université de mahajanga faculte des sciences l’exc llence

REPUBLIQUE DE MADAGASCARA Fitiavana-Tanindrazana-Fandrosoana

********* ** **** ** MINISTERE DE L’ ENSEIGNEMENT SUPERIEUR

ET DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE ********* ****** *

UNIVERSITE DE MAHAJANGA ********* **** ** ******

FACULTE DES SCIENCES ********* ******

INSTITUT DE BIOLOGIE APPLIQUEE IBA (ex-UFP)

Mé moire de fin d’ étude en vue de l’obte ntion du diplôme de LICENCE

è s-SCIENCES PROFESSIONNELLE

Option : BIOHYDROSYSTEME

Année : 2012 N° : 012BIOHY-UM-SN-UFP-12

ESSAI DE PRODUCTION DES CYSTES

D’Artemia sp AU SEIN DU CENTRE DE DEVELOPPEMENT DE LA CULTURE DE

CREVETTES, MAHAJANGA

Présenté et soutenu publiquement le 17 juillet 2012

Par :

Mademoiselle : RAZAFINDRASOA Landrie Holivia.

Promotion MAMIRATRA Membres du jury :

- Président de jury : Pr RASOANARIVO Rivoharinala - Directeur de mémoire : Mr RAMILAVONJY Benjamin. - Juge : Mr RAKOTONDRATSIMBA Bien Aimé

0324924344

FACULTE DES SCIENCES

LA CULTURE DE L’EXCELLENCE

Université de Mahajanga

REPUBLIQUE DE MADAGASCARA

Fitiavana-Tanindrazana-Fandrosoana

*****************

MINISTERE DE L’ENSEIGNEMENT SUPERIEUR

ET DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE

****************

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INSTITUT DE BIOLOGIE APPLIQUEE

IBA (ex-UFP)

***************

Mémoire de fin d’étude en vue de l’obtention du diplôme de LICENCE

ès-SCIENCES PROFESSIONNELLE

Option : BIOHYDROSYSTEME

Année : 2012 N°

ESSAI DE PRODUCTION DES CYSTES

D’Artemia sp AU SEIN DU CENTRE DE DEVELOPPEMENT DE LA CULTURE DE

CREVETTES, MAHAJANGA

Présenté et soutenu publiquement le 17 juillet 2012

Par :

Mademoiselle : RAZAFINDRASOA Landrie Holivia. Promotion MAMIRATRA 0324924344

FACULTE DES SCIENCES

LA CULTURE DE L’EXCELLENCE

Université de Mahajanga

Essai de production des cystes d’Artémia sp 2012

r l a n d r i e h o l i v i a @ y a h o o . c o m

Page i

DEDICACE

L’Eternel est le soutien de ma vie (Psaumes : 27/1c) ; Il est mon

réconfort.

Je dédie ce travail à toute ma famille ; vous m’avez soutenu moralement et

financièrement à la réalisation de ce mémoire. A ne pas oublier surtout : Mme

RAZANANALY Christine qui me prouve une affection sincère et vive de l’amour de la

mère, ma grande mère : RAZANADRASOA Justine et mon frère : LALAINATIANA

Jud'oro.

Je dédie également ce mémoire à mes quatre nièces et mon neveu à mes deux

autres frères et mes deux sœurs et à mes amis de la promotion et surtout à ceux qui me

tiennent plus proche.

Que Dieu vous bénisse !



Page ii

REMERCIEMENTS

Nombreuses entités ont figurés et collaborés pour avoir cet ouvrage.

� Nous adressons nos sincères remerciements à tous ceux qui ont contribué à

l’élaboration de cet ouvrage :

-Professeur RABESA Zafera Antoine ; Président de l’Université de Mahajanga.

-Docteur MILADERA Jonhson Christian ; Doyen de la Faculté des Sciences de

l’Université de Mahajanga.

-Ingénieur TSITOMOTRA Arsène ; Directeur de l’Institut de Biologie Appliquée

et Chef d’option Agriculture.

-Docteur BEMANAJA Etienne ; Chef d’option Biohydrosystème.

-Tous les enseignants de l’IBA ; vous êtes la source de tous les meilleurs

programmes de formation durant mes études au sein de l’université de Mahajanga.

� Nous adressons aussi nos remerciements les plus vifs à tous ceux qui nous ont aidés

durant le stage et à la réalisation de la recherche dans le département écloserie:

-Monsieur RAKOTONAIVO Jean Harimonjy ; Directeur du Centre de

Développement et de la Culture de Crevettes à Mahajanga ; qui m’a accordé de

faire le stage au sein de son établissement.

-Madame RAZAFINDRADOANY Louisette ; Chef du Département Ecloserie

Amborovy Mahajanga.

-Les Biologistes et Techniciens du Centre.

� Egalement nos remerciements aux encadreurs de cet ouvrage :

-Monsieur RAMILAVONJY Benjamin (Encadreur Pédagogique)

-Docteur RANDRIAMIARISOA (Encadreur Professionnel)

-Madame RAZAFINDRADOANY Louisette (Encadreur Professionnel); qui ont

consacré beaucoup de temps à la lecture du manuscrit et nous ont fait part de

critiques et suggestions positives.



Page iii

� Sincères remerciements à tous les membres de Jury en acceptant de présider, de juger,

et d’y apporter leurs suggestions positives malgré leur occupation :

-Président de jury : Pr RASOANARIVO Rivoharinala

-Juge : Mr RAKOTONDRATSIMBA Bien Aimé

-Rapporteur : Monsieur RAMILAVONJY Benjamin.



Page iv

SOMMAIRE

DEDICACE ........................................................................................................................ i

REMERCIEMENTS ......................................................................................................... ii

LISTE DES ABREVIATION OU DES SIGLES OU DES ACRONYMES .................. vi

GLOSSAIRE ....................................................................................................................... vii

LISTE DES FIGURES ....................................................................................................... viii

LISTE DES TABLEAUX ................................................................................................. ix

LISTE DES ANNEXES ..................................................................................................... x

RESUME ............................................................................................................................. xi

ABSTRACT ........................................................................................................................ xii

Partie I : INTRODUCTION ET RAPPEL BIBLIOGRAPHIQUE

I-1 : INTRODUCTION GENERALE .............................................................................. 1

I-2 : RAPPEL BIBLIOGRAPHIQUE .............................................................................. 3

2-1 : Généralité sur l’Artémia ............................................................................................ 3

2-2 : Morphologie ............................................................................................................... 4

2-3: Systématique ................................................................................................................ 5

2-4: Reproduction ............................................................................................................... 5

2-5 : Paramètres écologiques ............................................................................................. 6

2-6 : Utilité et valeur nutritionnelle ................................................................................... 7

Partie II : MATERIELS ET METHODES

II-1 : MATERIELS UTILISES ......................................................................................... 8

1-1 Site d’étude .................................................................................................................. 8

1-1-1 : Localisation .............................................................................................................. 8

1-1-2 : Historique du CDCC ............................................................................................... 9

1-1-3 : Objectifs du CDCC .................................................................................................. 9

1-1-4 : Activités du CDCC ................................................................................................... 9

1-2 : Matériel Biologique ................................................................................................... 10

1-3 Matériel Technique ...................................................................................................... 10

II-2 : METHODOLOGIE .................................................................................................... 11

2-1 : Préparation du milieu d’élevage ............................................................................... 11

2-2 : Incubation du cyste d’Artémia sp .............................................................................. 11

2-3 : Inoculation des nauplii d’Artémia sp ........................................................................ 12

2-4 : Suivi des paramètres physico-chimiques .................................................................. 13



Page v

2-5 : Fertilisation du milieu d’élevage ............................................................................... 13

2-6 : Acclimatation .............................................................................................................. 14

2-7 : Echantillonnage ............................................................................................................ 14

Partie III : RESULTATS

III-1 : FAISABILITE DE LA CULTURE ........................................................................ 15

1-1 : Variation journalière des paramètres de la culture ............................................ 15

1-1-1 : Température .......................................................................................................... 15

1-1-2 : Salinité .................................................................................................................... 16

1-1-3 : Evolution du niveau d’eau dans les bacs ........................................................................ 16

1-2 : Evolution des paramètres biologiques ................................................................ 17

III-2 : RESULTATS ATTENDUES .................................................................................. 19

2-1 : Récolte des cystes ........................................................................................................ 19

2-2 : Taux de survie ............................................................................................................. 20

2- 3 : Estimation de la quantité des cystes récoltés ........................................................... 20

Partie IV : DISCUSSION

IV-1 : Sur les paramètres physico-chimiques ................................................................... 22

IV-2 : Sur les paramètres biologiques ............................................................................... 22

IV-3 : Sur les résultats attendus ......................................................................................... 23

IV-4 : Quelques recommandations ................................................................................... 24

CONCLUSION .................................................................................................................... 25

BIBBLIOGGRAPHIE

WEBOGRAPHIE

ANNEXES



Page vi

LISTE DES ABREVIATION OU DES SIGLES OU DES ACRONYME S

� CDCC/DE : Centre du Développement de la Culture de Crevettières Département Ecloserie.

