plusmn 2229)

tampoco mostraron una diferencia significativa

(F=003 g11=2g12=2127 u=005) El porcentaje

de materia seca no present6 diferencias

significativas entre los tratamientos 10que indica

que la actividad fotosintetica no se ve afectada y

esto confirma los datos de analisis de carbohidratos

vistos previamente

Concentracirinde proteinas

Se calcu16 el promedio de la concentraci6n

de proteinas para cada tratamiento T1 (X=579 plusmn

338 mg-ml) T2 (X= 828 plusmn 382 mg-ml) y T3

(X=943 plusmn 673 mg-ml) Los cuales no mostraron

diferencias significativas (F=058 g11=2 g12=9

a=005) A pesar de que el magnesio esta

implicado en la estabilizaci6n de particulas

ribos6micas al enlazar las subunidades que

forman el ribosoma y de ser un activador en la

sintesis de proteinas (Bidwell 1990) las diferentes

concentraciones no afectaron ninguna de estas

funciones esto explica por que no fueron afectadasla materia seca ni la concentraci6n de

carbohidratos

Sintomatologia

Las plantas T1 (50 Mg) presentaron

sintomas como clorosis desde los margenes hacia

la parte interior manchas moteadas de color rojizo

Estos resultados coinciden con 10que sefiala Resh

(1997) Las plantas T3 (200 Mg) tambien

presentaron clorosis similar a T1 debido a que el

exceso de magnesio causa deficiencia de potasio

produciendo sintomas similares a la deficiencia demagnesio (Morales 2006)(Fig 4)

CONCLUSIONS

bull La deficiencia y exceso de magnesio no afect6

la actividad la concentraci6n demateria seca es

decir no influye en la fotosintesis directamente

a pesar de que la concentraci6n de clorofila si

fue afectada

bull El exceso de magnesio influye en especial al

crecimiento y la deficiencia afectaprincipalmente la concentraci6n de clorofila

bull La deficiencia y el exceso de magnesio son

perjudiciales para el cultivo de R sativus L var

Grimson Giant

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

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magnesium antagonism in growth and

metabolism of radish Plant and Soil 80 355-

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httpwwwverdurasconsumeresdocumentos

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del 2007

Recibido para publicaci6n ellS de marzo del 2007

y aceptado e121 demayo de12007

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INTRODUCCION

Raphanus sativus L (Brassicaceae) es una

planta oriunda del Asia que crece en zonas

tropicales y subtropicales se cultiva todo el afio y

se consume generalmente el hipoc6tilo que

contiene hidratos de carbono y fibras con un bajo

aporte cal6rico y alto contenido de agua Los

minerales mas abundantes en su composici6n son

el potasio y el yodo que aparece en mayor cantidad

que en las demas hortalizas Ademas contiene

cantidades significativas de calcio y f6sforo

(Zarraga 2005)

EI magnesio es esencial en la nutrici6n de

las plantas permite la asimilaci6n de otros

nutrientes se combina con el ATP (permitiendo

que participe en muchas reacciones) y activa

muchas enzimas necesarias para la fotosintesis

respiraci6n sintesis de carbohidratos formaci6n

de grasas y aceites formaci6n de ADN y ARN

(Agarwala amp Mehrotra 1984 Fink et al 2000

Pedleretal 2004 Saiki et al 2004)

La deficiencia de magnesio se manifiesta

por la perdida del color verde que comienza en las

hojas maduras y continua hacia las inmaduras

pero las venas conservan su color los tallos se

forman debiles y las raices se ramifican y se alargan

excesivamente las hojas se tuercen a 10 largo de los

bordes EI exceso de magnesio puede inducir la

carencia de potasio La asimilaci6n de algunos

elementos quimicos es afectada por la presencia de

otros esto se conoce como antagonismo

(Agarwala amp Mehrotra 1984) asi el exceso de

calcio puede interferir la asimilaci6n de magnesio

el exceso de sodio produce deficiencia de calcio y

magnesio (Morales 2005)

EI objetivo del presente trabajo fue

conocer las respuestas de R sativus L var

Grimson Giant frente a tres concentraciones de

magnesio en cultivos hidrop6nicos

MATERIALES Y METODOS

EI presente trabajo se llev6 a cabo en las

instalaciones del invemadero hidrop6nico y del

Laboratorio de Ecofisologia Vegetal de la Facultad

de Ciencias Naturales y Matematica de la

Universidad N acional Federico Villarreal

Se emplearon tres soluciones nutritivas

con diferentes concentraciones de magnesio T1

(Mg2) T2 (Mg) Y T3 (2 Mg) (Tabla 1)

Se emplearon 48 recipientes de plastico de 1 L de

capacidad llenados con sustrato de arena fina en

sus partes previamente lavada y desinfectada

con hipoclorito de sodio (5 ) Se dej6 reposarpor

3-4 dias y fueron lavadas nuevamente hasta

eliminar el desinfectante

Para la siembra se utilizaron 10 semillas de

R sativus L var Crimson Giant rabanito por

cada envase que fueron regados con agua potable

interdiariamente por una semana

Despues del periodo de germinaci6n

fueron elegidas tres plantulas de cada envase por

sus caracteristicas en tamafio color y vigor y se

descartaron las plantulas restantes Se aplic6 un

disefio completamente ramdomizado los

resultados se procesaron mediante ANVA y la

prueba de Tukey (SPSS versi6n 120) con tres

tratamientos y 16 repeticiones cada uno los cuales

fueron regados con soluci6n nutritiva (30 mL)

altemando con agua potable durante 34 dias Se

midi6 el pH y conductividad electrica de cada

soluci6n nutritiva preparada (Tabla 2) Las

principales condiciones de temperatura Humedad

relativa e irradiaci6n del ensayo se realizaron con

una frecuencia de 7 dias y siempre alrededor de las

1000 h (Tabla 3) Para determinar el efecto del

magnesio se realizaron analisis semanales

utilizando los siguientes seis parametres

Porcentaje materia seca (actividadfotosintetica)

Para el analisis se tom6 un envase de cada

tratamiento seleccionandose en dos fracciones

parte aerea (hojas e hipocotilo) y raiz y se

determin6 el peso fresco en una balanza analitica

Luego se coloc6 en una estufa a 70deg C por cinco

dias al termino de las cuales se volvi6 a pesar

Longitud de la plantaSe midi6 la longitud de la parte aerea y de

la raiz en ern

Determinacion del area foliarSe traz6 el borde de las hojas en papel

milimetrado y se calcul6 el area en em

Determinacion de clorofilaSe pes6 19 de hojas de cada tratamiento

para obtener una pulp a fina homogenizando con

acetona en un mortero se filtr6 y enras6 a 10 mL en

una probeta luego se extrajo 1 mL de la soluci6n

para nuevamente diluirlo en 9 mL de acetona Se

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Tabla 1 Soluciones nutritivas empleadas en la evaluaciones de Raphanus sativus

T1 T2 T3

NUTRIENTES(gLl) (gLl) (gLl)

(Mgl2) (Mg) (2 Mg)

Macronutrientes

Nitrato de calcio 0256 0256 0256

Nitrato de potasio 0616 0616 0616

Sulfato de magnesio 0214 0429 0858

Fosfato monoam6nico 0231 0231 0231

Sulfato de potasio 0171 0171 0171

Micro nutrientes

Acido b6rico 124 124 124

Sulfato de cobre 027 027 027

Sulfato de zinc 025 025 025

Molibdato de amonio 003 003 003

Sulfato de hierro 71 71 71

Sulfato de manganeso 073 073 073

Tabla 2 Valores de pH y Conductividad electrica (CE) de las soluciones empleadas en el riego

2411105 051205 1412 05

TRATAMIENTO

pH CE pH CE pH CE

mmohs mmohs mmohs

T1 (Mgl2) 69 09 55 15 58 16

T2 (Mg) 56 22 57 28 56 26

T3 (2Mg) 59 02 58 18 60 19

Tabla 3 Condiciones climaticas de temperatura Humedad relativa e irradiaci6n semanales a

las que se realizaron las evaluaciones en Raphanus sativus

rHOJA rAlRE HR IRRADIACION

eq eC) () (Ix)

22 249 56 45645

206 22 55 53700

246 275 59 56385

22 234 72 24165

13

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

60

50

~ 40

c = 2 300 IIICJ)

