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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLAS
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
EVALUACIÓN FITOSANITARIA Y AGRONÓMICA EN POBLACIONES
LOCALES DE FRÉJOL EN UNICULTIVO EN COTACACHI, SARAGURO Y
GUALACEO
TESIS DE GRADO PREVIA A LA ONTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERA
AGRÓNOMA
LORENA ALEXANDRA SAIGUA TINGO
QUITO-ECUADOR
2015
ii
DEDICATORIA
A Dios por haber sido mi guía y la luz en mi vida, por haberme dado fuerzas para culminar con
mi carrera.
A mi hermana María Teresa Saigua que ha sido un apoyo fundamental a lo largo de mi carrera,
por ser un ejemplo a seguir por enseñarme a luchar y ser cada día mejor.
A mis padres Ramiro y Elisa por haberme dado la vida, su apoyo y cariño
A mis hermanas Teresa, Mirian, Alicia, Fabiola y Vanesa, a mis sobrinos Alex, Helen, Micaela,
Keila y Miguelito por ser la alegría de todos los días.
iii
AGRADECIMIENTO
A la Universidad Central del Ecuador en especial a la Facultad de Ciencias Agrícolas por toda la enseñanza
impartida a lo largo de mi carrera universitaria.
A todos los ingenieros de la facultad de Ciencias Agrícolas quienes, nos inculcaron sus conocimiento y
prepararnos de la mejor manera para servir a la patria.
Al Ing. José Ochoa, por su apoyo en todo el proceso de la investigación.
Al Ing Juan Pazmiño, por el tiempo que dedico a la elaboración del trabajo de tesis.
A Don Antonio, Don Miguel Cumbas y su familia, a Don Luis por habernos abierto las puertas de su casa en
proceso de campo de muestras tesis.
A Fredy Geovanny Tapia Farinango, por haber sido un apoyo fundamental a inicios de mi carrera.
A Víctor Farinango, por ser mi amigo incondicional, gracias por la ayuda brindada y por las cosas vividas en
todo este proceso.
A mis queridos amigos Gaby C, Gloria H, Javi G, Yolanda L, Cris Ch, Vero D, Nelly B, Janeth D, Pablo C,
Víctor A, Mire G, Jhony C, Norma A, Lenin C, Edison S y a todos los Vodka Jr, por todos los momentos
compartidos, por el apoyo y su amistad incondicional.
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL
Yo, Lorena Alexandra Saigua Tingo en calidad de autor del trabajo de investigación o tesis
realizada sobre EVALUACIÓN FITOSANITARIA Y AGRONÓMICA EN POBLACIONES DE
FRÉJOL EN UNICULTIVO EN COTACACHI, SARAGURO Y GUALACEO, PHYTOSANITARY
AND AGRONOMIC ASSESSMENT OF LOCAL BEAN MONOULTURES IN COTACACHI,
SARAGURO AND GUALACEO, por la presente autorizo a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL
ECUADOR, hacer uso de todos los contenidos que me pertenecen o de parte de los que
contienen esta obra, con fines estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los
artículos 5, 6, 8, 19 y demás pertinentes de la ley de Propiedad Intelectual y su
Reglamento.
Quito, 04 de Agosto del 2015
FIRMA
060323562-3
IV
CERTIFICACIÓN
En calidad de tutor de trabajo de graduación cuyo título es: EVALUACIÓN FITOSANITARIA
Y AGRONÓMICA EN POBLACIONES LOCALES DE FRÉJOL EN UNICULTIVO EN COTACACHI,
SARAGURO Y GUALACEO. Presentado por la señorita Lorena Alexandra Saigua Tingo,
certifico haber revisado corregido, por lo que apruebo el mismo.
Tumbaco, a 04 de Agosto del 2015
Ing. Agr. José Ochoa, M.Sc.
TUTOR
Tumbaco, 04 de Agosto del 2015
Ingeniero
Carlos Alberto Ortega.,M.Sc.
DIRECTOR DE CARRERA DE
INGENIERÍA AGRONÓMICA
Presente.
Señor Director:
Luego de las revisiones técnicas realizadas por mi persona del trabajo de graduación,
EVALUACIÓN FITOSANITARIA Y AGRONÓMICA EN POBLACIONES LOCALES DE FRÉJOL EN
UNICULTIVO EN COTACACHI, SARAGURO Y GUALACEO llevado a cabo por parte de la
Señorita Egresada: LORENA ALEXANDRA SAIGUA TINGO de la Carrera de Ingeniería
Agronómica, ha concluido de manera exitosa, consecuentemente, la indicada estudiante
podrá continuar con los trámites de graduación correspondientes de acuerdo a lo que
estipulan las normativas y disposiciones legales.
Por la atención que se digne a dar a la presente, le anticipo mi agradecimiento.
Atentamente,
Ing. Agr. José Ochoa, M. Se.
TUTOR
vi
EVALUACIÓN FITOSANITARIA Y AGRONÓMICA DE POBLACIONES LOCALES
DE FRÉJOL EN UNICULTIVO EN COTACACHI, SARAGURO Y GUALACEO
APROBADO POR:
Ing. Agr. José Ochoa, M.Sc.
DIRECTOR DE TESIS
Lie. Diego Salazar, M. Se.
PRESIDENTE DE TRIBUNAL
Ing. Agr. Héctor Andrade, M. Se.
PRIMER VOCAL
Ing. Agr. Juan Pazmiño, M. Se.
SEGUNDO VOCAL
Vil
viii
CONTENIDO
CAPÍTULO PÁGINAS
1. INTRODUCCIÓN 1
2. REVISIÓN DE LITERATURA 3
2.1. Origen del fréjol 3
2.2. Clasificación taxonómica 3
2.3. Descripción botánica 3
2.4. Hábito de crecimiento. 4
2.5. Fenología de la planta 5
2.6. Etapas de la fase reproductiva 6
2.7. Defensa natural contra los patógenos 6
2.7.1. La resistencia 7
2.7.1.1. Resistencia Horizontal 7
2.7.1.2. Resistencia Vertical 7
2.7.2. Tolerancia 8
2.7.3. Inmunidad 8
2.7.4. Escape 8
2.8. Enfermedades del fréjol 8
2.8.1. Roya 8
2.8.1.1. Sintomatología 8
2.8.1.2. Epidemiologia 8
2.8.1.3. Control Cultural 8
2.8.2. ANTRACNOSIS 9
2.8.2.1. Sintomatología 9
2.8.2.2. Epidemiología 9
2.8.2.3. Control cultural 9
2.8.3. Ascoquita 9
2.8.3.1. Sintomatología 9
2.8.3.2. Epidemiología 9
ix
CAPÍTULO PÁGINAS
2.8.3.3. Control cultural 10
2.8.4. Virus del mosaico común del fréjol BCMV 10
2.8.4.1. Epidemiologia 10
2.8.4.2. Sintomatología 10
2.8.4.3. Control 10
2.8.5. Oídio o cenicilla 10
2.8.5.1. Sintomatología 10
2.8.5.2. Epidemiología 10
3. MATERIALES Y MÉTODOS 12
3.1. Ubicación del experimento 12
3.1.1. Ubicación política y geográfica 12
3.2. Materiales 12
3.3. Métodos 13
3.3.1. Experimento 1. Evaluación de genotipos de fréjol de Cotacachi y Saraguro. 13
3.3.2. Factor en estudio 13
3.3.3. Tratamientos 13
3.3.4. Análisis estadístico 14
3.3.4.1. Diseño Experimental. 14
3.3.4.2. Unidad experimental 14
3.3.4.3. Análisis de Variancia para genotipos locales de Cotacachi y Saraguro. 14
3.3.4.4. Análisis funcional 14
3.4. Variables y métodos de evaluación 14
3.4.1. Variables de Enfermedad 14
3.4.1.1. Tipos de reacción de roya 15
3.4.1.2. Severidad de ascochyta 15
3.4.1.3. Severidad de antracnosis 16
3.4.1.4. Severidad del mosaico común de fréjol CBMV 16
3.4.2. Severidad de oídio 17
x
CAPÍTULO PÁGINAS
3.5. Variables agronómicas 17
3.5.1. Días a inicios de floración 17
3.5.2. Días inicio a la primera vaina 17
3.5.3. Días a la madurez 17
3.5.4. Peso de 100 semillas 17
3.5.5. Rendimiento por planta 18
3.6. Manejo del experimento 18
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 19
4.1. Roya 19
4.2. Ascochyta 21
4.3. Antracnosis 22
4.4. Virus del Mosaico Común del Fréjol (CBMV) 24
4.5. Oídio 25
4.6. Evaluacion agronómica de genotipos 27
4.6.1. Días a la floración, días a la formación de vaina y días a la madurez fisiológica 27
4.6.2. Rendimiento y Peso de 100 semillas. 30
4.6.3. Análisis de correlación 32
5. CONCLUSIONES 34
6. RECOMENDACIONES 35
7. RESUMEN 36
8. SUMMARY 37
9. REFERENCIAS 38
10. ANEXOS 45
xi
ÍNDICE DE ANEXOS
ANEXO PÁG
1. Caracterización por forma, color y nombres que le dan los agricultores a los
genotipos de Cotacachi. Cotacachi, Imbabura 2014. 45
2. Semillas de fréjol 47
3. Parcela Experimental 48
4. Sintomatología causada por Uromyces appendiculatus 68
5. Sintomatología para (Phoma exigua var, exigua) 69
6. Sintomatología para (Colletotrichum lindemuthianum) 69
7. Sintomatología para CBMV 70
8. Sintomatología para (Erysiphe polygoni) 70
9. Floración R6 71
10. Envainado de frejol R7 71
11. Evaluaciones del cultivo 72
12. Evaluaciones del cultivo de fréjol 73
13. Cosecha de los ensayos de fréjol 73
14. Vainas de fréjol 74
15. Peso de 100 semillas 74
xii
ÍNDICES DE CUADROS
CUADRO PÁG
1. Genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro evaluados en Ensilada y Cañicapa
(Saraguro);Bullcay(Azuay) y Cumbas Conde (Cotacachi). 13
2. Escala para la evaluación del tipo de pústula de roya 15
3. Escala para la evaluación en campo de la resistencia a ascochyta 15
4. Escala para la evaluación en campo de la resistencia a antracnosis 16
5. Escala para la evaluación en campo de virus. 16
6. Escala para la evaluación en campo de oídio. 17
7. ANOVA para la evaluación de severidad de roya en poblaciones locales de Cotacachi y
Saraguro. 19
8. Tipos de reacción de resistencia y severidad de roya de 65 genotipos de Cotacachi y 69
genotipos de Saraguro. 20
9. ANOVA para la evaluación de ascochytaen poblacioneslocales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro. 21
10. Severidad de resistencia (R) y medianamente resistente (MR) para ascochyta y grupos de
reacción en base al análisis de conglomerados de genotipos locales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro en las cuatro localidades en estudio. 22
11. ANOVA para la evaluación de Antracnosis en poblaciones locales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro. 23
12. Severidad de antracnosis y grupos de reacción resistente y medianamente resistente en
base al análisis de conglomerados de genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro. 23
13. ANOVA para la evaluación de CBMV en poblaciones de fréjol locales de Cotacachi y
Saraguro. 24
14. Severidad del Virus del Mosaico Común del Fréjol(CBMV) y grupos de reacción en base al
análisis de conglomerados de genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro en tres
localidades en estudio. 25
15. ANOVA para la evaluación de oídio en poblaciones locales de fréjol de Cotacachiy Saraguro. 26
16. Severidad de oídio y grupos de reacción entre resistentes y medianamente resistentes en
base al análisis de conglomerados de genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro en
tres localidades en estudio. 26
17. ANOVA para la evaluación días a la floración, días a la formación de vainas y días a la
madurez fisiológica en poblaciones de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro. 27
xiii
CUADRO PÁG
18. Días a la floración, y grupos de precocidad en base al análisis de conglomerados en
genotipos de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro en diferentes localidades. 28
19. Días a la formación de vainas y grupo de precocidad en base al análisis de conglomerados
en genotipos de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro en diferentes localidades. 29
20. Días a la madurez fisiológica y grupos de precocidad establecidos en base al análisis de
conglomeradosen genotipos de fréjol locales de Cotacachiy Saraguro. 30
21. ANOVA para rendimiento y peso de 100 semillas en poblaciones locales de fréjol de
Cotacachi y Saraguro. 30
22. Promedio de peso de 100 semillas y grupos de clasificación en genotipos locales de fréjol
de Cotacachi y Saraguro en diferentes localidades. 31
23. Promedio de rendimiento y grupos de rendimiento en genotipos locales de fréjol de
Cotacachi y Saraguro en diferentes localidades. 32
24. Correlaciones entre variables fitopatogénicas y agronómicas de genotipos locales de
Cotacachi y Saraguro. 33
xiv
EVALUACIÓN FITOSANITARIA Y AGRONÓMICA EN POBLACIONES LOCALES DE FRÉJOL EN
UNICULTIVO EN COTACACHI, SARAGURO Y GUALACEO
RESUMEN
Se estudió la reacción a enfermedades y potencial agronómico de fréjol (Phaseolus
vulgaris), 65 de Cotacachi y 69 de Saraguro, se observó una gran variación de severidad
de infección de roya (Uromyces appendiculatus), ascochyta (Phoma exihua var. exigua),
antracnosis (Colletotrichum lindemuthianum), CBMV y oídio (Erysiphe polygoni), en los
genotipos evaluados, lo que en gran parte se debe a la resistencia a los patógenos que
causan estas enfermedades. La enfermedad más representativas fué roya, así el 40% de
genotipos de Cotacachi y el 12% de Saraguro presentaron tipo de reacción de resistencia
en las cuatro localidades. Los genotipos F25P1, F17P1, F99, F32P1, F59P1, F12P5 y F63P2
de Cotacachi y los genotipos F110P1, F70P1, F82P1, F50P1, F116P1 y F86P1 de Saraguro,
presentaron rendimientos altos y fueron resistentes a ciertos patógenos.
DESCRIPTORES: Genotipo, Resistencia, Severidad de infección, Enfermedades, Potencial agronómico.
xv
PHYTOSANITARY AND AGRONOMIC ASSESSMENT OF LOCAL BEAN MONOULTURES IN
COTACACHI, SARAGURO AND GUALACEO
ABSTRACT
This study analyzed the reaction to diseases and agronomic potential of beans (Phaseolus
vulgaris)-65 from Cotacachi and 69 from Saraguro. We observed great variations in the
level of severity of rust (Uromyces appendiulatus), ascochyta (Phoma exigua, var. exigua),
anthracnose (Colletotrichum lindemuthianum), CBMV and oidium (Erysiphe polygoni),
infections affecting the assessed genotypes, which is greatly due to the ressitance to the
pathogens that cause these diseases. The most prevalent disease encountered herein was
rust; 40% of Cotacachi genotypes and 12% of Saraguro genotypes exhibited resistance
reactions in all foru locations. Genotypes F25P1, F17P1, F99, F32P1, F59P1, F12P5 and
F63P2 from Cotacachi and genotypes F110P1, F70P1, F82P1, F50P1, F16P1, and F86P1
from Saraguro produced high yields and were resistant to certain pathogens.
KEYWORDS: Genotype, Resistance, Infection severity, Diseases, Agronomic potential.
PHYTOSANITARY AND AGRONOMIC ASSESSMENT OF LOCAL BEANMONOCULTURES IN COTACACHI, SARAGURO AND GUALACEO
ABSTRACT
This study anaiyzed the reaction to diseases and agronomic potential of beans (phaseolusvulgaris) - 65 from Cotacachi and 69 from Saraguro. We observed great variations in thelevel of severity of rust (Uromyces appendiculatus), ascochyta (Phoma exihua, exiguavar.), anthracnose (Colletotrichum lindemuthianum), CBMV and oidium (Erysiphepolygoni) infections affecting the assessed genotypes, which is greatly due to theresistance to the pathogens that cause these diseases. The most prevalent diseaseencountered herein was rust; 40% of Cotacachi genotypes and 12% of Saragurogenotypes exhibited resistance reactions in all four locations. Genotypes F25P1, F17P1,F99, F32P1, F59P1, F12P5 and F63P2 from Cotacachi and genotypes F110P1, F70P1,F82P1, F50P1, F116P1 and F86P1 from Saraguro produced high yields and were resistantto certain pathogens.
KEYWORDS: Genotype, Resistance, Infection severity, Diseases, Agronomic potential.
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1
1. INTRODUCCIÓN
El fréjol (Phaseolus vulgarisL.) es, entre las leguminosas de grano alimenticias, una de las especies
más importante para el consumo humano. Su producción abarca áreas agroecológicas diversas.
Esta leguminosa se cultiva prácticamente en todo el mundo. América Latina es la zona de mayor
producción y consumo, se estima que más del 45 % de la producción mundial proviene de esta
región (Voysest, 2000).
En Ecuador se cultivan dos tipos de fréjol común: arbustivos y volubles (asociados con maíz, en
espalderas o tutores). Los arbustivos son cultivados en valles meso-térmicos de la sierra,
estribaciones de cordillera y en la región costa; mientras que los volubles son cultivados
generalmente en la franja maicera de la sierra y estribaciones. Los dos tipos de fréjol son muy
importantes en la seguridad y soberanía alimentaria de miles de pequeños productores y familias
ecuatorianas de escasos recursos económicos por ser una fuente, única en muchos casos, de
proteína de bajo costo comparado con otras fuentes (Peralta, et ál., 2005).
En el Ecuador, según el Censo Agropecuario SICA (2002) la superficie cultivada de esta leguminosa
es de 121591 ha, de las cuales 24 379 ha son de fréjol (arbustivos) y 97 212 ha asociado con maíz.
El fréjol cultivado en Ecuador se lo encuentra desde los 20 hasta los 2800 m de altitud;
consecuentemente, por su amplia distribución geográfica en ambientes tan diversos, el fréjol es
afectado por problemas de producción de tipo biótico y abiótico. Los principales problemas
bióticos son las enfermedades causadas por hongos y bacterias, mientras que el principal
problema abiótico identificado en Ecuador es la falta de agua o sequía (Murillo, 1998).
Las principales enfermedades del fréjol, son causadas por: roya (Uromyces
appendiculatus),antracnosis (Colletotrichum lindemuthianum), ascochyta (Phoma exigua var.
exigua),virus del mosaico común del fréjol CBMV y oídio Erysiphe polygoni.
La mejor alternativa para el control de estas enfermedades, es la resistencia genética por ser
sostenible y compatible con todos los sistemas de cultivo y para evitar el uso de agroquímicos
INIAP (2007). La resistencia disponible en la diversidad de los agricultores, ha permitido conservar
el uso de la resistencia genética, el cual aparece como el medio que ha constituido el balance
epidemiológico de la enfermedad, lo que está contribuyendo a la sostenibilidad de los agro-
ecosistemas tradicionales en el país.
La diversidad genética dentro de las poblaciones es importante para la continua adaptación a las
condiciones cambiantes y a las necesidades de los agricultores mediante la evolución (Jarvis et al.,
2007). La conservación de la agrobiodiversidad por parte de los agricultores locales es una función
directa, ya que es importante para la seguridad alimentaria.
En este estudio se evaluó la resistencia de los genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro
a los principales patógenos foliares que se presentaron en Cumbas Conde (Cotacachi), Ensilada y
Cañicapa (Saraguro) y Bullcay (Gualaceo).
2
Este estudio tuvo como objetivo evaluar la resistencia a las principales enfermedades y
comportamiento agronómico de poblaciones locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro en
Cotacachi, Saraguro y Gualaceo.
Específicamente se propuso evaluar la resistencia de poblaciones locales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro a las principales enfermedades en Cotacachi, Saraguro y Gualaceo; evaluar el potencial
agronómico de poblaciones locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro.
3
2. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1. Origen del fréjol
Para determinar el origen y la domesticación de las plantas suelen utilizarse cuatro tipos de
evidencias, de acuerdo a Gepts (1999). Las arqueológicas (más específicamente
arqueobotánicas);las botánicas (por ejemplo, la distribución de las especies silvestres o de sus
parientes ancestrales); las históricas (la existencia de registros escritos que documentan la
importancia o existencia del cultivo); y las lingüísticas (por ejemplo, la existencia de palabras que
designen el cultivo o conceptos relacionados con el cultivo en lenguaje autóctono). Así las
investigaciones realizadas coinciden en identificar el origen del fréjol en Mesoamérica,
concretamente en México, desde Jalisco hasta Oaxaca (Kaplan, 1965).
2.2. Clasificación taxonómica
El nombre científico del fréjol es Phaseolus vulgaris, el cual fue establecido por Lineo (1753). Esta
especie pertenece a la Clase Angiospermae, Subclase Dicotiledónea, al Orden Rosales, Familia
Fabaceae, Subfamilia Papilionoideae (Sevilla yHolle, 2004).
2.3. Descripción botánica
Descripción botánica de la planta según Arias et al.,(2007) se describe a continuación.
Raíz. En la primera etapa de desarrollo, el sistema radical está formado por la radícula del
embrión, la cual se convierte posteriormente en la raíz principal o primaria. A los pocos días de la
emergencia de la radícula, es posible ver las raíces secundarias, que se desarrollan especialmente
en la parte superior o cuello de la raíz principal. Sobre las raíces secundarias se desarrollan las
raíces terciarias y otras subdivisiones como los pelos absorbentes. El sistema radicular tiende a ser
fasciculado, fibroso en algunos casos, pero con una amplia variación incluso dentro de una misma
variedad.
Tallo. Es el eje central de la planta, el cual está formado por la sucesión de nudos y entrenudos. Es
herbáceo y con sección cilíndrica o levemente angular, debido a pequeñas corrugaciones de la
epidermis.
Ramas. Se desarrollan a partir de un complejo de yemas localizado siempre en las axilas y se
denomina complejo axilar, que generalmente está formado por tres yemas visibles desde el inicio
de su desarrollo. Las ramas, pueden desarrollar otras estructuras, como las inflorescencias. El
predominio de ramas o inflorescencias depende del hábito de crecimiento y de la parte de la
planta considerada.
Hojas. Son de dos tipos, simples y compuestas, están insertadas en los nudos del tallo y las ramas.
Las hojas primarias son simples, aparecen en el segundo nudo del tallo, se forman en la semilla
durante la embriogénesis, y caen antes de que la planta esté completamente desarrollada.