� EESSA : Etablissement d'enseignement supérieur des sciences agronomiques.

� EASTA : Ecole d'application des sciences et techniques agricoles

� IHSM : Institut Halieutique et des Sciences Marines.

� LGA : Les Gambas d’Ankarana

� PL : post larve.



Page vii

GLOSSAIRE

- Acclimatation : ajustement des organismes aquatiques aux conditions environnementales.

- Aérobie : condition ou processus où de l’oxygène gazeux est présent ou nécessaire.

- Artémie : petit crustacé.

- Aquaculture semi-intensive : système de culture caractérisé par une production 2 à

20t/ha/an, largement dépendant de la nourriture naturelle, l’empoissonnement d’alevins

produits en écloserie, l’utilisation régulière d’engrais, un échange d’eau ou une aération

limitée.

- Aquarium : bac ou autre récipient adapté dans lequel des poissons ou autres organismes

aquatiques peuvent être maintenu en vie.

- Crustacé : classe d’animaux aquatiques appartenant au phylum Arthropoda, important

groupe d’organismes invertébrés caractérisés par leur exoskelette chitineux et par des

appendices articulés, présents dans les eaux salées et les eaux douces, ainsi que sur la terre.

- Cyste : phase très résistante, non-mobile, déhydratée, résistante, inactive, au repos existant

chez des organismes libres ou parasites, en réponse à des conditions de milieu défavorables.

- Elevage : gestion d’animaux captifs en vue d’améliorer leur reproduction, croissance et

santé.

- Incubation : en aquaculture ; élevage d’œufs depuis leur fécondation jusqu’à leur éclosion.

- Juvénile : jeune stade de développement d’animaux, qui dure généralement jusqu’au

moment où ils deviennent sexuellement matures pour la première fois.

- Marais salants ou salines sont un ensemble de bassins de faible profondeur, appelés

carreaux, dans lesquels est récolté le sel, obtenu par évaporation de l'eau de mer.

- Saumure : eau saturée d’un sel ou en contenant de grandes quantité en particulier du chlore

de sodium (sel de cuisine).



Page viii

LISTE DES FIGURES

Figure. 1: Identification du sexe d'un Artémia adulte .......................................................... 03

Figure.2 : Morphologie de l’Artémia .................................................................................. 04

Figure. 3: Cycle de vie de l'Artémia sp .................................................................................. 06

Figure.4 : Region Boeny et ses six District ............................................................................ 08

Figure.5 : Vue satellitaire de l’écloserie d’Amborovy ........................................................... 08

Figure.6 : Boite d’Artemia cyst ............................................................................................. 10

Figure.7 : Cystes .................................................................................................................... 10

Figure.8 : L’opération du dénombrement des nauplii d’Artemia sp ..................................... 13

Figure.9 : Juvénile, transparent, petit ................................................................................... 14

Figure.10 : Subadulte, bleu verdâtre, moyen ........................................................................ 14

Figure.11 : Adulte,rouge brique, max.................................................................................... 14

Figure.12: Variation de la température à 08h00 ................................................................... 15

Figure.13 : Variation de la température à 14h00 .................................................................. 15

Figure.14 : Variation journalière de la salinité ..................................................................... 16

Figure.15 : Variation journalière du niveau d’eau dans les bacs d’élevage ......................... 16



Page ix

LISTE DES TABLEAUX

Tableau I. Quantité des fertilisants utilisés durant l’élevage ................................................ 11

Tableau II. Dénombrement des nauplii à inoculer ................................................................ 12

Tableau III. Dose de la fertilisation d’entretien .................................................................... 13

Tableau IV. Caractéristiques observées durant l’échantillonnage ....................................... 14

Tableau V. Evolution du stade dans le bac 1 ........................................................................ 17

Tableau VI. Evolution du stade dans le bac 2 ....................................................................... 18

Tableau VII. Evolution du stade dans le bac 3 ..................................................................... 18

Tableau VIII. Evolution du stade dans le bac 4 .................................................................... 19

Tableau IX. Pesage des cyste récoltés ................................................................................... 19

Tableau X. Nombre d’Artémia enregistré durant l’expérience ............................................. 20

Tableau XI. Estimation après extrapolation .......................................................................... 21



Page x

LISTE DES ANNEXES

Annexe 1 : Estimation en % du stade échantillonné dans le bac 1


Annexe 3: Estimation en % du stade échantillonné dans le bac 3


Annexe 5: Variation journalière de la température chaque 08:00


Annexe 7: Variation journalière de la salinité par bac

Annexe 8: Variation journalière du niveau d’eau par bac

Annexe 9: Calendrier d’intervention sur les activités durant l’expérience

Annexe 10: Les matériels utilisés



Page xi

RESUME

L’aquaculture semi-intensive est basée à la production larvaire qui se déroule dans l’écloserie. L’élevage larvaire est censé à utiliser des nutritions essentiellement riches en protéines et des acides gras pour avoir du meilleur rendement et de bonne survie. L’essai de production des cystes d’Artémia sp a pour objet d’améliorer les apports nutritionnels en écloserie et de valoriser les nourritures vivantes. Durant l’expérience la température se situe entre 24,4°C et 31°C, avec une salinité supérieure à 100‰ et celle-ci est indispensable à l’animal. Nous avons pu exprimer que dans le bac n°2, la croissance des espèces élevées fut normale. De même ; par rapport à la récolte effectué, c’est le bac n°2 qui représente la plus grande valeur : avec un taux de survie 2,16% et 22g du cystes sec. L’estimation du futur résultat nous pousse à marquer quelques recommandations au centre : primo, il est important de diminuer la valeur de la solution de fer utilisé dans le protocole ; secundo, le pratique de la décapsulation du cyste est demandé,… En un mot, cette expérience est exploitable face aux conditions e la température et de la salinité voulu.

Mots clés : Artémia, Cystes, Ecloserie, Nutritionnel, Production.



Page xii

ABSTRACT

The semi-intensive aquaculture is based to the larval production that takes place in the hatchery. The larval raising is supposed to use the nutritional essentially rich in proteins and fatty acids to have the best output and good survival. The test of production of the cysts of Artemia sp has for object to improve the nutritional contributions in hatchery and to valorize the living foods. During the experience the temperature is located between 24.4°C and 31°C, with a saltiness superior to 100‰ and this one is indispensable to the animal. We could express that in the ferry n°2, the growth of the elevated species was normal. In the same way; in relation to the done harvest, it is the ferry n°2 that represents the biggest value: with a rate of survival 2.16% and 22g of the dry cysts. The evaluation of the future result pushes us to mark some recommendations in the center: firstly, it is important to decrease the value of the iron solution used in the protocol; for the convenient of the décapsulation of the cysts is asked secondly… In a word, this experience is exploitable facing the e conditions the temperature and of the wanted saltiness. Key words: Artemia, Cysts, hatchery, Nutritional, Production



Page 1

I-1 : INTRODUCTION GENERALE

L’élevage des crevettes pénéides est une activité relativement ancienne qui a démarré

dans les pays asiatique. En 1981, l’aquaculture ne représentait que 2 % de la production

mondiale. Aujourd’hui, il est devenu une activité économiquement importante dans de

nombreux pays de la zone tropicale.

A Madagascar, la crevetticulture est appelée à combler ce manque à gagner

(Randriamiarisoa, 2009). Elle a connu un essor considérable d’année en année. La production

de crevettes d’aquaculture a atteint actuellement la moitié de celles pêchées en milieu naturel.

