využití separačních technik při monitorování toxických látek

22
Využití separačních technik při monitorování toxických látek Ing. Pavla Vlasáková Průmyslová toxikologie a ekotoxikologie 2006 Kouty nad Desnou

Upload: ganesa

Post on 11-Jan-2016

30 views

Category:

Documents


1 download

DESCRIPTION

Využití separačních technik při monitorování toxických látek. Ing. Pavla Vlasáková. Průmyslová toxikologie a ekotoxikologie 2006 Kouty nad Desnou. Separační techniky Charakteristika vysoká selektivita široké použití různý způsob detekce Prezentované metody - PowerPoint PPT Presentation

TRANSCRIPT

Page 1: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Využití separačních technik při

monitorování toxických látek

Ing. Pavla Vlasáková

Průmyslová toxikologie a ekotoxikologie 2006

Kouty nad Desnou

Page 2: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Separační techniky

Charakteristika vysoká selektivita široké použití různý způsob detekce

Prezentované metody kapilární elforéza s vodivostní detekcí kapalinová RP chromatografie s UV detekcí

Page 3: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Toxické látky

Matrice ovzduší chemické produkty odpadní vody

Typy anorganické anionty chlorované organické látky volné aromatické aminy

Page 4: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

I. Stanovení azidů (N3- iontů)

Výroba kyseliny azobarbiturové (ABK)

Vlastnosti azidu: vysoce toxická látka nebezpečí exploze (náraz, zahřívání)

Použité matrice: pracovní ovzduší při výrobě ABKpasty ABK

Použité analytické metody:CE s vodivostní detekcíHPLC s UV detekcí

Page 5: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Ia. Stanovení azidů v pracovním ovzduší

Typy odběrů: Krátkodobý 10min (osobní odběr)

Dlouhodobý > 10 min a < 70% pracovní doby

Celosměnový > 70 % pracovní doby

Hygienické limity: PEL 0,2 mg HN3/m3, NPK 0,4mg HN3/m3

Odběr vzorků: absorpční trubičky (alkalicky impregnovaný silikagel)

Desorpce azidů: směs 0.9 mM-Na2CO3 + 0.9 mM-NaHCO3 60 min, občasné třepání

Page 6: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Záznam vzorku pracovního ovzduší (celosměnový odběr)

Použitá metoda CE s vodivostní detekcí

Podmínky separace

Pufr: 50mM CHES, 20mM LiOH, 0,03% Triton X100

Kapilára: Con Cap, 65 cm/ 50 m

Napětí: -25 kV

Dávka: 25 0.4 mbar.s

Detekce: vodivostní

1 – chloridy

2 – dusičnany

3 – sírany

4 - azidy

Page 7: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Metoda externí kalibraceY = 3,6563x – 0,4431

R2 = 0,9998

Ověření metody

přesnost 6% rel. na konc. hladině 2 mg N3-/l

linearita 0,7 – 13 mg N3-/l

mez detekce 0,3mg N3-/l, 0.0008 mg HN3/ trubičku

mez stanovení 0,5mg N3-/l, 0.0013 mg HN3/ trubičku

účinnost desorpce 95 % (pomocí přídavku NaN3 do trubičky)

účinnost absorpce 90 % (postup předúpravy past ABK)

-5

15

35

55

75

0 5 10 15 20 25mg NaN3/l

Area

Page 8: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Ib. Stanovení azidů v pastách ABK

Předúprava vzorků1. převedení azidů na HN3 okyselením suspenze vzorku 2. záchyt HN3 v absorpční trubičce (bazicky

impregnovaný silikagel)

Desorpce azidů3 ml směsi 0,9 mM-Na2CO3 + 0,9 mM-NaHCO3

Použitá metodaKapalinová chromatografie s UV detekcí

Podmínky separace

Kolona: Nucleosil C18, 125 x 4 mm, 5m, 25 °C

Mobilní fáze: 10 mM-hexylamín, pH=6,2 (H2SO4)