Las hojas compuestas trifoliadas son las hojas típicas del fréjol, tienen tres foliolos, un pecíolo y un
raquis. En la inserción de las hojas trifoliadas hay un par de estípulas de forma triangular que
siempre son visibles.
4
Flores. Es una típica flor papilionácea y las características del cáliz es: poseen cinco dientes
triangulados, la corola con dos pétalos soldados por su base. En ella se distinguen el pétalo más
sobresaliente o estandarte, que puede ser de color blanco, verde, rosado o púrpura y que
generalmente, se torna amarillo después de la fecundación; y, dos alas cuyo color puede ser
blanco, rosado o púrpura. La otra parte es la quilla, que tiene forma de espiral muy cerrada y
compuesta por dos pétalos completamente unidos, el androceo está formado por nueve
estambres y el gineceo por el ovario, estilo y el estigma.
Fruto. Es una vaina con dos valvas, las cuales provienen del ovario comprimido, esta especie se
clasifica como leguminosa. Las vainas pueden ser de diversos colores, uniformes o con rayas,
dependiendo de la variedad.
Semilla. La semilla no posee albumen, por tanto las reservas nutritivas se concentran en los
cotiledones. Puede tener varias formas: ovalada, redonda, cilíndrica, arriñonada. Las partes
externas más importantes de la semilla son la testa o cubierta, que corresponde a la capa
secundaria del óvulo y la del hilum, que conecta la semilla con la placenta, el micrópilo que es una
abertura en la cubierta cerca del hilum, a través del cual se realiza la absorción del agua; y, el rafe,
proveniente de la soldadura del funículo con los tegumentos externos de óvulo. Internamente, la
semilla está constituida por el embrión, el cual está formado por la plúmula, las dos hojas
primarias, el hipocótilo, los dos cotiledones y la radícula.
2.4. Hábito de crecimiento
Existen varios criterios para clasificar el fréjol como la forma de consumo, la duración del periodo
entre siembra y cosecha, la reacción a la duración del día, el hábito de crecimiento, las
características del grano, la clase comercial y el origen, aunque desde el punto de vista
agronómico uno de los criterios más importantes ese el hábito de crecimiento. Actualmente
existen muchas clasificaciones empíricas con términos como volubles, arbustivos, erectos y
postrados; el (Centro Internacional de Agricultura Tropical) CIAT, basado en estas características
ha desarrollado una clasificación en el modo de desarrollo de la planta y la presencia de un
meristemo terminal reproductivo o vegetativo, clasificación que se resume en el cuadro 1.1
(Voysest, 2000).
Cuadro 1.1. Diferentes criterios de clasificación del hábito de crecimiento del fréjol.
CIAT
Popular
Simplificada Refinada Refinada Simplificada
Determinado I Ia
Arbustivo
erecto Arbustivo
Ib
Indeterminado
II IIa
IIb Semi
Trepador
Voluble III
IIIa
IIIb Trepador o
Voluble IV IVa
IVb
Fuente: Voysest, 2000.
5
En el catálogo del Banco de Germoplasma del Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias
(INIAP) están reportadas 1 353 accesiones de fréjol que incluyen accesiones nacionales e
internacionales, de las cuales 740 pertenecen a fréjol arbustivo y 613 a fréjol voluble. A nivel
nacional tenemos 1 441 accesiones de fréjol, de las cuales 447 son de la provincia de Imbabura y
169 accesiones corresponden al cantón Cotacachi con 45 accesiones de hábito de crecimiento
voluble, en el caso de la provincia de Loja tenemos 445 accesiones las cuales incluyen 56 del
cantón Saraguro con 28 accesiones de fréjol arbustivo y 28 voluble (DENAREF, 2011).
En el Ecuador las variedades de fréjol de tipo voluble o “trepador” son sembradas a lo largo del
callejón interandino entre los 2400 y 2800 ms.n.m Murillo, et al.,(1998), en asociación
primordialmente con maíz, utilizando muy poco el sistema de espalderas o tutores (Peralta., et
al.,2007).
Figure 1.Esquema de los cuatro tipos de hábitos de crecimiento (CIAT, 1981).
2.5. FENOLOGÍA DE LA PLANTA
En el desarrollo de la planta de fréjol, se han identificado 10 etapas, las cuales están delimitadas
por eventos fisiológicos importantes. Fernández et al., (1986), consideraron 10 etapas que se
detallan a continuación:
Etapas de la fase vegetativa
La fase vegetativa incluye cinco etapas de desarrollo: germinación, emergencia, hojas primarias,
primera hoja trifoliada y tercera hoja trifoliada.
Etapa V0: germinación
Absorción de agua por la semilla; emergencia de la radícula y su transformación en raíz primaria.
Etapa V1: emergencia
Los cotiledones aparecen al nivel del suelo y empiezan a separarse, elepicótilo empieza a
desarrollarse.
Etapa V2: hojas primarias
Hojas primarias totalmente abiertas.
6
Etapa V3: primera hoja trifoliada
Se abre la primera hoja primaria y aparece la segunda hoja trifoliada.
Etapa V4: tercera hoja trifoliada
Se abre la tercera hoja trifoliada y las yemas de los nudos inferiores producen ramas.
2.6. ETAPAS DE LA FASE REPRODUCTIVA
Etapa R5: prefloración
Aparece el primer botón floral o el primer racimo, los botones florales de las variedades
determinadas se forman en el último nudo del tallo o rama, en las variedades indeterminadas los
racimos aparecen primero en los nudos más bajos.
Etapa R6: floración
Se abre la primera flor.
Etapa R7: formación de vainas
Aparece la primera vaina que mide más de 2.5 cm de longitud.
Etapa R8: llenado de las vainas
Comienza a llenarse la primera vaina (crecimiento de la semilla). Al final de esta etapa, las semillas
pierden su color verde y comienzas a mostrar las características de la variedad, se inicia la
defoliación.
Etapa R9: madurez fisiológica
Las vainas pierden su pigmentación y comienzan a secarse, las semillas desarrollan el color típico
de la variedad.
Figura2. Etapas de desarrollo de las planta de fréjol.
2.7. DEFENSA NATURAL CONTRA LOS PATÓGENOS
7
2.7.1. La resistencia
Es la capacidad de las plantas para reducir el crecimiento y desarrollo del patógeno o parásito
después del contacto entre el hospedante y el patógeno o después que este ha iniciado su
desarrollo o se ha establecido (Niks., et al.,1993).
La resistencia genética es controlada en algunos casos por un gen o por pocos genes importantes
cualitativa monogénica u oligogénica o, como en muchos casos, por múltiples genes en un
sistema poligénico. La resistencia puede ser:
2.7.1.1. Resistencia Horizontal
Es más difícil de manejar ya que en la misma participan un gran número de genes. Su herencia es
poligénica cuantitativa con una variación continua; por ello, las clases de resistencia y
susceptibilidad son difíciles de reconocer ya que el efecto de cada gen es muy limitado. Una
característica importante de la resistencia horizontal es su mayor estabilidad y durabilidad
(Renfro,1985).
Este tipo de resistencia es más o menos igual de efectiva para todas las razas de una especie de
patógeno, resulta en una reducida epidemia causada por el patógeno, a pesar de un tipo de
infección de susceptibilidad; es una forma más duradera de resistencia a enfermedades
(Robinson, 2000).
La resistencia duradera, se ha definido como la resistencia que permanece efectiva mientras es
usada extensivamente en agricultura por un largo período, en un ambiente favorable para la
enfermedad, esta no es una definición cualitativa por cuanto “largo período” y “uso extensivo”,
los dos en principio son conceptos cuantitativos. Por tanto la durabilidad de la resistencia es un
carácter típicamente cuantitativo (Johnson, 1981).
2.7.1.2. Resistencia Vertical
En este tipo de resistencia en el que existe interacción diferencial entre las razas del patógeno, es
conocida también como resistencia específica, cualitativa o diferencial. Por lo general, es
controlada por uno o algunos genes, por ello también se la conoce como resistencia monogénica
u oligogénica. Al parecer estos genes controlan una etapa importante de la interacción entre el
patógeno y el hospedante.La resistencia vertical permite diferenciar claramente las razas de un
patógeno, ya que es efectiva contra ciertas razas específicas e ineficaz contra otras (Robinson,
2000; Agrios, 2008).
Este mecanismo de resistencia inhibe el desarrollo inicial del patógeno que llega al campo
proveniente de plantas que carecen de genes mayores distintos que confieren resistencia a la
planta; por tanto, impide el desarrollo de epífitas al limitar el inóculo inicial, ya que al existir
interacción entre el hospedante y el patógeno, que al parecer son incompatibles, el primero
desarrolla una reacción de hipersensibilidad (muerte celular después de la invasión del patógeno)
de esta forma, el patógeno no puede establecerse ni multiplicarse en la planta (Agrios, 2008).
Existen ciertas ventajas cuando se trabaja con tipos de resistencia monogénicos, es simple la
transferencia de resistencia específica de un germoplasma a otro; sin embargo, esas formas de
8
resistencia se pueden romper fácil y rápidamente con la mutación de un solo gen o, de pocos
genes, además la resistencia específica pone gran presión sobre el patógeno para su
supervivencia, el cual debe cambiar su especificidad por mutación (Renfro,1985).
2.7.2. Tolerancia
Es la capacidad de las plantas para producir una buena cosecha aun cuando sean infectadas por
un patógeno, este mecanismo no restringe el contacto del patógeno ni su crecimiento y
reproducción luego del establecimiento (Danial, 1999).
2.7.3. Inmunidad
La planta no muestra ningún signo de infección visible después de estar expuesta a un patógeno
(Danial, 1999).
2.7.4. Escape
Es cuando la planta queda sin infección (o intento de infección) (Danial, 1999).
2.8. ENFERMEDADES DEL FRÉJOL
2.8.1. Roya
Este hongo pertenece: al reino Mycetae (Fungi), División II= EUMYCOTA, Subdivisión 5:
BASIDIOMYCOTINA, Clase 1: HEMIBASIDIOMYCETES, Orden: Uredinales, Género: Uromyces y
especie U. appendiculatus (AGRIOS, 2008).
2.8.1.1. Sintomatología
Inicialmente los síntomas se presentan como manchas cloróticas o blancas en el haz o en el envés
de las hojas en las cuales posteriormente se desarrollan pústulas o uredos color café-rojizo.
Cuando la infección es muy severa, puede ocurrir defoliación prematura de la planta(CIAT, 1980).
2.8.1.2. Epidemiologia
Los periodos prolongados (10-18 horas) de humedad relativa mayor de 95% y temperatura
moderada (17-20ᵒC) son condiciones que favorecen la infección. Las temperaturas mayores de
32ᵒC pueden destruir el hongo y las de menos de 15ᵒCpueden retardar su desarrollo.
Las uredósporas pueden sobrevivir bajo condiciones de campo durante 60 días aproximadamente.
Las corrientes de aire pueden transportar a grandes distancias las uredósporas las cuales pueden
ser inoculo inicial(CIAT, 1982).
2.8.1.3. Control Cultural
Se debe eliminar los residuos de cosecha, porque suelen contener esporas que pueden constituir
fuente de inóculo. También se debe reducir la densidad de siembra y mantener épocas adecuadas
de siembra (CIAT, 1980)
9
2.8.2. ANTRACNOSIS
Este hongo pertenece: al Reino Fungi, División Ascomycota, Subdivisión Taphrinomycotina, Clase:
Coelomycetes, Orden Melanconiales, Genero y Especie: Collectotrichum lindemuthianum (Sacc.
&Magn.) Scrib
2.8.2.1. Sintomatología
Antracnosis del fréjol ataca desde que la planta emerge hasta que llega a la producción, pudiendo
afectar a la semilla, en el follaje los síntomas inicialmente aparecen en la parte inferior de la hoja,
con lesiones pequeñas de color rojo oscuro, localizadas a lo largo de las vainas con el tiempo estas
lesiones se vuelven de color café oscuro a negro, en las vainas se producen lesiones redondas,
hundidas, con bordes bien definidos y centro oscuro (Araya, y Hernández, 2006).
2.8.2.2. Epidemiología
Las temperaturas moderadas entre 14C y 24ᵒC, con una óptima de 17oC, favorecen el desarrollo
de la infección. Las temperaturas mayores de 30ᵒC limitan el desarrollo del hongo. Se requiere
una humedad relativa alta (mayor de 92%) para que la enfermedad se presente.
Las conídias del patógeno pueden ser diseminadas por los insectos, los animales, la lluvia o el
hombre. La semilla en su interior porta el hongo (CIAT, 1982).ᵒC
2.8.2.3. Controlcultural
La reducción de la densidad ayuda a disminuir la incidencia de la enfermedad, la eliminación de
residuos de plantas infectadas debe ser realizada tan pronto como termine la cosecha, con el fin
de bajar los niveles de inoculo (Peralta et al., 2010).
2.8.3. ASCOQUITA
Pertenece: al Reino Fungí, División Ascomycota, Subdivisión Taphrinomycotina, Clase:
Coelomycetes, Orden Shaeropsidales, Género y Especie: Phoma exigua (Agrios, 2008).
2.8.3.1. Sintomatología
Inicialmente los síntomas aparecen en las hojas, donde se observan lesiones redondeadas de
color café a negro que, más tarde, pueden contener pequeños picnidios negros, las lesiones
también se pueden presentar en el pedúnculo, el pecíolo, las vainas y el tallo, cuando ocurren
epidemias severas se observa una caída prematura de las hojas, el hongo puede sobrevivir en la
semilla (Arias et al.,2007).
2.8.3.2. Epidemiología
Es muy severa en zonas ubicadas sobre los 1000 m.s.n.m., con temperaturas frías a moderadas y
con condiciones de alta humedad, las pérdidas en rendimiento pueden superar el 40 % (Peralta et
al., 2007).
10
2.8.3.3. Control cultural
Se debe sembrar semilla limpia libre del patógeno, una menor densidad de siembra y la
eliminación de restos de cosecha (Peralta et al.,2007).
2.8.4. Virus del mosaico común del fréjol BCMV
2.8.4.1. Epidemiologia
Estas enfermedades virales pueden ser transmitidos por insectos (áfidos, mosca blanca, vaquitas,
o chicharritas). Dependiendo del insecto transmisor, la distribución de las plantas afectadas puede
ser uniforme o limitada a parches en el campo. Esta distribución de plantas enfermas diferencia el
ataque de virus de otros factores que producen síntomas semejantes, porque su distribución en el
campo es más homogénea (Araya y Hernández, 2006).
2.8.4.2. Sintomatología
Los síntomas que producen los virus son variados y fácilmente se confunden con otras
alteraciones como deficiencias nutricionales, toxicidades o afectos ambientales. Los síntomas más
comunes son: alteraciones del verde de las hojas que van desde verde claro hasta amarillo,
muchas veces formando mosaicos; enanismo; hojas deformes; venas más saltada; el ciclo de vida
de la planta se acorta o se alarga; las vainas son deformes, con menor número de granos, o no se
producen del todo (Araya y Hernández, 2006).
2.8.4.3. Control
Emplear semillas sanas.
Mayor espaciamiento entre plantas.
Eliminar residuos de cosechas del cultivo anterior.
Utilizar variedades resistentes o tolerantes.
Elegir época óptima de siembra (Tamayo, 2001).
2.8.5. OÍDIO O CENICILLA
Reino Fungi,Clase Leotiomycetes, Orden Erysiphales, Familia Erysiphaceae, Género Erysiphe,
especie E. polygoni (Terralia, 2015).
2.8.5.1. Sintomatología
Los daños pueden ser severos cuando la infección se presenta en plantas jóvenes. Sin embargo la
infección es mayor en plantas adultas, aunque rara vez produce pérdidas importantes.
Inicialmente los síntomas se presentan en el haz de la hoja como áreas oscuras, que
posteriormente se cubren de micelio blanco, estas lesiones pueden unirse y la hoja puede quedar
totalmente cubierta con micelio y esporas, presentando una apariencia polvorosa. Infecciones
severas pueden causar una defoliación prematura (CIAT, 1982).
2.8.5.2. Epidemiología
El desarrollo del hongo es favorecido por una humedad de baja a alta y una temperatura de
moderada a baja, el patógeno presenta diferentes razas y está distribuido en todo el mundo
debido a que puede prevalecer en condiciones ambientales muy variadas, en la testa de las
11
semillas se pueden encontrar esporas, pero su diseminación primaria ocurre por la acción de las
corrientes de aire(CIAT, 1982).
2.8.5.3. Control
Como medidas de control se puede usar semilla limpia y la aplicación de fungicidas. Existen
variedades resistentes pero la presencia de nuevas razas del patógeno dificulta su utilización en
programas de mejoramiento; es necesario entonces buscar fuentes de resistencia no especifica u
horizontal (CIAT, 1982).
12
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Ubicación del experimento
3.1.1. Ubicación políticay geográfica
LOCALIDAD UBICACIÓN POLÍTICA DIVISIÓN GEOGRÁFICA
Cumbas Conde Provincia: Imbabura Cotacachi Longitud: 78o15´59´´W
Cantón: Cotacachi Latitud: 00o18´30´´N
Parroquia: Quiroga Altitud: 2650 msnm
Temperatura: 15 C
Precipitación: 850 mm/año
Bullcay Provincia: Azuay Bullcay Longitud: 78o46´35´´W
Cantón: Gualaceo Latitud: 02o52´55´´S
Parroquia: El Cabo Altitud: 2225 msnm
Temperatura: 18 oC
Precipitación: 750 mm/año
Ensilada Provincia: Loja Saraguro Longitud: 79o14´02´´W
y Cañicapa Cantón: Saraguro Latitud: 03o36´43´´S
Parroquia: Tenta Altitud: 2517, 2525 msnm
Temperatura: 18 oC
Precipitación: 706 mm/año
Fuente: Datos tomados con GPS, (INAMHI, 2014)
3.2. Materiales
Material de campo
Semilla de fréjol
Libro de campo.
Etiquetas de identificación para plantas.
Croquis de parcelas.
Estacas
Marcador de pintura
Piola
Fundas de papel
Sacos de yute para la cosecha
Materiales de Laboratorio
Balanza electrónica capacidad 3lb, unidad en g
Tara
Material Oficina
Computadora
Impresora
Calculadora
Cámara fotográfica
13
Hojas de papel bond
3.3. MÉTODOS
3.3.1. Experimento 1.Evaluación de genotipos de fréjol de Cotacachi y Saraguro.
3.3.2. Factor en estudio
Genotipos de fréjol (g)
3.3.3. Tratamientos
Se evaluaron 134 genotipos de fréjol: 65 genotipos de Cotacachi y 69genotipos de Saraguro
(Cuadro 1).
Cuadro 1. Genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro evaluados en Ensilada y Cañicapa
(Saraguro); Bullcay(Azuay) y Cumbas Conde (Cotacachi).
COTACACHI SARAGURO
Genotipo Identificación Genotipo Identificación Genotipo Identificación Genotipo Identificación
g1 F100 g36 F58P1 g1 F100P1 g36 F61P1 g2 F103 g37 F59P1 g2 F102P3 g37 F64P1 g3 F104 g38 F5P1 g3 F103P3 g38 F67P3 g4 F105 g39 F61 g4 F106P1 g39 F68P1 g5 F106 g40 F62P1 g5 F108P1 g40 F69P2 g6 F108 g41 F63P2 g6 F110P1 g41 F70P1 g7 F109 g42 F64 g7 F112P3 g42 F73P1 g8 F111 g43 F69 g8 F113P1 g43 F74P1 g9 F113 g44 F72P2 g9 F114P1 g44 F75P1
g10 F12P5 g45 F73 g10 F115P1 g45 F7P2 g11 F13P2 g46 F7P1 g11 F116P1 g46 F81P1 g12 F15P1 g47 F85 g12 F118P1 g47 F82P1 g13 F16P3 g48 F86 g13 F119P1 g48 F85P2 g14 F17P1 g49 F88 g14 F14P3B g49 F86P2 g15 F19 g50 F89 g15 F15P1 g50 F87P1 g16 F1P1 g51 F91 g16 F19P2 g51 F92P1 g17 F21P2 g52 F93 g17 F1P1 g52 F97P1 g18 F24P2 g53 F94 g18 F22P1 g53 F98P1 g19 F25P1 g54 F97 g19 F23P1 g54 F65P2B g20 F26P5 g55 F99 g20 F28P1 g55 F86P1 g21 F28P2 g56 F15P3 g21 F29P2 g56 F103P1 g22 F29P3 g57 F46P4 g22 F2P1 g57 F65P2 g23 F32P1 g58 F95 g23 F30P1 g58 F34P1A g24 F33 g59 F11P5 g24 F31P1 g59 F90P1 g25 F35 g60 F12P2 g25 F32P1 g60 F44P3 g26 F42 g61 F39P2 g26 F33P1 g61 F56P2 g27 F43P1 g62 F52 g27 F35P3 g62 F36P2 g28 F51P2 g63 F57P1 g28 F42P2A g63 F57P3 g29 F52P2 g64 F60P4 g29 F47P1 g64 F9P1 g30 F54P1 g65 F79P1 g30 F4P1 g65 F77P1 g31 F54P4 g31 F50P1 g66 F21P1 g32 F55P1 g32 F55P1 g67 F54P1 g33 F55P3 g33 F58P1 g68 F59P1 g34 F56P1 g34 F5P1 g69 F48P1 g35 F56P4 g35 F60P1
14
3.3.4. Análisis estadístico
3.3.4.1. Diseño Experimental.
Se utilizó un Diseño Completamente al Azar, donde se estableció cuatro surcos por cada genotipo
dentro de una parcela de 32 surcos, se seleccionaron cuatro plantas al azar (observaciones).
3.3.4.2. Unidad experimental
Una planta con competencia completa.
3.3.4.3. Análisis de Variancia para genotipos locales de Cotacachi y Saraguro.
GL
F de V Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
GENOTIPO 125 122 92 46
ERROR 406 401 106 149
TOTAL 531 523 198 195
Promedio=
Cv (%)=
3.3.4.4. Análisis funcional
Se utilizó el análisis de Conglomerados en cada una de las variables que resultaron significativas y
altamente significativas. Para el análisis de conglomerados se utilizó la distancia Euclidea y el
método de agrupamiento jerárquico de Ward (2011).