Ce qui rejoint la politique nationale d’augmenter la production tout en diminuant la pression

sur les ressources naturelles.

En bref, la prise maximale autorisée annuelle (ou Maximum Sustainable Yield, MSY)

de crevettes côtières à Madagascar est estimée à 12 000 tonnes. La production de crevettes

d’aquaculture enregistrée était de 408 t en 1994. Elle a passé à 2 720 tonnes en 1997 pour une

superficie totale des bassins de 1 028 ha. En 2007, la production a atteint 8 457t

(BANACREM, 2009)

Comparé à tout élevage semi-intensif connu ; l’élevage en bassin et à grande échelle,

dépend toujours à l’écloserie. En général, une écloserie est la base de l’aquaculture. L’élevage

larvaire de toutes les espèces ou individus élevés en bassin se déroule dans l’écloserie. Les

larves des crevettes pénéides et/ou crevettes carididés ont presque la même besoin alimentaire

quand aux aliments vivants et frais. Selon Sorgeloos et Leger (1992) depuis 1980, beaucoup

de progression a été enregistrée dans la commerce et l’expérience de l’élevage larvaire pour

différentes espèces en aquaculture, entre autres les crevettes pénéides et carididés. Une

amélioration des apports nutritionnels est appliquée en valorisant les nourritures vivantes

comme Brachionus plicatilis et Artémia salina.

Selon Volana (2007), les crevettes produites de Madagascar sont qualifiées jusqu’ici

de haut de gamme et suivent les normes internationales. Le principal client est l’Union

Européenne. Face à ces normes internationales, Madagascar est orienté à l’importation de tous

les produits de traitement et des aliments utilisés en écloserie. D’après John et Daniel, (1993),

les cystes d’Artémia est cher et ne sont pas toujours disponibles à l’écloserie. Ceci est dû à la

demande en cystes d’Artémia qui a rapidement dépassé l’offre. Par conséquent, les prix ont

augmenté rapidement (Sorgeloos et al 1986). L'élevage des poissons et d'autres produits



Page 2

halieutiques dans les eaux marines à Madagascar se limite pour l'instant à des élevages

expérimentaux (Chanos chanos, poissons d'aquarium, huîtres, algues, Artemia,...).

Pour l'artémiculture, une ferme de 4 ha a débuté ses activités au Nord de Morondava

(Anonyme, 1999). L'ISHM a entrepris des élevages expérimentaux d'Artémia salina dans les

bassins de la saline de Toliara. L'étude a pour objet la fourniture de cystes et d'adultes

d'Artémia aux futures fermes crevettières à Madagascar. Les essais se poursuivent avec

l'appui financier d'un privé et l'assistance technique d'un expert vietnamien

(http://www.fao.org/ ). De plus, un centre d'appui (formation, vulgarisation, postlarves) pour

le développement de la crevetticulture artisanale est opérationnel à Mahajanga (Anonyme,

1999). En 2011, le Centre de Développement de Culture de Crevettes (CDCC) vient d’être

doté d’expérimentation sur l’Artémiculture à raison de l’importance des aliments vivants et

frais pour les larves de Macrobrachium sp.

De par l’insuffisance d’étude menée sur l’artémiculture à Madagascar et de ces

constats que la présente étude intitulée : « Essai de production des cystes d’Artémia sp au

sein du CDCC Mahajanga.» a été menée.

Après un rappel bibliographique sur l’artémiculture, les matériels utilisés et la

méthode d’élevage adoptée sont présentés. La troisième partie du mémoire est axée sur la

présentation des résultats obtenus. Elle est suivie de la discussion et quelques

recommandations, puis enfin de la conclusion générale.



Page 3

I-2 : RAPPEL BIBLIOGRAPHIQUE

2-1 : Généralité sur l’Artémia

L’artémia est un petit crustacé d'eau salée, primitif, apparu il y a entre 100 et 400

millions d'années. C'est en 1755 que le Docteur Schlosser a décrit pour la première fois

Artémia salina. En 1840 le Docteur Joly apporte une description plus complète de ce petit

crustacé (Xipho, 2009a). La recherche fondamentale et appilquée sur l'Artémia a été lancée à

l'Université de Ghent (Belgique) au début des années soixante-dix, Lors de la conférence

technique sur l'aquaculture organisée par la FAO à Kyoto en 1976, nous avons déclaré sur la

base de nos connaissances (théoriques) que la pénurie de cystes n'était qu'un problème

aritficiel et temporaire (Sorgeloos et al 1986). Le "nauplius" d'artémia est tout simplement la

première forme de la vie de ce crustacé, celle qu'il présente à la sortie de l'œuf ou cyste. Elle

ne possède pas de coquille et nage sur le dos, les artémias produisent des cystes (l'équivalent

des œufs). Les cystes sont capables de survivre à une dessiccation totale durant plusieurs

années pour éclore lorsque la mare se remplit à nouveau.

Les cystes réhydratés donnent naissance en 2 ou 3 jours à des nauplii mesurant un

quart de millimètre environ. Si les conditions sont favorables, l'artémia grandira en 3

semaines jusqu'à sa taille adulte de 10 à 12 millimètres. Le mâle est caractérisé par deux

grands appendices de forme recourbée au niveau de la tête. La femelle possède une poche

située juste en dessous de ses branchies et dans laquelle se développeront les œufs.

Figure. 1: Identification du sexe d'un Artémia adulte. Source : http://www.invertebia.fr/invertebres/artemia-salina.html; modifié par l’auteur.



Page 4

2-2 : Morphologie :

L'Artémia est un petit crustacé aquatique de forme allongée et dépourvu de carapace,

il fait 14 mues avant de devenir adulte. Sa coloration va du blanc laiteux au bleu vert jusqu'au

rouge brique et au vermillon selon la nourriture et le milieu, en particulier selon la teneur en

oxygène dissous. Il est composé de 3 parties :

- La tête : Elle porte un œil nauplien médian et deux yeux latéraux, dans sa partie

antérieure on remarque une paire d'antennes courbées portant à leur extrémité 3 petites

soies,

- Le thorax : Il comprend 11 segments, chacun portant une paire d'appendices

natatoires foliacés qui ont une fonction motrice et respiratoire, permettant la filtration

de la nourriture et son acheminement vers les deux mandibules.

- L'abdomen : Il est composé de huit segments. Les deux premiers segments sont

génitaux, deux pénis chez le mâle ou la poche incubatrice chez la femelle.

Le dernier segment possède deux appendices portant de longues soies; entre ces

appendices se trouve l’anus.

-

Figure.2 : Morphologie de l’Artémia.

Source : Eckert, cité par Xipho (2009), modifié par l’auteur.

Le thorax

La tête L'abdomen



Page 5

2-3: Systématique

Selon Leach (1819), la position systématique de l’artémia est la suivante :

Règne : Animalia

Embranchement : Arthropoda

Sous-embranchement : Crustacea

Classe : Branchiopoda

Sous-classe : Sarsostraca

Ordre : Anostraca

Sous-ordre : Artemiina

Famille : Artemidae

Genre : Artémia

Source : http://www.invertebia.fr/invertebres/artemia-salina.html.

2-4: Reproduction

L'Artémia dispose de deux méthodes de reproduction :

Reproduction par parthénogénèse : il n'y a pas de mâles et seules les femelles assurent la

reproduction. Les individus disposent d'un double jeu de gènes (diploïdie). Ces artémies sont

considérées comme une espèce particulière.

Reproduction sexuée : il y a des mâles et des femelles qui s'accouplent. Lors de

l'accouplement, qui dure plusieurs jours, le mâle s'accroche à la poche de la femelle à l'aide de

ses appendices recourbés. La femelle pond des nauplii déjà formées si les conditions du

milieu sont favorables. Dans le cas contraire (en particulier si la salinité est élevée), elle pond

des cystes qui devront passer par une dessiccation puis une réhydratation pour éclore. Il existe

deux "formes" de cystes d'artémia: ceux qui sont produits par les crustacés adultes dans des

conditions favorables à l'éclosion. Ils n'ont pas besoin d'une forte coquille et éclosent de suite.