20 laquo

10

0

2 3 4

Semanas

- - - + - T1 (50 Mg)

_ T2 (100 Mg)

____ T3 (200 Mg)

Figura 1 Area foliar versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

16

14

12~E

c = 10III - - - + - T1 (50 Mg)CJ )

8 _ T2 (100 Mg)CJ)

laquoc

6____ T3 (200 Mg)

c

0_J

4

2

0

0 2 3 4

Semanas

Figura 2 Longitud aerea versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

14

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oto) 05tnQ)- = 04o

g 03Q

U 02e n

E 01

o

- - - + - T1 (50 Mg)

____ T2 (100 Mg)

____ T3 (200 Mg)

06

1 2 3 4

Semanas

Figura 3 Clorofila total versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

Figura 4 Comparaci6n de hipocotilos en Raphanus sativus de los tres tratamientos (Tl T2 T3)

en la ultima evaluaci6n

15

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

midi6 la absorbancia de esta soluci6n a longitudes

de onda de 645 y 663 nm

Determinacion de proteinas

Se pes6 5 g de hojas por cada tratamiento que

fueron homogenizados con suero fisio16gico

filtrandose hasta llegar a un volumen de 10mL Se

centrifug6 a 4000 rpm por 40 (4 veces) Se tom6 1

mL del sobrenadante y se llev6 a 5mL con el

reactivo de Biuret Ademas se construy6 una curva

de calibraci6n para determinar la concentraci6n de

proteinas utilizando un stock de ovoalbumina

(1) La Iectura de absorbancia fue a 540 nm

Determinacion de carbohidratos

En la ultima evaluaci6n se extrajeron los

hipoc6tilos de cada tratamiento se tritur6 en un

mortero con acido sulfurico (H2S04) y fenol a15

y luego el filtrado se diluy6 en 1 6 La Iectura de

absorbancia fue a 490 nm Se construy6 una curva

de calibraci6n utilizando soluciones con diferentes

concentraciones de glucosa para determinar la

concentraci6n de carbohidratos

Las plantas de los diferentes tratamientos

fueron fotografiadas con la camara digital

Olympus D-545 ZOOM

RESULTADOS Y DISCUSION

Area foliar

Se caIcu16los promedios del area foliar del

T1 (X=1888 plusmn 658 em) T2 (X= 3438 plusmn 1523

em) y T3 (X=1452 plusmn 733 em) segun el analisis

de varianza (AN VA) mostr6 diferencias

significativas (F=I191 g11=2 g12=33 u=005)

Los valores de la prueba de Tukey se muestran a

continuaci6n

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 1888 A

T2 3438 B

T3 1452 A

Los tratamiento T3 (2 Mg) Y T1 (Mg2)

presentaron medias similares a comparaci6n del

tratamiento T2 (Mg) que obtuvo el mayor

promedio Tanto la deficiencia y el exceso de

magnesio reduce el area foliar que esta

relacionado con la capacidad fotosinteticaAdemas el exceso de magnesio produce

deficiencia de potasio el cual interviene en la

activaci6n de mas de 60 sistemas enzimaticos en

las plantas (Bidwell 1990)(Fig 1)

Longitud de la parte aerea

Se caIcu16 el promedio de la longitud de la

parte area para cada tratamiento T1 (X=958 plusmn

248 cm) T2 (X= 1157 plusmn211 em) y T3 (X=844 plusmn

246 em) mostraron una diferencia significativa

(F=655 g11=2g12=33u=005) y por la prueba de

Tukey se obtuvieron los siguientes resultados

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 958 AB

T2 1157 B

T3 844 A

Los tratamientos T2 (100 Mg+2)Y T3

(200 Mg+

2

) presentan medias diferentes Sinembargo T 1(50 Mg+2)presenta medias similares

a T2 y T3 En este caso el exceso de magnesio fue el

que afect6 principalmente el crecimiento de la

parte area El exceso de magnesio disminuye la

concentraci6n de potasio (Morales 2005) 10 que

produce estres generando una reducci6n del

crecimiento vegetativo de las plantas sobre todo la

porci6n area quiza debido a un incremento de la

sintesis del acido abscisico y un descenso del

contenido de citoquininas (Azcon-Bieto amp Talon

1996) Esto se manifiesta por la reducci6n del

crecimiento caulinar el debilitamiento del tallo y la

baja resistencia a pat6genos (Bidwell 1990) (Fig

2)

Concentracirin de clorofila

Los promedios de la concentraci6n de

cIorofila total para los tratamientos fueron Tl

(X=O11 plusmn 013 mg Clig peso fresco) T2 (X= 016

plusmn 003 mg Clig peso fresco) y T3 (X=O13 plusmn 028

mg Clig peso fresco) cuyo resultado mostr6 una

diferencia significativa (F=041 g11=2 g12=9

u=005) por la prueba de Tukey se obtuvieron los

siguientes valores

16

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

MediasSubconjuntosTratamiento (mg CIIg

peso fresco)homogeneos

T1 011 A

T2 016 B

T3 013 AB

Se observ6 que el tratamiento T2 y T3

presenta una mayor concentraci6n de clorofila ya

que el magnesio es un componente esencial para la

formaci6n de este pigmento (Fernandez ampGarcia

1982) y su deficiencia afecta directamente a la

clorofila (Fig 3)

Analisis de carbohidratos

En el analisis de carbohidratos se obtuvo

una mayor concentraci6n de azucares para T1

(Mg2) Y T2 (Mg) Y una menor concentraci6n para

T3 (2 Mg) Como se sabe el Magnesio es

importante para el ingreso de carbohidratos en el

floema (Bidwell 1990) por 10 que no se ve un

efecto notable en este parametro es decir las

concentraciones de Magnesio que se usaron no

tuvieron efecto sobre la carga del floema

Tratamiento Concentracion de azucar(mgvml)

T1 (Mg 50)

T2 (Mg 100)

T3 (Mg 200)

008

009

0056

Porcentaje demateria seca

Se calcu16 el promedio del porcentaje de

materia seca de la parte aerea para cada tratamiento

T1 (X= 2111 plusmn 1030 ) T2 (X= 2044plusmn 1074)Y T3 (X=1750 plusmn 1087) no presentaron una

diferencia significativa (F=039 g11=2 g12=33

u=005) De igual manera el promedio del

porcentaje de materia seca de la raiz para cada

tratamiento fue T1 (X= 2654 plusmn 1561) T2 (X=

2610 plusmn 2261 ) y T3 (X=2450 plusmn 2229)

tampoco mostraron una diferencia significativa

(F=003 g11=2g12=2127 u=005) El porcentaje

de materia seca no present6 diferencias

significativas entre los tratamientos 10que indica

que la actividad fotosintetica no se ve afectada y

esto confirma los datos de analisis de carbohidratos

vistos previamente

Concentracirinde proteinas

Se calcu16 el promedio de la concentraci6n

de proteinas para cada tratamiento T1 (X=579 plusmn

338 mg-ml) T2 (X= 828 plusmn 382 mg-ml) y T3

(X=943 plusmn 673 mg-ml) Los cuales no mostraron

diferencias significativas (F=058 g11=2 g12=9

a=005) A pesar de que el magnesio esta

implicado en la estabilizaci6n de particulas

ribos6micas al enlazar las subunidades que

forman el ribosoma y de ser un activador en la

sintesis de proteinas (Bidwell 1990) las diferentes

concentraciones no afectaron ninguna de estas

funciones esto explica por que no fueron afectadasla materia seca ni la concentraci6n de

carbohidratos

Sintomatologia

Las plantas T1 (50 Mg) presentaron

sintomas como clorosis desde los margenes hacia

la parte interior manchas moteadas de color rojizo

Estos resultados coinciden con 10que sefiala Resh

(1997) Las plantas T3 (200 Mg) tambien

presentaron clorosis similar a T1 debido a que el

exceso de magnesio causa deficiencia de potasio

produciendo sintomas similares a la deficiencia demagnesio (Morales 2006)(Fig 4)