Průtok: 1 ml/min

Detekce: 220 nm

Page 9: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

HPLC záznam vzorku pasty ABK HPLC záznam vzorku pasty ABK + N3

-

Ověření metody

přesnost 5 % rel. na konc. hladině 0,9 mg N3-/l

správnost 110% (výtěžnost na konc. 0,6 mg N3

-/l )

linearita 0,5 - 2 mg N3-/l

mez detekce 0,16 mg N3-/l , resp. 0,3ppm N3

-

iontu/vzorek

mez stanovení 0,57 mg N3-/l , resp. 1 ppm N3

- iontu /vzorek

min0 1 2 3 4 5 6 7 8 9

mAU

0

2.5

5

7.5

10

12.5

15

17.5

DAD1 A, Sig=220,40 Ref=550,100 (D:\CD5\AZID-04\292S1M-2.D)

azidN3

-

min0 1 2 3 4 5 6 7 8 9

mAU

0

2.5

5

7.5

10

12.5

15

17.5

DAD1 A, Sig=220,40 Ref=550,100 (D:\CD5\AZID-04\292S1M-3.D)

Page 10: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

II. Stanovení CrVI

Stanovení ve formě CrO42- iontu

Matricešroubky

Použitá analytická metodaCE s vodivostní detekcí

Podmínky separacePufr: 50mM CHES, 20mM LiOH, 0,03% Triton X-100

Kapilára: Con Cap, 65 cm/ 50 m

Napětí: -25 kV

Dávka: 25 0.4 mbar.s

Detekce: vodivostní

Page 11: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

1

CE záznam vzorku výluhu šroubků CE záznam vody použité k výluhu

Ověření metody – externí kalibrace

přesnost 5 % rel. na konc. hladině 0,9 mg Cr/l

mez detekce 0,2 mg CrVI/l

[min.]Time

4,5 5,0 5,5 6,0 6,5

[mV]

Voltag

e

600

620

640

660

680C:\Clarity\AKP 521-8\Data\Panasonic - Cr\170106\P0-1

1- chromany

[min.]Time

4,0 4,5 5,0 5,5 6,0 6,5

[mV]

Voltag

e

600

650

700

C:\Clarity\AKP 521-8\Data\Panasonic - Cr\170106\P1-1

1

Page 12: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

III. Stanovení chlorftalových kyselinVýroba kypových barviv

KF tvoří chlorační prostředí

Kontaminace odpadních vod, popř. vlastního produktu vznik mono, dichlorftalových kyselin (AOX)

Použitá metodaHPLC s UV detekcí

Podmínky separaceKolona: Lichrospher RP18, 5 µm, 250 x 4 mm, 30 °C

Mobilní fáze: vodný MeOH s H3PO4 - gradientPrůtok: 1 ml/ minDetekce: 215 nm

Page 13: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Identifikované látkykyselina ftalová RT 7,0 min 1

kyselina 3-chlorftalová RT 8,7 min 2

ftalanhydrid RT ~ 10,4 min 3

kyselina 4-chlorftalová RT 11,4 min 4

Kyselina benzoová RT ~ 12,4 min 5

kyselina 4,5-dichlorftalová RT 14,7 min -

Ukázka separace chlorovaných derivátů kyseliny ftalové

min0 2 4 6 8 10 12 14 16 18

mAU

0

10

20

30

40

DAD1 A, Sig=215,40 Ref=550,100 (OMRAN\5013N1-1.D)

min0 2 4 6 8 10 12 14 16 18

mAU

0

10

20

30

40

DAD1 A, Sig=215,40 Ref=550,100 (OMRAN\5009N1-1.D)

1

5

3 4 4 5 3 2

Page 14: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

IV. Stanovení aromatických aminů

Volné aromatické aminySada 22 sledovaných primárních aromatických

aminů benzidin 2-naftylamin

p-chloranilin 2-metylanilino-anisidin 4-chloro-2-metylanilin

p-kresidin 3,3´- dichlorbenzidin

AplikaceBarvářské polotovaryPigmenty (polotovary, finální produkty)

Metoda stanoveníobvykle GC / MS

Page 15: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Stanovení p-chloranilinu v PAFSES

Limitní koncentrace25 ppm p-ClAn

Použitá metodaHPLC s UV detekcí

Podmínky separace

Kolona: Lichrospher RP18, 5 µm, 250 x 4 mm, 40 °C

Mobilní fáze: 50% MeOH

Průtok: 1 ml/ min

Detekce: 240 nm

A) Iva.IVa. Barvářské polotovary

Page 16: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

min0 2 4 6 8 10

mAU

0

10

20

30

40

DAD1 A, Sig=240,40 Ref=off (PCLAN-1\4998N2-B.D)