Si les conditions du milieu deviennent défavorables (salinité trop élevée, voir assèchement du

bassin d'eau de mer), les cystes produits sont munis d'une forte coquille qui leur permettra de

survivre plusieurs années (Anonyme, 2011).



Page 6

Figure. 3 : Cycle de vie de l'Artémia sp. Source : http://www.invertebia.fr/invertebres/artemia-salina.html; modifié par l’auteur.

2-5 : Paramètres écologiques

Les artémias sont des petits crustacés primitifs que l’on rencontre dans les marais

salants du monde entier, où ils sont récoltés pour être commercialisés (Marcel, 2000).

L’animal est adapté aux milieux sursalés et produit en grande quantité des cystes dans de

nombreux marais salants et autres attendues d’eaux sur salées ou il prospère (Guillaume, et al

1999). Cependant, la production de cystes exige des conditions écologiques spécifiques

adaptées à l’espèce. Xipho (2009b) a décrit les conditions écologiques optimales exigées par

Artémia telle la température, l'oxygène dissous, la salinité et le pH.

- La température : Les valeurs optimales sont comprises entre 25°C et 30°C et la

moyenne est de 28°C. L'éclosion est maximale dans un délai de 12 heures. A noter

qu’à une température supérieure à 33°C, le processus métabolique est stoppé. Pour

maintenir le milieu d’élevage à la température moyenne exigée en écloserie, l’emploi

d’une résistance chauffante fiable équipée d'un thermostat est indispensable. A une

température de 28°C, le processus métabolique se déroulant parfaitement et les nauplii

posséderont un maximum de valeur énergétique.

Reproduction

Adulte

Femelle portant des œufs/cystes

Différenciation (mues)

Embryon émergeant de la membrane d’éclosion

œufs/cystes

Eclosion

Nauplius



Page 7

- L'oxygène: Il est évident que la quantité d'oxygène varie en fonction de la quantité de

cystes mis en culture. Les recommandations sont de 2 mg d'oxygène par litre de

culture avec une aération continue par le fond.

- La salinité et le pH: La salinité est maintenue à la valeur de 35-340‰. A l’éclosion, la

salinité peu descendre jusqu’à 5 ‰ et pour l’élevage, les valeurs optimales sont de 30

à 50 ‰. Le pH doit être maintenu à plus de 8. Un brassage permanent et un ajout

éventuel de NaHCO3 sont nécessaires (Gaëlle, et al, 1998).

2-6 : Utilité et valeur nutritionnelle

L'utilisation des nauplii d'artémias est particulièrement utile comme première alimentation des larves des poissons et des crustacés, elle est de plus très efficace pour la croissance. Les artémias et des larves d'artémias (nauplii) représentent une nourriture vivante très utilisée pour des poissons d'aquarium. En effet c'est quasiment l'aliment miracle indispensable à tout aquariophile. (Marcel, 2000). Seale (1933) et Rollefsen (1939) cités par Xipho (2009a) ont déjà utilisé l’Artémia, nourriture à haute valeur nutritive, en aquaculture. En effet, les adultes contienant 60 % de protéines, sont très riches en acides aminés essentiels, en acides gras polyinsaturés et ne contiennent que 10% de cendres (Gilbert, 1986). Le nauplius d’Artémia sp à l’éclosion contient des lipides à 18,1% en matière sèche dont 14,4 % des acides gras et d’autres sels minéraux comme le fer, zinc, magnésium et cuivre (Guillaume, 1999).



Page 8

II-1 : MATERIELS UTILISES

1-4 Site d’étude

Nous avons effectué cette étude dans le département écloserie du centre CDCC Mahajanga .Notre expérience est soumis à la salle d’algue extérieur bien équipé et avec soin.

1-1-1 : Localisation

La zone d’étude se trouve au Nord-Ouest de Madagascar, dans la région Boeny, district Mahajanga I.

Figure.4 : Région Boeny et ses six District.

Source : Région Boeny (2012), modifié par l’auteur.

L’écloserie du CDCC est sise dans le quartier d’Amborovy, de la commune urbaine de Mahajanga I. Elle se situe à 6 km au Nord de la ville de Mahajanga, route vers Zahamotel. Ce centre est présenté dans la figure 5.

Figure.5 : Vue satellitaire de l’écloserie d’Amborovy.

Source : CDCC (2012), modifié par l’auteur.

Réservoir d’eau de mer

Administration Château d’eau Culture d’algue

Salle d’élevage

larvaire

Bassin de

décantation



Page 9

1-1-2 : Historique du CDCC

Ce centre est le fruit de la coopération entre le gouvernement Malagasy et le gouvernement japonais. C’est un don non remboursable d’une valeur de 50 milliards de francs malagasy.

• 1995: Début de construction

• 02 juillet 1996: Inauguration

• 1998-2002: Projet de Développement de l'Aquaculture dans la Côte Nord-Ouest de

Madagascar – Phase 1

• 2003 – Mai 2006: Projet de Développement de l'Aquaculture dans la Côte Nord-

Ouest de Madagascar – Phase 2

• Mai 2006 – Actuel: Transition

Il est structuré par deux départements:

o Département écloserie ; sise à Amborovy (près de la petite plage).

o Département Formation et Bassins de grossissement ; qui se trouve à

Antsahanibingo.

1-1-3 : Objectifs du CDCC

Le principal objectif est de promouvoir l’aquaculture de crevettes à petite échelle dans la côte Nord-Ouest de Madagascar. Et de renforcer la capacité du CDCC par la formation et par le développement de la technologie de la culture de crevettes.

1-1-4 : Activités du CDCC

Plusieurs activités sont exploitées au centre :

� Production de PL de Penaeus monodon: depuis 1996.

� Essai de production de Macrobrachium sp: année 2004 (même infrastructure que le

Penaeus monodon)

� Production de Tilapia: écloserie déjà mise en place, démarrage de la mise à la

reproduction (2006).

� Encadrement du : Stage d’imprégnation sur la crevetticulture ; préparation de mémoire

de fin d’études dans des Écoles professionnelles et Universitaires (EASTA

Mahajanga; IBA (ex-UFP) Mahajanga; Université de Mahajanga; Université

d’Antananarivo; ESSA Tanà; IHSM Toliary; ferme LGA).

� Élargir le champ d’activités du CDCC en exploitant d’autres espèces pour

l’aquaculture.

� Diversifier les activités génératrices.



Page 10

1-2 : Matériel Biologique

Le matériel biologique utilisé est les cystes d’Artemia. Ils sont importés des Etats Unis

d’Amérique (Utah). Les cystes sont enfermés hermétiquement dans une boite cylindrique

d’un poids net 400g .La qualité du cyste est « hight 5 » et le taux d’éclosion est de 80 %

selon la notice de la boîte.

Figure.6 : Boite d’Artémia cyst.

1-5 Matériel Technique

Quatre (4) bacs en polycarbonates de 500 litres chacun, équipés par des tuyaux

d’aération et des diffuseurs d’air (sucres d’aérateur) ont été utilisés pendant

l’expérimentation. Les bacs sont remplis par de l’eau de mer filtrée à 0,65 µ.

D’autres matériels comme l’Erlen Meyer de 2l, une éprouvette gradué de 250 ml, des

pipettes graduées 3 ml, des béchers de 1000 ml, un compteur manuel, une loupe

monoculaire, un réfractomètre manuel à 100‰, une règle graduée de 60 cm, un thermomètre

à mercure, une balance de précision, une balance taré, des tamis à Artémia et un seau 12 l ont

été aussi nécessaires pour le suivi.

Des produits chimiques comme le chlore, la poudre de Fe Cl3, l’urée et le sel ont été

également utilisés.

Figure.7 : Cystes.



Page 11

II-2 : METHODOLOGIE

2-1 : Préparation du milieu d’élevage

Avant le démarrage effectif de l’expérimentation, le nettoyage et la désinfection de

tous les matériels et équipements utilisés constituent la première étape du travail. Ensuite, les

bacs sont remplis avec de l’eau de mer filtrée avec un filtre à cartouche 0,65µ jusqu’à un

volume de 200l. Les bacs sont numérotés de 1 à 4 pour bien les identifier. Il suffit de

brancher les aérateurs pour avoir un milieu aérobie. L’ajout des principaux fertilisants est

indiqué dans le tableau ci-après :

Tableau I. Quantité des fertilisants utilisés durant l’élevage.