CONCLUSIONS

bull La deficiencia y exceso de magnesio no afect6

la actividad la concentraci6n demateria seca es

decir no influye en la fotosintesis directamente

a pesar de que la concentraci6n de clorofila si

fue afectada

bull El exceso de magnesio influye en especial al

crecimiento y la deficiencia afectaprincipalmente la concentraci6n de clorofila

bull La deficiencia y el exceso de magnesio son

perjudiciales para el cultivo de R sativus L var

Grimson Giant

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

Agarwala SC amp Mehrotra SC 2005 Iron-

magnesium antagonism in growth and

metabolism of radish Plant and Soil 80 355-

361

Azcon-Bieto J amp Talon M 1996 Fisiologia y

17

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

Bioquimica Vegetal 10Ed Ed Interamericana

Me Graw-Hill Madrid Espana 581 p

Bidwell R G 1990 Fisiologia Vegetal 10 Ed

AGT Editor SA Mexico pp 278-281

Fernandez J amp Garcia R 1982 Edafologia y

Fertilizaci6n agricola Ed Aedo Barcelona 1deg

Edici6n Espana p116

Fink M Feller C Scharpf HC Weier uMayne A Ziegler J Paschold PJ amp

Strohmeyer K 2000 Nitrogen phosphorus

potassium and magnesium contents of field

vegetables - Recent data for fertiliser

recommendations and nutrient balances J

PlantNutrit Soil Sci 162 71-73

Morales J 2005 Carencia de nutrientes minerales

Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincom articuloscarencias

-nutrientes-mineraleshtm leido el 08 de abril

de12007

Morales J 2006 Carencias de Nitr6geno F6sforo

y Potasio Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincomarticulos carencias

-nitrogeno- fosforo-potasiohtmpotasio leido

el 08 de abril de12007

Pedler JF Kinraide TBampParker DR 2004 Zinc

rhizotoxicity in wheat and radish is alleviated

by micromolar levels of magnesium and

potassium in solution culture Plant and Soil

259 191-199

Resh M H 1997 Nutrici6nde las plantas pp 39-

56 Cultivos hidrop6nicos Ed Mundi-Prensa

Mexico

Saiki C Hirasawa R Sadayasu C Yamashiro

S Tominaga M amp Sato K 2004 Uptake of

iron by a vegetable kaiware daikon (Japanese

radish sprout) J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo)

50 286-290

Zarraga A 2005 Hortalizas y verduras

Consumeres Erosko Espana Disponible en

httpwwwverdurasconsumeresdocumentos

Ihortalizasrabanointrophpleido el 08 de abril

del 2007

Recibido para publicaci6n ellS de marzo del 2007

y aceptado e121 demayo de12007

18

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Tabla 1 Soluciones nutritivas empleadas en la evaluaciones de Raphanus sativus

T1 T2 T3

NUTRIENTES(gLl) (gLl) (gLl)

(Mgl2) (Mg) (2 Mg)

Macronutrientes

Nitrato de calcio 0256 0256 0256

Nitrato de potasio 0616 0616 0616

Sulfato de magnesio 0214 0429 0858

Fosfato monoam6nico 0231 0231 0231

Sulfato de potasio 0171 0171 0171

Micro nutrientes

Acido b6rico 124 124 124

Sulfato de cobre 027 027 027

Sulfato de zinc 025 025 025

Molibdato de amonio 003 003 003

Sulfato de hierro 71 71 71

Sulfato de manganeso 073 073 073

Tabla 2 Valores de pH y Conductividad electrica (CE) de las soluciones empleadas en el riego

2411105 051205 1412 05

TRATAMIENTO

pH CE pH CE pH CE

mmohs mmohs mmohs

T1 (Mgl2) 69 09 55 15 58 16

T2 (Mg) 56 22 57 28 56 26

T3 (2Mg) 59 02 58 18 60 19

Tabla 3 Condiciones climaticas de temperatura Humedad relativa e irradiaci6n semanales a

las que se realizaron las evaluaciones en Raphanus sativus

rHOJA rAlRE HR IRRADIACION

eq eC) () (Ix)

22 249 56 45645

206 22 55 53700

246 275 59 56385

22 234 72 24165

13

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

60

50

~ 40

c = 2 300 IIICJ)

20 laquo

10

0

2 3 4

Semanas

- - - + - T1 (50 Mg)

_ T2 (100 Mg)

____ T3 (200 Mg)

Figura 1 Area foliar versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

16

14

12~E

c = 10III - - - + - T1 (50 Mg)CJ )

8 _ T2 (100 Mg)CJ)

laquoc

6____ T3 (200 Mg)

c

0_J

4

2

0

0 2 3 4

Semanas

Figura 2 Longitud aerea versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

14

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oto) 05tnQ)- = 04o

g 03Q

U 02e n

E 01

o

- - - + - T1 (50 Mg)

____ T2 (100 Mg)

____ T3 (200 Mg)

06

1 2 3 4

Semanas

Figura 3 Clorofila total versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

Figura 4 Comparaci6n de hipocotilos en Raphanus sativus de los tres tratamientos (Tl T2 T3)

en la ultima evaluaci6n

15

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

midi6 la absorbancia de esta soluci6n a longitudes

de onda de 645 y 663 nm

Determinacion de proteinas

Se pes6 5 g de hojas por cada tratamiento que

fueron homogenizados con suero fisio16gico

filtrandose hasta llegar a un volumen de 10mL Se

centrifug6 a 4000 rpm por 40 (4 veces) Se tom6 1

mL del sobrenadante y se llev6 a 5mL con el

reactivo de Biuret Ademas se construy6 una curva

de calibraci6n para determinar la concentraci6n de

proteinas utilizando un stock de ovoalbumina

(1) La Iectura de absorbancia fue a 540 nm

Determinacion de carbohidratos

En la ultima evaluaci6n se extrajeron los

hipoc6tilos de cada tratamiento se tritur6 en un

mortero con acido sulfurico (H2S04) y fenol a15

y luego el filtrado se diluy6 en 1 6 La Iectura de

absorbancia fue a 490 nm Se construy6 una curva

de calibraci6n utilizando soluciones con diferentes

concentraciones de glucosa para determinar la

concentraci6n de carbohidratos

Las plantas de los diferentes tratamientos

fueron fotografiadas con la camara digital

Olympus D-545 ZOOM

RESULTADOS Y DISCUSION

Area foliar

Se caIcu16los promedios del area foliar del

T1 (X=1888 plusmn 658 em) T2 (X= 3438 plusmn 1523

em) y T3 (X=1452 plusmn 733 em) segun el analisis

de varianza (AN VA) mostr6 diferencias

significativas (F=I191 g11=2 g12=33 u=005)

Los valores de la prueba de Tukey se muestran a

continuaci6n

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 1888 A

T2 3438 B

T3 1452 A

Los tratamiento T3 (2 Mg) Y T1 (Mg2)

presentaron medias similares a comparaci6n del

tratamiento T2 (Mg) que obtuvo el mayor

promedio Tanto la deficiencia y el exceso de

magnesio reduce el area foliar que esta

relacionado con la capacidad fotosinteticaAdemas el exceso de magnesio produce

deficiencia de potasio el cual interviene en la

activaci6n de mas de 60 sistemas enzimaticos en

las plantas (Bidwell 1990)(Fig 1)

Longitud de la parte aerea

Se caIcu16 el promedio de la longitud de la

parte area para cada tratamiento T1 (X=958 plusmn

248 cm) T2 (X= 1157 plusmn211 em) y T3 (X=844 plusmn

246 em) mostraron una diferencia significativa

(F=655 g11=2g12=33u=005) y por la prueba de

Tukey se obtuvieron los siguientes resultados

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 958 AB

T2 1157 B

T3 844 A

Los tratamientos T2 (100 Mg+2)Y T3

(200 Mg+

2

) presentan medias diferentes Sinembargo T 1(50 Mg+2)presenta medias similares

a T2 y T3 En este caso el exceso de magnesio fue el

que afect6 principalmente el crecimiento de la

parte area El exceso de magnesio disminuye la

concentraci6n de potasio (Morales 2005) 10 que

produce estres generando una reducci6n del

crecimiento vegetativo de las plantas sobre todo la

porci6n area quiza debido a un incremento de la

sintesis del acido abscisico y un descenso del

contenido de citoquininas (Azcon-Bieto amp Talon

1996) Esto se manifiesta por la reducci6n del

crecimiento caulinar el debilitamiento del tallo y la

baja resistencia a pat6genos (Bidwell 1990) (Fig

2)