Para la obtención de ADEVAS y Conglomerados se utilizó el programa informático estadístico
INFOSTAT 2013. Además se realizó la correlación de Pearson al 5% y al 1% en cada localidad,
para determinar el grado de asociación entre las variables.
En las variables de enfermedad se estableció cuatro conglomerados los que se han establecido
como resistentes (R), medianamente resistentes (MR), medianamente susceptibles (MS) y
susceptibles (S).
Para la variable de rendimiento se estableció cinco conglomerados los que se han establecido
como muy buenos (MB), buenos (B), medios (M), bajos (Bj) y muy bajos (MBJ).
Para las variables días a la floración, días a la vaina y días a la madurez fisiológica se
establecieron tres conglomerados los que se establecieron como precoces (P), intermedios (I) y
tardíos (T).
3.4. VARIABLES Y MÉTODOS DE EVALUACIÓN
3.4.1. Variables de Enfermedad
Para la evaluación de las variables de enfermedades se incluyó el estado fenológico del cultivo, se
empezó cuando las plantas estuvieron en R6 (floración).
15
Las variables evaluadas son roya, ascochyta, antracnosis, virus del mosaico común del fréjol CBMV
y oídio, de las cuales CBMV no se presentó en Cumbas Conde.
Para las evaluaciones se etiqueto al azar cuatro plantas por cada genotipo, las evaluaciones
iniciaron a partir de R6 y se evaluó roya.
Cuando las plantas presentaron un estado fenológico R7 se evaluó antracnosis, ascochyta, CBMV
y oídio, además se realizó una segunda evaluación de roya, para el análisis estadístico se utilizó la
evaluación más confiable, debido a que se presentaron diferencias en las evaluaciones.
3.4.1.1. Tipos de reacción de roya
Se evaluó el tipo de pústula de roya en cada planta seleccionada de acuerdo a la escala
desarrollada por (Schoonhoven y Pastor, 1987).
Cuadro 2.Escala para la evaluación del tipo de pústula de roya
Fuente: Schoonhoven y Pastor,1987.
Severidad de la enfermedad Las evaluaciones se realizaron a partir de la etapa de desarrollo R6 (Floración). Se apreció el área
foliar visiblemente cubierta ya sea por manchas necróticas no esporulantes, por pústulas con
esporulación, o por halos cloróticos alrededor de las pústulas. Se expresó en porcentaje.
3.4.1.2. Severidad de ascochyta
La severidad de la enfermedad se evaluó utilizando la escala 1-9, desarrollada por (Schoonhoven y
Pastor, 1987)(Cuadro 3).
Cuadro 3.Escala para la evaluación en campo de la resistencia a ascochyta
Fuente: (Schoonhoven y Pastor, 1987).
Tipos de infección Síntomas
1 Sin síntomas visibles de la enfermedad, inmunidad
2 Manchas necróticas sin esporulación
3 Pústulas de 300 µm con esporulación
4 Pústulas con esporulación de 300-500 µm de diámetro a veces redondeados con halos
cloróticos
5 Pústulas de esporulación de 500-800 µm de diámetro, frecuentemente rodeada por
halos cloróticos
6 Pústulas con esporulación > de 800 µm de diámetro, rodeado por halos cloróticos
Clasificación Descripción
1 Sin síntomas visibles de la enfermedad.
3 Presencia de pocas lesiones concéntricas pequeñas y oscuras, que cubren aproximadamente el 2 %
del área foliar.
5 Presencia de varias lesiones de tamaño pequeño a mediano (hasta 1 cm de diámetro), con
esporulación limitada, las cuales cubren aproximadamente el 5 % del área foliar.
7 Presencia de lesiones grandes con esporulación que cubren aproximadamente el 10 % del área foliar.
También pueden aparecer lesiones en tallos y ramas, en el follaje, estas lesiones pueden juntarse.
9 Presencia de lesiones grandes con esporulación que cubren aproximadamente el 25 % o más del
área foliar, las lesiones de las hojas se juntan con frecuencia causando necrosis de segmentos
grandes que suelen desprenderse dejando orificios en las hojas, el resultado es una defoliación
prematura y severa, las lesiones también cubren grandes segmentos del tallo y de las ramas.
16
3.4.1.3. Severidad de antracnosis
La severidad de la enfermedad se evaluó utilizando la escala 1-9desarrollada por (Schoonhoven y
Pastor, 1987) (Cuadro 4)
Cuadro 4. Escala para la evaluación en campo de la resistencia a antracnosis
Fuente: (Schoonhoven y Pastor, 1987).
3.4.1.4. Severidaddel mosaico común de fréjol CBMV
La severidad de la enfermedad se evaluó utilizando la escala 1-9 desarrollada por (Tamayo, 1995)
Cuadro 5. Escala para la evaluación en campo de virus.
GRADO SÍNTOMAS
1 Ausentes
2 Dudosos
3 Débiles
4 Moderados
5 Intermedios
6 Generales
7 Intensos
8 Severos
9 Muerte
Fuente: (Tamayo, 1995).
Clasificación Descripción
1 Sin síntomas visibles de la enfermedad
2 Muy pocas lesiones pequeñas aisladas en la nervadura principal del envés
3 Lesiones pequeñas frecuentes en la nervadura principal del envés
4 Lesiones presentes en la nervadura central y ocasionalmente en las
nervaduras secundarias
5 Muchas lesiones esparcidas en la nervadura principal y en las nervaduras
secundarias
6 Muchas lesiones pequeñas como se describen en el grado 5 en el haz, el
envés, tallos y peciolos
7 Presencia de numerosas lesiones grandes acompañadas por tejido muerto
roto, crecimiento reducido de las plantas y muchas lesiones en los tallos y
peciolos
8 Muchas lesiones grandes acompañadas por tejido muerto y roto,
crecimiento reducido de las plantas y muchas lesiones de los tallos y
peciolos
9 Necrosis severa evidente en el 25 % o más del tejido de la planta como
resultado de lesiones en hojas, pecíolos, tallo, ramas e incluso en el punto
de crecimiento; esta necrosis causa frecuentemente la muerte de gran
parte de los tejidos de la planta.
17
3.4.2. Severidad de oídio
La severidad de la enfermedad se evaluó utilizando la escala 1-9 desarrollada por
(Tamayo, 1995)
Cuadro 6. Escala para la evaluación en campo de oídio.
GRADO DESCRIPCIÓN
1 Sin síntomas visibles de la enfermedad
3 Presencia de unas pocas lesiones pequeñas sin esporulación que cubren
aproximadamente el 2% del área foliar.
5
Presencia de varias lesiones generalmente pequeñas, con esporulación
limitada, las cuales cubren aproximadamente el 5% del área foliar o del área de
las vainas.
7
Lesiones abundantes generalmente grandes, con esporulación que cubren
aproximadamente el 10% del área foliar o del área de las vainas, en el follaje las
lesiones pueden juntarse y el resultado son áreas infestadas más grandes
asociadas con tejido clorótico las lesiones también pueden encontrarse en el
tallo o en las vainas.
9
Un 25% del área foliar o del área de las vainas está cubierto por lesiones
esporulantes grandes que tienden con frecuencia a juntarse, los tejidos foliares
son generalmente cloróticos, lo cual ocasionan una defoliación severa
prematura, las vainas infectadas están en general, deformadas y arrugadas y
contienen un bajo número de semillas, tanto en el tallo como en las ramas se
observan lesiones abundantes esporulantes.
Fuente: (Tamayo, 1995).
3.5. VARIABLES AGRONÓMICAS
3.5.1. Días a inicios de floración
Se contabilizó el número de días desde la siembra hasta cuando el 50% plantas presentaron la
primera flor abierta, se expresó en días.
3.5.2. Días inicio a la primera vaina
Se contabilizó el número de días desde la siembra hasta cuando el 50% de plantas presentaron la
primera vaina, se expresó en días.
3.5.3. Días a la madurez
Se contabilizó el número de días después de la siembra hasta cuando el 50 % de las plantas
presentaron una coloración amarilla, se expresó en días.
3.5.4. Peso de 100 semillas
Utilizando una balanza de precisión se pesó 100 semillas y se expresó en gramos, cuando no se
obtuvieron 100 semillas, se contó y pesó todas las semillas y este valor se transformó a peso de
100 semillas, se expresó en gramos por 100 semillas.
18
De acuerdo a Voysest (2000). El tamaño de la semilla es determinado por el peso de 100 semillas,
clasificándose en tres grupos:
Pequeño: hasta 25g/100 semillas
Mediano: entre 25 y 40 g/100 semillas
Grande: 40 g/100 semillas
3.5.5. Rendimiento por planta
Se pesó las semillas de toda la planta y se expresó en gramos por planta.
3.6. MANEJO DEL EXPERIMENTO
La siembra se realizó a una distancia de 0.6 m entre surcos y 0.7 m entre plantas, se sembró dos
semillas de maíz con 2-3 de fréjol voluble, conservando así la forma tradicional de siembra.
La deshierba se realizó a los 35 días después de la siembra y eltutoreo en las parcelas en las que
se perdió el maíz.
La cosecha se realizó una vez presentada la madurez fisiológica (R9), se cosecho en fundas de
papel previamente identificadas (una planta por funda), la cosecha fue manualmente. Para
Bullcay el rendimiento fue bajo puesto que la mayoría de genotipos se perdieron debido a que
existió competencia del cultivo de maíz, causando que esta variable no sea analizada. En Cumbas
Conde únicamente fueron evaluados los genotipos de Cotacachi, mientras que los genotipos de
Saraguro no fueron evaluados debido a que no hubo disponibilidad de semilla.
Para la evaluación de las variables agronómicas se procedió al conteo y pesado de las semillas
para realizar los cálculos de peso de 100 semillas y rendimiento.
19
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4.1. Roya
Cuando se analiza tipos de reacción (TR) el (40%) de genotipos de Cotacachi y el (12%) de
Saraguro presentaron TR de resistencia cuantitativa en las cuatro localidades Cuadro 8,
probablemente debido, a que el estudio se desarrolló mayormente en Saraguro, por lo que el
patógeno no se adaptó a los genes de resistencia que poseen los genotipos de Cotacachi y si para
las fuentes de resistencia que poseen los genotipos de Saraguro. Estos genotipos poseen genes
mayores de resistencia eficientes para la población de roya presente en las localidades. Los
genotipos de Cotacachi F100, F15P3, F32P1, F113P1, F25P1 y F88 evaluados en estudios
anteriores presentaron reacciones similares de resistencia en Cotacachi (Espinoza, 2010; Carrillo,
2014 y Amagua, 2014), por lo que se podría considerar que estos genotipos poseen resistencia
cuantitativa (estable).
Una fracción importante de genotipos tanto de Cotacachi y Saraguro anexo 3, presentaron
interacciones de resistencia/susceptibilidad con las poblaciones del patógeno de las localidades
estudiadas. La resistencia de estos genotipos ya no es efectiva ya que en al menos una localidad
existen población(es) del patógeno que son virulentas.
Cuando se analiza la severidad de roya (SR), en el análisis de la varianza, se encontraron
diferencias altamente significativas entre genotipos en las cuatro localidades donde se realizó el
estudio (Cuadro 7).
Cuadro 7. ANOVA para la evaluación de severidad de roya en poblaciones locales de Cotacachi y
Saraguro.
F de V Grados de Libertad Cuadrados Medios
L1 L2 L3 L4
Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
GENOTIPO 111 97 73 39
9.41** 3.31** 6.68** 12.03**
ERROR 345 300 224 112
0.19 0.15 0.10 0.08
TOTAL 456 397 297 151
PROMEDIO= 30.38 25.29 17.64 28.00
CV (%)= 14.18 11.82 12.67 10.94
**= Diferencias estadísticas altamente significativas L1= Ensilada, L2= Cañicapa, L3= Bullcay, L4= Cumbas.
En las cuatro localidades, los niveles de severidad de roya variaron significativamente entre
genotipos. Cuando los genotipos presentaron solo TR de resistencia (TR 1, 2, 3), los niveles de
severidad fueron bajos entre 0 a tr (trazas 0-1), lo que significa que un gen mayor de resistencia
está involucrado en estos genotipos cuadro 8. El resto de genotipos durante la epidemia de la
enfermedad presentan diferentes tipos de reacción, tanto TR de resistencia (2, 3), como TR de
susceptibilidad (4, 5, 6). En el primer caso, la diversidad de reacciones muestra que se presentan
más de una raza del patógeno en la epidemia y que las razas incompatibles (TR 2, 3), no
incrementan la epidemia, en este caso, los genotipos presentan genes mayores de resistencia que
son eficientes y protegen del patógeno. Mientras que cuando los TR de resistencia son solo de
susceptibilidad (TR 4, 5, 6), toda la población del patógeno es virulenta, lo que significa, que no
existe protección, porque los genotipos no presentan genes de resistencia, o si presentan genes
20
de resistencia, toda la población del patógeno es virulenta, por esta razón los niveles de severidad
son altos, la presencia de genes mayores aun vencidos parece ser importantes en la protección en
contra de roya ya que no permiten que la severidad sea muy alta. Estos resultados están
alineados con lo que concluyen Dileone y Mundt (1994), quienes sostienen que a mayor
diversidad en la población del patógeno menor severidad de la enfermedad.
Cuadro 8. Tipos de reacción de resistencia y severidad de roya de 65 genotipos de Cotacachi y 69
genotipos de Saraguro.
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
TR1 Sev2 TR1 Sev2 TR1 Sev2 TR1 Sev2 TR1 Sev2 TR1 Sev2 TR1 Sev2
F105 1 0 2 1 1 0 - - F110P1 1 0 1 0 - -
F15P1 1 0 1 0 1 0 2.3 1 F116P1 1 0 1 0 - -
F15P3 1 0 1.2 trz3 1 0 1 0 F70P1 1 0 1 0 - -
F19 1 0 1 0 2.3 trz3 - - F82P1 1 0 1 0 - -
F25P1 1 0 1 0 1 0 1.2 trz3 F50P1 2 0 1 0 1.2.3 0
F35 1 0 1 0 - - 1.2.3 trz3 F86P1 2.3 trz3 1 0 - -
F52 1 0 1 0 2 trz3 - - F14P3B 2.3 9 1 0 2.3 1
F52P2 1 0 1 0 1 0 2 1 F55P1 3 11 2.3 trz3 1 0
F59P1 1 0 1 0 1 0 2 1
F63P2 1 0 1 0 1.2 trz3 - -
F69 1 0 1.2 trz3 1 0 - -
F7P1 1 0 1 0 1 0 1 0
F85 1 0 1 0 1.2 trz3 - -
F61 2.1 trz3 - - 2.3 trz3 2.3 trz3
F100 2 trz3 1 0 3 8 2 1
F16P3 2 trz3 1 0 2.3 4 2.3 3
F32P1 1.2.3 trz3 1 0 2.3 4 1.2.3 trz3
F113 1.2.3 trz3 1 0 3.2 5 2.1 1
F43P1 2.1 trz3 1 0 - - - -
F91 2.1 trz3 1 0 2.3 1 2.3 trz3
F60P4 2 trz3 1 0 - - - -
F21P2 2.3 trz3 3.2 5 - - 2.3 2
F51P2 2.3 trz3 1 0 1 0 - -
F55P3 2.3 1 1 0 - - 3.2 1
F88 2.3 3 1 0 1 0 2.3 3
F1P1 3.2 5 1 0 2.3 2 - -
TR1= Tipo de reacción en la escala del 1-6 Schoonhoven y Pastor (1987), 1, 2, 3 reacción de resistencia Sev2= Severidad escala de Cobb (0-100) CIAT (1987). trz3= trazas, valores entre 0 y 1 %.
21
4.2. Ascochyta
En el análisis de la varianza, se encontraron diferencias altamente significativas entre genotipos
para severidad de ascochyta (SA), en las cuatro localidades en las que se realizó el estudio
(Cuadro 9).
Cuadro 9. ANOVA para la evaluación de ascochyta en poblaciones locales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro.
F de V Grados de Libertad Cuadrados Medios
L1 L2 L3 L4
Cumbas Ensilada Bullcay Cañicapa
GENOTIPO 41 125 84 122
7.28** 11.17** 7.40** 7.29**
ERROR 126 406 267 401
0.29 0.40 0.26 0.27
TOTAL 167 531 351 523
PROMEDIO= 4.00 2.44 2.32 2.30
CV (%)= 12.20 25.97 22.17 22.44
**= Diferencias estadísticas altamente significativas
L1= Cumbas, L2=Ensilada, L3=Bullcay, L4= Cañicapa.
En el Cuadro 10, se presentan la severidad de ascochyta para cada genotipo, los genotipos F104,
F64, F91, F94, F100,y F97 de Cotacachi y los genotipos F103P1 al F74P1de Saraguro presentaron
reacciones entre resistente (R) y medianamente resistente (MR)en todas las localidades que se
realizó el estudio, lo que demuestra que estos genotipos presentan resistencia cuantitativa
(estable)al patógeno.
El resto de genotipos presentaron reacciones muy heterogéneas, así una fracción importante de
genotipos de Cotacachi y Saraguro fueron susceptibles en al menos una localidad Anexo 4,esta
heterogeneidad se pudo deber a que la epidemia no se diseminó uniformemente en el
experimento, o que existió una influencia importante en la interferencia entre parcelas, es decir
que el surco donde se sembró un genotipo susceptible no diseminó uniformemente el inóculo a
los diferentes genotipos evaluados, haciendo parecer resistentes a ciertos genotipos que en la
Ensilada fueron susceptibles y en Cañicapa resistentes y viceversa.
Según Danial (1993), se produce cuando parcelas de genotipos resistentes reciben una gran
cantidad de inoculo de parcelas susceptibles vecinas, y como consecuencia el nivel de infección de
los genotipos resistentes será mucho más que si estuvieran aislados y los genotipos susceptibles
por el contrario diseminan más esporas de lo que reciben consecuentemente tendrán un menor
nivel de infección que si estuvieran solos.
De acuerdo con los promedios generales entre localidades, se observó que la severidad es
diferente para cada localidad, así Cumbas Conde presentó mayor severidad y Cañicapa menor
severidad, esto se pudo deber a que en la primera localidad existió mayor cantidad de fuentes de
inóculo y que las condiciones fueron apropiadas para su diseminación.
22
Cuadro 10. Severidad de resistencia (R) y medianamente resistente (MR) para ascochyta y grupos
de reacción en base al análisis de conglomerados de genotipos locales de fréjol de
Cotacachi y Saraguro en las cuatro localidades en estudio.
Genotipos de Saraguro Genotipos de Cotacachi
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2
F103P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R F104 1.0 R 1.0 R 3.0 MR 3.5 MR
F114P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R F64 1.0 R 3.0 MR 1.0 R 3.0 MR
F115P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R F91 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR 3.0 MR
F58P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R F94 1.0 R 3.0 MR 1.0 R 3.0 MR
F64P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R F100 2.0 R 3.0 MR 1.0 R 4.0 MR
F68P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R F97 1.0 R 3.0 MR 1.0 R 3.0 MR
F73P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F75P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F103P3 1.0 R 1.0 R 4.0 MR
F112P3 1.0 R 1.0 R 4.0 MR
F2P1 1.0 R 1.0 R 3.5 MR
F30P1 1.0 R 1.0 R 3.0 MR
F31P1 1.0 R 1.0 R 4.0 MR
F32P1 1.0 R 1.0 R 3.5 MR
F19P2 1.0 R 1.0 R 3.0 MR
F57P3 1.0 R 1.0 R 3.0 MR
F90P1 1.0 R 1.0 R 4.0 MR
F97P1 1.0 R 1.0 R 3.0 MR
F55P1 1.0 R 3.0 MR 1.0 R
F50P1 1.0 R 3.5 MR 1.0 R
F98P1 1.5 R 3.0 MR 1.0 R
F61P1 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F29P2 1.0 R 3.0 MR 3.5 MR
F69P2 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F74P1 1.0 R 4.0 MR 3.0 MR
Sev1= Severidad de ascochyta en la escala 1- 9 Schoonhoven y Pastor (1987),
GR2= Grupo de reacción, resistente (R), medianamente resistente (MR)
4.3. Antracnosis
En el análisis de la varianza, se encontraron diferencias altamente significativas entre genotipos
para severidad de antracnosis en las cuatro localidades en estudio (Cuadro11).
23
Cuadro 11. ANOVA para la evaluación de Antracnosis en poblaciones locales de fréjol de
Cotacachi y Saraguro.
F de V Grados de Libertad Cuadrados Medios
L1 L2 L3 L4
Cumbas Cañicapa Bullcay Ensilada
GENOTIPO 41 122 84 125
12.13** 9.46** 2.20** 10.45**
ERROR 126 401 267 406
0.57 0.39 0.19 0.59
TOTAL 167 523 351 531
PROMEDIO= 4.00 3.81 3.28 2.44
CV (%)= 19.36 16.44 13.22 31.00
**= Diferencias estadísticas altamente significativas L1= Cumbas,L2= CañicapaL3=Bullcay,L4=Ensilada.
En el Cuadro 12, se presenta la severidad de antracnosis para cada genotipo. Los genotipos F89 y
F104 de Cotacachi y el 44 % de genotipos de Saraguro presentaron reacciones entre R y MR en
todas las localidades, lo que demuestra que estos genotipos presentan resistencia estable al
patógeno. La mayor parte de genotipos, presentaron reacciones a la enfermedad muy
heterogéneas entre localidades Anexo 5, así la mayor parte de genotipos de Cotacachi (83 %) y
Saraguro (56 %) tuvieron reacciones entre S y MS en al menos una localidad, lo que significa que
estas accesiones son susceptibles al patógeno. La heterogeneidad, se puede deber a que la
epidemia no se diseminó uniformemente, o que el inoculo existente en cada localidad fue
diferente para cada localidad Araya (1981) informó que el número de focos de inoculo inicial en el
campo estaba relacionado linealmente con la incidencia de antracnosis.
Cuadro 12. Severidad de antracnosis y grupos de reacción resistente y medianamente resistente
en base al análisis de conglomerados de genotipos locales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro.
Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR
2 Sev
1 GR
2 Sev
1 GR
2 Sev
1 GR
2 Sev
1 GR
2 Sev
1 GR
2
F36P2 1 R 2 R 1.5 R F29P2 1 R 3 MR 3 MR
F68P1 1 R 2 R 2.5 R F30P1 1 R 3 MR 3 MR
F23P1 1 R 2 R 3 MR F31P1 1 R 3 MR 4 MR
F35P3 1 R 2 R 3 MR F32P1 1 R 3 MR 3 MR
F58P1 1 R 2 R 3 MR F33P1 1 R 3 MR 1 R
F75P1 1 R 2 R 4 MR F4P1 1 R 3 MR 4 MR
F14P3B 2.5 R 2 R 3 MR F55P1 1 R 4 MR 3 MR
F87P1 1 R 2 R 4 MR F57P3 1 R 4 MR 4 MR
F73P1 1.5 R 2 R 3 MR F64P1 1 R 3.2 MR 3 MR
F90P1 1 R 2 R 3.5 MR F74P1 1 R 4 MR 3.5 MR
F103P1 1 R 3 MR 4 MR F81P1 1 R 3 MR 4 MR
F106P1 1 R 4 MR 4 MR F97P1 1 R 3 MR 4 MR
F115P1 1 R 3 MR 3 MR F98P1 1 R 4 MR 3.5 MR
F19P2 1 R 4 MR 2.5 R F9P1 1 R 4 MR 4 MR
F22P1 1 R 4 MR 3 MR
24
Continuación cuadro 12….
Genotipos de Cotacachi
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2
F89 1.0 R 1.0 R 3.2 MR 4.5 MR
F104 3.0 MR 4.5 MR 3.7 MR 2.0 R
Sev1= Severidad de antracnosis en la escala 1- 9 Schoonhoven y Pastor (1987),
GR2= Grupo de reacción resistente (R), medianamente resistente (MR)
4.4. Virus del Mosaico Común del Fréjol (CBMV)
En el análisis de la varianza, se encontraron diferencias altamente significativas entre genotipos
para severidad de CBMV en las tres localidades en estudio (Cuadro 13).
Cuadro 13. ANOVA para la evaluación de CBMV en poblaciones de fréjol locales de Cotacachi y
Saraguro.
F de V Grados de Libertad Cuadrados Medios
Cañicapa Bullcay Ensilada Cañicapa Bullcay Ensilada
GENOTIPO 122 84 125
3.82** 3.29** 2.44**
ERROR 401 267 406
0.17 0.36 0.41
TOTAL 523 351 531
PROMEDIO= 4.00 2.74 2.35
CV (%)= 11.65 21.92 27.18
**= Diferencias estadísticas altamente significativas.
En el Cuadro 14, se presenta la severidad de CBMV para cada genotipo. El (39%) de genotipos de
Cotacachi y los genotipos F75P1, F31P1, F50P1, F119P1, F2P1, F33P1, F103P3 y F7P2 de Saraguro
presentaron reacciones entre resistentes (R) y medianamente resistentes (MR) en las localidades
en estudio, lo que demuestra que estos genotipos presentan resistencia cuantitativa (estable)al
patógeno. El resto de genotipos presentaron niveles de severidad muy heterogéneas entre
localidades, así el (19%) de genotipos de Cotacachi y el (68%) de genotipos de Saraguro Anexo 6,
tuvieron reacciones entre susceptibles(S) y medianamente susceptible (MS) en al menos una
localidad. Esto pudo deberse a que existe más frecuencia de la enfermedad en los genotipos de
Saraguro, probablemente porque los genotipos de Cotacachi presentaron ciertos genes de
resistencia al CBMV, ya que en Cumbas Conde en el Cantón Cotacachi no hubo presencia de la
enfermedad, esto se puedo deber a que en esta localidad no existió presencia del virus y de
vectores.
25
Cuadro 14.Severidad del Virus del Mosaico Común del Fréjol(CBMV) y grupos de reacción en base
al análisis de conglomerados de genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro
en tres localidades en estudio.
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev GR Sev1 GR2 Sev GR Sev GR
F69 2.0 R 1.0 R 1.8 R F75P1 1.3 R 2.0 R 2.0 R
F113 2.0 R 2.3 R 1.0 R F31P1 1.3 R 3.0 MR 3.0 MR
F1P1 1.0 R 2.5 R 2.3 R F50P1 2.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F15P3 2.3 R 1.5 R 2.3 R F119P1 1.5 R 3.5 MR 2.8 MR
F52P2 2.0 R 2.3 R 2.3 R F2P1 1.5 R 3.0 MR 2.0 R
F52 2.3 R 2.5 R 2.3 R F33P1 1.8 R 3.0 MR 3.3 MR
F56P1 2.0 R 2.5 R 2.3 R F103P3 2.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F111 2.0 R 3.3 MR 2.3 R F7P2 2.5 R 3.0 MR 3.0 MR
F28P2 1.3 R 3.3 MR 2.3 R
F19 2.0 R 3.3 MR 3.0 MR
F89 2.5 R 1.0 R 2.8 MR
F88 2.0 R 2.0 R 2.8 MR
F73 1.3 R 3.5 MR 3.5 MR
F25P1 2.0 R 3.5 MR 2.8 MR
F5P1 1.8 R 3.0 MR 2.5 R
F7P1 2.0 R 3.5 MR 2.3 R
F85 2.0 R 3.5 MR 2.3 R
F86 2.0 R 3.3 MR 3.0 MR
F104 2.3 R 3.5 MR 3.5 MR
F11P5 2.3 R 3.5 MR 2.0 R
F17P1 2.3 R 3.5 MR 3.3 MR
F59P1 2.3 R 3.5 MR 3.0 MR
F63P2 2.3 R 3.5 MR 1.3 R
F64 2.3 R 3.0 MR 1.3 R
F51P2 2.3 R 3.5 MR 2.5 R
Sev1= Severidad del Virus del Mosaico Común del Fréjol CBMV en la escala 1- 9 Tamayo (1995)
GP2= Grupo de reacción resistente (R), medianamente resistente (MR)
4.5. Oídio
En el análisis de la varianza, se encontraron diferencias altamente significativas entre genotipos
para severidad de oídio en las tres localidades en estudio (Cuadro 15).
26
Cuadro 15. ANOVA para la evaluación de oídio en poblaciones locales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro.
F de V Grados de Libertad Cuadrados Medios
Bullcay Cañicapa Ensilada Bullcay Cañicapa Ensilada
GENOTIPO 84 122 125
11.73** 16.09** 7.56**
ERROR 267 401 406
1.08 0.70 0.60
TOTAL 351 523 531
PROMEDIO= 4.78 4.52 1.99
CV (%)= 21.79 18.83 38.94
**= Diferencias estadísticas altamente significativas.
En el Cuadro 16, se presenta la severidad de oídio para cada genotipo, los genotipos F15P1, F105,
F46P4, F51P2, F28P2, F52P2, F63P2 y F88 de Cotacachi y los genotipos F112P3, F119P1, F28P1,
F30P1, F36P2, F68P1 y F74P1 de Saraguro presentaron reacciones entre resistentes (R) y
medianamente resistentes (MR) en las tres localidades, lo que demuestra que estos genotipos
presentan resistencia cuantitativa (estable)al patógeno. El resto de genotipos presentaron niveles
de severidad muy heterogéneo entre localidades Anexo 7, así el 55 % de genotipos de Cotacachi y
el 62 % de genotipos de Saraguro tuvieron reacciones entre susceptibles (S) y medianamente
susceptible (MS) en al menos una localidad, por lo que lo más probable los genotipos son
susceptibles.
De acuerdo, a las medias Bullcay y Cañicapa presentan niveles altos de severidad de oídio, esto
pudo deberse a que en estas localidades existió mayor cantidad de inoculo o que las condiciones
ambientales fueron favorables para su desarrollo, por lo que existió mayor severidad.
Cuadro 16.Severidad de oídio y grupos de reacción entre resistentes y medianamente resistentes
en base al análisis de conglomerados de genotipos locales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro en tres localidades en estudio.
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2
F15P1 1.0 R 4.0 MR 4.0 MR F112P3 1.0 R 3.0 MR 4.0 MR
F105 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR F119P1 1.0 R 3.0 MR 4.5 MR
F46P4 1.0 R 4.0 MR 1.0 R F28P1 1.0 R 3.0 MR 1.0 R
F51P2 1.0 R 4.0 MR 3.0 MR F30P1 1.0 R 3.0 MR 4.5 MR
F28P2 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR F36P2 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F52P2 1.0 R 4.0 MR 3.0 MR F68P1 1.0 R 3.0 MR 4.0 MR
F63P2 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR F74P1 1.0 R 3.0 MR 4.5 MR
F88 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR
Sev1= Severidad de oídio en la escala 1- 9 Tamayo (1995)
GP2= Grupo de reacción resistente (R), medianamente resistente (MR)
27
4.6. EVALUACIÓN AGRONÓMICA
4.6.1. Días a la floración, días a la formación de vaina y días a la madurez fisiológica
En el análisis de la varianza Cuadro 17, se encontraron diferencias altamente significativas entre
genotipos para las variables días a la floración, días a la formación vainas y días a inicios de la
madurez fisiológica en las tres localidades en estudio.
Cuadro 17. ANOVA para la evaluación días a la floración, días a la formación de vainas y días a la
madurez fisiológica en poblaciones de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro.
Grados de Libertad Cuadrados Medios
F de V
Días a la floración
Días a la vaina
Días a la madurez
L1 L2 L3 L1 L2 L3 L1 L2 L3 L1 L2 L3
TOTAL 535 523 168
GENOTIPO 125 122 42
0.08** 0.07** 0.07**
0.06** 0.06** 0.04**
0.03** 0.03** 0.04**
ERROR EXP 410 401 126 0.0024 0.0023 0.0023 0.0018 0.0018 0.00 0.0009 0.00078 0.00
PROMEDIO= 4.75 4.82 4.84 4.86 4.89 4.94 5.18 5.21 5.25
CV (%)= 1.03 1.01 1.02 0.88 0.88 0.00 1.76 0.54 0.00
**= Diferencias estadísticas altamente significativas
L1= Ensilada; L2= Cañicapa; L3= Cumbas.
En el Cuadro 18, se presenta los valores de días a la floración (estado R6),en las tres localidades.
En Ensilada los genotipos iniciaron la floración antes que en Cañicapa y Cumbas Conde, debido a
que esta localidad se encuentra a una menor altitud (2517msnm)con relación a Cañicapa y
Cumbas Conde que se encuentran a (2525 msnm y 2650 msnm respectivamente), los genotipos
F88,F55P3 y F5P1 de Cotacachi fueron más precoces en las tres localidades, los días desde la
siembra hasta la floración fue de 82 a 100 días, de la misma manera los genotipos de Saraguro
iniciaron la floración en Ensilada seguida de Cañicapa, los genotiposF85P2, F116P1, F50P1,
F114P1, F35P3, F97P1, F30P1,F21P1, F54P1, F23P1, F100P1 y F55P1de Saraguro, fueron más
precoces en las dos localidades, los días desde la siembra hasta la floración fueron de 79 a 101
días en las dos localidades. Una pequeña fracción de genotipos de Cotacachi (12 %) y una mayor
fracción de genotipos de Saraguro (40%), presentaron precocidad intermedia en las tres
localidades.
El (21%) de genotipos de Cotacachi y el (19%)de Saraguro fueron los más tardíos Anexo 8, los días
a la floración fue de 136 a 148 días en las tres localidades; mientras que en los genotipos de
Saraguro los días desde la siembra a la floración fue de 126 a 140 días en las dos localidades. El
resto de genotipos presentaron precocidad heterogénea entre localidades, esto pudo deberse a
que los estudios se realizaron en diferentes zonas con diferentes condiciones ambientales por lo
que existió variación en los días a la floración.
De acuerdo a las medias, se puede observar que los genotipos de Saraguro fueron más precoces
que los genotipos de Cotacachi, esto pudo deberse a que el estudio se desarrolló mayormente en
Saraguro, por lo tanto los genotipos tuvieron mejor adaptabilidad.
28
Cuadro 18. Días a la floración, y grupos de precocidad en base al análisis de conglomerados en
genotipos de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro en diferentes localidades.
Genotipos de Saraguro Genotipos de Cotacachi
Genotipo Ensilada Cañicapa
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
DF1 GP2 DF1 GP2 DF1 GP2 DF1 GP2 DF1 GP2
F85P2 79 P 80 P F88 82 P 84 P 88 P
F116P1 84 P 86 P F55P3 89 P 96 P 100 P
F50P1 84 P 86 P F5P1 89 P 98 P 100 P
F114P1 86 P 89 P
F35P3 86 P 89 P
F97P1 86 P 89 P
F30P1 88 P 89 P
F21P1 88 P 89 P
F54P1 88 P 86 P
F23P1 92 P 94 P
F100P1 96 P 94 P
F55P1 96 P 101 P
DF1= Días a inicios de la floración
GP2= Grupo de precocidad establecidos mediante el análisis de conglomerados precoz (P)
En el Cuadro 19, se presenta los valores de días a la formación de vainas (estado R7), en las tres
localidades. En Ensilada los genotipos iniciaron la formación de vainas antes que en Cañicapa y
Cumbas Conde, debido a que esta localidad se encuentra a menor altitud (msnm), mientras que
Cumbas Conde fue la localidad en la que la formación de vainas fue tardía, ya que posee una
temperatura de 15 OC a diferencia de Ensilada y Cañicapa que está a 18 OC. Los genotipos F88,
F55P3 y F5P1 de Cotacachi, fueron los más precoces en las tres localidades, los días desde la
siembra hasta inicios a la formación de vainas fue de 96 a 114 días. De la misma manera los
genotipos de Saraguro iniciaron la formación de vainas en Cañicapa y posteriormente en Ensilada,
los genotipos desde el F85P2 hasta el F55P1 de Saraguro fueron los más precoces en las dos
localidades, los días desde la siembra hasta la floración fue de 91 a 103 días. Una fracción
importante de genotipos de Cotacachi (10 %) y una mayor fracción de genotipos de
Saraguro(42%), presentaron precocidad intermedia en las tres localidades. El 18% de genotipos de
Cotacachi fueron los más tardíos los días desde la siembra hasta la formación de vainas variaron
de 147 a 162 días, mientras que el 19 % de genotipos de Saraguro fueron más tardíos con 140 a
154 días desde de la siembra a la formación de vainas. El resto de genotipos presentó precocidad
heterogénea entre localidades, esto pudo deberse a que el estudio se realizó en diferentes
localidades con diferentes condiciones ambientales, así las localidades que se encuentran en
Cotacachi están a (2650 msnm) con temperaturas de 15 OC, y las localidades de Saraguro se
encuentran a (2517 msnm) con temperaturas de 18OC, por lo que según Voysest (2002),
manifiesta que en zonas con temperaturas entre 13 a 15 OC los genotipos son más tardíos,
mientras que en ambientes con temperaturas entre 17 a 20 OC son más precoces.
29
Cuadro 19. Días a la formación de vainas y grupo de precocidad en base al análisis de
conglomerados en genotipos de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro en diferentes
localidades.
Genotipos de Saraguro Genotipos de Cotacachi
Genotipo Ensilada Cañicapa
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
DV1 GP2 DV1 GP2 DV1 GP2 DV1 GP2 DV1 GP2
F85P2 93 P 94 P F88 96 P 96 P 102 P
F116P1 98 P 100 P F55P3 103 P 109 P 114 P
F50P1 98 P 100 P F5P1 103 P 111 P 114 P
F114P1 100 P 103 P
F35P3 100 P 103 P
F97P1 100 P 103 P
F30P1 102 P 102 P
F21P1 102 P 103 P
F54P1 102 P 100 P
F23P1 106 P 108 P
F100P1 110 P 108 P
F55P1 110 P 115 P
DV1= Días a la primera vaina
GP2= Grupo de precocidad establecidos mediante el análisis de conglomerados precoz (P)
En el Cuadro 20, se presenta los valores, días a la madurez fisiológica (estado R9), en las tres
localidades. Los genotiposF88, F55P3 y F5P1 de Cotacachi fueron los más precoces en las tres
localidades, los días desde la siembra hasta la madurez fisiológica fue de 146 a 163 días. De la
misma forma los genotipos F85P2, F116P1, F50P1, hasta el F55P1de Saraguro fueron los más
precoces en las dos localidades, los días desde la siembra hasta la madurez fisiológica fue de 142 a
164 días. Una fracción importante de genotipos de Cotacachi 21 % y una mayor fracción de
genotipos de Saraguro 68 %, presentaron precocidad intermedia en las tres localidades. El 20 %
de genotipos de Cotacachi fueron los más tardíos, los días desde la siembra hasta la madurez
fisiológica fue de 192 a 207días, mientras que en los genotipos de Saraguro el 18 % fueron los más
tardíos, los días desde la siembra hasta la madurez fisiológica fue de 189 a 203 días. El resto de
genotipos presentaron precocidad heterogénea entre localidades. La diferencia de los días a la
madurez fisiológica entre localidades se puedo deber a la diferencia de temperaturas y altitudes
entre localidades, así las localidades de Cotacachi se encuentran a (2650 msnm) con una
temperatura de 15 oC, y las localidades de Saraguro se encuentran a (2517 msnm) con una
temperatura de 18 ᵒC ya que aun teniendo solo 100 m de diferencia, según lo reportado por
Leonard (1981) las temperaturas bajan 0.65 ᵒC, esto tiene gran influencia en el largo del período
de crecimiento del cultivo tanto como su adaptación al área, lo que confirma en el estudio que los
genotipos de Saraguro fueron más precoces.
30
Cuadro 20.Días a la madurez fisiológica y grupos de precocidad establecidos en base al análisis de
conglomerados en genotipos de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro.
Genotipos de Saraguro Genotipos de Cotacachi
Genotipo Ensilada Cañicapa
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
DM1 GP2 DM1 GP2 DM1 GP2 DM1 GP2 DM1 GP2
F85P2 142 P 143 P F5P1 160 P 165 P 163 P
F116P1 147 P 149 P F88 145 P 147 P 151 P
F50P1 147 P 149 P F55P3 152 P 163 P 163 P
F114P1 149 P 152 P
F35P3 149 P 152 P
F97P1 149 P 158 P
F30P1 151 P 157 P
F21P1 151 P 152 P
F54P1 151 P 159 P
F23P1 155 P 160 P
F100P1 159 P 157 P
F55P1 159 P 164 P DM1= Días a inicios de la madurez fisiológica
GP2= Grupo de precocidad establecidos mediante el análisis de conglomerados precoz (P)
4.6.2. Rendimiento y Peso de 100 semillas.
En el análisis de la varianza, se encontraron diferencias altamente significativas entre genotipos
para las variables rendimiento y peso de 100 semillas en las localidades en estudio(Cuadro 21).
Cuadro 21. ANOVA para rendimiento y peso de 100 semillas en poblaciones locales de fréjol de
Cotacachi y Saraguro.
F de V
Grados de Libertad Cuadrados Medios
Rendimiento
Peso de 100 semillas
L1 L2 L3 L1 L2 L3 L1 L2 L3
TOTAL 535 523 195
GENOTIPO 125 122 46
1310.28** 2359.85** 972.66** 540.27** 410.69** 3474.51**
ERROR 410 401 149 152.67 134.90 165.60 28.98 56.48 141.27
PROMEDIO= 38.95 39.75 28.88 40.00 41.44 60.65
CV (%)= 31.72 29.22 44.56 13.44 18.14 19.60
**= Diferencias estadísticas altamente significativas, L1= Ensilada, L2= Cañicapa, L3= Cumbas.
En el Cuadro 22, se presenta los valores de peso de 100 semillas. Una fracción importante de
genotipos de Cotacachi (40%), presentaron tamaño de semillas grande en las tres localidades,
(40.2 a 62.8 g/100 semillas),datos similares se encontraron en estudios anteriores en Cotacachi
por Amagua (2014), de las misma manera una fracción importante de genotipos de Saraguro
(59%), presentaron tamaño de semilla grande de 40.3 a 67.1 g/100 semillas en las dos localidades.
El genotipo F17P1 de Cotacachi presentó tamaño de semillas pequeño de 24.9 a 25g/100 semillas
en las tres localidades, y los genotipos de Saraguro F23P1 y F103P3 presentaron tamaño de
semilla pequeño de 23.2 a 24.5g/100 semillas en las dos localidades. El resto de genotipos
presentaron tamaños de semilla heterogénea entre localidades, lo que se pudo deber a que
31
puede estar relacionado parcialmente con la resistencia de estos genotipos a las enfermedades, lo
que se evidenció con el análisis de correlación que las variables de enfermedad como roya y oídio
tuvieron un efecto negativo en el tamaño de semillas esto quiere decir que estas enfermedades
afectan al peso de semillas. En este estudio se observa una gran variación en el peso de 100
semillas, siendo mayormente el tamaño grande(40 g/100 semillas) posteriormente el tamaño
mediano (25 a 40 g/100 semillas) y en una menor cantidad el tamaño pequeño (hasta 25
g/100semillas), según Voysest (2002) el tamaño del grano está determinado por el peso de 100
granos clasificándolos en tres grupos, pequeños (hasta 25g/100 semillas), mediano (entre 25 y 40
g/100 semillas) y grandes (desde 40g/100 semillas).
Cuadro 22. Promedio de peso de 100 semillas y grupos de clasificación en genotipos locales de
fréjol de Cotacachi y Saraguro en diferentes localidades.
