1Germinación en semillas de Zea mayz y Phaseolus vulgaris bajo efectos de presión osmótica.

Universidad De Ciencias Y Artes

De Chiapas

Facultad de Ciencias Biológicas

MORFOFISIOLOGÍA VEGETAL I

Presenta:

“Germinación en semillas de Zea Mayz y Vicia faba bajo efectos de presión osmótica.”

Por:

Ángeles Fragoso

Cristian

SÉPTIMO SEMESTRE

Grupo “B”

Tuxtla Gutiérrez, Chiapas a octubre 25 del 2010.

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Índice.

Marco teórico.

Planteamiento del problema.

Justificación.

Antecedentes.

Hipótesis.

Objetivos de la investigación.

Generales.

Específicos.

Metodología.

Área de estudio.

Características de la especie.

Materiales y métodos.

Cronograma de actividades.

Fuentes de información

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Marco Teórico.

Las semillas proceden de los primordios o rudimentos seminales de la flor, una vez

fecundados y maduros. Su función es la de dar lugar a un nuevo individuo, perpetuando y

multiplicando la especies a la que pertenece. La semilla consta esencialmente de un

embrión (formado por un eje embrionario y uno, dos o varios cotiledones), una provisión de

reservas nutritivas, que pueden almacenarse en un tejido especializado (albumen o

endospermo) o en el propio embrión, y una cubierta seminal que recubre y protege a ambos.

Las semillas son la unidad de reproducción sexual de las plantas y tienen la función de

multiplicar y perpetuar la especie a la que pertenecen. Además, es uno de los elementos

más eficaces para que la especie se disperse, tanto en el tiempo como en el espacio

(Eichhorn, et al, 1992).

Para que el proceso de germinación, es decir, la recuperación de la actividad

biológica por parte de la semilla, tenga lugar, es necesario que se den una serie de

condiciones ambientales favorables como son: un sustrato húmedo, suficiente disponibilidad

de oxígeno que permita la respiración aerobia y, una temperatura adecuada para los

distintos procesos metabólicos y para el desarrollo de la plántula (García, et al, 2003;

Eichhorn, et al, 1992). La absorción de agua por la semilla desencadena una secuencia de

cambios metabólicos, que incluyen la respiración, la síntesis proteica y la movilización de

reservas. A su vez la división y el alargamiento celular en el embrión provocan la rotura de

las cubiertas seminales, que generalmente se produce por la emergencia de la radícula. Sin

embargo, las semillas de muchas especies son incapaces de germinar, incluso cuando se

encuentran en condiciones favorables. Esto es debido a que las semillas se encuentran en

estado de latencia (García, et al, 2003).

Por ello, mientras no se den las condiciones adecuadas para la germinación, la

semilla se mantendrá latente durante un tiempo variable, dependiendo de la especie, hasta

que llegado un momento, pierda su capacidad de germinar. Cuando una semilla germina, la

primera estructura que emerge, de la mayoría de las especies, después de la rehidratación

de los diferentes tejidos es la radícula (Fuentes, 2001; García, et al, 2003).

En aquellas semillas, en las que la radícula no es el primer acontecimiento

morfológico, se consideran otros criterios para definir la germinación como: la emergencia

del coleoptilo en granos de cereales; la obtención de plantas normales; o el aumento de la

actividad enzimática, tras la rehidratación de los tejidos (García, et al, 2003).

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En el proceso de germinación podemos distinguir tres fases:

Fase de hidratación: La absorción de agua es el primer paso de la germinación, sin

el cual el proceso no puede darse. Durante esta fase  se produce una intensa

absorción de agua por parte de los distintos tejidos que forman la semilla. Dicho

incremento va acompañado de un aumento proporcional en la actividad respiratoria.

Fase de germinación : Representa el verdadero proceso de la germinación. En ella se

producen las transformaciones metabólicas, necesarias para el correcto desarrollo

de la plántula. En esta fase la absorción de agua se reduce considerablemente,

llegando incluso a detenerse.

Fase de crecimiento : Es la última fase de la germinación y se asocia con la

emergencia de la radícula (cambio morfológico visible). Esta fase se caracteriza

porque la absorción de agua vuelve a aumentar, así como la actividad respiratoria.  