Concentracirin de clorofila

Los promedios de la concentraci6n de

cIorofila total para los tratamientos fueron Tl

(X=O11 plusmn 013 mg Clig peso fresco) T2 (X= 016

plusmn 003 mg Clig peso fresco) y T3 (X=O13 plusmn 028

mg Clig peso fresco) cuyo resultado mostr6 una

diferencia significativa (F=041 g11=2 g12=9

u=005) por la prueba de Tukey se obtuvieron los

siguientes valores

16

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

MediasSubconjuntosTratamiento (mg CIIg

peso fresco)homogeneos

T1 011 A

T2 016 B

T3 013 AB

Se observ6 que el tratamiento T2 y T3

presenta una mayor concentraci6n de clorofila ya

que el magnesio es un componente esencial para la

formaci6n de este pigmento (Fernandez ampGarcia

1982) y su deficiencia afecta directamente a la

clorofila (Fig 3)

Analisis de carbohidratos

En el analisis de carbohidratos se obtuvo

una mayor concentraci6n de azucares para T1

(Mg2) Y T2 (Mg) Y una menor concentraci6n para

T3 (2 Mg) Como se sabe el Magnesio es

importante para el ingreso de carbohidratos en el

floema (Bidwell 1990) por 10 que no se ve un

efecto notable en este parametro es decir las

concentraciones de Magnesio que se usaron no

tuvieron efecto sobre la carga del floema

Tratamiento Concentracion de azucar(mgvml)

T1 (Mg 50)

T2 (Mg 100)

T3 (Mg 200)

008

009

0056

Porcentaje demateria seca

Se calcu16 el promedio del porcentaje de

materia seca de la parte aerea para cada tratamiento

T1 (X= 2111 plusmn 1030 ) T2 (X= 2044plusmn 1074)Y T3 (X=1750 plusmn 1087) no presentaron una

diferencia significativa (F=039 g11=2 g12=33

u=005) De igual manera el promedio del

porcentaje de materia seca de la raiz para cada

tratamiento fue T1 (X= 2654 plusmn 1561) T2 (X=

2610 plusmn 2261 ) y T3 (X=2450 plusmn 2229)

tampoco mostraron una diferencia significativa

(F=003 g11=2g12=2127 u=005) El porcentaje

de materia seca no present6 diferencias

significativas entre los tratamientos 10que indica

que la actividad fotosintetica no se ve afectada y

esto confirma los datos de analisis de carbohidratos

vistos previamente

Concentracirinde proteinas

Se calcu16 el promedio de la concentraci6n

de proteinas para cada tratamiento T1 (X=579 plusmn

338 mg-ml) T2 (X= 828 plusmn 382 mg-ml) y T3

(X=943 plusmn 673 mg-ml) Los cuales no mostraron

diferencias significativas (F=058 g11=2 g12=9

a=005) A pesar de que el magnesio esta

implicado en la estabilizaci6n de particulas

ribos6micas al enlazar las subunidades que

forman el ribosoma y de ser un activador en la

sintesis de proteinas (Bidwell 1990) las diferentes

concentraciones no afectaron ninguna de estas

funciones esto explica por que no fueron afectadasla materia seca ni la concentraci6n de

carbohidratos

Sintomatologia

Las plantas T1 (50 Mg) presentaron

sintomas como clorosis desde los margenes hacia

la parte interior manchas moteadas de color rojizo

Estos resultados coinciden con 10que sefiala Resh

(1997) Las plantas T3 (200 Mg) tambien

presentaron clorosis similar a T1 debido a que el

exceso de magnesio causa deficiencia de potasio

produciendo sintomas similares a la deficiencia demagnesio (Morales 2006)(Fig 4)

CONCLUSIONS

bull La deficiencia y exceso de magnesio no afect6

la actividad la concentraci6n demateria seca es

decir no influye en la fotosintesis directamente

a pesar de que la concentraci6n de clorofila si

fue afectada

bull El exceso de magnesio influye en especial al

crecimiento y la deficiencia afectaprincipalmente la concentraci6n de clorofila

bull La deficiencia y el exceso de magnesio son

perjudiciales para el cultivo de R sativus L var

Grimson Giant

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

Agarwala SC amp Mehrotra SC 2005 Iron-

magnesium antagonism in growth and

metabolism of radish Plant and Soil 80 355-

361

Azcon-Bieto J amp Talon M 1996 Fisiologia y

17

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httpslidepdfcomreaderfullexperimentocon-rabanito 88

Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

Bioquimica Vegetal 10Ed Ed Interamericana

Me Graw-Hill Madrid Espana 581 p

Bidwell R G 1990 Fisiologia Vegetal 10 Ed

AGT Editor SA Mexico pp 278-281

Fernandez J amp Garcia R 1982 Edafologia y

Fertilizaci6n agricola Ed Aedo Barcelona 1deg

Edici6n Espana p116

Fink M Feller C Scharpf HC Weier uMayne A Ziegler J Paschold PJ amp

Strohmeyer K 2000 Nitrogen phosphorus

potassium and magnesium contents of field

vegetables - Recent data for fertiliser

recommendations and nutrient balances J

PlantNutrit Soil Sci 162 71-73

Morales J 2005 Carencia de nutrientes minerales

Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincom articuloscarencias

-nutrientes-mineraleshtm leido el 08 de abril

de12007

Morales J 2006 Carencias de Nitr6geno F6sforo

y Potasio Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincomarticulos carencias

-nitrogeno- fosforo-potasiohtmpotasio leido

el 08 de abril de12007

Pedler JF Kinraide TBampParker DR 2004 Zinc

rhizotoxicity in wheat and radish is alleviated

by micromolar levels of magnesium and

potassium in solution culture Plant and Soil

259 191-199

Resh M H 1997 Nutrici6nde las plantas pp 39-

56 Cultivos hidrop6nicos Ed Mundi-Prensa

Mexico

Saiki C Hirasawa R Sadayasu C Yamashiro

S Tominaga M amp Sato K 2004 Uptake of

iron by a vegetable kaiware daikon (Japanese

radish sprout) J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo)

50 286-290

Zarraga A 2005 Hortalizas y verduras

Consumeres Erosko Espana Disponible en

httpwwwverdurasconsumeresdocumentos

Ihortalizasrabanointrophpleido el 08 de abril

del 2007

Recibido para publicaci6n ellS de marzo del 2007

y aceptado e121 demayo de12007

18

Page 4: experimentocon rabanito

5172018 experimentocon rabanito - slidepdfcom

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

60

50

~ 40

c = 2 300 IIICJ)

20 laquo

10

0

2 3 4

Semanas

- - - + - T1 (50 Mg)

_ T2 (100 Mg)

____ T3 (200 Mg)

Figura 1 Area foliar versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

16

14

12~E

c = 10III - - - + - T1 (50 Mg)CJ )

8 _ T2 (100 Mg)CJ)

laquoc

6____ T3 (200 Mg)

c

0_J

4

2

0

0 2 3 4

Semanas

Figura 2 Longitud aerea versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

14

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oto) 05tnQ)- = 04o

g 03Q

U 02e n

E 01

o

- - - + - T1 (50 Mg)

____ T2 (100 Mg)

____ T3 (200 Mg)

06

1 2 3 4

Semanas

Figura 3 Clorofila total versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

Figura 4 Comparaci6n de hipocotilos en Raphanus sativus de los tres tratamientos (Tl T2 T3)

en la ultima evaluaci6n

15

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

midi6 la absorbancia de esta soluci6n a longitudes

de onda de 645 y 663 nm

Determinacion de proteinas

Se pes6 5 g de hojas por cada tratamiento que

fueron homogenizados con suero fisio16gico

filtrandose hasta llegar a un volumen de 10mL Se

centrifug6 a 4000 rpm por 40 (4 veces) Se tom6 1

mL del sobrenadante y se llev6 a 5mL con el

reactivo de Biuret Ademas se construy6 una curva

de calibraci6n para determinar la concentraci6n de

proteinas utilizando un stock de ovoalbumina

(1) La Iectura de absorbancia fue a 540 nm

Determinacion de carbohidratos

En la ultima evaluaci6n se extrajeron los

hipoc6tilos de cada tratamiento se tritur6 en un

mortero con acido sulfurico (H2S04) y fenol a15

y luego el filtrado se diluy6 en 1 6 La Iectura de

absorbancia fue a 490 nm Se construy6 una curva

de calibraci6n utilizando soluciones con diferentes

concentraciones de glucosa para determinar la

concentraci6n de carbohidratos

Las plantas de los diferentes tratamientos

fueron fotografiadas con la camara digital

Olympus D-545 ZOOM

RESULTADOS Y DISCUSION

Area foliar

Se caIcu16los promedios del area foliar del

T1 (X=1888 plusmn 658 em) T2 (X= 3438 plusmn 1523

em) y T3 (X=1452 plusmn 733 em) segun el analisis

de varianza (AN VA) mostr6 diferencias

significativas (F=I191 g11=2 g12=33 u=005)