Fertilisant Bac n°1 Bac n°2 Bac n°3 Bac n°4

Urée 0 6mg 12mg 18mg

Solution de Fer 0 216ml 432ml 648ml

Source : CDCC (2012), modifié par l’auteur.

La préparation de la solution de Fer est la suivante :

- Peser 1,5g de poudre de FeCl3 à l’aide d’une balance de précision,

- Verser dans 1,5l d’eau distillée,

- Agiter dans un Erlen Meyer,

- Mettre la solution dans un autoclave pendant 15min avant l’utilisation.

2-2 : Incubation du cyste d’Artémia sp

C’est la partie la plus importante pour obtenir des nauplii à ensemencer dans des

milieux déjà préparés. Le processus à suivre est le suivant :

� Décapsulation ;

- ajouter 2g de chlore dans un litre d’eau de mer pour faciliter la décapsulation du

cyste d’Artémia sp,

- aérer l’eau de mer chlorée pour bien disperser le chlore,

- mettre 1g de cystes d’Artémia dans l’ d’eau de mer chlorée, bien aérée, et agitée

pendant 15min,

- rincer les cystes avec l’eau de mer en utilisant la maille à Artémia.



Page 12

� Incubation proprement dit ;

L’opération s’effectue dans un bac de 30L pendant 17 à 24h avant la récolte des

nauplii. Le déroulement de l’incubation est le suivant:

- d’abord les cystes sont réhydratés, entre temps commence l’éclosion,

- les nauplii sortent du cyste, c’est l’éclosion puis,

- les nauplii libérés nagent tout de suite.

Ces derniers sont prêts à ensemencer dans un milieu de culture.

2-3 : Inoculation des nauplii d’Artémia sp

D’après le protocole du centre, la densité est de 50 nauplii d’Artémia sp par litre. Dans

200l d’eau de mer ; il nous faut 10 000 nauplii par bac. Vue la taille et la mobilité des

nauplii ; l’opération pour avoir 10 000 nauplii est le dénombrement par dilution dont le mode

opératoire est le suivant. Prélever 1ml de nauplii d’Artémia sp puis verser le dans 100ml d’eau

de mer. Prélever dans cette préparation 10 échantillons. Les nauplii de chaque échantillon est

compté un à un. L’opération est répétée trois fois successives (A, B et C)

Tableau II. Dénombrement des nauplii à inoculer.

Comptage

N° Echantillon

A B C

01 12 09 12

02 05 10 04

03 07 04 05

04 07 01 07

05 03 09 05

06 10 08 04

07 08 06 06

08 03 07 03

09 07 06 06

10 07 11 06

Moyenne 6,9 7,1 5,8

Moyenne des moyennes 6,6



Page 13

La moyenne des moyennes obtenue est de 6,6 nauplii/ml. Cette photo montre la méthode du

dénombrement que nous avons effectué :

Figure.8 : L’opération du dénombrement des nauplii d’Artemia sp.

2-4 : Suivi des paramètres physico-chimiques

Le prélèvement des paramètres physico-chimiques comme la température, a été faite

deux fois par jour à 8h30mn le matin et à 14h00mn l’après-midi, ceux de la salinité et du

niveau d’eau ont été pris une seule fois par jour.

2-5 : Fertilisation du milieu d’élevage

La fertilisation est faite en deux étapes ; la fertilisation principale qui est faite au début

de l’expérience en une seule fois puis la fertilisation d’entretien, réalisée une fois par semaine

après l’inoculation des nauplii. Les doses de la fertilisation d’entretien sont présentées dans le

tableau III.

Tableau III. Dose de la fertilisation d’entretien.

Fertilisant d’entretien Bac n°1 Bac n°2 Bac n°3 Bac n°4

Urée 0 3mg 6mg 9mg

Solution de Fer 0 8ml 216ml 224ml

Source : CDCC (2012).



Page 14

2-6 : Acclimatation

C’est une façon d’habituer l’espèce élevé à la condition voulue et qui est différent à

celui-ci au paravent. Notre but est d’atteindre la salinité optimale 100g par litre (100 ‰) ; il

suffit d’ajouter 500g de sel par bac par jour ou bien 1kg par 2jours. Nous avons effectué

celle-ci au 5ème jour après l’inoculation des nauplii d’Artémia sp.

2-7 : Echantillonnage

Un prélèvement hebdomadaire d’un échantillon de 10 litres par bac a été effectué afin

de suivre l’évolution des stades d’individu élevés dans les bacs. L’opération consiste au

dénombrement des Artémia sp, à l’identification de leurs caractéristiques et à la

détermination des différents stades. Les caractéristiques étudiées durant l’échantillonnage

sont compilées dans le tableau IV.

Tableau IV. Caractéristiques observées durant l’échantillonnage.

Stade d’Artemia sp Couleur Comportement Taille

Nauplius Blanc laiteux Mobile micron

Juvénile Transparent Dynamique petite

Subadulde Bleu verdâtre Prêt à la reproduction Moyenne

Adulte Rouge brique Porteuse des œufs les femelles Max

Des photos sont prises pour identification des stades de l’animal, vis-à-vis de son

comportement.

Figure.9 : Juvénile,

transparent, petit.

Figure.10 : Subadulte, bleu

verdâtre, moyen.

Figure.11 : Adulte,rouge

brique, max.



Page 15

III-1 : FAISABILITE DE LA CULTURE

La faisabilité de la culture est prouvée par la suivie des paramètres physico-chimique, et avec l’échantillonnage nous avons identifié l’évolution des stades.

1-1 : Variation journalière des paramètres de la culture

1-1-3 Température

Les résultats des prélèvements de la température de l’eau d’élevage des 4 bacs

jusqu’au 19è jour sont présentés dans les figures 12 et 13. Les jours suivants, l’appareil n’est

plus disponible.

Figure.12: Variation de la température à 08h00.

En général, la température dans la matinée est stable durant l’élevage. Elle varie autour

de 28°C. Le minimal est de 24,4°C et le maximal est de 31°C. La valeur maximale de la

température est apparue au J5 et au J6.

Figure.13 : Variation de la température à 14h00.

Dans l’après-midi, les valeurs de la température obtenues sont presque les mêmes que celles de la matinée. Elles varient entre 24,4°C et 31°C.

0

10

20

30

40

J1 J2 J3 J4 J5 J6 J7 J17 J18 J19

Te

mp

éra

ture

(°C

)

Jours

Bac n°1 Bac n°2 Bac n°3 Bac n°4

0

10

20

30

40

J1 J2 J3 J4 J5 J6 J7 J16 J17 J18 J19

Tem

péra

ture

(°C

)

Jours

Bac n°1 Bac n°2 Bac n°3 Bac n°4

Essai de production des cystes d’Artémia sp

1-1-2 : Salinité

Un seul prélèvement par jour a été fait pour la

obtenus sont présentés dans la figure 14.

Figure.14 : Variation journalière de la salinité

La salinité de l’eau d’élevage est plutôt stable du premier au 19è jour. Ensuite elle a

augmenté régulièrement jusqu’à la fin de l’élevage une fois que l’on a commencé à ajouter du

sel à raison de 500g par jour. En fin d’élevage, elle a atteint

19è jour.

1-1-3 : Evolution du niveau d’eau dans les bacs

L’élevage a été réalisé san

l’élevage, il a été constaté une diminution du niveau d’eau dans les bacs. Les résultats obtenus

sont présentés dans la figure 15.

Figure.15 : Variation journalière du niveau d’eau dans les bacs

La figure 15 dénote

27cm au début de l’expérience à 17cm

bac.

0

20

40

60

80

100

120

140

J1 J2 J3

salin

ité (

‰) Bac n1

0

10

20

30

J1

Hau

teur

de

l'eau

(c

m)

Essai de production des cystes d’Artémia sp


Un seul prélèvement par jour a été fait pour la salinité de l’eau d’élevage. Les résultats

obtenus sont présentés dans la figure 14.

Variation journalière de la salinité.

d’élevage est plutôt stable du premier au 19è jour. Ensuite elle a

jusqu’à la fin de l’élevage une fois que l’on a commencé à ajouter du

sel à raison de 500g par jour. En fin d’élevage, elle a atteint 120‰ si elle n’est que de 44‰ le

Evolution du niveau d’eau dans les bacs

L’élevage a été réalisé sans changement d’eau ni ajout de nouvelle eau.


sont présentés dans la figure 15.