HPLC záznam vzorku PAFSES Metoda externí kalibrace

Ověření metody

přesnost 5 % rel. na konc. hladině 500 ppm p-ClAn

linearita 1,2 – 12 mg pClAn/l

mez detekce 11 ppm p-ClAn

mez stanovení 38 ppm p-ClAn

Amount[mg/50ml] 0

Height

0

2

4

6

8

10

12

1 2

3

4 R2=0,99993

y = 20,284x + 0,08

p-ClAn

Page 17: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

IVb. Pigmenty - polotovaryStanovení o-anisidinu v acetoacet-o-anisididu

(AAoA)

AAoA - pasivní komponenta při výrobě pigmentů

Nelze použít metodu GC/MS (rozklad AAoA při nástřiku)

Použitá metoda: HPLC s UV detekcí

Rozpouštění vzorků: výběr rozpouštědla za účelem zvýšení stability roztoku vzorku

Podmínky separaceKolona: Agilent Extended C18,

250x4 mm, 5m, 40°C Mobilní fáze: 20% MeOH + 80% 25mM-citronanu sodného Průtok: 1,5 ml/min

Detekce: 230 nm

Page 18: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

y = 168,14x + 0,21 R2=0,99979

HPLC záznam vzorku AAoA Metoda externí kalibrace

Ověření metody

přesnost 5 % rel. na konc. hladině 500 ppm o-anisidinu

linearita 4 – 14 mg o-anisidinu/l

mez detekce 130 ppm o-anisidinu/ vzorek

mez stanovení 380 ppm o-anisidinu/ vzorek

min0 5 10 15 20 25 30

mAU

-2

0

2

4

6

8

DAD1 B, Sig=230,20 Ref=off (Z:\VLASKO~1\HP1050~3\CD5\ANIS\0510N2-1.D)

6.79

4

Amount[mg/50ml] 0

Area

0 20 40 60 80

100

1

2

3 Rel. Res%(1): -1.577

o-anisidin

Page 19: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Stanovení o-anisidinu v pigmentu P.Y. 74

Obvyklá metoda stanoveníGC-MS po extrakci aminů do kyselého prostředí a poté

do nepolárního rozpouštědla

Problémy- rozklad pasivní komponenty za vzniku volných

arom. aminů - povrchová extrakce

Použitá metoda HPLC-UV

Odstranění problémů- zamezení rozkladu pasivní komponenty

- převedení pigmentu do roztoku

A) IVc. Pigmenty – finální produkty

Page 20: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Příprava roztoku vzorku1. rozpuštění pigmentu ve směsi DMF a NaOH2. přídavek dest. vody (vysrážení pigmentu)

3. odstranění pigmentu filtrací4. naředění do MeOH

Podmínky separaceKolona: Zorbax Extended C18, 5 µm, 250x4 mm,

30 °CMobilní fáze: 40% MeOH + 60% 25mM-citronanu

NaPrůtok: 1 ml/ minDetekce: 254 nm

Page 21: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

HPLC záznam vzorku pigmentu P.Y. 74 Kalibrační přímka o-anisidinu

Ověření metody přesnost 10% rel. na konc. hladině 0,1% hm. o-

anisidinu

linearita 3 – 16 mg o-anisidinu/l

mez detekce 180 ppm o-anisidinu/ vzorek

mez stanovení 540 ppm o-anisidinu/ vzorek

0.0 2.5 5.0 7.5 10.0 min -0.005

-0.003

0.000

0.003

0.005

0.007

0.010

0.013 mAU (x1,000)

254nm,4nm (1.00)

o-anisidin

AAoA

y = 176543x + 72.696

R2 = 1

0

20000

40000

60000

80000

0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5

mg/25ml

A

Page 22: Využití separačních technik při  monitorování toxických látek

Výzkumný ústav organických syntéz a.s.Rybitví 296, 532 18 Pardubice 20, ČR

Závěry

Separační metody jsou vhodným nástrojem v oblasti ekoanalýz

Vhodná příprava vzorku k analýze