Los valores de la prueba de Tukey se muestran a

continuaci6n

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 1888 A

T2 3438 B

T3 1452 A

Los tratamiento T3 (2 Mg) Y T1 (Mg2)

presentaron medias similares a comparaci6n del

tratamiento T2 (Mg) que obtuvo el mayor

promedio Tanto la deficiencia y el exceso de

magnesio reduce el area foliar que esta

relacionado con la capacidad fotosinteticaAdemas el exceso de magnesio produce

deficiencia de potasio el cual interviene en la

activaci6n de mas de 60 sistemas enzimaticos en

las plantas (Bidwell 1990)(Fig 1)

Longitud de la parte aerea

Se caIcu16 el promedio de la longitud de la

parte area para cada tratamiento T1 (X=958 plusmn

248 cm) T2 (X= 1157 plusmn211 em) y T3 (X=844 plusmn

246 em) mostraron una diferencia significativa

(F=655 g11=2g12=33u=005) y por la prueba de

Tukey se obtuvieron los siguientes resultados

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 958 AB

T2 1157 B

T3 844 A

Los tratamientos T2 (100 Mg+2)Y T3

(200 Mg+

2

) presentan medias diferentes Sinembargo T 1(50 Mg+2)presenta medias similares

a T2 y T3 En este caso el exceso de magnesio fue el

que afect6 principalmente el crecimiento de la

parte area El exceso de magnesio disminuye la

concentraci6n de potasio (Morales 2005) 10 que

produce estres generando una reducci6n del

crecimiento vegetativo de las plantas sobre todo la

porci6n area quiza debido a un incremento de la

sintesis del acido abscisico y un descenso del

contenido de citoquininas (Azcon-Bieto amp Talon

1996) Esto se manifiesta por la reducci6n del

crecimiento caulinar el debilitamiento del tallo y la

baja resistencia a pat6genos (Bidwell 1990) (Fig

2)

Concentracirin de clorofila

Los promedios de la concentraci6n de

cIorofila total para los tratamientos fueron Tl

(X=O11 plusmn 013 mg Clig peso fresco) T2 (X= 016

plusmn 003 mg Clig peso fresco) y T3 (X=O13 plusmn 028

mg Clig peso fresco) cuyo resultado mostr6 una

diferencia significativa (F=041 g11=2 g12=9

u=005) por la prueba de Tukey se obtuvieron los

siguientes valores

16

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

MediasSubconjuntosTratamiento (mg CIIg

peso fresco)homogeneos

T1 011 A

T2 016 B

T3 013 AB

Se observ6 que el tratamiento T2 y T3

presenta una mayor concentraci6n de clorofila ya

que el magnesio es un componente esencial para la

formaci6n de este pigmento (Fernandez ampGarcia

1982) y su deficiencia afecta directamente a la

clorofila (Fig 3)

Analisis de carbohidratos

En el analisis de carbohidratos se obtuvo

una mayor concentraci6n de azucares para T1

(Mg2) Y T2 (Mg) Y una menor concentraci6n para

T3 (2 Mg) Como se sabe el Magnesio es

importante para el ingreso de carbohidratos en el

floema (Bidwell 1990) por 10 que no se ve un

efecto notable en este parametro es decir las

concentraciones de Magnesio que se usaron no

tuvieron efecto sobre la carga del floema

Tratamiento Concentracion de azucar(mgvml)

T1 (Mg 50)

T2 (Mg 100)

T3 (Mg 200)

008

009

0056

Porcentaje demateria seca

Se calcu16 el promedio del porcentaje de

materia seca de la parte aerea para cada tratamiento

T1 (X= 2111 plusmn 1030 ) T2 (X= 2044plusmn 1074)Y T3 (X=1750 plusmn 1087) no presentaron una

diferencia significativa (F=039 g11=2 g12=33

u=005) De igual manera el promedio del

porcentaje de materia seca de la raiz para cada

tratamiento fue T1 (X= 2654 plusmn 1561) T2 (X=

2610 plusmn 2261 ) y T3 (X=2450 plusmn 2229)

tampoco mostraron una diferencia significativa

(F=003 g11=2g12=2127 u=005) El porcentaje

de materia seca no present6 diferencias

significativas entre los tratamientos 10que indica

que la actividad fotosintetica no se ve afectada y

esto confirma los datos de analisis de carbohidratos

vistos previamente

Concentracirinde proteinas

Se calcu16 el promedio de la concentraci6n

de proteinas para cada tratamiento T1 (X=579 plusmn

338 mg-ml) T2 (X= 828 plusmn 382 mg-ml) y T3

(X=943 plusmn 673 mg-ml) Los cuales no mostraron

diferencias significativas (F=058 g11=2 g12=9

a=005) A pesar de que el magnesio esta

implicado en la estabilizaci6n de particulas

ribos6micas al enlazar las subunidades que

forman el ribosoma y de ser un activador en la

sintesis de proteinas (Bidwell 1990) las diferentes

concentraciones no afectaron ninguna de estas

funciones esto explica por que no fueron afectadasla materia seca ni la concentraci6n de

carbohidratos

Sintomatologia

Las plantas T1 (50 Mg) presentaron

sintomas como clorosis desde los margenes hacia

la parte interior manchas moteadas de color rojizo

Estos resultados coinciden con 10que sefiala Resh

(1997) Las plantas T3 (200 Mg) tambien

presentaron clorosis similar a T1 debido a que el

exceso de magnesio causa deficiencia de potasio

produciendo sintomas similares a la deficiencia demagnesio (Morales 2006)(Fig 4)

CONCLUSIONS

bull La deficiencia y exceso de magnesio no afect6

la actividad la concentraci6n demateria seca es

decir no influye en la fotosintesis directamente

a pesar de que la concentraci6n de clorofila si

fue afectada

bull El exceso de magnesio influye en especial al

crecimiento y la deficiencia afectaprincipalmente la concentraci6n de clorofila

bull La deficiencia y el exceso de magnesio son

perjudiciales para el cultivo de R sativus L var

Grimson Giant

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

Agarwala SC amp Mehrotra SC 2005 Iron-

magnesium antagonism in growth and

metabolism of radish Plant and Soil 80 355-

361

Azcon-Bieto J amp Talon M 1996 Fisiologia y

17

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httpslidepdfcomreaderfullexperimentocon-rabanito 88

Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

Bioquimica Vegetal 10Ed Ed Interamericana

Me Graw-Hill Madrid Espana 581 p

Bidwell R G 1990 Fisiologia Vegetal 10 Ed

AGT Editor SA Mexico pp 278-281

Fernandez J amp Garcia R 1982 Edafologia y

Fertilizaci6n agricola Ed Aedo Barcelona 1deg

Edici6n Espana p116

Fink M Feller C Scharpf HC Weier uMayne A Ziegler J Paschold PJ amp

Strohmeyer K 2000 Nitrogen phosphorus

potassium and magnesium contents of field

vegetables - Recent data for fertiliser

recommendations and nutrient balances J

PlantNutrit Soil Sci 162 71-73

Morales J 2005 Carencia de nutrientes minerales

Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincom articuloscarencias

-nutrientes-mineraleshtm leido el 08 de abril

de12007

Morales J 2006 Carencias de Nitr6geno F6sforo

y Potasio Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincomarticulos carencias

-nitrogeno- fosforo-potasiohtmpotasio leido

el 08 de abril de12007

Pedler JF Kinraide TBampParker DR 2004 Zinc

rhizotoxicity in wheat and radish is alleviated

by micromolar levels of magnesium and

potassium in solution culture Plant and Soil

259 191-199

Resh M H 1997 Nutrici6nde las plantas pp 39-

56 Cultivos hidrop6nicos Ed Mundi-Prensa

Mexico

Saiki C Hirasawa R Sadayasu C Yamashiro

S Tominaga M amp Sato K 2004 Uptake of

iron by a vegetable kaiware daikon (Japanese

radish sprout) J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo)

