poster del laboratorio

1
La BIOTECNOLOGÍA por medio de El CULTIVO DE TEJIDOS VEGETALES o CULTIVO In Vitro, representa un grupo de técnicas que bajo condiciones totalmente asépticas, a partir de un pequeño segmento inicial de tejido (semillas, embriones, órganos, tejidos, células y protoplastos) es posible regenerar en poco tiempo miles de plantas genéticamente iguales a la planta madre. El desarrollo de investigaciones encaminadas a generar tecnologías para el mejoramiento de Ia propagación vegetativa de especies en extisión, híbridos o clones geneticamente mejorados, conservación de germoplasma, el mejoramiento genético por tecnicas de selección in vitro, y el trasporte de germoplasma a través de fronteras internacionales sin riesgos fitosanitarios; son acciones prioritarias en las que el cultivo de tejidos vegetales representa una alternativa viable en el marco de la agricultura sustentable. Mediante el empleo de técnicas moleculares es posible certificar antes de su liberación al campo, la uniformidad (clonación) o la variación genética que las plantas obtenidas poseen. Desde 1997, con la partisipación de estudiantes en el Laboratorio de Biotecnología del Instituto Tecnológico Agropecuario No. 28, se realizan diversos proyectos de investigación y desarrollo tecnológico encaminados hacia la micropropagación de especies económicamente importantes en la región sur del país. A traves de los cuales los estudiantes son capasitados durante su servicios social y estancia de residencia profesional misma que se realizan en colaboración con otras instituciones del país, lo cual fortalece la formación del capital humano de calidad esta área nueva del conocimiento. Payró de la Cruz Emeterio Payró de la Cruz Emeterio Docente. Instituto Tecnológico Agropecuario No. 28. Villa Docente. Instituto Tecnológico Agropecuario No. 28. Villa Ocuiltzapotlán, Centro Tabasco, México. [email protected] Ocuiltzapotlán, Centro Tabasco, México. [email protected] BIBLIOGRAFIA 1.- Chi, M.F. 1998. Etiología y Manejo Integral de la Bacteriosis (Erwinia carotovora Smith) en Pitahaya. Tesis de Maestría. Centro de Investigación y Graduados Agropecuarios No. 2. Conkal, Yucatán. 2.- Cruz D.H., Sánchez R.D. y Payró C.E. 1998. Efecto del Tiadiazurón Sobre la Morfogénesis en Yemas Axilares de Pitahaya (Hylocerus undatus). IX Congreso Nacional de Investigación y Desarrollo Tecnológico Agropecuario. D.G.E.T.A. Conkal, Yucatán. Pg. 95. 3.- López, A.J.I., Rodríguez, C.M., Olivera, S., y González, L.V.W. 1996. Áreas Potenciales Para el Cultivo de Maracuyá y Pitahaya en Tabasco. Informe Técnico. INIFAP. Campo Experimental Huimanguillo, Tabasco 7p. 4.- Mohamed, Y.Y. 1994. Micropropagation of Pitahaya (Hylocereus undatus Brítton & Rose). Hort Science. 29:55-59. 5.- Murashigue, T. and F.A. Skoog (1962). A Revised Medium For Rapid Growth and Bioassays With Tobacco Culture. Physiol. Plant. 15:473- 497. 6.- Narváez G.J.L., Bustamante G.M., Payró de la C.E y González G.S. 2001. Evaluation of Citokinines on Regeneration in vitro of Pitahaya (Hylocereus undatus H.). Hort Science 36(3). 458-459. 7.- Payró C.E., Ruiz C.V., Cruz D.H., y Sánchez R.D. 1998. Metodología Para el Establecimiento Aséptico de Yemas Axilares de Pitahaya Fungir como una unidad de servicios para la formación de profesionales de alto nivel capasitados en el uso responsable de la biotecnología para el desarrollo sustentable. Promover la vinculación con instituciones academicas, de investigación y el sector productivo del país. Laboratorio de Biotecnología Logros y Perspectivas DIAGRAMA DE FLUJO METODOLOGIA REGENERACIÓN. De plántulas asépticas se disectan brotes (1cm) y son decapitados para su cultivo en un medio nutritivo MS (Murashigue y Skoog, 1963), suplementado con diferentes concentraciones de TDZ o BA (0, 1, 2, 4, 6, 8, y 10 M), sacarosa 30 gr/l, pH 5.7. En cada contenedor se aplican 20ml de medio y se siembra un explante individual. A los 24 días 6 M de BA al igual que 1 M de TDZ inducen 20 brotes respectivamente, al igual que callo, el que es separado y cultivado de manera independiente donde muestra su capacidad para la regeneración de brotes. En esta etapa los callos pueden ser co-cultivados con filtrados del agente causal de la bacteriosis y con el tejido sobreviviente estimular la brotación. Los brotes de aproximadamente de 1 cm de altura, son individualizados y transferidos a medio nuevo donde permanecen por 15 días, donde se estimula su crecimiento y emisión de raíces. ACLIMATIZACIÓN. Plántulas de aproximadamente 2.5 cm de altura, son transferidas ex vitro a macetas conteniendo una mezcla (v/v) de tierra negra, cascarilla de cacao (Theobroma cacao L) triturada y arena de río previamente esterilizadas en autoclave (121°C durante 20 min); donde permanecen por 30-45 días duplicando su MISIÓN La metodología propuesta tiene una capacidad potencial para la producción de 20 plántulas por explante y una sobrevivencia del 95% durante la etapa de aclimatización. El ciclo de propagación no rebasa los 6 meses. CONCLUSIONES INTRODUCCIÓN Explante inicial Experimento para regeneración Inducción de callos y brotes Cultivo y proliferación de callo Co-cultivos y experimentos para la selección in vitro Regeneración de plantas a partir de tejido resistente Plantula con sistema radical Subcultivo paras estimular el crecimiento de los brotes Transferencia a condiciones ex vitro. Evaluación y mantenimiento del cultivo Planta terminada REGENERACIÓN ACLIMATIZACIÓN Consolidarse como un laboratorio generador de tecnología de frontera y capital humanos, que respondan a las demandas del sector productivo. VISIÓN