La duración de cada una de estas fases depende de ciertas propiedades de las semillas, como su contenido en compuestos hidratables y la permeabilidad de las cubiertas al agua y al oxígeno. Estas fases también están afectadas por las condiciones del medio, como el nivel de humedad, las características y composición del sustrato, la temperatura, etc. Otro aspecto interesante es la relación de estas fases con el metabolismo de la semilla.  La primera fase se produce tanto en semillas vivas y muertas y, por tanto, es independiente de la actividad metabólica de la semilla. Sin embargo, en las semillas viables, su metabolismo se activa por la hidratación. La segunda fase constituye un período de metabolismo activo previo a la germinación en las semillas viables o de inicio en las semillas muertas. La tercera fase se produce sólo en las semillas que germinan y obviamente se asocia a una fuerte actividad metabólica que comprende el inicio del crecimiento de la plántula y la movilización de las reservas. Por tanto los factores externos que activan el metabolismo, como la temperatura, tienen un efecto estimulante en la última fase (Fuentes, 2001; García, et al, 2003).

En las dos primeras fases de la germinación los procesos son reversibles, a partir de

la fase de crecimiento se entra en una situación fisiológica irreversible. La semilla que haya

superado la fase de germinación tendrá que pasar a la fase de crecimiento y originar una

plántula, o por el contrario morir.

Los factores que afectan a la germinación los podemos dividir en dos tipos:

Factores interno s (intrínsecos): propios de la semilla; madurez y viabilidad de las

semillas.

Factores externos (extrínsecos): dependen del ambiente; agua, temperatura y gases.

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Decimos que una semilla es madura cuando ha alcanzado su completo desarrollo

tanto desde el punto de vista morfológico como fisiológico. La madurez morfológica se

consigue cuando las distintas estructuras de la semilla han completado su desarrollo,

dándose por finalizada cuando el embrión ha alcanzado su máximo desarrollo. También, se

la relaciona con la deshidratación de los diferentes tejidos que forman la semilla.

La madurez se suele alcanzar sobre la misma planta, sin embargo, existen algunas

especies que diseminan sus semillas antes de que se alcance. Aunque la semilla sea

morfológicamente madura, muchas de ellas pueden seguir siendo incapaces de germinar

porque necesitan experimentar aún una serie de transformaciones fisiológicas. Lo normal es

que requieran la pérdida de sustancias inhibidoras de la germinación o la acumulación de

sustancias promotoras. En general,  necesitan reajustes en el equilibrio hormonal de la

semilla y/o en la sensibilidad de sus tejidos para las distintas sustancias activas. La madurez

fisiológica se alcanza al mismo tiempo que la morfológica, como en la mayoría de las

especies cultivadas; o bien puede haber una diferencia  de semanas, meses y hasta años

entre ambas (Eichhorn, et al, 1992).

La viabilidad de las semillas es el período de tiempo durante el cual las semillas

conservan su capacidad para germinar. Es un período variable y depende del tipo de semilla

y de las condiciones de almacenamiento. Atendiendo a la longevidad de las semillas, es

decir, el tiempo que las semillas permanecen viables, pueden haber semillas que germinan,

todavía, después de decenas o centenas de años; se da en semillas con una cubierta

seminal dura como las leguminosas (Fuentes, 2001).

Entre los factores ambientales más importantes que inciden en el proceso de

germinación destacamos: humedad, temperatura y gases.

Humedad . La absorción de agua es el primer paso, y el más importante, que tiene

lugar durante la germinación; porque para que la semilla recupere su metabolismo es

necesaria la rehidratación de sus tejidos.

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La entrada de agua en el interior de la semilla se debe exclusivamente a una diferencia

de potencial hídrico entre la semilla y el medio que le rodea. En condiciones normales, este

potencial hídrico es menor en las semillas secas que en el medio exterior. Por ello, hasta

que emerge la radícula, el agua llega al embrión a través de las paredes celulares de la

cubierta seminal; siempre a favor de un gradiente de potencial hídrico.

Aunque es necesaria el agua para la rehidratación de las semillas, un exceso de la

misma actuaría desfavorablemente para la germinación, pues dificultaría la llegada de

oxígeno al embrión (García, et al, 2003).

Temperatura . La temperatura es un factor decisivo en el proceso de la germinación,

ya que influye sobre las enzimas que regulan la velocidad de las reacciones

bioquímicas que ocurren en la semilla después de la rehidratación.

La actividad de cada enzima tiene lugar entre un máximo y un mínimo de temperatura,

existiendo un óptimo intermedio. Del mismo modo, en el proceso de germinación pueden

establecerse unos límites similares. Por ello, las semillas sólo germinan dentro de un cierto

margen de temperatura. Si la temperatura es muy alta o muy baja, la geminación no tiene

lugar aunque las demás condiciones sean favorables. La temperatura mínima sería aquella

por debajo de la cual la germinación no se produce, y la máxima aquella por encima de la

cual se anula igualmente el proceso. La temperatura óptima, intermedia entre ambas, puede

definirse como la más adecuada para conseguir el mayor porcentaje de germinación en el

menor tiempo posible. Las temperaturas compatibles con la germinación varían mucho de

unas especies a otras (Fuentes, 2001).