Variation journalière du niveau d’eau dans les bacs d’élevage

La figure 15 dénote que la baisse progressive du niveau d’eau dans les bacs a passé de

début de l’expérience à 17cm vers la fin, soit une perte d’environ 28 litres d’eau par

J5 J6 J7 J17 J18 J19

Jours

1 Bac n 2 Bac n 3 Bac n 4

J17

J32

jours

Bac n 1 Bac n 2 Bac n


r l a n d r i e h o l i v i a @ y a h o o . c o m Page 16

de l’eau d’élevage. Les résultats

d’élevage est plutôt stable du premier au 19è jour. Ensuite elle a

jusqu’à la fin de l’élevage une fois que l’on a commencé à ajouter du

si elle n’est que de 44‰ le

s changement d’eau ni ajout de nouvelle eau. Durant


d’élevage.

d’eau dans les bacs a passé de

, soit une perte d’environ 28 litres d’eau par

J34 J35 J36

Bac n3 Bac n 4



Page 17

1-2 : Evolution des paramètres biologiques

Evolution des stades

Les échantillonnages hebdomadaires réalisés ont permis de suivre l’évolution du

cheptel de chaque bac. Les résultats obtenus de chaque bac sont présentés dans les tableaux n°

V, VI, VII et VIII ci-après.

Tableau V. Evolution du stade dans le bac 1.

Stades

Semaine

Nauplius (%) Juvénile (%) Adulte (%) Œufs (%)

1 transfert 0 0 0

2 100 0 0 0

3 0 90 10 0

4 10 40 50 0

5 30 0 70 0

6 10 10 40 40

7 5 0 20 75

Pour le bac 1 (Cf. Tab n° V) où aucune fertilisation n’a été faite dans l’eau d’élevage,

il a été constaté qu’à la 2ème semaine, on n’a recensé que des nauplii. A la troisième semaine,

90 % du cheptel sont devenus juvéniles et 10 % des adultes. A partir de la sixième semaine,

on a pu obtenir 40 % d’œufs parmi le cheptel. A une semaine avant la récolte, les œufs ont

atteint 75 % de l’élevage et 20 % d’adultes et 5% des nauplii déjà éclos.



Page 18

Tableau VI. Evolution du stade dans le bac 2.

Stades

Semaine


1 transfert 0 0 0

2 100 0 0 0

3 0 40 60 0

4 20 10 70 0

5 25 0 75 0

6 70 05 10 15

7 5 0 40 55

Concernant le bac 2 (Cf. tab n°IV), les mêmes évolutions du cheptel que celles du bac 1 ont été enregistrées. Cependant, à la troisième semaine, il ne reste plus que 40 % de juvéniles et 60 % sont des adultes. L’obtention des œufs n’a eu lieu qu’à la sixième semaine avec un taux de 15 %. A une semaine avant la récolte, 55 % du cheptel sont représentés par des œufs avec un taux de 40 % d’adulte et 5% des nauplii déjà éclos.

Tableau VII. Evolution du stade dans le bac 3.

Stades

Semaine


1 transfert 0 0 0

2 100 0 0 0

3 0 100 0 0

4 0 40 60 0

5 5 25 70 0

6 40 10 40 10

7 5 0 20 75

Les résultats obtenus dans le bac 3 sont présentés au tableau n° VII. Durant laquelle à

la troisième semaine, il n’y a que des juvéniles, qui sont représenté au 100%. A partir de la

sixième semaine le taux d’œufs formé ne figure que 10% et les adultes ne sont qu’au 40%. A

une semaine avant la récolte, 75 % du cheptel sont représentés par des œufs avec un taux de

20 % d’adultes et de 5% des nauplii déjà éclos.



Page 19

Tableau VIII. Evolution du stade dans le bac 4.

Stades

Semaine


1 transfert 0 0 0

2 100 0 0 0

3 0 100 0 0

4 10 30 60 0

5 0 30 70 0

6 5 0 80 15

7 5 0 30 65

Les résultats obtenus dans le bac 4 sont présentés au tableau n° VIII. Pendant celle ci

à la troisième semaine, il n’y a que des juvéniles, qui sont représenté au 100% de

l’échantillon. A partir de la sixième semaine le taux d’œufs formé a figuré 15% et les adultes

sont au 80%. A une semaine avant la récolte, 65 % du cheptel sont représentés par des œufs

avec un taux de 30 % d’adulte et de 5% des nauplii déjà éclos.

III-2 : RESULTATS ATTENDUES

2-1 : Récolte des cystes

Les cystes récoltés sont pesés à l’état frais et à l’état sec. Les résultats sont chiffrés dans le

tableau ci-dessous :

Tableau IX. Pesage des cyste récoltés.

Bac Poids frais du cyste (g) Poids sec du cyste (g) Rapport poids

frais/poids sec

1 15,1 4,1 3,68

2 60,7 22 2,75

3 38,9 14,7 2,64

4 33,4 14,3 2,33



Page 20

Pour le bac 1, qui est un témoin, représente le minimum résultat 4.1g à l’état sec. Par contre le

bac 2 ; indique le maximum du résultat 22g à l’état sec. Et que les bacs 3 et 4 ont montré la

moyenne, qui est du 14g à l’état sec.

2-2 : Taux de survie

Il est calculé par : le nombre d’Artémia vivant restant après la récolte des cyste multiplié par

100 et divisé le nombre total des nauplii inoculé. Les valeurs sont enregistrées comme suit :

Tableau X. Nombre d’Artémia enregistré durant l’expérience.

Bac

Nauplii inoculés Adultes survivant porteuses d’œufs Taux de survie en %

1 10000 179 1,79

2 10000 216 2,16

3 10000 59 0,59

4 10000 213 2,13

Le bac 2 figure le taux de survie maximum 2,16% ; celle-ci vérifie la bonne qualité du milieu

de culture. Pourtant le bac 3: malgré ; la fertilisante d’entretien deux fois que celle du bac 2 ;

il ne présente que 0,59% de survie.

2- 3 : Estimation de la quantité des cystes récoltés

Nous allons essayer d’extrapoler les résultats obtenus à petite échelles afin d’avoir une

idée sur le futur rendement à l’hectare.

-Sachant que : 1l équivaut à 1dm3

10000m2 équivaut à celle de 1ha.

-La formule de la superficie d’un cylindre s’écrit : S= 2�rh

Avec ; S : surface / r : rayon d’un cylindre / h : hauteur d’un cylindre.

-Nous avons six bimestres dans une année et un cycle de production est effectué dans un

bimestre ; c'est-à-dire deux mois suffisent la production des cyste d’Artémia.

Après avoir cette valeur nous pouvons estimer les résultats suivant :



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Tableau XI. Estimation après extrapolation.

Bac

Quantité du cyste récolté

dans un bac de 500l

(g/bac)

Quantité du cyste éstimé à

récolter dans 1ha en 1

bimestre (Kg/ha)

Quantité du cyste éstimé

à récolter dans 1ha en une

année (kg/an)

1 4,1 15,41 92,46

2 22 82,70 496,2

3 14,7 55,26 331,56

4 14,3 53,75 322,5

Avec ces résultats ; seule dans le bac 2 qui nous rendrait positive au rendement. Environ

0.5t/ha/an est la production attendue si nous procède au protocole du bac 2.



Page 22

IV-1 : Sur les paramètres physico-chimiques

Notre température ambiante, de l’eau d’élevage, ne dépasse pas du 31°C le long de

l’expérience. Elle varie autour du 28°C. Cette valeur est vérifiée par l’hypothèse de Xipho

(2009) ; Les valeurs optimales de la température sont comprises entre 25°C et 30°C et la

moyenne est de 28°C. Pourtant ; les baisses le plus importante qui ont eu lieu du J5 et au J6

ont été dues à la tombée de la pluie accompagnée des vents cyclonique durant l’expérience.

En bref, les températures de l’eau d’élevage sont comprises dans les normes exigées par

l’espèce et les variations de température viennent aussi du temps. Lorsqu’il fait beau et

ensoleillé, la température de la culture augmente. Les temps nuageux et pluvieux fait diminuer

la température.