Upload: emeterio-payro-de-la-cruz

Post on 17-Dec-2015

5 views

Category:

Documents


0 download

DESCRIPTION

DE TRABAJOS REALIZADOS EN EL ITZO

TRANSCRIPT

  • La BIOTECNOLOGA por medio de El CULTIVO DE TEJIDOS VEGETALES o CULTIVO In Vitro, representa un grupo de tcnicas que bajo condiciones totalmente aspticas, a partir de un pequeo segmento inicial de tejido (semillas, embriones, rganos, tejidos, clulas y protoplastos) es posible regenerar en poco tiempo miles de plantas genticamente iguales a la planta madre.

    El desarrollo de investigaciones encaminadas a generar tecnologas para el mejoramiento de Ia propagacin vegetativa de especies en extisin, hbridos o clones geneticamente mejorados, conservacin de germoplasma, el mejoramiento gentico por tecnicas de seleccin in vitro, y el trasporte de germoplasma a travs de fronteras internacionales sin riesgos fitosanitarios; son acciones prioritarias en las que el cultivo de tejidos vegetales representa una alternativa viable en el marco de la agricultura sustentable. Mediante el empleo de tcnicas moleculares es posible certificar antes de su liberacin al campo, la uniformidad (clonacin) o la variacin gentica que las plantas obtenidas poseen.

    Desde 1997, con la partisipacin de estudiantes en el Laboratorio de Biotecnologa del Instituto Tecnolgico Agropecuario No. 28, se realizan diversos proyectos de investigacin y desarrollo tecnolgico encaminados hacia la micropropagacin de especies econmicamente importantes en la regin sur del pas. A traves de los cuales los estudiantes son capasitados durante su servicios social y estancia de residencia profesional misma que se realizan en colaboracin con otras instituciones del pas, lo cual fortalece la formacin del capital humano de calidad esta rea nueva del conocimiento.