50 286-290

Zarraga A 2005 Hortalizas y verduras

Consumeres Erosko Espana Disponible en

httpwwwverdurasconsumeresdocumentos

Ihortalizasrabanointrophpleido el 08 de abril

del 2007

Recibido para publicaci6n ellS de marzo del 2007

y aceptado e121 demayo de12007

18

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oto) 05tnQ)- = 04o

g 03Q

U 02e n

E 01

o

- - - + - T1 (50 Mg)

____ T2 (100 Mg)

____ T3 (200 Mg)

06

1 2 3 4

Semanas

Figura 3 Clorofila total versus tiempo en Raphanus sativus a tres concentraciones de magnesio

Figura 4 Comparaci6n de hipocotilos en Raphanus sativus de los tres tratamientos (Tl T2 T3)

en la ultima evaluaci6n

15

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

midi6 la absorbancia de esta soluci6n a longitudes

de onda de 645 y 663 nm

Determinacion de proteinas

Se pes6 5 g de hojas por cada tratamiento que

fueron homogenizados con suero fisio16gico

filtrandose hasta llegar a un volumen de 10mL Se

centrifug6 a 4000 rpm por 40 (4 veces) Se tom6 1

mL del sobrenadante y se llev6 a 5mL con el

reactivo de Biuret Ademas se construy6 una curva

de calibraci6n para determinar la concentraci6n de

proteinas utilizando un stock de ovoalbumina

(1) La Iectura de absorbancia fue a 540 nm

Determinacion de carbohidratos

En la ultima evaluaci6n se extrajeron los

hipoc6tilos de cada tratamiento se tritur6 en un

mortero con acido sulfurico (H2S04) y fenol a15

y luego el filtrado se diluy6 en 1 6 La Iectura de

absorbancia fue a 490 nm Se construy6 una curva

de calibraci6n utilizando soluciones con diferentes

concentraciones de glucosa para determinar la

concentraci6n de carbohidratos

Las plantas de los diferentes tratamientos

fueron fotografiadas con la camara digital

Olympus D-545 ZOOM

RESULTADOS Y DISCUSION

Area foliar

Se caIcu16los promedios del area foliar del

T1 (X=1888 plusmn 658 em) T2 (X= 3438 plusmn 1523

em) y T3 (X=1452 plusmn 733 em) segun el analisis

de varianza (AN VA) mostr6 diferencias

significativas (F=I191 g11=2 g12=33 u=005)

Los valores de la prueba de Tukey se muestran a

continuaci6n

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 1888 A

T2 3438 B

T3 1452 A

Los tratamiento T3 (2 Mg) Y T1 (Mg2)

presentaron medias similares a comparaci6n del

tratamiento T2 (Mg) que obtuvo el mayor

promedio Tanto la deficiencia y el exceso de

magnesio reduce el area foliar que esta

relacionado con la capacidad fotosinteticaAdemas el exceso de magnesio produce

deficiencia de potasio el cual interviene en la

activaci6n de mas de 60 sistemas enzimaticos en

las plantas (Bidwell 1990)(Fig 1)

Longitud de la parte aerea

Se caIcu16 el promedio de la longitud de la

parte area para cada tratamiento T1 (X=958 plusmn

248 cm) T2 (X= 1157 plusmn211 em) y T3 (X=844 plusmn

246 em) mostraron una diferencia significativa

(F=655 g11=2g12=33u=005) y por la prueba de

Tukey se obtuvieron los siguientes resultados

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 958 AB

T2 1157 B

T3 844 A

Los tratamientos T2 (100 Mg+2)Y T3

(200 Mg+

2

) presentan medias diferentes Sinembargo T 1(50 Mg+2)presenta medias similares

a T2 y T3 En este caso el exceso de magnesio fue el

que afect6 principalmente el crecimiento de la

parte area El exceso de magnesio disminuye la

concentraci6n de potasio (Morales 2005) 10 que

produce estres generando una reducci6n del

crecimiento vegetativo de las plantas sobre todo la

porci6n area quiza debido a un incremento de la

sintesis del acido abscisico y un descenso del

contenido de citoquininas (Azcon-Bieto amp Talon

1996) Esto se manifiesta por la reducci6n del

crecimiento caulinar el debilitamiento del tallo y la

baja resistencia a pat6genos (Bidwell 1990) (Fig

2)

Concentracirin de clorofila

Los promedios de la concentraci6n de

cIorofila total para los tratamientos fueron Tl

(X=O11 plusmn 013 mg Clig peso fresco) T2 (X= 016

plusmn 003 mg Clig peso fresco) y T3 (X=O13 plusmn 028

mg Clig peso fresco) cuyo resultado mostr6 una

diferencia significativa (F=041 g11=2 g12=9

u=005) por la prueba de Tukey se obtuvieron los

siguientes valores

16

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

MediasSubconjuntosTratamiento (mg CIIg

peso fresco)homogeneos

T1 011 A

T2 016 B

T3 013 AB

Se observ6 que el tratamiento T2 y T3

presenta una mayor concentraci6n de clorofila ya

que el magnesio es un componente esencial para la

formaci6n de este pigmento (Fernandez ampGarcia

1982) y su deficiencia afecta directamente a la

clorofila (Fig 3)

Analisis de carbohidratos

En el analisis de carbohidratos se obtuvo

una mayor concentraci6n de azucares para T1

(Mg2) Y T2 (Mg) Y una menor concentraci6n para

T3 (2 Mg) Como se sabe el Magnesio es

importante para el ingreso de carbohidratos en el

floema (Bidwell 1990) por 10 que no se ve un

efecto notable en este parametro es decir las

concentraciones de Magnesio que se usaron no

tuvieron efecto sobre la carga del floema

Tratamiento Concentracion de azucar(mgvml)

T1 (Mg 50)

T2 (Mg 100)

T3 (Mg 200)

008

009

0056

Porcentaje demateria seca

Se calcu16 el promedio del porcentaje de

materia seca de la parte aerea para cada tratamiento

T1 (X= 2111 plusmn 1030 ) T2 (X= 2044plusmn 1074)Y T3 (X=1750 plusmn 1087) no presentaron una

diferencia significativa (F=039 g11=2 g12=33

u=005) De igual manera el promedio del

porcentaje de materia seca de la raiz para cada

tratamiento fue T1 (X= 2654 plusmn 1561) T2 (X=

2610 plusmn 2261 ) y T3 (X=2450 plusmn 2229)

tampoco mostraron una diferencia significativa

(F=003 g11=2g12=2127 u=005) El porcentaje

de materia seca no present6 diferencias

significativas entre los tratamientos 10que indica

que la actividad fotosintetica no se ve afectada y

esto confirma los datos de analisis de carbohidratos

vistos previamente

Concentracirinde proteinas

Se calcu16 el promedio de la concentraci6n

de proteinas para cada tratamiento T1 (X=579 plusmn

338 mg-ml) T2 (X= 828 plusmn 382 mg-ml) y T3

(X=943 plusmn 673 mg-ml) Los cuales no mostraron

diferencias significativas (F=058 g11=2 g12=9

a=005) A pesar de que el magnesio esta

implicado en la estabilizaci6n de particulas

ribos6micas al enlazar las subunidades que

forman el ribosoma y de ser un activador en la

sintesis de proteinas (Bidwell 1990) las diferentes

concentraciones no afectaron ninguna de estas

funciones esto explica por que no fueron afectadasla materia seca ni la concentraci6n de

carbohidratos

Sintomatologia

Las plantas T1 (50 Mg) presentaron

sintomas como clorosis desde los margenes hacia

la parte interior manchas moteadas de color rojizo

Estos resultados coinciden con 10que sefiala Resh

(1997) Las plantas T3 (200 Mg) tambien

presentaron clorosis similar a T1 debido a que el

exceso de magnesio causa deficiencia de potasio

produciendo sintomas similares a la deficiencia demagnesio (Morales 2006)(Fig 4)