GENOTIPOS DE SARAGURO GENOTIPOS DE COTACACHI
Genotipo
Ensilada Cañicapa
Genotipo
Ensilada Cumbas Cañicapa
P.100s1 GT
2 P.100s
1 GT
2
P.100s
1
GT2 P.100s
1 GT
2 P.100s
1 GT
2
F31P1 67.1 G 65.9 G F99 62.8 G 64.5 G 61.3 G
F22P1 66.5 G 66.6 G F26P5 59.8 G 59.9 G 62.1 G
F28P1 65.8 G 64.9 G F16P3 58.7 G 58.3 G 59.2 G
F116P1 63.5 G 61.4 G F25P1 54.8 G 56.5 G 51.3 G
F33P1 62.6 G 66.4 G F72P2 52.3 G 49.6 G 48.9 G
F106P1 62.4 G 60.8 G F64 52.3 G 51.3 G 52.0 G
F82P1 58.4 G 58.4 G F21P2 50.9 G 53.8 G 51.7 G
F69P2 57 G 55.6 G F94 50.8 G 57.2 G 51.5 G
F58P1 56.5 G 56.3 G F32P1 50.0 G 50.0 G 50.1 G
F74P1 54.2 G 51.5 G F28P2 49.8 G 49.6 G 49.3 G
F54P1 53.9 G 49.8 G F35 49.7 G 50.9 G 47.7 G
F2P1 52.4 G 50.6 G F91 49.4 G 50.6 G 48.2 G
F86P1 51.9 G 54.2 G F100 49.3 G 51.6 G 50.2 G
F57P3 51.2 G 51.8 G F109 49.0 G 50.8 G 43.9 G
F36P2 50.8 G 54.2 G F59P1 48.6 G 51.1 G 49.8 G
F34P1 50.7 G 48.5 G F62P1 47.4 G 48.8 G 40.4 G
F67P3 49.6 G 50.9 G F106 47.2 G 48.4 G 49.9 G
F68P1 48.6 G 47.8 G F113 46.8 G 47.3 G 48.5 G
F108P1 47.5 G 45.8 G F42 46.6 G 49.5 G 45.0 G
F64P1 47.2 G 47.2 G F89 45.1 G 48.5 G 38.6 G
F70P1 46.5 G 48.5 G F58P1 44.8 G 44.2 G 46.6 G
F15P1 46.4 G 44.7 G F12P5 44.7 G 49.0 G 49.2 G
F30P1 46.1 G 46.1 G F97 43.7 G 41.6 G 46.8 G
F73P1 46.0 G 44.7 G F5P1 42.8 G 42.6 G 42.4 G
F44P3 45.9 G 43.9 G
F86P2 45.8 G 48.9 G
F9P1 45.1 G 43.3 G
F118P1 44.9 G 44.6 G
F65P2 44.8 G 43.3 G
F56P2 44.7 G 46.1 G
F81P1 44.6 G 46.7 G 1= Promedio peso de 100 semillas 2= Grupo de tamaño de semilla,grande (G, 40g/100 semillas)
32
En el Cuadro 23, se presentan los valores de los promedios de rendimiento para cada genotipo. El
genotipos F32P1 de Cotacachi presenta el mejor rendimiento entre muy buenos (MB) y buenos
(B) de 49.3 a 88.9 g/pl en Ensilada, Cañicapa y Cumbas Conde, de la misma manera los genotipos
F86P1, F82P1 y F58P1 de Saraguro presentan los mejores rendimientos entre muy buenos (MB) y
buenos (B)de 80.3 a 148.8 g/pl en Ensilada y Cañicapa. Los genotipos F16P3 y F28P2 de Cotacachi
presentan rendimiento medios (M)de 36.1 a 52.8 g/pl en las tres localidades, al igual que el
genotipo F85P2 de Saraguro presentó un rendimiento de 56.8 a 72.5 g/pl en las dos localidades,
los genotipos F103, F15P3, F54P1, F57P1, F93 y F52P2 de Cotacachi presentaron rendimientos
entre bajos (Bj) y muy bajos (MBj) de 21.3 a 35.3 g/pl en las tres localidades, de la misma manera
una fracción importante de genotipos de Saraguro (64%) presentaron rendimientos entre Bj y MBj
de 6.0 a 60.3 g/pl en las dos localidades. El resto de genotipos presentaron rendimientos
heterogéneos entre localidades, lo que pudo deberse a que puede estar asociado parciamente
con la resistencia de estos genotipos a las enfermedades, lo que se evidenció en los análisis de
correlación que las variables de enfermedad como roya y antracnosis tuvo un efecto negativo en
la variable de rendimiento. Lo que señala el CIAT (1984) que los bajos rendimientos han sido
asociados a enfermedades foliares siendo estas las responsables de las mayores pérdidas de
producción en las áreas más importantes de cultivo del país. Además Finckh y Wolfe (1999),
manifiesta que cuando la enfermedad está ausente, los genotipos tienden a tener promedios de
rendimiento más altos.
Cuadro 23. Promedio de rendimiento y grupos de rendimiento en genotipos locales de fréjol de
Cotacachi y Saraguro en diferentes localidades.
GENOTIPOS DE SARAGURO GENOTIPOS DE COTACACHI
Genotipo Cañicapa Ensilada
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
Rend1 GR2 Rend1 GR2 Rend1 GR2 Rend1 GR2 Rend1 GR2
F86P1 148.8 MB 80.3 B F32P1 88.9 MB 60.7 B 49.3 B
F82P1 106.8 B 115.1 MB
F58P1 96.8 B 97.4 B Rend1= Promedio de rendimiento por genotipo
GR2 = Grupos de rendimiento muy buenos (MB) y buenos (B)
4.6.3. Análisis de correlación
De acuerdo a los análisis de correlación Cuadro 24, se observó que el rendimiento se correlacionó
positivamente con CBMV en Cañicapa y peso de 100 semillas en Ensilada, Cañicapa y Cumbas
Conde, además el rendimiento se correlacionó negativamente con roya en Cañicapa y ascochyta
en Ensilada y Cumbas Conde, por lo tanto la severidad de estas enfermedades afectan en el
rendimiento. El peso de 100 semillas mostró correlación negativa con roya y oídio en Cañicapa, lo
que probablemente estas enfermedades influyen en el peso de 100 semillas.
Roya se correlacionó positivamente con oídio en Ensilada y Cañicapa, además presentó
correlación negativa con ascochyta en Ensilada, debido a que probablemente la presencia de una
enfermedad influye en la presencia de la otra.
Ascochyta se correlacionó positivamente con antracnosis en Ensilada Cañicapa y Cumbas Conde.
33
Cuadro 24. Correlaciones entre variables fitopatogénicas y agronómicas de genotipos locales
de Cotacachi y Saraguro.
Variables Locl Roya Ascochyta Antracnosis CBMV Oídio P. 100
semillas Rendimiento
Ascochyta L1 -0.29** 1
L2 -0.07ns 1
L3 -0.05ns 1
Antracnosis L1 -0.06ns 0.22** 1
L2 0.03ns 0.22** 1
L3 0.02ns 0.19** 1
CBMV L1 -0.04ns 0.04ns 0.09ns 1
L2 -0.00ns -0.02ns 0.07ns 1
0idio L1 0.34** 0.11ns 0.03ns 0.07ns 1
L2 0.21** 0.01ns 0.08ns 0.03ns 1
P.100semillas L1 -0.01ns -0.09ns 0.06ns 0.05ns 0.01ns 1
L2 -0.28** -0.11ns 0.03ns 0.07ns -0.13* 1
L3 -0.03ns -0.08ns 0.02ns - - 1
Rendimiento L1 0.06ns -0.15* 0.12ns 0.07ns 0.07ns 0.97** 1
L2 -0.23** -0.11ns 0.06ns 0.13* -0.05ns 0.96** 1
L3 0.04ns -0.17* 0.00ns - - 0.30** 1
Locl= Localidades en las que se establecieron los estudios.
L1= Ensilada, L2= Cañicapa, L3= Cumbas Conde.
ns= nos significativo
*= significativo
**= altamente significativo
34
5. CONCLUSIONES
Los genotipos de Cotacachi F100, F15P3, F32P1, F113P1, F25P1 y F88 evaluados en
estudios anteriores presentaron reacciones similares de resistencia a roya en Cotacachi
(Espinoza, 2010.; Carrillo y Amagua, 2014), por lo que se podría considerar que estos
genotipos poseen resistencia cuantitativa (estable).
Los genotipos de Saraguro presentaron mayor severidad a todas las enfermedades.
En este estudio se observó una gran variación en el peso de 100 semillas, siendo
mayormente el tamaño grande (40 g/100 semillas) posteriormente el tamaño mediano
(25 a 40 g/100 semillas) y en una menor cantidad el tamaño pequeño (hasta 25
g/100semillas.
El genotipo de Cotacachi F32P1 presentó el mejor rendimiento MB y B variando entre
49.3 a 88.9 g/pl en Ensilada, Cañicapa y Cumbas Conde, de la misma manera los genotipos
F86P1, F82P1 y F58P1de Saraguro presentaron los mejores rendimientos MB y B variando
entre 80.3 a 148.8 g/pl en Ensilada y Cañicapa.
En este estudio se observó que el rendimiento se correlacionó positivamente con CBMV
en Cañicapa y peso de 100 semillas en Ensilada, Cañicapa y Cumbas Conde, además el
rendimiento se correlaciono negativamente con roya en Cañicapa y ascochyta en Ensilada
y Cumbas Conde, por lo tanto la severidad de estas enfermedades afectan en el
rendimiento. El peso de 100 semillas mostro correlación negativa con roya y oídio en
Cañicapa, lo que probablemente estas enfermedades influyen en el peso de 100 semillas.
35
6. RECOMENDACIONES
Los genotipos F100, F15P3, F32P1, F113P1, F25P1, F88 de Cotacachi y los genotipos
F50P1, F14P3B, F55P1 de Saraguro podría ser usado en programas de mejoramiento
genético por tener fuentes de resistencia a roya U. appendiculatus.
Confirmar estos resultados con experimentos similares.
Utilizar a mayor escala la diversidad genética para estabilizar las epidemias de
enfermedades en los campos de los agricultores y mejorar la productividad.
36
7. RESUMEN
El presente estudio se realizó en Cumbas Conde (Cotacachi, Imbabura), Ensilada y Cañicapa
(Saraguro, Loja), y Bullcay (Gualaceo, Azuay) se estudió la dinámica, reacción a enfermedades y
potencial agronómico de 134 genotipos locales 65 de Cotacachi y 69 de Saraguro. Se observó una
gran variación de severidad de infección de roya (Uromyces appendiculatus), ascochyta (Phoma
exihua var. exigua), antracnosis (Colletotrichum lindemuthianum), CBMV y oídio (Erysiphe
polygoni), en los genotipos evaluados, lo que en gran parte se debe a la resistencia a los patógenos
que causan estas enfermedades. Las variables evaluadas en el experimento fueron: tipo de
reacción a roya (escala 1-6) siendo (TR 1,2,3) resistente y (TR 4, 5, 6) susceptible, severidad de
roya, se evaluó en (%) ascochyta (escala 1-3-7-9), antracnosis (escala 1-9), virus (escala 1-9), oídio
(escala 1-3-7-9), días inicio a la floración, días a la formación de la vaina, días a la madurez
fisiológica, rendimiento por planta, y peso de 100 semillas. Se utilizó un Diseño Completamente al
Azar con cuatro observaciones, además se realizó un análisis de conglomerados.
La resistencia fue específica a enfermedades. Pocos genotipos fueron resistentes a todas las
enfermedades, pero la mayoría de genotipos fueron resistentes al menos a un hongo. Los
rendimientos de los genotipos variaron significativamente, y estuvieron mayormente asociados
con la resistencia a enfermedades; sin embargo, hay otros factores que también intervienen en la
adaptación y el rendimiento que no se evaluaron en este estudio. Los genotipos F25P1, F17P1,
F99, F32P1, F59P1, F12P5 y F63P2 presentaron los mejores rendimientos a más de presentar
resistencia a ciertos patógenos.
Las variables de rendimiento en Cumbas Conde y Bullcay no se analizaron ya que los rendimientos
no fueron representativos, debido a que existió competencia con el maíz, lo que no les permitió
obtener producción y solo se evaluó las variables de enfermedad.
Los genotipos de Ensilada fueron más precoces que los genotipos de Cañicapa y Cumbas Conde.
Roya y ascochyta presentaron correlación negativa con el rendimiento, las cuales presentan una
influencia negativa sobre el rendimiento.
Roya y oídio presento correlación negativa con el peso de 100 semillas, los cuales afectan de
forma negativa al peso de 100 semillas.
37
8. SUMMARY
This study was conducted in Cumbas Conde (Cotacachi, Imbabura), silage and Cañicapa (Saraguro,
Loja) and Bullcay (Gualaceo, Azuay) dynamics, reaction to diseases and agronomic potential of
134 local genotypes 65 and 69 were studied Cotacachi Saraguro-. A large variation in severity of
infection rust (Uromyces appendiculatus), ascochyta (Phoma exigua var. exigua), anthracnose
(Colletotrichum lindemuthianum), CBMV and powdery mildew (Erysiphe polygoni) in genotypes,
was observed which was largely due to resistance to pathogens that cause these diseases. The
variables evaluated in the experiment were: type of reaction to rust (scale 1-6) being (TR 1,2,3)
and resistant (TR 4, 5, 6) capable, rust severity was evaluated in (%) ascochyta (scale 1-3-7-9),
anthracnose (scale 1-9), viruses (scale 1-9), powdery mildew (scale 1-3-7-9) days beginning at
flowering, days to training pod, days to physiological maturity, yield per plant and 100 seed
weight. One Completely Random Design with four observations were used, plus cluster analysis
was performed.
Was specific resistance to disease. Few genotypes were resistant to all diseases, but most
genotypes were resistant to at least one fungus. The yields of the genotypes varied significantly
and were mostly associated with disease resistance; however, other factors are also involved in
the adaptation and performance that were not assessed in this study. The F25P1, F17P1, F99,
F32P1, F59P1, F12P5 and F63P2 genotypes showed the best returns over exhibit resistance to
certain pathogens.
The performance variables in Cumbas Conde and Bullcay not analyzed because the yields were
not representative because there was competition with corn, which did not earn only production
and disease variables was evaluated.
Ensiled genotypes were more precocious than genotypes Cañicapa and Cumbas Conde.
Ascochyta blight and showed negative correlation with the performance, which have a negative
influence on performance.
Rust and powdery mildew present negative correlation with the weight of 100 seeds, which
negatively affect the weight of 100 seeds.
38
9. REFERENCIAS
Agrios, G. (2008). Fitopatología. DF, México: MX. LIMUSA
Amagua, N. (2014). Evaluación de la resistencia en poblaciones y genotipos locales de fréjol
(Phaseolusvulgaris l.) de Cotacachi a las principales enfermedades. Cotacachi, Imbabura. Trabajo
de Grado presentado como requisito Parcial para optar al Título de Ing. Agr. Quito: Universidad
Central del Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas.
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45
10. ANEXOS
Anexo 1. Caracterización por forma, color y nombres que le dan los agricultores a los
genotipos de Cotacachi. Cotacachi, Imbabura. 2014.
CÓDIGOS 2010 FORMA1 COLORES1
NOMBRES DADOS POR LOS
AGRICULTORES2
CHAKRAS
F91 Cuboide Crema/Negro Manteca rayado
F13P2 Ovalada Crema, Negro Chakra poroto
F22P1 Cuboide Crema, Negro Chakra poroto
F92 Cuboide Crema, Morado/Jaspeado morado Chakra poroto
F12P5 Cuboide Crema/Morado Chakra poroto
F93 Ovalada Crema/Morado Chakra poroto
F17P2 Cuboide Café claro/Negro; Negro/Café claro Killu rayado
F17P1 Cuboide Crema/Concho de vino Chakra poroto
F77P1 Ovalada Crema/Concho de vino Chakra poroto
F94 Cuboide Café claro/Concho de vino Chakra poroto
F46P2 Ovalada Café claro/Concho de vino Chakra poroto
F21P2 Cuboide Crema Manteca poroto
F21P3 Ovalada Crema Molón
F95 Redonda Crema Molón
F58P1 Ovalada Café claro, Jaspeado negra/Negro Chakra poroto
F6P1 Cuboide Café claro, Jaspeado negra/Negro Chakra poroto
F62P1 Cuboide Rojo, Rosado/Crema Chakra poroto
F84P2 Cuboide Blanco, Rojo Puka lichi vaca
F33 Ovalada Blanco/Crema ,morado Yura pintado
F79P1 Ovalada Crema, Blanco/Morado Killu vaca
F25P1 Ovalada Blanco/Café oscuro Torito poroto
F57P2 Cuboide Café claro, Jaspeado negro/Negro Conejo poroto
F54P1 Cuboide Crema, Jaspeado morado/Morado Chakra poroto
46
Cont (Anexo 1)…
CÓDIGOS 2010 FORMA1 COLORES1
NOMBRES DADOS POR LOS
AGRICULTORES2
F99 Ovalada Crema, Morado claro/Morado Chakra poroto
F42 Cuboide Blanco, Negro Lichi vaca
F60P1 Cuboide Morado oscuro, Morado claro/Blanco Murusiki
F72P2 Redondo Verde oscuro/Verde claro Caca conejo
F29F3
Cuboide Morado claro, Morado
oscuro/Morado oscuro
Chakra poroto
F63P2 Cuboide Rojo Lakri poroto
F63P3 Ovalada Rojo Lakri poroto
F38P1 Cuboide Negro Yana poroto
F71P2 Ovalada Morado Puka poroto
F100 Cuboide Morado Puka poroto
F59P1 Ovalada Crema, Jaspeado morado claro Chakra poroto
F16P2 Ovalada Crema, Morado Capulis poroto
F16P3 Ovalada Crema, Rojo Toa poroto
F102 Cuboide Crema/Café Chakra poroto
F30P1 Cuboide Crema, Morado/Jaspeado morado Chakra poroto
F27P1 Cuboide Morado, Crema Chakra poroto
F103 Redonda Café claro Killu poroto
F45P2 Cuboide Café claro Killu poroto
F104 Ovalada Crema/Verde Chakra poroto
F55P3 Cuboide Café claro, Jaspeado negro/Negro Chakra poroto
F61 Cuboide Crema/Jaspeado morado Chakra poroto
F106 Cuboide Rosado/Morado oscuro Chakra poroto
F107 Ovalada Rosado/Morado oscuro Chakra poroto
F64 Cuboide Crema/Café Chakra poroto
F14P1 Ovalada Amarillo verdoso Canario poroto
47
Anexo 2. Semillas de fréjol
Cont (anexo 1)….
CÓDIGOS 2010 FORMA1 COLORES1
NOMBRES DADOS POR LOS
AGRICULTORES2
F18P4 Cuboide Amarillo verdoso Canario poroto
F56P1 Ovalada Crema, Jaspeado morado oscuro Chakra poroto
F53P2 Cuboide Crema, Jaspeado morado oscuro Chakra poroto
F110 Cuboide Morado/Jaspeado crema Chakra poroto
F73 Ovalada Rosado, Morado oscuro Chakra poroto
48
Anexo 3. Tipos de reacción y severidad de roya de 65 genotipos de Cotacachi y 69 genotipos
de Saraguro.
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
TR1 Sev
2 TR
1 Sev
2 TR
1 Sev
2 TR
1 Sev
2 TR
1 Sev
2 TR
1 Sev
2 TR
1 Sev
2
F105 1 0 2 1 1 0 - - F110P1 1 0 1 0 - -
F15P1 1 0 1 0 1 0 2.3 1 F116P1 1 0 1 0 - -
F15P3 1 0 1.2 trz3 1 0 1 0 F70P1 1 0 1 0 - -
F19 1 0 1 0 2.3 trz3 - - F82P1 1 0 1 0 - -
F25P1 1 0 1 0 1 0 1.2 trz3 F50P1 2 0 1 0 1.2.3 0
F35 1 0 1 0 - - 1.2.3 trz3 F86P1 2.3 trz
3 1 0 - -
F52 1 0 1 0 2 trz3 - - F14P3B 2.3 9 1 0 2.3 1
F52P2 1 0 1 0 1 0 2 1 F55P1 3 11 2.3 trz3 1 0
F59P1 1 0 1 0 1 0 2 1 F31P1 3.2 19 4.3 35 3 15
F63P2 1 0 1 0 1.2 trz3 - - F2P1 3.4 23 4.5 38 2.3 5
F69 1 0 1.2 trz3 1 0 - - F65P2 3.4 25 1 0 - -
F7P1 1 0 1 0 1 0 1 0 F34P1A 3.4 26 1.2 trz3 - -
F85 1 0 1 0 1.2 trz3 - - F42P2A 3.4 26 4.3 33 3 10
F61 2.1 trz3 - - 2.3 trz
3 2.3 trz
3 F22P1 3.4 30 4.3 21 3 15
F100 2 trz3 1 0 3 8 2 1 F69P2 3.4 31 5.4 50 3.2 5
F16P3 2 trz3 1 0 2.3 4 2.3 3 F103P1 4.3 33 3 15 3 10
F32P1 1.2.3 trz3 1 0 2.3 4 1.2.3 trz
3 F103P3 4.3 33 5.6 55 4 43
F113 1.2.3 trz3 1 0 3.2 5 2.1 1 F106P1 4.3 33 3.4 39 2.3 4
F43P1 2.1 trz3 1 0 - - - - F33P1 3.4 33 4.3 36 3.4 10
F91 2.1 trz3 1 0 2.3 1 2.3 trz
3 F90P1 3.4.5 33 4.3 33 4.3 25
F60P4 2 trz3 1 0 - - - - F115P1 4.3 34 4.3 19 3.4 38
F21P2 2.3 trz3 3.2 5 - - 2.3 2 F119P1 4.3 35 4.3 28 4.3 36
F51P2 2.3 trz3 1 0 1 0 - - F32P1 3.4 35 4.3 33 3.4 14
F55P3 2.3 1 1 0 - - 3.2 1 F85P2 4.3 35 4.3 33 - -
F88 2.3 3 1 0 1 0 2.3 3 F112P3 3.4 36 4.3 33 4.3 45
F1P1 3.2 5 1 0 2.3 2 - - F114P1 4.3 38 4.3 65 4.3 30
F64 3 5 2.3 8 2.3 8 3.4 33 F118P1 3.4 38 4.3 18 - -
F17P1 3.2 13 4.3 23 3 5 3.4 20 F64P1 4.5 38 2 1 3 5
F55P1 3.4.5 13 3.4 40 3.2 4 4.5 45 F1P1 4.5 40 4.3 31 - -
F94 3.2 13 4.3.5 43 4.3 45 34 35 F35P3 3.4 40 4.3 41 4.3 20
F58P1 3.4 14 4.3 44 4.5 50 4.5 51 F58P1 4.3 40 4.3 31 3.4 20
F12P2 3.4 15 3.4.2 11 - - - - F68P1 3.4.5 40 3.2 11 3 11
F86 3.4.2 16 1 0 2.3 1 - - F73P1 3.4 40 4.3 45 3.2 18
F109 3.2 18 4.3 13 - - 4.5 41 F86P2 4.3 40 4.3 34 - -
F33 3.4 19 4.3 28 - - - - F54P1 4.3 41 3.4 35 - -
TR1= Tipo de reacción en la escala del 1-6 Stavely (1989), 1, 2, 3 reacción de resistencia; 4, 5, 6 reacción
de susceptibilidad
Sev2= Severidad escala de Cobb (0-100) CIAT, (1987).
trz3= trazas, valores entre 0 y 1 %.