La salinité de l’eau d’élevage est plutôt stable du premier au 19è jour ; même si nous

avons déjà procédé à l’acclimatation au 5ème jour. Au jour 19, nous avons réussi à progresser

l’augmentation de la salinité ; grâce à la saison qui a été de mieux ensoleillée. Nous avons pu

atteindre la valeur 120‰ à la fin de l’expérience, bien qu’au début nous n’avons que 25‰. La

salinité est maintenue à la valeur de 35-340‰ ; et pour l’élevage, les valeurs optimales sont

de 30 à 50‰ (Xipho, 2009). Alors, notre salinité convient à la norme exigée à l’élevage

d’artémia sp. Une forte salinité accélère l’inhibition du développement des œufs libérés.

Comme dit ; Gaelle et al (1998) : pour élever des artémia, on fera attention à certains

facteurs ; la température est du 6 à 40°C (optimum : 25 à 30°C) et la salinité est de la valeur

35 à 340‰.

Il est normale que le niveau d’eau baisse progressivement dès le début jusqu’à la fin

de l’expérience. Cette baisse est le fruit de l’évaporation ; parce qu’il n’y avait ni changement

d’eau, ni ajout de nouvelle eau. En fait, la perte est plutôt bénéfique pour l’élevage puisqu’elle

a entraîné une meilleure concentration du sel, paramètre indispensable à la formation du cyste.

IV-2 : Sur les paramètres biologiques

Suivi par l’échantillonnage nous a permis d’évaluer la capacité de notre expérience

d’essai. Tout au long de l’expérience nous avons effectué six échantillons sur huit semaines

d’élevage. Durant laquelle ;

• les trois premières semaines nous montrent que les bacs n°1 et 2 ont

regroupé l’évolution rapide des stades du cheptel. C'est-à-dire au 14ème jour d’élevage nous

avons vu l’apparition des adultes prêts à la reproduction. Alors que ; l’hypothèse affirme que

l’artémia atteint sa maturité en 10 jours lorsque les conditions optimum sont réunies :



Page 23

température (28°-30°C), salinité, alimentation, densité de population

(http://www.invertebia.fr). Des nauplii nouveaux ont été déjà formé parce que les conditions

de la formation des cystes ne sont pas encore réunies. A ce propos la femelle pond des nauplii

déjà formées si les conditions du milieu sont favorables (Anonyme, 2009). Par contre ; les

bacs n°3 et 4 représentaient un ralentissement d’évolution du stade.

• les trois deuxième semaines nous indique que tous les bacs sont concurrencé

à la formation des œufs, tous à la porté de la femelle. Des taux sont enregistré après avoir

évalué durant l’échantillonnage ; plus les œufs sont à faibles taux, plus ils sont déjà éclos en

donnant des nauplii. En faite nous avons enregistré à chaque bac qu’à la fin de

l’échantillonnage ; les nauplii sont figurés au 5% du cheptel.

IV-3 : Sur les résultats attendus

Après avoir optimisé la salinité, et que les autres conditions ont été regroupé ; nous avons

effectué la récolte. Le bac n°2 contient des cystes avec le poids sec 22g, alors que celle du

bac n°1 non fertilisé est de 4,1g de poids sec (1/5 de celle du bac n°2). Ces valeurs

valorisaient la fertilisante utilisé tels que le fer et l’urée ; c’est le fer qui était notre référence

pour la fertilisation, parce que c’est l’un des oligo-éléments plus important dans l’eau de mer,

avec de valeur 50mg/m3 (Duvigneaud. 1980). Aloui et al(2003), ont eu des résultats suivantes

après l’utilisation des fertilisants référencié au fer : L’exploitation d’Artemia (cystes et

biomasse) et le dénombrement des animaux en fin d’expérimentation dans les différents bacs

montre que la meilleure dose du fertilisant est 0,75 (0,75*F). Elle permet de multiplier par 5 la

production par rapport au témoin en cystes et en biomasse. Alors que dans notre expérience ;

au cours de ce travail, nous avons pu évaluer que la meilleure production de cystes est

obtenue dans le bac n°2 fertilisé de la solution de fer 8ml (1*F) par semaine.

A la fin de l’expérience nous avons une survie remarquable au bac n°2, le seul qui présente le

maximum résultat. Il est mentionné par Aloui et al(2003), qu’en faisant une corrélation entre

le nombre des animaux et la quantité de cystes produite, nous remarquons qu’il y a une

corrélation positive, c’est à dire, plus il y a d’animaux dans le milieu, plus la quantité de

cystes est importante. On constate déjà que le milieu de culture dans le bac n°2 est meilleur

parce qu’enfin il a figuré 261 adultes porteuse de l’œuf, avec une survie 2.16%.

Ayant su, les connaissances exactes des caractéristiques biologiques et écologiques de

l'Artémia (cycle de vie et habitat) révèlent le potentiel d'exploitation que représentent des

sources naturelles de cystes et de biomasse existantes dans les salines ou les lacs salés. Des



Page 24

bassins de petite dimension, fertilisés au moyen de guano de poulet, peuvent produire jusqu'à

20 kg (poids sec) de cystes d'Artémia ou 1500 kg d'Artémia adultes (poids vif - la biomasse)

par hectare et par mois (Sorgeloos et al 1986). Nous avons eu, après l’extrapolation 496,2kg

par hectare et par an ; qui vaut 41,35kg par hectare et par an selon le protocole du bac n°2.

IV-4 : Quelques recommandations

Le stage que nous avons effectué au sein du CDCC nous a permis de connaitre la place

d’Artémia sp de la classe crustacée dans l’élevage larvaire des crevettes. Tout au long de

l’expérience ; nous sommes liés à la contribution de la valeur des aliments des crevettes pour

avoir une meilleur qualité de produit.

Avant la mis en pratique des résultats de la recherche à grande échelle ; on exige de

nombreux points à approfondir dans le cadre de notre étude :

� Nous encourageons le centre de continuer les recherches sur la production du cystes

d’Artémia.

� Nous recommandons au CDCC/DE de continuer à utiliser les cystes décapsulés parce

que l’emploi du cystes décapsulés élimine non seulement les problèmes de séparation

mais l’application de la technique de décapsulation apporte aussi d’autres avantages :

les cystes sont désinfectés, l’éclosion est améliorée.

� Il est important de diminuer la valeur de la référence en oligo-élément utilisé comme

fertilisant du milieu de culture.

� En fin, nous félicitons le centre d’y être renforcés au courage de l’effort demandé par

rapport à ce résultat.



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CONCLUSION

Bien que dans notre pays; la crevetticulture occupe une place prépondérante dans l’économie

nationale malagasy. Face à la concurrence asiatique et européenne, la filière crevetticole

malagasy doit être compétitive, d’où la nécessité de maitriser le cout de production

parallèlement à la qualité de produits finis qui dépendent aux nutritions et aux traitements.

L’alimentation est un facteur indispensable dans l’élevage larvaire de crevettes. En effet ;

parmi les régimes alimentaires apportés aux larves, une amélioration des apports nutritionnels

est appliquée en valorisant les nourritures vivantes comme Brachionus plicatilis et Artémia

salina. A raison de l’importance des aliments vivants et frais pour les larves de

Macrobrachium sp l’expérimentation sur l’Artémiculture est en cours d’essai au CDCC ;

ainsi que notre but est de produire le cystes d’Artémia à partir de cystes importé de l’Etats

Unis d’Amérique (Utah), qui est emballé dans une boite à Artémia cyste avec un taux

d’éclosion 80%. Face au différent paramètre physico-chimiques ; notre température ambiante

ne dépasse pas du 31°C le long de l’expérience. Parallèle au cela la salinité joue un rôle très

important et nous avons provoqué l’acclimatation pour atteindre une salinité optimale voulue

et pour succomber le besoin en sel de l’Artémia sp, la valeur est de 120‰. En tout cas ; notre

essai accorde le résultat dans le bac d’expérience n°2. Cet essai a confirmé l'importance des

facteurs de milieu, comme la température et la salinité, ainsi que de la productivité naturelle et

de la fertilisation.