CONCLUSIONS

bull La deficiencia y exceso de magnesio no afect6

la actividad la concentraci6n demateria seca es

decir no influye en la fotosintesis directamente

a pesar de que la concentraci6n de clorofila si

fue afectada

bull El exceso de magnesio influye en especial al

crecimiento y la deficiencia afectaprincipalmente la concentraci6n de clorofila

bull La deficiencia y el exceso de magnesio son

perjudiciales para el cultivo de R sativus L var

Grimson Giant

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

Agarwala SC amp Mehrotra SC 2005 Iron-

magnesium antagonism in growth and

metabolism of radish Plant and Soil 80 355-

361

Azcon-Bieto J amp Talon M 1996 Fisiologia y

17

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

Bioquimica Vegetal 10Ed Ed Interamericana

Me Graw-Hill Madrid Espana 581 p

Bidwell R G 1990 Fisiologia Vegetal 10 Ed

AGT Editor SA Mexico pp 278-281

Fernandez J amp Garcia R 1982 Edafologia y

Fertilizaci6n agricola Ed Aedo Barcelona 1deg

Edici6n Espana p116

Fink M Feller C Scharpf HC Weier uMayne A Ziegler J Paschold PJ amp

Strohmeyer K 2000 Nitrogen phosphorus

potassium and magnesium contents of field

vegetables - Recent data for fertiliser

recommendations and nutrient balances J

PlantNutrit Soil Sci 162 71-73

Morales J 2005 Carencia de nutrientes minerales

Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincom articuloscarencias

-nutrientes-mineraleshtm leido el 08 de abril

de12007

Morales J 2006 Carencias de Nitr6geno F6sforo

y Potasio Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincomarticulos carencias

-nitrogeno- fosforo-potasiohtmpotasio leido

el 08 de abril de12007

Pedler JF Kinraide TBampParker DR 2004 Zinc

rhizotoxicity in wheat and radish is alleviated

by micromolar levels of magnesium and

potassium in solution culture Plant and Soil

259 191-199

Resh M H 1997 Nutrici6nde las plantas pp 39-

56 Cultivos hidrop6nicos Ed Mundi-Prensa

Mexico

Saiki C Hirasawa R Sadayasu C Yamashiro

S Tominaga M amp Sato K 2004 Uptake of

iron by a vegetable kaiware daikon (Japanese

radish sprout) J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo)

50 286-290

Zarraga A 2005 Hortalizas y verduras

Consumeres Erosko Espana Disponible en

httpwwwverdurasconsumeresdocumentos

Ihortalizasrabanointrophpleido el 08 de abril

del 2007

Recibido para publicaci6n ellS de marzo del 2007

y aceptado e121 demayo de12007

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Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

midi6 la absorbancia de esta soluci6n a longitudes

de onda de 645 y 663 nm

Determinacion de proteinas

Se pes6 5 g de hojas por cada tratamiento que

fueron homogenizados con suero fisio16gico

filtrandose hasta llegar a un volumen de 10mL Se

centrifug6 a 4000 rpm por 40 (4 veces) Se tom6 1

mL del sobrenadante y se llev6 a 5mL con el

reactivo de Biuret Ademas se construy6 una curva

de calibraci6n para determinar la concentraci6n de

proteinas utilizando un stock de ovoalbumina

(1) La Iectura de absorbancia fue a 540 nm

Determinacion de carbohidratos

En la ultima evaluaci6n se extrajeron los

hipoc6tilos de cada tratamiento se tritur6 en un

mortero con acido sulfurico (H2S04) y fenol a15

y luego el filtrado se diluy6 en 1 6 La Iectura de

absorbancia fue a 490 nm Se construy6 una curva

de calibraci6n utilizando soluciones con diferentes

concentraciones de glucosa para determinar la

concentraci6n de carbohidratos

Las plantas de los diferentes tratamientos

fueron fotografiadas con la camara digital

Olympus D-545 ZOOM

RESULTADOS Y DISCUSION

Area foliar

Se caIcu16los promedios del area foliar del

T1 (X=1888 plusmn 658 em) T2 (X= 3438 plusmn 1523

em) y T3 (X=1452 plusmn 733 em) segun el analisis

de varianza (AN VA) mostr6 diferencias

significativas (F=I191 g11=2 g12=33 u=005)

Los valores de la prueba de Tukey se muestran a

continuaci6n

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 1888 A

T2 3438 B

T3 1452 A

Los tratamiento T3 (2 Mg) Y T1 (Mg2)

presentaron medias similares a comparaci6n del

tratamiento T2 (Mg) que obtuvo el mayor

promedio Tanto la deficiencia y el exceso de

magnesio reduce el area foliar que esta

relacionado con la capacidad fotosinteticaAdemas el exceso de magnesio produce

deficiencia de potasio el cual interviene en la

activaci6n de mas de 60 sistemas enzimaticos en

las plantas (Bidwell 1990)(Fig 1)

Longitud de la parte aerea

Se caIcu16 el promedio de la longitud de la

parte area para cada tratamiento T1 (X=958 plusmn

248 cm) T2 (X= 1157 plusmn211 em) y T3 (X=844 plusmn

246 em) mostraron una diferencia significativa

(F=655 g11=2g12=33u=005) y por la prueba de

Tukey se obtuvieron los siguientes resultados

Tratamientos Medias Subconjuntos

homogeneos

T1 958 AB

T2 1157 B

T3 844 A

Los tratamientos T2 (100 Mg+2)Y T3

(200 Mg+

2

) presentan medias diferentes Sinembargo T 1(50 Mg+2)presenta medias similares

a T2 y T3 En este caso el exceso de magnesio fue el

que afect6 principalmente el crecimiento de la

parte area El exceso de magnesio disminuye la

concentraci6n de potasio (Morales 2005) 10 que

produce estres generando una reducci6n del

crecimiento vegetativo de las plantas sobre todo la

porci6n area quiza debido a un incremento de la

sintesis del acido abscisico y un descenso del

contenido de citoquininas (Azcon-Bieto amp Talon

1996) Esto se manifiesta por la reducci6n del

crecimiento caulinar el debilitamiento del tallo y la

baja resistencia a pat6genos (Bidwell 1990) (Fig

2)

Concentracirin de clorofila

Los promedios de la concentraci6n de

cIorofila total para los tratamientos fueron Tl

(X=O11 plusmn 013 mg Clig peso fresco) T2 (X= 016

plusmn 003 mg Clig peso fresco) y T3 (X=O13 plusmn 028

mg Clig peso fresco) cuyo resultado mostr6 una

diferencia significativa (F=041 g11=2 g12=9

u=005) por la prueba de Tukey se obtuvieron los

siguientes valores

16

5172018 experimentocon rabanito - slidepdfcom

httpslidepdfcomreaderfullexperimentocon-rabanito 78

Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

MediasSubconjuntosTratamiento (mg CIIg

peso fresco)homogeneos

T1 011 A

T2 016 B

T3 013 AB

Se observ6 que el tratamiento T2 y T3

presenta una mayor concentraci6n de clorofila ya

que el magnesio es un componente esencial para la

formaci6n de este pigmento (Fernandez ampGarcia

1982) y su deficiencia afecta directamente a la

clorofila (Fig 3)

Analisis de carbohidratos

En el analisis de carbohidratos se obtuvo

una mayor concentraci6n de azucares para T1

(Mg2) Y T2 (Mg) Y una menor concentraci6n para

T3 (2 Mg) Como se sabe el Magnesio es

importante para el ingreso de carbohidratos en el

floema (Bidwell 1990) por 10 que no se ve un

efecto notable en este parametro es decir las

concentraciones de Magnesio que se usaron no

tuvieron efecto sobre la carga del floema

Tratamiento Concentracion de azucar(mgvml)

T1 (Mg 50)

T2 (Mg 100)

T3 (Mg 200)