49
Cont (anexo 3)…
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
TR1 Sev
2 TR
1 Sev
2 TR
1 Sev
2 TR
1 Sev
2 TR
1Sev
2 TR
1Sev
2 TR
1 Sev
2
F11P5 3.4 20 4.3 40 3.2.4 28 - - F60P1 4.3 41 6.5 70 - -
F73 3.4 20 3.4 28 3.4 11 - - F92P1 4.3 41 4.3 40 4.3 34
F54P4 3.4 26 3.2.4 14 - - 4.5 48 F113P1 4.3 43 4.3 28 - -
F104 3.4 33 6.5 60 3.2 5 3.4 30 F15P1 4.3 43 3.4 10 - -
F62P1 3.4 33 5.4 50 - - 5.4.6 73 F65P2B 4.5 43 4.3 35 4.3 45
F12P5 3.4.5 35 4.3 33 - - 5.6.4 54 F87P1 4.3 43 4.3 33 3.4 30
F103 4.3 36 3.4 25 - - 4.5 59 F9P1 3.4 43 4.5 53 3.2 19
F97 3.4 36 5.4 43 2.3 5 3.4 33 F23P1 4.3 44 4.3 38 4.3 44
F99 4.3.5 38 4.3.5 18 - - 4.3 26 F44P3 3.4 44 3.4 14 - -
F54P1 3.4 39 3.4 38 - - 2 1 F56P2 5.4 44 5.4 53 3.4 38
F56P1 3.4 40 4.3 35 3.2.4 8 4.3.5 40 F74P1 3.4.5 44 4.3 31 4.3 33
F72P2 3.4 40 5.6 55 - - 6.5 54 F28P1 4.3 45 4.3 40 4.5 50
F13P2 4.3 41 4.3 43 - - - - F4P1 4..5 45 3.4.2 18 4.3 31
F56P4 4.5 41 - - 5.4.6 55 4.5 54 F57P3 3.4 45 5.4 51 5.3 40
F108 4.5.6 43 4.3 28 3.2 5 - - F75P1 3.4 45 5.4 53 4.3 31
F28P2 4.5 44 4.3 41 4.3.5 40 5.6 61 F81P1 4.5 45 5.4 58 3.4 26
F93 4.6 45 5.4 41 4.3 24 5.4 51 F98P1 4.3 45 5.4.3 44 4.3 35
F111 3.4.5 46 4.3 19 1 0 - - F67P3 4.5 46 5.4 53 3.4 15
F89 4.5 46 4.3 40 3.4 38 4.5 44 F7P2 4.3 46 5.4 50 5.4 48
F46P4 4.5 48 3.4 13 3.2 8 - - F47P1 4.5 48 4.3 33 4.3 30
F42 5.6 53 5.6 59 - - 4.5 53 F48P1 4.5 49 3.2 23 - -
F29P3 4.5 54 - - 3.4 33 5.6 65 F108P1 4.5 50 5.4 56 - -
F24P2 4.5 55 5.4 49 4.3 26 - - F102P3 4.5 51 5.4 46 - -
F26P5 5.4.6 55 3.4.5 28 - - 5.6 55 F21P1 5.4 53 4.3 31 - -
F106 5 58 3.4 13 - - 4.3 36 F77P1 5.6 54 4.3 38 - -
F95 5.6 60 3.4 38 3.4 29 - - F36P2 5.6 55 4.5 43 3.4 28
F39P2 5.6 61 3.4 38 - - - - F59P1 5.4 60 4.3 40 - -
F57P1 4.5 65 5.4 45 - - 5.4.6 61 F19P2 4.5 61 4.3 10 3.2 9
F5P1 6.5 66 4.3.5 34 3.4 29 5.6 58 F61P1 5.4 63 4.5 43 3 15
F79P1 5.6 66 3.4 13 - - - - F97P1 4.5 63 4.5 45 4.5 49
F30P1 4.5 64 4.5 45 3.2 16
F100P1 5.6 65 5.4 43 - -
F29P2 5.6 65 3.4 13 3.4 30
F5P1 - - 4.3 41 - -
TR1= Tipo de reacción en la escala del 1-6 Schoonhoven y Pastor (1987), 1, 2, 3 reacción de resistencia; 4,
5, 6 reacción de susceptibilidad
Sev2= Severidad escala de Cobb (0-100) CIAT, (1987).
trz3= trazas, valores entre 0 y 1 %.
50
Anexo 4. Severidad de ascochyta y grupos de reacción en base al análisis de conglomerados de
genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro.
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2
F104 1.0 R 1.0 R 3.0 MR 3.5 MR F103P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F64 1.0 R 3.0 MR 1.0 R 3.0 MR F114P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F91 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR 3.0 MR F115P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F94 1.0 R 3.0 MR 1.0 R 3.0 MR F58P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F100 2.0 R 3.0 MR 1.0 R 4.0 MR F64P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F97 1.0 R 3.0 MR 1.0 R 3.0 MR F68P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F63P2 1.0 R 1.0 R 1.0 R - - F73P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F95 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR - - F75P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R
F61 1.0 R - - 3.0 MR 3.0 MR F103P3 1.0 R 1.0 R 4.0 MR
F12P5 1.0 R 3.0 MR - - 3.5 MR F112P3 1.0 R 1.0 R 4.0 MR
F26P5 1.0 R 1.0 R - - 3.5 MR F2P1 1.0 R 1.0 R 3.5 MR
F35 1.0 R 3.0 MR - - 3.0 MR F30P1 1.0 R 1.0 R 3.0 MR
F62P1 1.0 R 3.0 MR - - 3.0 MR F31P1 1.0 R 1.0 R 4.0 MR
F103 1.0 R 3.0 MR - - 4.5 MS F32P1 1.0 R 1.0 R 3.5 MR
F106 1.0 R 3.0 MR - - 5.0 MS F19P2 1.0 R 1.0 R 3.0 MR
F111 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR - - F57P3 1.0 R 1.0 R 3.0 MR
F13P2 1.0 R 1.0 R - - - - F90P1 1.0 R 1.0 R 4.0 MR
F60P4 1.0 R 3.0 MR - - - - F97P1 1.0 R 1.0 R 3.0 MR
F15P1 1.0 R 5.0 MS 1.0 R 3.0 MR F55P1 1.0 R 3.0 MR 1.0 R
F15P3 1.0 R 3.0 MR 1.0 R 4.5 MS F50P1 1.0 R 3.5 MR 1.0 R
F16P3 1.0 R 5.0 MS 3.0 MR 5.0 MS F98P1 1.5 R 3.0 MR 1.0 R
F17P1 1.0 R 3.0 MR 1.0 R 5.0 MS F61P1 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F21P2 1.0 R 3.0 MR - - 5.0 MS F29P2 1.0 R 3.0 MR 3.5 MR
F28P2 1.0 R 1.0 R 1.0 R 5.0 MS F69P2 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F32P1 1.0 R 5.0 MS 3.0 MR 5.0 MS F74P1 1.0 R 4.0 MR 3.0 MR
F42 1.0 R 3.0 MR - - 4.5 MS F34P1A 1.0 R 1.0 R - -
F55P1 1.0 R 3.0 MR 5.0 MS 5.0 MS F59P1 1.0 R 1.0 R - -
F56P1 1.0 R 1.0 R 1.0 R 5.0 MS F60P1 1.0 R 1.0 R - -
F56P4 1.0 R - - 1.0 R 7.0 S F44P3 1.0 R 1.0 R - -
F5P1 1.0 R 3.0 MR 1.0 R 7.0 S F15P1 1.0 R 1.0 R - -
F72P2 1.0 R 3.0 MR - - 5.0 MS F65P2 1.0 R 3.0 MR - -
F99 1.0 R 7.0 S - - 5.0 MS F54P1 1.0 R 3.0 MR - -
F29P3 1.5 R - - 3.0 MR 4.5 MS F21P1 1.0 R 3.0 MR - -
F108 2.5 MR 3.0 MR 3.0 MR - - F48P1 1.0 R 3.0 MR - -
F109 3.0 MR 1.0 R - - 3.0 MR F87P1 1.0 R 1.0 R 5.0 MS
F11P5 3.0 MR 3.0 MR 1.0 R - - F28P1 1.0 R 1.0 R 5.5 MS
F33 3.0 MR 1.0 R - - - - F100P1 3.0 MR 3.0 MR - -
F43P1 3.0 MR 3.0 MR - - - - F108P1 3.0 MR 1.0 R - -
F46P4 3.0 MR 5.0 MS 3.0 MR - - F110P1 3.0 MR 1.0 R - -
F52P2 3.0 MR 3.0 MR 1.0 R 6.5 S F118P1 3.0 MR 1.0 R - -
51
Cont (anexo 4)…
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2
F52P2 3.0 MR 3.0 MR 1.0 R 6.5 S F118P1 3.0 MR 1.0 R - -
F54P1 3.0 MR 3.0 MR - - 5.0 MS F119P1 3.0 MR 3.0 MR 3.0 MR
F54P4 3.0 MR 3.0 MR - - 7.0 S F14P3B 3.0 MR 1.0 R 1.0 R
F55P3 3.0 MR 1.0 R - - 1.0 R F1P1 3.0 MR 3.0 MR - -
F57P1 3.0 MR 5.0 MS - - 5.0 MS F33P1 3.0 MR 1.0 R 4.5 MS
F73 3.0 MR 5.0 MS 5.0 MS - - F35P3 3.0 MR 1.0 R 1.0 R
F79P1 3.0 MR 3.0 MR - - - - F42P2A 3.0 MR 3.0 MR 4.5 MS
F88 3.0 MR 7.0 S 3.0 MR 6.5 S F56P2 3.0 MR 1.0 R 3.0 MR
F89 3.0 MR 5.0 MS 1.0 R 3.0 MR F65P2B 3.0 MR 1.0 R 1.0 R
F105 3.5 MR 3.0 MR 3.0 MR - - F7P2 3.0 MR 1.0 R 3.0 MR
F24P2 4.0 MR 3.0 MR 1.0 R - - F82P1 3.0 MR 1.0 R - -
F39P2 4.0 MR 3.0 MR - - - - F85P2 3.0 MR 1.0 R - -
F51P2 4.0 MR 3.0 MR 3.0 MR - - F86P2 3.0 MR 1.0 R - -
F25P1 4.5 MS 5.0 MS 3.0 MR 6.5 S F92P1 3.0 MR 3.0 MR 3.0 MR
F12P2 5.0 MS 1.0 R - - - - F9P1 3.0 MR 3.0 MR 3.0 MR
F1P1 5.0 MS 1.0 R 1.0 R - - F22P1 3.5 MR 3.0 MR 3.0 MR
F58P1 5.0 MS 3.0 MR 1.0 R 3.0 MR F36P2 4.0 MR 1.0 R 1.0 R
F69 5.0 MS 3.0 MR 1.0 R - - F77P1 4.0 MR 1.0 R - -
F7P1 5.0 MS 3.0 MR 3.0 MR 5.0 MS F81P1 4.0 MR 1.0 R 5.0 MS
F85 5.0 MS 3.0 MR 1.0 R - - F23P1 5.0 MS 1.0 R 6.0 MS
F86 5.0 MS 3.0 MR 1.0 R - - F47P1 5.0 MS 1.0 R 1.0 R
F93 5.0 MS 1.0 R 1.0 R 4.5 MS F4P1 5.0 MS 3.0 MR 1.0 R
F19 5.5 MS 3.0 MR 1.0 R - - F67P3 5.0 MS 1.0 R 3.0 MR
F52 5.5 MS 5.0 MS 3.0 MR - - F70P1 5.0 MS 4.0 MR - -
F59P1 5.5 MS 3.0 MR 3.0 MR 5.0 MS F102P3 6.0 MS 1.0 R - -
F113 6.5 S 3.0 MR 1.0 R 5.0 MS F106P1 6.0 MS 1.0 R 3.0 MR
P3= 2.5
3.0
2.0
4.4
F113P1 6.0 MS 1.0 R - -
F86P1 6.0 MS 3.0 MR - -
F116P1 7.0 S 1.0 R - -
F5P1 - - 1.0 R - -
P3= 2.4 1.6 2.6
Sev1= Severidad de ascochyta en la escala 1- 9 Schoonhoven y Pastor (1987),
2= grupo de reacción
GR2= Grupo de reacción, resistente (R), medianamente resistente (MR), medianamente susceptible
(MS) y susceptible (S).
P3= Promedio general de ascochyta
52
Anexo 5. Severidad de antracnosis y grupos de reacción en base al análisis de conglomerados
de genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro en cuatro localidades.
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2
F105 1.0 R 2.5 R 2.0 R - - F36P2 1.0 R 2.0 R 1.5 R
F69 2.5 R 2.5 R 2.3 R - - F68P1 1.0 R 2.0 R 2.5 R
F89 1.0 R 1.0 R 3.3 MR 4.5 MR F23P1 1.0 R 2.0 R 3.0 MR
F104 3.0 MR 4.5 MR 3.8 MR 2.0 R F35P3 1.0 R 2.0 R 3.0 MR
F19 1.0 R 4.5 MR 4.0 MR - - F58P1 1.0 R 2.0 R 3.0 MR
F1P1 1.0 R 3.0 MR 3.3 MR - - F75P1 1.0 R 2.0 R 4.0 MR
F24P2 1.0 R 4.5 MR 3.8 MR - - F14P3B 2.5 R 2.0 R 3.0 MR
F63P2 1.0 R 2.0 R 3.3 MR - - F87P1 1.0 R 2.0 R 4.0 MR
F11P5 1.0 R 3.5 MR 3.3 MR - - F73P1 1.5 R 2.0 R 3.0 MR
F95 2.5 R 3.5 MR 3.5 MR - - F90P1 1.0 R 2.0 R 3.5 MR
F12P2 1.0 R 1.5 R - - - - F103P1 1.0 R 3.0 MR 4.0 MR
F13P2 1.0 R 1.5 R - - - - F106P1 1.0 R 4.0 MR 4.0 MR
F43P1 1.0 R 2.5 R - - - - F115P1 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F109 2.0 R 2.3 R - - 3.8 MR F19P2 1.0 R 4.0 MR 2.5 R
F33 2.5 R 2.0 R - - - - F22P1 1.0 R 4.0 MR 3.0 MR
F42 1.0 R 3.5 MR - - 4.5 MR F29P2 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F57P1 1.0 R 4.5 MR - - 6.0 MS F30P1 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F88 1.0 R 2.5 R 3.8 MR 6.0 MS F31P1 1.0 R 3.0 MR 4.0 MR
F59P1 2.0 R 4.5 MR 4.3 MR 6.5 S F32P1 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F91 1.0 R 6.8 S 2.5 R 1.0 R F33P1 1.0 R 3.0 MR 1.0 R
F94 1.0 R 7.0 S 3.8 MR 1.0 R F4P1 1.0 R 3.0 MR 4.0 MR
F99 1.0 R 6.8 S - - 5.8 MS F55P1 1.0 R 4.0 MR 3.0 MR
F25P1 1.0 R 5.5 MS 3.3 MR 3.5 MR F57P3 1.0 R 4.0 MR 4.0 MR
F28P2 2.0 R 5.5 MS 3.8 MR 2.5 R F64P1 1.0 R 3.3 MR 3.0 MR
F29P3 2.0 R - - 3.3 MR 5.3 MS F74P1 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR
F39P2 2.0 R 3.3 MR - - - - F81P1 1.0 R 3.0 MR 4.0 MR
F54P4 2.0 R 4.0 MR - - 4.5 MR F97P1 1.0 R 3.0 MR 4.0 MR
F56P1 2.0 R 6.0 MS 3.0 MR 2.5 R F98P1 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR
F79P1 2.5 R 5.0 MS - - - - F9P1 1.0 R 4.0 MR 4.0 MR
F108 3.0 MR 1.0 R 3.5 MR - - F44P3 1.0 R 2.0 R - -
F111 3.0 MR 5.3 MS 3.5 MR - - F110P1 1.0 R 2.0 R - -
F15P3 3.0 MR 6.0 MS 3.8 MR 5.5 MS F59P1 1.0 R 2.0 R - -
F52 3.0 MR 5.5 MS 3.8 MR - - F82P1 1.0 R 2.0 R - -
F52P2 3.0 MR 2.5 R 3.3 MR 2.3 R F47P1 1.0 R 5.0 MS 3.0 MR
F55P3 3.0 MR 5.5 MS - - 6.0 MS F50P1 1.0 R 5.0 MS 4.0 MR
F5P1 3.0 MR 5.3 MS 3.0 MR 3.5 MR F56P2 1.0 R 3.0 MR 5.0 MS
F62P1 3.0 MR 5.0 MS - - 3.5 MR F103P3 1.0 R 6.0 MS 5.3 MS
F7P1 3.0 MR 4.5 MR 4.3 MR 5.5 MS F114P1 1.0 R 7.0 S 2.0 R
F97 3.0 MR 4.0 MR 3.3 MR 2.8 MR F119P1 1.0 R 5.0 MS 3.0 MR
F46P4 3.3 MR 4.5 MR 2.3 R - - F15P1 1.0 R 7.0 S - -
F56P4 3.3 MR - - 2.8 MR 6.8 S F118P1 1.0 R 3.0 MR - -
53
Cont (anexo 5)…
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2
F113 3.5 MR 2.5 R 3.0 MR 1.0 R F34P1A 1.0 R 6.0 MS - -
F51P2 3.5 MR 2.5 R 3.5 MR - - F54P1 1.0 R 3.0 MR - -
F54P1 3.5 MR 2.0 R - - 3.0 MR F65P2 1.0 R 5.0 MS - -
F64 3.5 MR 1.0 R 3.3 MR 2.5 R F69P2 1.0 R 5.0 MS 3.0 MR
F73 4.0 MR 5.5 MS 4.3 MR - - F61P1 1.0 R 7.0 S 4.0 MR
F58P1 4.3 MR 5.3 MS 3.8 MR 2.0 R F48P1 1.3 R 4.0 MR - -
F85 4.3 MR 5.8 MS 4.0 MR - - F67P3 1.0 R 7.0 S 4.0 MR
F86 4.3 MR 3.0 MR 3.3 MR - - F92P1 1.5 R 7.0 S 2.5 R
F103 4.5 MR 5.5 MS - - 3.0 MR F7P2 1.0 R 7.0 S 3.0 MR
F15P1 4.5 MR 4.5 MR 4.0 MR 5.5 MS F28P1 3.3 MR 2.0 R 3.0 MR
F35 4.5 MR 4.3 MR - - 3.5 MR F2P1 3.3 MR 3.5 MR 4.0 MR
F61 4.5 MR - - 3.3 MR 5.0 MS F112P3 3.5 MR 6.0 MS 2.5 R
F93 4.5 MR 3.0 MR 2.3 R 2.0 R F70P1 3.5 MR 1.0 R - -
F12P5 4.8 MS 3.5 MR - - 3.8 MR F102P3 4.0 MR 4.0 MR - -
F26P5 5.0 MS 3.5 MR - - 3.5 MR F113P1 4.0 MR 3.0 MR - -
F32P1 5.3 MS 7.3 S 2.0 R 5.5 MS F116P1 4.0 MR 4.0 MR - -
F16P3 5.5 MS 3.5 MR 1.8 R 6.5 S F42P2A 4.0 MR 4.0 MR 4.0 MR
F17P1 5.5 MS 3.0 MR 2.3 R 5.8 MS F21P1 4.5 MR 4.0 MR - -
F72P2 5.8 MS 3.5 MR - - 5.5 MS F60P1 4.5 MR 2.0 R - -
F100 6.0 MS 2.5 R 2.3 R 1.0 R F86P1 4.5 MR 5.0 MS - -
F106 6.0 MS 4.5 MR - - 1.0 R F100P1 4.8 MS 4.0 MR - -
F21P2 6.0 MS 3.5 MR - - 4.3 MR F86P2 5.0 MS 3.0 MR - -
F55P1 6.0 MS 5.5 MS 3.5 MR 4.5 MR F77P1 5.3 MS 3.0 MR - -
F60P4 6.0 MS 3.0 MR - - - - F108P1 5.5 MS 6.0 MS - -
F65P2B 5.5 MS 3.0 MR 3.0 MR
F85P2 5.5 MS 4.0 MR - -
F1P1 5.8 MS 5.0 MS - -
F5P1 - - 4.0 MR - -
Sev1= Severidad de antracnosis en la escala 1- 9 Schoonhoven y Pastor. (1987),
GR2= Grupo de reacción resistente (R), medianamente resistente (MR), medianamente susceptible (MS)
y susceptible (S).
54
Anexo 6. Severidad del Virus del Mosaico Común del Fréjol (CBMV) y grupos de reacción en
base al análisis de conglomerados de genotipos locales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro en tres localidades en estudio.