Une telle expérience comme celle de la notre pourrait avoir un résultat négatif et résultat

positive. Selon HILEN (sans date) : on peut dire qu’avec quelques précautions et quelques

modifications, on pourrait optimiser l’élevage d’Artémia. Nous tombons à la quasi-réussite de

notre essai ; au début nous avons incubé 1g de cystes alors qu’à la fin nous avons récolté

55,1g de cystes à l’état sec. Nous atteindrons un résultat 50 fois de plus que la semence si

nous procède à la fertilisant du bac n°2. Nous estimons que dans un bassin de1ha nous

pourrons produire 0,5tonnes de cystes à l’état sec en une année.

Pour une bonne application des résultats de recherche, nous recommandons que : Il est

important de continuer à effectuer une décapsulation avant de faire une incubation

Il est nécessaire de diminuer la valeur de la référence en oligo-élément utilisé comme

fertilisant du milieu de culture.

C’est un projet exploitable, quand on parle de la production de cystes d’Artémia sp dans la

Cote Nord-Ouest de Madagascar avec sa potentielle température et celle de la salinité. Malgré



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le manque de quelques matériels du laboratoire à l’écloserie le centre trouve toujours des

solutions pour utiliser des produits locaux et avec soin.

En fait, nous posons comme un créneau : l’Evaluation du taux d’éclosion des produits de

cystes locaux. Celle-ci marque un grand pas avec progrès du centre.



Page 1

BIBLIOGRAPHIE

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Stade % d'échantillon estimé

Nauplius 0

Juvénile 90

Adulte 10



Nauplius 0

Juvénile 40

Adulte 60



Nauplius 0

Juvénile 100

Adulte 0



Nauplius 0

Juvénile 100

Adulte 0


Jour Bac n°1 Bac n°2 Bac n°3 Bac n°4

J1 27,7 27,9 28,1 28,1

J2 25,7 25,6 25,7 25,7

J3 26,4 26,8 26,7 26,8

J4 25,2 25,4 25,4 25,4



Page 4

J5 24,4 24,2 24,5 24,4

J6 24,5 24,5 24,5 24,4

J7 27,2 27,2 27,2 27,2

J8 27 27 27 26,9

J9 27,9 28 28 28

J10 27,5 27,9 27,7 27,6

J11 28,3 27,9 27,9 27,7

J12 27,9 27,7 27,7 27,5

J13 27,4 27,6 27,4 27,8

J14 27,8 27,9 27,9 27,8

J15 27,2 27,2 27,2 27,2

J16 31,5 31,5 31,5 31,5

J17 31,5 31,5 31,5 30,5

J18 29 29 29 28,5

J19 31 31 31 30



J1 27,7 27,9 28,1 28,1

J2 28,3 28,3 28,3 28,1

J3 28,5 28,6 28,6 28,5

J4 27,1 27 27,1 26,9

J5 25,3 25,2 25,2 25,1

J6 24,5 24,5 24,5 24,4

J7 28,5 28,3 28,3 28,2

J8 28,6 28,4 28,5 28,4

J9 29,7 29,6 29,6 29,3

J10 29,8 29,6 29,6 29,1

J11 29,4 29,6 29,6 29,3

J12 27,9 27,7 27,7 27,5

J13 29,5 29,4 29,3 29,3



Page 5

J14 29,9 29,9 29,9 29,7

J15 29,6 29,4 29,5 29,4

J16 31,5 31,5 31,5 31,5

J17 31,5 31,5 31,5 30,5

J18 29 29 29 28,5

J19 31 31 31 30

Annexe 7: Variation journalière de la salinité par bac

Jours Bac n°1 Bac n°2 Bac n°3 Bac n°4

J1 25 25 25 25

J2 28 26 27 28

J3 25 28 28 28

J4 30 29 29 30

J5 28 26 25 26

J6 27 27 27 28

J7 27 27 27 28

J8 28 27 27 28

J9 29 30 30 29

J10 30 30 30 30

J11 31 31 31 31

J12 35 35 35 35

J13 37 38 38 38

J14 40 40 37 38

J15 42 41 43 43

J16 45 45 45 45

J17 43 40 41 44

J18 43 43 43 44

J19 45 45 45 45

J20 47 46 48 49

J21 51 52 54 56

J22 53 52 52 52



Page 6

J23 55 56 55 55

J24 59 59 60 59

J25 58 59 60 59

J26 66 68 67 66

J27 73 76 76 74

J28 75 76 77 74

J29 81 81 82 80

J30 83 85 85 85

J31 87 90 92 88

J32 90 93 95 90

J33 98 100 100 98

J34 100 100 100 98

J35 105 110 105 100

J36 110 120 110 110

Annexe 8: Variation journalière du niveau d’eau par bac


J1 27 27 27 27

J2 26 26 26 26

J3 25,8 25,9 25,6 25,1

J4 25,3 25,5 24,5 24,9

J5 25,7 25,4 24,7 24,7

J6 25,8 25,4 24,5 24,5

J7 25,8 25,6 24,2 24,4

J8 24,6 24,7 23,7 24,3

J9 23,4 23,7 23,7 23,4

J10 23,4 22,8 23,5 23,4

J11 23,4 23,5 22,6 23,3

J12 23,2 22,8 21,9 22,9

J13 22,6 22,5 21,7 22,2



Page 7

J14 22,5 21 22,5 21,5

J15 21,2 21 20 20,9

J16 22 21,6 20,7 21,5

J17 22,6 21,9 20,9 23,1

J18 22,9 22,3 21,3 22

J19 22,8 22,5 21,6 21,8

J20 22,4 22,1 21,5 22,5

J21 22,3 22 21 22

J22 22,1 21,7 20,7 21,7

J23 21,5 21,4 20,4 21,5

J24 21,5 21,1 21,1 21,3

J25 21,2 21 20 21,2

J26 20,1 19,5 19,5 20

J27 20 19,4 19,1 19,9

J28 19,7 19,1 19,1 20,3

J29 20 19,1 19 20

J30 19,6 19 18,3 19,7

J31 19,3 18,6 18,6 19,6

J32 19,1 18 18 19,4

J33 18,9 18 18 19,4

J34 18,2 17,2 17,2 18,5

J35 17,9 17,2 17,1 18,3

J36 17,5 17 17 17,2

Annexe 9: Calendrier d’intervention sur les activités durant l’expérience

Date

Activités Méthode/Observation

10/02/12 -Préparation des matériels utilisés

-Préparation du milieu de culture en ajoutant de

fertilisant initial -Fertilisant principal

-Nettoyer les bacs -Charger les bacs avec

l’eau de mer filtrée à 200 litre/bac

-Brancher l’aérateur -Ajouter l’urée et la

solution de fer



Page 8

16/02/12

Incubation des cystes d’Artémia

1g de cyste dans 2litres d’eau de mer

17/02/12 Inoculation des nauplii 10000 nauplii par bac Dilution 1ml d’Artémia concentré dans 100ml

d’eau 22/02/12

Acclimatation 500g du sel par bac

23/02/12


24/02/12

Fertilisant d’entretien Ajouter urée et solution de fer

27/02/12


01/03/12


02/03/12

Acclimatation Echantillonnage

500g du sel par bac Détermination des stades

03/03/12


07/0312

Acclimatation 1kg du sel par bac

09/0312

Acclimatation échantillonnage

Ajout du sel 1kg/bac Détermination des stades

12/03/12

acclimatation Ajout du sel 1kg/bac

14/03/12


19/03/12


22/03/12

échantillonnage Détermination des stades

23/03/12

Fertilisant d’entretien Urée+solution du fer

27/03/12 récolte Cyste/artémia adulte porteuse d’œuf

30/03/12

Pesage du cyste sec Balance avec plateau



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Annexe 10 : Les matériels utilisés

Une balance de précision

Tamis au cystes d’Artémia

Deux béchers avec une loupe

monoculaire

Un thermomètre à mercure

Un seau 12L et un aérateur branché

avec

Une règle graduée



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Une balance taré et du cystes frais

avec

Un refractomètre manuel

Solution de fer dans un Erlen Meyer

Eprouvette graduée

Cystes d’Artémia dans une boite

Boite de pétrie contenu des cystes

récolté avec un compteur manuel



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Des tuyau avec les sucres d’aérateur

Filtre à cartouche 0.65µm

Bacs noir polycarbonate

Urée



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université de mahajanga faculte des sciences l’exc llence

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