    Payr de la Cruz EmeterioDocente. Instituto Tecnolgico Agropecuario No. 28. Villa Ocuiltzapotln, Centro Tabasco, Mxico. [email protected] BIBLIOGRAFIA

    1.- Chi, M.F. 1998. Etiologa y Manejo Integral de la Bacteriosis (Erwinia carotovora Smith) en Pitahaya. Tesis de Maestra. Centro de Investigacin y Graduados Agropecuarios No. 2. Conkal, Yucatn.2.- Cruz D.H., Snchez R.D. y Payr C.E. 1998. Efecto del Tiadiazurn Sobre la Morfognesis en Yemas Axilares de Pitahaya (Hylocerus undatus). IX Congreso Nacional de Investigacin y Desarrollo Tecnolgico Agropecuario. D.G.E.T.A. Conkal, Yucatn. Pg. 95. 3.- Lpez, A.J.I., Rodrguez, C.M., Olivera, S., y Gonzlez, L.V.W. 1996. reas Potenciales Para el Cultivo de Maracuy y Pitahaya en Tabasco. Informe Tcnico. INIFAP. Campo Experimental Huimanguillo, Tabasco 7p.4.- Mohamed, Y.Y. 1994. Micropropagation of Pitahaya (Hylocereus undatus Brtton & Rose). Hort Science. 29:55-59.5.- Murashigue, T. and F.A. Skoog (1962). A Revised Medium For Rapid Growth and Bioassays With Tobacco Culture. Physiol. Plant. 15:473-497.6.- Narvez G.J.L., Bustamante G.M., Payr de la C.E y Gonzlez G.S. 2001. Evaluation of Citokinines on Regeneration in vitro of Pitahaya (Hylocereus undatus H.). Hort Science 36(3). 458-459. 7.- Payr C.E., Ruiz C.V., Cruz D.H., y Snchez R.D. 1998. Metodologa Para el Establecimiento Asptico de Yemas Axilares de Pitahaya (Hylocerus undatus). XI Reunin Cientfica-Tecnolgica Forestal y Agropecuaria. I.N.I.F.A.P. Villahermosa, Tabasco. Pg. 241-245.

    Fungir como una unidad de servicios para la formacin de profesionales de alto nivel capasitados en el uso responsable de la biotecnologa para el desarrollo sustentable.

    Promover la vinculacin con instituciones academicas, de investigacin y el sector productivo del pas.Laboratorio de Biotecnologa Logros y Perspectivas DIAGRAMA DE FLUJO METODOLOGIAREGENERACIN.

    De plntulas aspticas se disectan brotes (1cm) y son decapitados para su cultivo en un medio nutritivo MS (Murashigue y Skoog, 1963), suplementado con diferentes concentraciones de TDZ o BA (0, 1, 2, 4, 6, 8, y 10 mM), sacarosa 30 gr/l, pH 5.7. En cada contenedor se aplican 20ml de medio y se siembra un explante individual. A los 24 das 6 mM de BA al igual que 1 mM de TDZ inducen 20 brotes respectivamente, al igual que callo, el que es separado y cultivado de manera independiente donde muestra su capacidad para la regeneracin de brotes. En esta etapa los callos pueden ser co-cultivados con filtrados del agente causal de la bacteriosis y con el tejido sobreviviente estimular la brotacin. Los brotes de aproximadamente de 1 cm de altura, son individualizados y transferidos a medio nuevo donde permanecen por 15 das, donde se estimula su crecimiento y emisin de races.

    ACLIMATIZACIN.

    Plntulas de aproximadamente 2.5 cm de altura, son transferidas ex vitro a macetas conteniendo una mezcla (v/v) de tierra negra, cascarilla de cacao (Theobroma cacao L) triturada y arena de ro previamente esterilizadas en autoclave (121C durante 20 min); donde permanecen por 30-45 das duplicando su crecimiento y teniendo una sobrevivencia mayor del 95% ex vitro.MISIN

    La metodologa propuesta tiene una capacidad potencial para la produccin de 20 plntulas por explante y una sobrevivencia del 95% durante la etapa de aclimatizacin.

    El ciclo de propagacin no rebasa los 6 meses.

    CONCLUSIONESINTRODUCCINExplante inicialExperimento para regeneracinInduccin de callos y brotesCultivo y proliferacin de calloCo-cultivos y experimentos para la seleccin in vitroRegeneracin de plantas a partirde tejido resistentePlantula con sistema radicalSubcultivo paras estimular el crecimiento de los brotesTransferencia a condiciones ex vitro.Evaluacin y mantenimiento del cultivoPlanta terminadaREGENERACINACLIMATIZACIN

    Consolidarse como un laboratorio generador de tecnologa de frontera y capital humanos, que respondan a las demandas del sector productivo.VISIN

    *