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev GR Sev1 GR2 Sev GR Sev GR
F69 2.0 R 1.0 R 1.8 R F75P1 1.3 R 2.0 R 2.0 R
F113 2.0 R 2.3 R 1.0 R F31P1 1.3 R 3.0 MR 3.0 MR
F1P1 1.0 R 2.5 R 2.3 R F50P1 2.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F15P3 2.3 R 1.5 R 2.3 R F119P1 1.5 R 3.5 MR 2.8 MR
F52P2 2.0 R 2.3 R 2.3 R F2P1 1.5 R 3.0 MR 2.0 R
F52 2.3 R 2.5 R 2.3 R F33P1 1.8 R 3.0 MR 3.3 MR
F56P1 2.0 R 2.5 R 2.3 R F103P3 2.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F111 2.0 R 3.3 MR 2.3 R F7P2 2.5 R 3.0 MR 3.0 MR
F28P2 1.3 R 3.3 MR 2.3 R F100P1 1.5 R 3.0 MR - -
F19 2.0 R 3.3 MR 3.0 MR F86P2 1.8 R 3.0 MR - -
F89 2.5 R 1.0 R 2.8 MR F85P2 2.0 R 3.0 MR - -
F88 2.0 R 2.0 R 2.8 MR F1P1 2.3 R 3.0 MR - -
F73 1.3 R 3.5 MR 3.5 MR F48P1 2.3 R 3.0 MR - -
F25P1 2.0 R 3.5 MR 2.8 MR F65P2 2.3 R 3.0 MR - -
F5P1 1.8 R 3.0 MR 2.5 R F70P1 2.3 R 3.3 MR - -
F7P1 2.0 R 3.5 MR 2.3 R F77P1 2.3 R 3.0 MR - -
F85 2.0 R 3.5 MR 2.3 R F68P1 1.3 R 4.0 MS 3.5 MR
F86 2.0 R 3.3 MR 3.0 MR F114P1 2.0 R 4.0 MS 5.0 S
F104 2.3 R 3.5 MR 3.5 MR F35P3 2.0 R 4.0 MS 3.0 MR
F11P5 2.3 R 3.5 MR 2.0 R F36P2 2.0 R 4.0 MS 2.0 R
F17P1 2.3 R 3.5 MR 3.3 MR F9P1 1.5 R 4.0 MS 3.0 MR
F59P1 2.3 R 3.5 MR 3.0 MR F65P2B 1.8 R 4.0 MS 2.0 R
F63P2 2.3 R 3.5 MR 1.3 R F14P3B 2.3 R 4.0 MS 3.5 MR
F64 2.3 R 3.0 MR 1.3 R F42P2A 2.0 R 4.0 MS 4.0 MS
F51P2 2.3 R 3.5 MR 2.5 R F23P1 2.3 R 4.0 MS 4.5 MS
F99 1.3 R 2.8 MR - - F87P1 2.3 R 4.0 MS 2.8 MR
F33 2.0 R 1.0 R - - F22P1 2.5 R 4.0 MS 4.3 MS
F39P2 2.0 R 2.3 R - - F97P1 2.5 R 4.0 MS 2.0 R
F43P1 2.3 R 1.0 R - - F55P1 2.0 R 4.0 MS 2.5 R
F12P5 2.3 R 2.5 R - - F56P2 2.3 R 4.0 MS 2.3 R
F55P3 2.0 R 3.3 MR - - F64P1 2.3 R 4.0 MS 3.8 MS
F13P2 2.0 R 2.8 MR - - F74P1 2.3 R 4.0 MS 2.0 R
F57P1 2.0 R 3.3 MR - - F59P1 2.0 R 4.0 MS - -
55
Cont (anexo 6)…
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev GR Sev1 GR2 Sev GR Sev GR
F103 2.3 R 3.5 MR - - F82P1 2.3 R 4.0 MS - -
F54P4 1.0 R 3.0 MR - - F44P3 2.5 R 4.0 MS - -
F106 2.3 R 3.0 MR - - F30P1 1.3 R 6.0 S 2.3 R
F61 1.8 R - - 2.5 R F61P1 1.5 R 6.0 S 3.0 MR
F29P3 1.0 R - - 2.5 R F32P1 1.3 R 5.0 S 3.0 MR
F56P4 1.5 R - - 2.3 R F92P1 2.0 R 5.0 S 2.8 MR
F35 2.0 R 3.8 MS - - F112P3 2.3 R 6.0 S 2.8 MR
F21P2 2.3 R 4.5 MS - - F28P1 2.5 R 5.0 S 3.3 MR
F42 2.3 R 3.3 MR - - F15P1 2.3 R 5.0 S - -
F100 1.0 R 4.3 MS 2.3 R F108P1 2.0 R 5.0 S - -
F97 1.3 R 4.0 MS 1.3 R F110P1 2.0 R 5.0 S - -
F24P2 2.0 R 4.5 MS 1.0 R F54P1 2.3 R 5.0 S - -
F60P4 1.5 R 4.5 MS - - F103P1 2.8 MR 4.0 MS 3.0 MR
F105 2.0 R 4.0 MS 3.0 MR F113P1 2.8 MR 4.0 MS - -
F95 1.0 R 4.0 MS 2.3 R F115P1 2.8 MR 5.0 S 3.5 MR
F108 2.3 R 4.3 MS 1.0 R F4P1 2.8 MR 3.0 MR 3.5 MR
F46P4 2.5 R 4.3 MS 2.3 R F81P1 2.8 MR 4.0 MS 4.5 MS
F94 2.8 MR 3.5 MR 1.3 R F86P1 2.8 MR 3.0 MR - -
F16P3 3.0 MR 3.5 MR 1.0 R F118P1 3.0 MR 3.0 MR - -
F55P1 3.0 MR 3.5 MR 3.8 MS F21P1 3.0 MR 4.0 MS - -
F58P1 3.0 MR 2.8 MR 2.3 R F106P1 3.3 MR 5.0 S 3.0 MR
F62P1 3.0 MR 3.5 MR - - F116P1 3.3 MR 4.0 MS - -
F79P1 3.0 MR 3.5 MR - - F19P2 3.3 MR 4.0 MS 3.0 MR
F93 3.0 MR 3.5 MR 1.3 R F60P1 3.3 MR 3.0 MR - -
F12P2 3.3 MR 3.3 MR - - F67P3 3.3 MR 5.0 S 3.0 MR
F26P5 3.3 MR 3.5 MR - - F90P1 3.3 MR 5.0 S 3.3 MR
F54P1 3.3 MR 3.5 MR - - F98P1 3.3 MR 1.3 R 5.0 S
F91 3.3 MR 3.3 MR 3.0 MR F29P2 3.5 MR 4.0 MS 3.5 MR
F32P1 3.5 MR 5.5 S 1.0 R F34P1A 3.5 MR 3.0 MR - -
F72P2 3.5 MR 3.5 MR - - F47P1 3.5 MR 5.0 S 3.5 MR
F109 4.0 MS 4.5 MS - - F57P3 3.5 MR 4.0 MS 3.8 MS
F15P1 4.5 MS 3.5 MR 2.5 R F73P1 3.5 MR 5.0 S 3.0 MR
F58P1 4.5 MS 4.0 MS 5.0 S
F102P3 5.0 S 4.0 MS - -
F69P2 5.8 S 3.0 MR 5.0 S
F5P1 - - 4.0 MS - -
Sev1= Severidad del Virus del Mosaico Común del Fréjol CBMV en la escala 1- 9 Tamayo, (1995)
GP2= Grupo de reacción resistente (R), medianamente resistente (MR), medianamente susceptible (MS)
y susceptible (S).
56
Anexo 7. Severidad de oídio y grupos de reacción en base al análisis de conglomerados de
genotipos locales de fréjol de Cotacachi y Saraguro en tres localidades en estudio.
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2
F15P1 1.0 R 4.0 MR 4.0 MR F112P3 1.0 R 3.0 MR 4.0 MR
F105 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR F119P1 1.0 R 3.0 MR 4.5 MR
F46P4 1.0 R 4.0 MR 1.0 R F28P1 1.0 R 3.0 MR 1.0 R
F51P2 1.0 R 4.0 MR 3.0 MR F30P1 1.0 R 3.0 MR 4.5 MR
F28P2 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR F36P2 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR
F52P2 1.0 R 4.0 MR 3.0 MR F68P1 1.0 R 3.0 MR 4.0 MR
F63P2 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR F74P1 1.0 R 3.0 MR 4.5 MR
F88 1.0 R 4.0 MR 3.5 MR F44P3 1.0 R 1.0 R - -
F43P1 1.0 R 1.0 R - - F34P1A 1.0 R 3.0 MR - -
F33 1.0 R 3.0 MR - - F48P1 1.0 R 3.0 MR - -
F39P2 1.0 R 3.5 MR - - F103P3 1.0 R 7.0 MS 7.0 MS
F12P2 1.0 R 4.0 MR - - F19P2 1.0 R 5.0 MS 5.5 MS
F13P2 1.0 R 4.5 MR - - F22P1 1.0 R 7.0 MS 7.0 MS
F55P3 1.0 R 3.0 MR - - F29P2 1.0 R 7.0 MS 8.5 S
F19 1.0 R 1.0 R 5.0 MS F2P1 1.0 R 5.0 MS 5.0 MS
F1P1 1.0 R 1.0 R 7.5 MS F31P1 1.0 R 1.0 R 5.5 MS
F24P2 1.0 R 7.0 MS 3.0 MR F32P1 1.0 R 5.0 MS 6.5 MS
F25P1 1.0 R 5.5 MS 3.0 MR F33P1 1.0 R 9.0 S 7.0 MS
F108 1.0 R 5.5 MS 5.5 MS F114P1 1.0 R 5.0 MS 7.0 MS
F113 1.0 R 3.0 MR 6.0 MS F35P3 1.0 R 5.0 MS 5.5 MS
F11P5 1.0 R 7.0 MS 3.0 MR F42P2A 1.0 R 3.0 MR 6.5 MS
F52 1.0 R 6.0 MS 3.0 MR F47P1 1.0 R 7.0 MS 6.5 MS
F56P4 1.0 R - - 5.5 MS F50P1 1.0 R 5.0 MS 8.0 MS
F57P1 1.0 R 6.0 MS - - F110P1 1.0 R 5.0 MS - -
F58P1 1.0 R 7.0 MS 3.0 MR F54P1 1.0 R 7.0 MS - -
F5P1 1.0 R 3.0 MR 5.0 MS F55P1 1.0 R 5.0 MS 1.0 R
F64 1.0 R 3.0 MR 3.0 MR F56P2 1.0 R 5.0 MS 5.0 MS
F69 1.0 R 1.0 R 7.0 MS F58P1 1.0 R 1.0 R 5.0 MS
F73 1.0 R 5.0 MS 3.0 MR F59P1 1.0 R 9.0 S - -
F79P1 1.0 R 5.5 MS - - F61P1 1.0 R 3.0 MR 5.5 MS
F7P1 1.0 R 6.0 MS 3.0 MR F64P1 1.0 R 5.0 MS 4.0 MR
F85 1.0 R 4.0 MR 5.5 MS F65P2 1.0 R 7.0 MS - -
F86 1.0 R 3.5 MR 5.5 MS F67P3 1.0 R 5.0 MS 5.5 MS
57
Cont (anexo 7)…
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Genotipo Ensilada Cañicapa Bullcay
Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2 Sev1 GR2
F85 1.0 R 4.0 MR 5.5 MS F65P2 1.0 R 7.0 MS - -
F86 1.0 R 3.5 MR 5.5 MS F67P3 1.0 R 5.0 MS 5.5 MS
F100 1.0 R 5.5 MS 3.0 MR F15P1 1.0 R 7.0 MS - -
F89 1.0 R 1.0 R 5.0 MS F118P1 1.0 R 5.0 MS - -
F91 1.0 R 5.0 MS 3.5 MR F69P2 1.0 R 7.0 MS 4.0 MR
F93 1.0 R 6.0 MS 3.5 MR F75P1 1.0 R 5.0 MS 5.0 MS
F94 1.0 R 1.0 R 5.5 MS F7P2 1.0 R 5.0 MS 6.5 MS
F95 1.0 R 9.0 S 5.5 MS F81P1 1.0 R 5.0 MS 8.0 MS
F17P1 1.5 R 5.0 MS 5.0 MS F87P1 1.0 R 7.0 MS 7.0 MS
F16P3 2.5 MR 1.0 R 3.0 MR F90P1 1.0 R 5.0 MS 4.0 MR
F29P3 2.5 MR - - 3.0 MR F92P1 1.0 R 5.0 MS 5.5 MS
F42 2.5 MR 5.5 MS - - F97P1 1.0 R 5.0 MS 5.0 MS
F15P3 3.0 MR 6.0 MS 3.0 MR F98P1 1.0 R 5.5 MS 5.0 MS
F21P2 3.0 MR 6.0 MS - - F23P1 1.5 R 3.0 MR 8.0 MS
F35 3.0 MR 4.0 MR - - F86P1 2.0 R 1.0 R - -
F54P4 3.0 MR 4.5 MR - - F103P1 2.5 MR 3.0 MR 8.0 MS
F55P1 3.0 MR 3.0 MR 4.0 MR F100P1 3.0 MR 3.0 MR - -
F61 3.0 MR - - 3.0 MR F102P3 3.0 MR 3.0 MR - -
F62P1 3.0 MR 5.0 MS - - F108P1 3.0 MR 3.0 MR - -
F99 3.0 MR 6.0 MS - - F14P3B 3.0 MR 7.0 MS 8.0 MS
F103 3.5 MR 3.0 MR - - F57P3 3.0 MR 3.0 MR 5.5 MS
F104 3.5 MR 7.0 MS 6.0 MS F70P1 3.0 MR 1.5 R - -
F26P5 4.0 MR 6.0 MS - - F82P1 3.0 MR 3.0 MR - -
F56P1 4.0 MR 6.5 MS 5.5 MS F85P2 3.0 MR 1.0 R - -
F60P4 4.0 MR 3.0 MR - - F86P2 3.0 MR 1.0 R - -
F72P2 4.5 MR 6.0 MS - - F115P1 3.5 MR 7.0 MS 6.0 MS
F106 5.0 MS 4.0 MR - - F116P1 3.5 MR 3.0 MR - -
F109 5.0 MS 7.0 MS - - F4P1 3.5 MR 3.0 MR 3.0 MR
F111 5.0 MS 7.0 MS 4.0 MR F73P1 3.5 MR 3.0 MR 6.5 MS
F12P5 5.0 MS 6.5 MS - - F9P1 3.5 MR 3.0 MR 4.0 MR
F32P1 5.0 MS 4.0 MR 3.0 MR F1P1 4.0 MR 3.0 MR - -
F59P1 5.0 MS 6.0 MS 3.5 MR F65P2B 4.0 MR 5.0 MS 7.5 MS
F97 5.0 MS 9.0 S 3.5 MR F113P1 4.5 MR 1.0 R - -
F54P1 6.5 MS 9.0 S - - F21P1 4.5 MR 7.0 MS - -
F60P1 4.5 MR 5.0 MS - -
F106P1 5.5 MS 3.0 MR 3.0 MR
F77P1 6.0 MS 1.0 R - -
F5P1 - - 5.0 MS - -
Sev1= Severidad de oídio en la escala 1- 9 Tamayo, (1995)
GP2= Grupo de reacción resistente (R), medianamente resistente (MR), medianamente susceptible (MS)
y susceptible (S).
58
Anexo 8. Días a la floración, y grupos de precocidad en base al análisis de conglomerados en
genotipos de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro en diferentes localidades.
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa
DF1 GP2 DF1 GP2 DF1 GP2 DF1 GP2 DF1 GP2
F88 82 P 84 P 88 P F85P2 79 P 80 P
F55P3 89 P 96 P 100 P F116P1 84 P 86 P
F5P1 89 P 98 P 100 P F50P1 84 P 86 P
F1P1 85 P 93 P - - F114P1 86 P 89 P
F43P1 82 P 88 P - - F35P3 86 P 89 P
F86 82 P 84 P - - F97P1 86 P 89 P
F7P1 98 P 100 P 108 I F30P1 88 P 89 P
F89 96 P 110 I 112 I F21P1 88 P 89 P
F15P1 96 P 100 P 104 I F54P1 88 P 86 P
F69 98 P 106 I - - F23P1 92 P 94 P
F91 98 P 106 I 108 I F100P1 96 P 94 P
F104 114 I 116 I 118 I F55P1 96 P 101 P
F105 103 I 110 I - - F110P1 100 P 108 I
F109 117 I 126 T 129 T F29P2 100 P 110 I
F113 107 I 112 I 114 I F112P3 101 P 112 I
F12P5 117 I 122 I 126 T F19P2 103 I 110 I
F13P2 117 I 120 I - - F5P1 104 I 110 I
F19 105 I 108 I - - F77P1 104 I 117 I
F21P2 110 I 116 I 118 I F108P1 108 I 112 I
F25P1 118 I 124 I 126 T F32P1 108 I 112 I
F28P2 117 I 126 T 128 T F74P1 108 I 112 I
F42 124 I 124 I 126 T F57P3 108 I 114 I
F52P2 124 I 128 T 128 T F119P1 110 I 119 I
F54P4 110 I 106 I 118 I F90P1 111 I 116 I
F55P1 117 I 124 I 126 T F70P1 112 I 119 I
F58P1 124 I 128 T 130 T F86P1 112 I 119 I
F62P1 120 I 124 I 126 T F31P1 113 I 119 I
F63P2 118 I 122 I - - F87P1 114 I 116 I
F72P2 117 I 122 I 126 T F34P1A 114 I 126 T
F85 103 I 110 I - - F59P1 114 I 118 I
F93 110 I 116 I 120 I F28P1 115 I 118 I
F97 117 I 120 I 118 I F68P1 115 I 117 I
F99 110 I 116 I 118 I F69P2 115 I 115 I
F15P3 103 I 112 I 114 I F81P1 116 I 117 I
59
Cont (anexo 8)…
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa
DF1 GP2 DF1 GP2 DF1 GP2 DF1 GP2 DF1 GP2
F11P5 117 I 126 T - - F1P1 117 I 119 I
F12P2 103 I 110 I - - F33P1 117 I 119 I
F39P2 114 I 114 I - - F58P1 115 I 117 I
F52 103 I 110 I - - F65P2B 117 I 117 I
F60P4 120 I 125 T - - F14P3B 115 I 118 I
F100 136 T 138 T 140 T F103P1 119 I 124 I
F103 136 T 138 T 140 T F42P2A 119 I 126 T
F106 135 T 137 T 139 T F60P1 119 I 124 I
F108 136 T 138 T - - F61P1 119 I 120 I
F111 129 T 137 T - - F22P1 120 I 120 I
F16P3 136 T 138 T 140 T F47P1 120 I 127 T
F17P1 140 T 144 T 148 T F75P1 120 I 126 T
F24P2 136 T 138 T - - F56P2 121 I 125 T
F26P5 143 T 144 T 146 T F36P2 121 I 126 T
F29P3 138 T - - 142 T F4P1 122 I 124 I
F32P1 129 T 132 T 136 T F86P2 122 I 128 T
F33 136 T 138 T - - F2P1 123 I 127 T
F35 131 T 136 T 138 T F102P3 124 I 128 T
F51P2 128 T 130 T - - F9P1 124 I 126 T
F54P1 136 T 138 T 140 T F98P1 124 I 126 T
F56P1 136 T 138 T 140 T F65P2 124 I 128 T
F56P4 140 T - - 144 T F48P1 124 I 126 T
F59P1 131 T 136 T 136 T F106P1 126 T 126 T
F61 138 T
142 T F115P1 126 T 130 T
F64 128 T 133 T 134 T F15P1 126 T 131 T
F73 131 T 136 T - - F44P3 126 T 126 T
F94 129 T 130 T 134 T F73P1 127 T 134 T
F46P4 136 T 138 T - - F7P2 128 T 136 T
F57P1 126 T 128 T 134 T F92P1 128 T 134 T
F79P1 131 T 136 T - - F113P1 129 T 132 T
F95 131 T 136 T - - F118P1 130 T 134 T
F64P1 131 T 136 T
F67P3 134 T 138 T
F82P1 134 T 136 T
F103P3 139 T 140 T
DF 1= Días a inicios de la floración
GP2= Grupo de precocidad establecidos mediante el análisis de conglomerados precoz (P), intermedio
(I), tardío (T).
60
Anexo 9. Días a la formación de vainas y grupo de precocidad en base al análisis de
conglomerados en genotipos de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro en diferentes
localidades.
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa
DV GP DV GP DV GP DV GP DV GP
F88 96 P 96 P 102 P
F85P2 93 P 94 P
F55P3 103 P 109 P 114 P
F116P1 98 P 100 P
F5P1 103 P 111 P 114 P
F50P1 98 P 100 P
F1P1 99 P 107 P - -
F114P1 100 P 103 P
F43P1 96 P 102 P - -
F35P3 100 P 103 P
F86 96 P 98 P - -
F97P1 100 P 103 P
F15P1 110 P 114 P 118 I
F30P1 102 P 102 P
F89 110 P 124 I 126 I
F21P1 102 P 103 P
F69 112 P 120 I - -
F54P1 102 P 100 P
F7P1 112 P 114 P 122 I
F23P1 106 P 108 P
F91 112 P 120 I 122 I
F100P1 110 P 108 P
F105 117 I 124 I - -
F55P1 110 P 115 P
F85 117 I 124 I - -
F110P1 114 P 122 I
F15P3 117 I 126 I 128 I
F29P2 114 P 124 I
F12P2 117 I 124 I
F112P3 115 P 126 I
F52 117 I 124 I - -
F19P2 117 I 124 I
F19 119 I 122 I - -
F5P1 118 I 124 I
F113 121 I 126 I 128 I
F77P1 118 I 131 I
F21P2 124 I 130 I 130 I
F108P1 122 I 126 I
F54P4 124 I 120 I 132 I
F32P1 122 I 126 I
F93 124 I 130 I 134 I
F74P1 122 I 126 I
F99 124 I 130 I 130 I
F57P3 122 I 128 I
F104 128 I 130 I 132 I
F119P1 124 I 133 I
F39P2 128 I 128 I - -
F90P1 125 I 130 I
F109 131 I 140 T 143 T
F70P1 126 I 133 I
F12P5 131 I 136 I 140 T
F86P1 126 I 132 I
F13P2 131 I 134 I - -
F31P1 127 I 133 I
F28P2 131 I 140 T 142 T
F87P1 127 I 130 I
F55P1 131 I 138 I 140 T
F34P1A 128 I 140 T
F72P2 131 I 136 I 140 T
F59P1 128 I 132 I
F97 131 I 132 I 130 I
F28P1 129 I 132 I
F11P5 131 I 140 T - -
F68P1 129 I 131 I
F25P1 132 I 138 I 140 T F69P2 129 I 129 I
61
Cont (anexo 9)….
