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Catherine Roche-LestienneClaude Preudhomme
Recherche de mutations: pourquoi, comment, pour qui,
quand, par qui?
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Pourquoi?Elles peuvent être un des mécanismes de la résistance au traitement par Glivec®
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15
5WT
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M24
4V
G25
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Y25
3F/H
E25
5K/V
F311
L
T31
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F317
L
M35
1T
E35
5GF3
59V
V37
9IL
387M
H39
6P/R
BiochimiqueCellulaire
Boucle P Fixation IM Boucle A
Leurs effets varient selon leur nature et leur localisation
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Suivi
2 mois
6 mois
11 mois
13 mois
Certaines peuvent être sélectionnées sous traitement
Barthe C et coll., Br J Haematol. 2002
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L’émergence des mutations est corrélée avec la phase de la maladie
S Branford et coll (ASH 2005):probabilité de détection de mutations sous IM:
26% si traitement en seconde intention7% si traitement en première intention
M Deininger et coll. (ASH 2004):corrélation entre la détection des mutations et la phase de la maladie p=0,0008
Marqueur de progressionNotion de risque
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Soverini S et coll;, J Clin Oncol. 2005
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Certaines mutations semblent être associées à un moins bon pronostique
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Soverini S et coll., J Clin Oncol. 2005
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étude multicentrique Fi-LMC 89 patients résistants et mutés:
T315I n=8
P-loopn=11
Autres n=37
OS, p=0.050
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0 10 20 30 40
T315I n=6
P-loop n=9
Autres n=28
PFS, p=0.0227
0 10 20 30 40
Mois depuis la détection des mutations
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Comment?Techniques Sensibilité Spécificité Biais Accessibilité
PCR + Séquence directe
25% ++ non +++
Séquence après clonage
10% +++ non ++
DG-DGGE 5% ++ non ++
D-HPLC 10% ++ non ++
PCR+PNA
« clamping »
0.2% ++ oui +
ASO-PCR 0.01% +++ oui +
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Quand, pour qui ?Critères de résistance à l’IM (STIC)
Patients réfractaires
Patients qui échappent au traitement
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Peut-on définir des facteurs de risques de développer des mutations?
Brandford S et coll., ASH. 2005:
Etude retrospective sur 222 patients en phase chronique de la LMC
Surveillance de l’émergence de mutations indépendamment de la réponse au Glivec®
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• Haut risque (70%): Blastose > 2%; diagnostique > 2 ans avant J1 IM
recherche de mutations tous les 3 mois après J1 IM
• Risque intérmédiaire (22%):Blastose ≤ 2%; diagnostique > 2 ans avant J1 IM
• Faible risque (5,6%): Blastose ≤ 2%; diagnostique < 2 ans avant J1 IM
recherche de mutations tous les 3 mois après J1 IMsi absence de réponse cytogénétique majeure
si augmentation en RQ-PCR
NB: Intensification de la recherche de mutations dans la population à haut risque?
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Doit-on détecter de manière précoce les mutations?
Willis S et coll., Blood 2005:
66 patients traités par Glivec®Recherche de mutations par ASO-PCR et séquençage
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La détection précoce des mutations est corrélée avec la réponse cytogénétique
T315I Q252H
Q252H+
F359V
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La détection précoce des mutation n’est pas corrélée avec:
-la réponse au Glivec®- la survie globale -la survie sans progression
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STIC 2005Technique de biologie moléculaire permettant d’évaluer la sensibilitéaux inhibiteurs de tyrosine kinaseCible : - mutations BCR-ABL (LMC+LAL)
- CKit (CBF et mastocytoses)- PDGFRα (HES)- PDGFRβ (aCML)- NUP-ABL (LAL T)
BCR-ABL- Permettre que tout patient nécessitant une recherche de mutation puisse l’avoir- Comparer différentes approches méthodologiques avec Gold-Standart : séquençage direct BCR-ABL- Recueillir l’évolution des patients
* déclaration base registre FI LMC* suivi (fiche) : ARC à 2/3 temps
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Qui étudier ?
Critères de résistance à imatinib (STIC)
Résistance Primaire:Absence de rémission hématologique à 3 mois de TT
Absence de réponse cytogénétique à 6 mois de TTAbsence de réponse cytogénétique complète à 12 mois de TT
Ratio normalisé BCR-ABL/ABL≥1% au moins 12 mois après traitement par ITK
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Résistance secondaire:
Perte de la rémission hématologiqueProgression de la LMC (phase accélérée, crise blastique)
Perte de la réponse cytogénétique complèteAugmentation du % de mitoses Ph+Apparition d’anomalie(s) clonales additionnelles dans des mitoses Ph+
Augmentation du taux de transcrit BCR-ABL≥0.5 log confirmée sur 2 examens successifs à moins d’1 mois d’intervalle
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Par qui ?• LILLE (NO)
• ST LOUIS/CRETEIL (AP-HP)
• POITIERS (GO)
• BORDEAUX (SO)
• LYON (SE)
• NIMES (PACA)
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Sept.98 Sept.99 Sept.00 Sept.01 Sept.02 Sept.03 Sept.04 Sept.05
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05/07/04 : Y253H
25/11/04 : mutation non retrouvée
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Patient C.A.
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Août 04 Mai 05 Nov. 05
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Nov. 04 Fév. 05 Août 05
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09/08/04 : pas de mutation détectée
18/04/05 : pas de mutation détectée
06/09/05 : F317L
25/11/05 : pas de mutation détectée
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INF
23/08/02 : T315I1/12/04 : T315I + Y253H
12/10/05 :
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uniquement
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M7M0 Control315IWT
B: RT-PCR and RFLPC C C CT T T T
ControlM0 M7Mi
A: ASO PCR
Patient C.J.L.
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20/01/05 : L324Q
14 et 15/10/03: pas de mutation détectée
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CONCLUSIONRecherche mutation : étape importante dans bilan résistant
MAISAutres causes : - cytogénétique
- pharmaco-cinétique- efflux…
• Nécessité langage commun : critère de résistance et techniques
• Ce qui est clair : T315I ne répond pas aux nouveaux inhibiteurs
Tous les autres patients mutés ne répondent pas obligatoirement en particulier sur le plan cytogénétique et moléculaire
• Nécessité d’une prise en charge multidisciplinaire
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Remerciements
♦ Laboratoire d’hématologie et moléculaireCHRU
♦ Service clinique NPC♦ Service cytogénétique NPC♦ Groupe Phi LMC♦ Participants protocole SPIRIT