008

009

0056

Porcentaje demateria seca

Se calcu16 el promedio del porcentaje de

materia seca de la parte aerea para cada tratamiento

T1 (X= 2111 plusmn 1030 ) T2 (X= 2044plusmn 1074)Y T3 (X=1750 plusmn 1087) no presentaron una

diferencia significativa (F=039 g11=2 g12=33

u=005) De igual manera el promedio del

porcentaje de materia seca de la raiz para cada

tratamiento fue T1 (X= 2654 plusmn 1561) T2 (X=

2610 plusmn 2261 ) y T3 (X=2450 plusmn 2229)

tampoco mostraron una diferencia significativa

(F=003 g11=2g12=2127 u=005) El porcentaje

de materia seca no present6 diferencias

significativas entre los tratamientos 10que indica

que la actividad fotosintetica no se ve afectada y

esto confirma los datos de analisis de carbohidratos

vistos previamente

Concentracirinde proteinas

Se calcu16 el promedio de la concentraci6n

de proteinas para cada tratamiento T1 (X=579 plusmn

338 mg-ml) T2 (X= 828 plusmn 382 mg-ml) y T3

(X=943 plusmn 673 mg-ml) Los cuales no mostraron

diferencias significativas (F=058 g11=2 g12=9

a=005) A pesar de que el magnesio esta

implicado en la estabilizaci6n de particulas

ribos6micas al enlazar las subunidades que

forman el ribosoma y de ser un activador en la

sintesis de proteinas (Bidwell 1990) las diferentes

concentraciones no afectaron ninguna de estas

funciones esto explica por que no fueron afectadasla materia seca ni la concentraci6n de

carbohidratos

Sintomatologia

Las plantas T1 (50 Mg) presentaron

sintomas como clorosis desde los margenes hacia

la parte interior manchas moteadas de color rojizo

Estos resultados coinciden con 10que sefiala Resh

(1997) Las plantas T3 (200 Mg) tambien

presentaron clorosis similar a T1 debido a que el

exceso de magnesio causa deficiencia de potasio

produciendo sintomas similares a la deficiencia demagnesio (Morales 2006)(Fig 4)

CONCLUSIONS

bull La deficiencia y exceso de magnesio no afect6

la actividad la concentraci6n demateria seca es

decir no influye en la fotosintesis directamente

a pesar de que la concentraci6n de clorofila si

fue afectada

bull El exceso de magnesio influye en especial al

crecimiento y la deficiencia afectaprincipalmente la concentraci6n de clorofila

bull La deficiencia y el exceso de magnesio son

perjudiciales para el cultivo de R sativus L var

Grimson Giant

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

Agarwala SC amp Mehrotra SC 2005 Iron-

magnesium antagonism in growth and

metabolism of radish Plant and Soil 80 355-

361

Azcon-Bieto J amp Talon M 1996 Fisiologia y

17

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httpslidepdfcomreaderfullexperimentocon-rabanito 88

Biologist (Lima) Vol 5 Ndegl Ene-Jun 2007 Bailon H et al

Bioquimica Vegetal 10Ed Ed Interamericana

Me Graw-Hill Madrid Espana 581 p

Bidwell R G 1990 Fisiologia Vegetal 10 Ed

AGT Editor SA Mexico pp 278-281

Fernandez J amp Garcia R 1982 Edafologia y

Fertilizaci6n agricola Ed Aedo Barcelona 1deg

Edici6n Espana p116

Fink M Feller C Scharpf HC Weier uMayne A Ziegler J Paschold PJ amp

Strohmeyer K 2000 Nitrogen phosphorus

potassium and magnesium contents of field

vegetables - Recent data for fertiliser

recommendations and nutrient balances J

PlantNutrit Soil Sci 162 71-73

Morales J 2005 Carencia de nutrientes minerales

Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincom articuloscarencias

-nutrientes-mineraleshtm leido el 08 de abril

de12007

Morales J 2006 Carencias de Nitr6geno F6sforo

y Potasio Infojardin Espana Disponible en

httpwwwinfojardincomarticulos carencias

-nitrogeno- fosforo-potasiohtmpotasio leido

el 08 de abril de12007

Pedler JF Kinraide TBampParker DR 2004 Zinc

rhizotoxicity in wheat and radish is alleviated

by micromolar levels of magnesium and

potassium in solution culture Plant and Soil

259 191-199

Resh M H 1997 Nutrici6nde las plantas pp 39-

56 Cultivos hidrop6nicos Ed Mundi-Prensa

Mexico

Saiki C Hirasawa R Sadayasu C Yamashiro

S Tominaga M amp Sato K 2004 Uptake of

iron by a vegetable kaiware daikon (Japanese

radish sprout) J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo)

50 286-290

Zarraga A 2005 Hortalizas y verduras

Consumeres Erosko Espana Disponible en

httpwwwverdurasconsumeresdocumentos

Ihortalizasrabanointrophpleido el 08 de abril

del 2007

Recibido para publicaci6n ellS de marzo del 2007

y aceptado e121 demayo de12007

18

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peso fresco)homogeneos

T1 011 A

T2 016 B

T3 013 AB

Se observ6 que el tratamiento T2 y T3

presenta una mayor concentraci6n de clorofila ya

que el magnesio es un componente esencial para la

formaci6n de este pigmento (Fernandez ampGarcia

1982) y su deficiencia afecta directamente a la

clorofila (Fig 3)

Analisis de carbohidratos

En el analisis de carbohidratos se obtuvo

una mayor concentraci6n de azucares para T1

(Mg2) Y T2 (Mg) Y una menor concentraci6n para

T3 (2 Mg) Como se sabe el Magnesio es

importante para el ingreso de carbohidratos en el

floema (Bidwell 1990) por 10 que no se ve un

efecto notable en este parametro es decir las

concentraciones de Magnesio que se usaron no

tuvieron efecto sobre la carga del floema

Tratamiento Concentracion de azucar(mgvml)

T1 (Mg 50)

T2 (Mg 100)

T3 (Mg 200)

008

009

0056

Porcentaje demateria seca

Se calcu16 el promedio del porcentaje de

materia seca de la parte aerea para cada tratamiento

T1 (X= 2111 plusmn 1030 ) T2 (X= 2044plusmn 1074)Y T3 (X=1750 plusmn 1087) no presentaron una

diferencia significativa (F=039 g11=2 g12=33

u=005) De igual manera el promedio del

porcentaje de materia seca de la raiz para cada

tratamiento fue T1 (X= 2654 plusmn 1561) T2 (X=

2610 plusmn 2261 ) y T3 (X=2450 plusmn 2229)

tampoco mostraron una diferencia significativa

(F=003 g11=2g12=2127 u=005) El porcentaje

de materia seca no present6 diferencias

significativas entre los tratamientos 10que indica

que la actividad fotosintetica no se ve afectada y

esto confirma los datos de analisis de carbohidratos

vistos previamente

Concentracirinde proteinas

Se calcu16 el promedio de la concentraci6n

de proteinas para cada tratamiento T1 (X=579 plusmn

338 mg-ml) T2 (X= 828 plusmn 382 mg-ml) y T3

(X=943 plusmn 673 mg-ml) Los cuales no mostraron

diferencias significativas (F=058 g11=2 g12=9

a=005) A pesar de que el magnesio esta

implicado en la estabilizaci6n de particulas

ribos6micas al enlazar las subunidades que

forman el ribosoma y de ser un activador en la

sintesis de proteinas (Bidwell 1990) las diferentes

concentraciones no afectaron ninguna de estas

funciones esto explica por que no fueron afectadasla materia seca ni la concentraci6n de

carbohidratos

Sintomatologia

Las plantas T1 (50 Mg) presentaron

sintomas como clorosis desde los margenes hacia

la parte interior manchas moteadas de color rojizo

Estos resultados coinciden con 10que sefiala Resh

(1997) Las plantas T3 (200 Mg) tambien

presentaron clorosis similar a T1 debido a que el

exceso de magnesio causa deficiencia de potasio

produciendo sintomas similares a la deficiencia demagnesio (Morales 2006)(Fig 4)

CONCLUSIONS

bull La deficiencia y exceso de magnesio no afect6

la actividad la concentraci6n demateria seca es

decir no influye en la fotosintesis directamente

a pesar de que la concentraci6n de clorofila si

fue afectada

bull El exceso de magnesio influye en especial al

crecimiento y la deficiencia afectaprincipalmente la concentraci6n de clorofila

bull La deficiencia y el exceso de magnesio son

perjudiciales para el cultivo de R sativus L var

Grimson Giant

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

Agarwala SC amp Mehrotra SC 2005 Iron-

magnesium antagonism in growth and

metabolism of radish Plant and Soil 80 355-

361

Azcon-Bieto J amp Talon M 1996 Fisiologia y

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Bioquimica Vegetal 10Ed Ed Interamericana

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Strohmeyer K 2000 Nitrogen phosphorus

potassium and magnesium contents of field

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Morales J 2006 Carencias de Nitr6geno F6sforo

y Potasio Infojardin Espana Disponible en

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el 08 de abril de12007

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by micromolar levels of magnesium and

potassium in solution culture Plant and Soil

259 191-199

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Mexico

Saiki C Hirasawa R Sadayasu C Yamashiro

S Tominaga M amp Sato K 2004 Uptake of

iron by a vegetable kaiware daikon (Japanese

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50 286-290

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