Genotipos de Cotacachi Genotipos de Saraguro
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
Genotipo
Ensilada Cañicapa
DV GP DV GP DV GP DV GP DV GP
F63P2 132 I 136 I - -
F81P1 130 I 131 I
F62P1 134 I 138 I 140 T
F1P1 131 I 133 I
F60P4 134 I 139 I - -
F33P1 131 I 133 I
F58P1 135 I 140 T 142 T
F58P1 129 I 131 I
F42 138 I 138 I 140 T
F65P2B 131 I 131 I
F52P2 138 I 142 T 142 T
F14P3B 129 I 132 I
F57P1 138 I 142 T 148 T
F103P1 133 I 138 I
F51P2 142 T 144 T - -
F42P2A 133 I 140 T
F64 142 T 147 T 148 T
F60P1 133 I 138 I
F111 143 T 151 T
-
F61P1 133 I 134 I
F32P1 143 T 146 T 150 T
F22P1 134 I 134 I
F94 143 T 144 T 148 T
F47P1 134 I 141 T
F35 145 T 150 T 152 T
F75P1 134 I 140 T
F59P1 145 T 150 T 150 T
F56P2 135 I 139 I
F73 145 T 150 T - -
F36P2 135 I 140 T
F79P1 145 T 150 T - -
F4P1 136 I 138 I
F95 145 T 150 T - -
F86P2 136 I 142 T
F106 149 T 151 T 153 T
F2P1 137 I 141 T
F100 150 T 152 T 154 T
F102P3 138 I 142 T
F103 150 T 152 T 154 T
F9P1 138 I 140 T
F108 150 T 152 T - -
F98P1 138 I 140 T
F16P3 150 T 152 T 154 T
F65P2 138 I 142 T
F24P2 150 T 152 T - -
F48P1 138 I 140 T
F33 150 T 152 T - -
F106P1 140 T 140 T
F54P1 150 T 152 T 154 T
F115P1 140 T 144 T
F56P1 150 T 152 T 154 T
F15P1 140 T 145 T
F46P4 150 T 152 T - -
F44P3 140 T 140 T
F29P3 152 T - - 156 T
F73P1 141 T 148 T
F61 152 T - - 156 T
F7P2 142 T 150 T
F17P1 154 T 158 T 162 T
F92P1 142 T 148 T
F56P4 154 T - - 158 T
F113P1 143 T 146 T
F26P5 157 T 158 T 160 T
F118P1 144 T 148 T
F64P1 145 T 150 T
F67P3 148 T 152 T
F82P1 148 T 150 T
F103P3 153 T 154 T
DV 1= Días a la primera vaina
GP2= Grupo de precocidad establecidos mediante el análisis de conglomerados precoz (P), intermedio
(I), tardío (T).
62
Anexo 10. Días a la madurez fisiológica y grupos de precocidad establecidos en base al análisis
de conglomerados en genotipos de fréjol locales de Cotacachi y Saraguro en
diferentes localidades.
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
Genotipo Ensilada Cañicapa
DM GP DM GP DM GP DM GP DM GP
F5P1 160 P 165 P 163 P
F85P2 142 P 143 P
F88 145 P 147 P 151 P
F116P1 147 P 149 P
F55P3 152 P 163 P 163 P
F50P1 147 P 149 P
F43P1 145 P 151 P - -
F114P1 149 P 152 P
F86 145 P 147 P - -
F35P3 149 P 152 P
F1P1 148 P 163 P - -
F97P1 149 P 158 P
F69 161 P 169 I - -
F30P1 151 P 157 P
F7P1 161 P 163 P 171 I
F21P1 151 P 152 P
F15P1 159 P 163 P 167 I
F54P1 151 P 159 P
F104 177 I 179 I 181 I
F23P1 155 P 160 P
F105 166 I 173 I - -
F100P1 159 P 157 P
F109 180 I 189 T 192 T
F55P1 159 P 164 P
F113 170 I 175 I 177 I
F110P1 163 P 171 I
F12P5 180 I 185 I 189 T
F29P2 163 P 173 I
F13P2 180 I 183 I - -
F112P3 164 P 175 I
F19 168 I 171 I - -
F19P2 166 I 176 I
F21P2 173 I 179 I 187 I
F5P1 167 I 173 I
F25P1 181 I 187 I 189 T
F77P1 167 I 180 I
F28P2 180 I 189 T 191 T
F108P1 171 I 175 I
F42 187 I 187 I 189 T
F32P1 171 I 175 I
F52P2 187 I 191 T 191 T
F74P1 171 I 175 I
F54P4 173 I 169 I 181 I
F57P3 171 I 177 I
F55P1 180 I 187 I 189 T
F119P1 173 I 182 I
F58P1 186 I 191 T 198 T
F90P1 174 I 179 I
F62P1 183 I 189 T 189 T
F86P1 175 I 189 T
F63P2 181 I 185 I - -
F31P1 176 I 182 I
F72P2 180 I 185 I 189 T
F34P1A 177 I 198 T
F85 166 I 173 I - -
F59P1 177 I 181 I
F89 167 I 173 I 175 I
F1P1 180 I 188 I
F91 170 I 169 I 171 I
F65P2B 180 I 180 I
F93 173 I 179 I 183 I
F58P1 180 I 189 T
F97 180 I 185 I 183 I
F14P3B 181 I 190 T
F99 173 I 182 I 187 I F103P1 182 I 187 I
63
Cont (anexo 10)…
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
Genotipo
Ensilada Cañicapa
DM GP DM GP DM GP DM GP DM GP
F15P3 166 I 175 I 177 I
F42P2A 182 I 189 T
F11P5 180 I 189 T - -
F60P1 182 I 187 I
F12P2 166 I 173 I - -
F61P1 182 I 183 I
F39P2 177 I 177 I - -
F69P2 182 I 181 I
F52 166 I 173 I - -
F81P1 182 I 185 I
F57P1 188 I 191 T 204 T
F22P1 183 I 188 I
F60P4 183 I 188 I - -
F47P1 183 I 190 T
F100 199 T 201 T 210 T
F75P1 183 I 189 T
F103 199 T 201 T 203 T
F70P1 184 I 183 I
F106 198 T 208 T 210 T
F87P1 184 I 183 I
F108 199 T 201 T - -
F56P2 184 I 188 I
F111 192 T 200 T - -
F36P2 184 I 189 T
F16P3 199 T 201 T 203 T
F4P1 185 I 187 I
F17P1 203 T 207 T 211 T
F86P2 185 I 191 T
F24P2 199 T 201 T - -
F28P1 186 I 189 T
F26P5 206 T 207 T 209 T
F2P1 186 I 190 T
F29P3 203 T - - 207 T
F68P1 186 I 187 I
F32P1 192 T 195 T 199 T
F102P3 187 I 191 T
F33 199 T 201 T - -
F33P1 187 I 187 I
F35 194 T 199 T 201 T
F9P1 187 I 189 T
F51P2 191 T 193 T
F98P1 187 I 189 T
F54P1 199 T 201 T 203 T
F65P2 187 I 191 T
F56P1 199 T 201 T 203 T
F48P1 187 I 189 T
F56P4 203 T - - 207 T
F106P1 189 T 189 T
F59P1 194 T 202 T 199 T
F115P1 189 T 193 T
F61 201 T - - 205 T
F15P1 189 T 198 T
F64 191 T 196 T 197 T
F44P3 189 T 189 T
F73 194 T 199 T - -
F73P1 190 T 197 T
F94 192 T 193 T 197 T
F7P2 191 T 199 T
F46P4 199 T 201 T - -
F92P1 191 T 202 T
F79P1 194 T 199 T - -
F113P1 192 T 195 T
F95 194 T 199 T - -
F118P1 193 T 197 T
F64P1 194 T 199 T
F67P3 197 T 201 T
F82P1 197 T 199 T
F103P3 202 T 203 T
DM 1= Días a inicios de la madurez fisiológica
GP2= Grupo de precocidad establecidos mediante el análisis de conglomerados precoz (P), intermedio
(I), tardío (T).
64
Anexo 11. Promedio de peso de 100 semillas y grupos de clasificación en genotipos locales de
fréjol de Cotacachi y Saraguro en diferentes localidades.
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo Ensilada Cumbas Cañicapa
Genotipo
Ensilada Cañicapa
P.100s1 GT2 P.100s1 GT2 P.100s1 GT2 P.100s1 GT2 P.100s1 GT2
F99 62.8 G 64.5 G 61.3 G
F31P1 67.1 G 65.9 G
F26P5 59.8 G 59.9 G 62.1 G
F22P1 66.5 G 66.6 G
F16P3 58.7 G 58.3 G 59.2 G
F28P1 65.8 G 64.9 G
F25P1 54.8 G 56.5 G 51.3 G
F116P1 63.5 G 61.4 G
F72P2 52.3 G 49.6 G 48.9 G
F33P1 62.6 G 66.4 G
F64 52.3 G 51.3 G 52.0 G
F106P1 62.4 G 60.8 G
F21P2 50.9 G 53.8 G 51.7 G
F82P1 58.4 G 58.4 G
F94 50.8 G 57.2 G 51.5 G
F69P2 57.0 G 55.6 G
F32P1 50.0 G 50.0 G 50.1 G
F58P1 56.5 G 56.3 G
F28P2 49.8 G 49.6 G 49.3 G
F74P1 54.2 G 51.5 G
F35 49.7 G 50.9 G 47.7 G
F54P1 53.9 G 49.8 G
F91 49.4 G 50.6 G 48.2 G
F2P1 52.4 G 50.6 G
F100 49.3 G 51.6 G 50.2 G
F86P1 51.9 G 54.2 G
F109 49.0 G 50.8 G 43.9 G
F57P3 51.2 G 51.8 G
F59P1 48.6 G 51.1 G 49.8 G
F36P2 50.8 G 54.2 G
F62P1 47.4 G 48.8 G 40.4 G
F34P1 50.7 G 48.5 G
F106 47.2 G 48.4 G 49.9 G
F67P3 49.6 G 50.9 G
F113 46.8 G 47.3 G 48.5 G
F68P1 48.6 G 47.8 G
F42 46.6 G 49.5 G 45.0 G
F108P1 47.5 G 45.8 G
F89 45.1 G 48.5 G 38.6 G
F64P1 47.2 G 47.2 G
F58P1 44.8 G 44.2 G 46.6 G
F70P1 46.5 G 48.5 G
F12P5 44.7 G 49.0 G 49.2 G
F15P1 46.4 G 44.7 G
F97 43.7 G 41.6 G 46.8 G
F30P1 46.1 G 46.1 G
F5P1 42.8 G 42.6 G 42.4 G
F73P1 46.0 G 44.7 G
F7P1 40.5 G 49.3 G 48.0 G
F44P3 45.9 G 43.9 G
F104 62.8 G - - 61.4 G
F86P2 45.8 G 48.9 G
F33 61.5 G - - 59.4 G
F9P1 45.1 G 43.3 G
F11P5 60.1 G - - 59.4 G
F118P1 44.9 G 44.6 G
F95 52.6 G - - 51.9 G
F65P2 44.8 G 43.3 G
F73 51.6 G - - 49.1 G
F56P2 44.7 G 46.1 G
F79P1 49.6 G - - 51.9 G
F81P1 44.6 G 46.7 G
F29P3 49.2 G 43.1 G - -
F50P1 44.6 G 40.0 M
F111 48.9 G - - 51.0 G F77P1 44.5 G 47.0 G
65
Cont (anexo 11)…
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo Ensilada Cumbas Cañicapa
Genotipo Ensilada Cañicapa
P.100s1 GT2 P.100s1 GT2 P.100s1 GT2 P.100s1 GT2 P.100s1 GT2
F19 48.9 G - - 49.1 G
F75P1 44.5 G 41.4 G
F1P1 48.6 G - - 51.4 G
F14P3 44.5 G 46.1 G
F108 47.8 G - - 50 G
F85P2 44.4 G 48.4 G
F46P4 47.7 G - - 49.8 G
F42P2 44.3 G 43.8 G
F63P2 45.8 G - - 48.5 G
F115P1 43.9 G 41.3 G
F24P2 45.8 G - - 48.7 G
F60P1 43 G 46.5 G
F85 44.6 G - - 42.2 G
F65P2 42.8 G 41 G
F52 44.6 G - - 42 G
F98P1 42.6 G 40.8 G
F43P1 44.1 G - - 48.8 G
F61P1 40.5 G 41.2 G
F54P4 39.9 M 38.6 M 32 M
F21P1 40 M 40.5 G
F39P2 38.7 M - - 39.6 M
F113P1 39.9 M 41 G
F15P1 39.4 M 43.6 G 41.4 G
F59P1 39.7 M 42.6 G
F88 39.4 M 38.1 M 40.2 G
F35P3 39.2 M 42.2 G
F55P3 39 M 38.8 M 35 M
F19P2 38.7 M 38.8 M
F61 37.8 M 36.6 M - -
F90P1 38.7 M 39.6 M
F103 37.7 M 35.2 M 35.4 M
F7P2 38.4 M 34.2 M
F105 37.6 M - - 36.5 M
F48P1 38.1 M 40.2 G
F15P3 37.1 M 37.8 M 35.2 M
F114P1 38 M 36.1 M
F86 36.8 M - - 39.8 M
F119P1 37.2 M 34.8 M
F56P4 36.7 M 32.1 M - -
F100P1 36.6 M 35 M
F60P4 36.7 M - - 38.3 M
F5P1 36.2 M 36.7 M
F57P1 35.9 M 34.1 M 35.3 M
F87P1 35.8 M 34.3 M
F12P2 35.5 M - - 30.4 M
F32P1 34.4 M 31.3 M
F55P1 35.2 M 37 M 31.9 M
F112P3 34.4 M 36.2 M
F54P1 34.8 M 33.9 M 35.3 M
F110P1 33.9 M 34 M
F93 34.8 M 36.2 M 34.4 M
F4P1 33.8 M 39.4 M
F13P2 34.3 M - - 30.1 M
F55P1 33.8 M 35.1 M
F56P1 33.7 M 37.5 M 31.9 M
F47P1 33 M 38.4 M
F52P2 33.7 M 36.6 M 33.5 M
F29P2 31.8 M 34.3 M
F51P2 33.2 M - - 36.4 M
F103P1 31.3 M 40.7 G
F69 30.6 M - - 33.3 M
F92P1 29.5 M 29.7 M
F17P1 24.9 P 25 P 24.9 P
F1P1 29.4 M 26.2 M
F97P1 26.1 M 25.8 M
F102P3 28.4 M 30.6 M
F23P1 23.4 P 21.4 P
F103P3 23.2 P 24.5 P
1= Promedio peso de 100 semillas
2= Grupo de tamaño de semilla, grande (G, 40g/100 semillas), mediano (M, 25-40g/100 semillas),
pequeño (P, 25g/100 semillas)
66
Anexo 12.Promedio y grupos de rendimiento en genotipos locales de fréjol de Cotacachi y
Saraguro en diferentes localidades.
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo Ensilada Cañicapa Cumbas
Genotipo Cañicapa Ensilada
Rend1 GR2 Rend1 GR2 Rend1 GR2 Rend1 GR2 Rend1 GR2
F32P1 88.9 MB 60.7 B 49.3 B
F86P1 148.8 MB 80.3 B
F99 66.4 B 19.5 MBj 39.5 M
F82P1 106.8 B 115.1 MB
F64 63.4 B 25.1 Bj 21.8 Bj
F58P1 96.8 B 97.4 B
F104 63.0 B 23.3 Bj - -
F108P1 93.0 B 34.8 Bj
F72P2 57.0 M 44.3 M 49.4 B
F86P2 91.0 B 27.9 MBj
F95 55.0 M 45.8 M - -
F34P1A 78.8 M 81.4 B
F35 53.4 M 60.5 B 46.6 B
F110P1 77.0 M 95.1 B
F16P3 52.8 M 36.1 M 37.8 M
F85P2 72.5 M 56.8 M
F73 52.8 M 29.3 Bj - -
F103P3 72.0 M 36.2 Bj
F26P5 52.2 M 32.7 Bj 42.1 B
F70P1 71.2 M 47.8 Bj
F94 51.2 M 15.5 MBj 21.1 Bj
F113P1 69.8 M 42.6 Bj
F91 49.3 M 22.3 Bj 31.0 M
F67P3 68.0 M 89.9 B
F28P2 47.9 M 46.8 M 38.1 M
F65P2B 60.3 Bj 45.2 Bj
F108 47.2 M 31.8 Bj - -
F103P1A 60.0 Bj 46.9 Bj
F25P1 46.6 M 36.5 M 16.8 MBj
F118P1 59.8 Bj 62.5 M
F106 45.1 M 91.0 MB - -
F116P1 56.3 Bj 62.5 M
F33 44.7 M 34.5 M - -
F28P1 54.5 Bj 56.2 M
F59P1 42.5 Bj 80.6 MB 13.4 MBj
F65P2 52.8 Bj 81.3 B
F85 42.0 Bj 50.5 M - -
F14P3B 52.5 Bj 38.3 Bj
F11P5 41.8 Bj 24.5 Bj - -
F69P2 51.9 Bj 64.6 M
F58P1 41.2 Bj 88.1 MB 9.5 MBj
F48P1 51.9 Bj 42.5 Bj
F79P1 41.2 Bj 13.4 MBj - -
F106P1 51.0 Bj 67.8 M
F63P2 40.9 Bj 89.5 MB - -
F35P3 50.9 Bj 24.0 MBj
F52 40.2 Bj 52.1 M - -
F102P3 50.8 Bj 43.5 Bj
F12P5 40.2 Bj 36.0 M 85.6 MB
F19P2 49.4 Bj 52.3 M
F97 39.0 Bj 18.0 MBj 48.0 B
F77P1 49.0 Bj 46.1 Bj
F46P4 38.1 Bj 37.2 M - -
F60P1 48.8 Bj 58.9 M
F21P2 37.8 Bj 37.8 M 45.9 B
F33P1 48.5 Bj 31.7 Bj
F55P3 37.5 Bj 22.5 Bj 40.2 M
F22P1 44.3 Bj 43.6 Bj
F42 37.5 Bj 18.3 MBj 51.5 B
F15P1 42.3 Bj 52.3 M
F109 36.7 Bj 38.7 M - -
F55P1 41.6 Bj 34.7 Bj
F43P1 35.8 Bj 35.3 M - -
F59P1 40.5 Bj 56.7 M
F5P1 35.3 Bj 66.3 B 13.5 MBj F31P1 39.8 Bj 67.7 M
67
Cont (anexo 12)…
GENOTIPOS DE COTACACHI GENOTIPOS DE SARAGURO
Genotipo
Ensilada Cañicapa Cumbas Genotipo
Cañicapa Ensilada
Rend1 GR2 Rend1 GR2 Rend1 GR2 Rend1 GR2 Rend1 GR2
F103 35.3 Bj 20.6 MBj 8.2 MBj
F114P1 38.8 Bj 58.2 M
F7P1 32.8 MBj 6.0 MBj 44.0 B
F68P1 38.5 Bj 31.9 Bj
F29P3 32.8 MBj - - 19.8 MBj
F5P1 38.3 Bj 38.9 Bj
F100 32.5 MBj 42.2 M - -
F54P1 36.1 MBj 44.4 Bj
F15P1 32.1 MBj 25.5 Bj 30.7 M
F98P1 33.5 MBj 33.4 Bj
F54P4 32.0 MBj 23.5 Bj 23.5 B
F64P1 31.3 MBj 28.0 MBj
F24P2 31.2 MBj 38.8 M - -
F42P2A 30.2 MBj 18.3 MBj
F88 31.2 MBj 26.7 Bj 38.9 M
F47P1 30.2 MBj 27.3 MBj
F1P1 30.8 MBj 58.7 B - -
F56P2 29.5 MBj 42.2 Bj
F105 28.9 MBj 9.0 MBj - -
F115P1 29.3 MBj 26.6 B
F61 28.3 MBj - - 27.5 Bj
F119P1 28.5 MBj 33.7 Bj
F60P4 28.0 MBj 71.4 B - -
F29P2 27.3 MBj 18.3 MBj
F62P1 28.0 MBj 66.8 B 33.4 M
F92P1 24.3 MBj 26.3 MBj
F15P3 27.9 MBj 31.2 Bj 25.2 Bj
F21P1 24.1 MBj 31.1 Bj
F89 27.8 MBj 14.8 MBj 37.9 M
F112P3 23.8 MBj 7.7 MBj
F113 27.6 MBj 17.3 MBj - -
F4P1 23.3 MBj 31.8 Bj
F56P4 27.0 MBj - - 16.7 MBj
F2P1 22.8 MBj 17.8 MBj
F86 26.9 MBj 36.8 M - -
F61P1 22.8 MBj 23.9 MBj
F54P1 26.5 MBj 27.2 Bj 17.0 MBj
F44P3 22.4 MBj 34.7 Bj
F57P1 25.9 MBj 9.5 MBj 9.3 MBj
F57P3 22.3 MBj 22.3 MBj
F19 25.6 MBj 25.3 Bj - -
F97P1 22.0 MBj 35.6 Bj
F12P2 25.3 MBj 20.0 MBj - -
F75P1 21.3 MBj 18.7 MBj
F93 24.6 MBj 17.1 MBj 27.3 Bj
F81P1 20.2 MBj 32.7 Bj
F55P1 23.8 MBj 44.5 M 32.2 M
F100P1 20.2 MBj 26.4 MBj
F13P2 23.6 MBj 31.7 Bj - -
F36P2 18.1 MBj 23.1 MBj
F52P2 22.4 MBj 26.3 Bj 21.3 Bj
F73P1 17.4 MBj 26.8 MBj
F56P1 22.3 MBj 68.2 B 27.4 Bj
F23P1 17.2 MBj 9.2 MBj
F111 22.2 MBj 60.3 B - -
F7P2 14.9 MBj 20.3 MBj
F51P2 19.5 MBj 38.5 M - -
F74P1 14.8 MBj 31.4 Bj
F69 19.3 MBj 42.8 M - -
F32P1 13.2 MBj 22.0 MBj
F39P2 17.6 MBj 15.2 MBj - -
F9P1 12.7 MBj 17.5 MBj
F17P1 12.3 MBj 38.8 M 17.8 MBj
F1P1 12.5 MBj 31.7 Bj
F50P1 12.0 MBj 21.6 MBj
F30P1 11.0 MBj 13.0 MBj
F87P1 6.0 MBj 26.0 MBj
Rend1= Promedio de rendimiento por genotipo
GR2 = Grupo de rendimiento muy buenos (MB), buenos (B), medios (M), bajos (Bj) y muy bajos
(MBj)
68
Anexo 13. Parcela Experimental
Anexo14. Sintomatología causada por Uromycesappendiculatus
69
Anexo 15. Sintomatología para (Phoma exiguavar, exigua)
Anexo 16. Sintomatología para (colletotrichumlindemuthianum)
70
Anexo 17. Sintomatología para virus
Anexo 18. Sintomatología para (Erysiphepolygoni)
71
Anexo 19. Floración R6
Anexo 20. Envainado de frejol R7
72
Anexo 21. Evaluaciones del cultivo
73
Anexo 22. Evaluaciones del cultivo de fréjol
Anexo 23. Cosecha de los ensayos de fréjol
74
Anexo 24. Vainas de fréjol
Anexo 25. Peso de 100 semillas