Sus límites suelen ser muy estrechos en semillas de especies adaptadas a hábitats muy

concretos, y más amplios en semillas de especies de amplia distribución. Por otra parte, se

sabe que la alternancia de las temperaturas entre el día-noche actúan positivamente sobre

las etapas de la germinación. Por lo que el óptimo térmico de la fase de germinación y el de

la fase de crecimiento no tienen por que coincidir. Así, unas temperaturas estimularían la

fase de germinación y otras la fase de crecimiento (García, et al, 2003).

Gases . La mayor parte de las semillas requieren para su germinación un medio

suficientemente aireado que permita una adecuada disponibilidad de O2 y CO2. De

esta forma el embrión obtiene la energía imprescindible para mantener sus

actividades metabólicas.

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La mayoría de las semillas germinan bien en atmósfera normal con 21% de O2 y un

0.03% de CO2. Sin embargo, existen algunas semillas que aumentan su porcentaje de

germinación al disminuir el contenido de O2 por debajo del 20%. Para que la germinación

tenga éxito, el O2 disuelto en el agua de imbibición debe poder llegar hasta el embrión. A

veces, algunos elementos presentes en la cubierta seminal como compuestos fenólicos,

capas de mucílago, macroesclereidas, etc. pueden obstaculizar la germinación de la semilla

por que reducen la difusión del O2 desde el exterior hacia el embrión (Fuentes, 2001).

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Planteamiento del problema.

En la germinación de semillas bajo presión osmótica se usan solutos como el

cloruro de sodio, sacarosa o azúcar, manitol y polietilen glicol (Espinosa & Solano,

1992). Los genotipos que sus semillas logran un mayor porcentaje de germinación

bajo estas condiciones se consideran tolerantes. En el estado de Chiapas no se

dispone de equipo para medir el potencial osmótico de las soluciones, por lo que se

debe trabajar en término de sus concentraciones (%).

Es así como se pretende estudiar la velocidad de germinación y el vigor de la

plántula respecto a los efectos correspondientes al someterse a distintas soluciones

y concentraciones de manitol, cloruro de sodio y sacarosa, cuya investigación aporte

información útil para la germinación de semillas en distintos sustratos con

condiciones adversas (alta o baja mineralización) y así mismo la producción de las

mismas bajo cualidades tolerantes a ciertos factores que afecten el proceso natural

de la geminación de la semilla. Tomaremos en cuenta que el vigor es una

característica genética de la planta expresada a nivel de semilla, que es afectada por

factores exógenos como la nutrición de la planta madre, daños mecánicos

ocasionados durante la cosecha, el procesamiento y el almacenamiento (McDonald

1998).

Justificación.

Entre las variables ambientales que afectan el crecimiento y el desarrollo de

las plantas, la deficiencia de agua o tensión hídrica es una de las más importantes,

ya que en alguna parte de su ciclo están expuestas a desecación.

El objetivo del presente trabajo es evaluar la influencia de diferentes potenciales

osmóticos sobre la germinación de semillas y vigor de plántulas en semillas de Vicia

faba y Zea mays. Tomando interés particular de estas especies por su potencial uso

alimenticio y nutricional en la población.

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Antecedentes.

A nivel de semilla, una de las mejores pruebas para identificar variedades

tolerantes a sequía es determinar el porcentaje de germinación a diferentes

potenciales osmóticos con manitol, ya que esta sustancia química, al igual que otras,

como sacarosa y polietilen-glicol, han mostrado simular satisfactoriamente un efecto

de sequía durante la germinación y emergencia de la semilla (Wiggins y Gardner,

1959; Jackson, 1962; Parmar y Moore, 1968; Espinoza y Kuruvadi, 1985). También

se ha demostrado que existe una correlación alta y positiva entre la tasa de

germinación en soluciones osmóticas y la tasa de emergencia en el campo,

indicando que estas pruebas tienen valor predictivo (Kuruvadi, 1988). Al respecto, de

acuerdo con Blum (1979), existe una estrecha asociación entre la fase de sequía y

un mecanismo dado de resistencia a sequía, puesto que una prueba de respuesta a

sequía estuvo relacionada en realidad a un evento de sequía. Por ejemplo, la

emergencia de la semilla en una solución de manitol puede revelar tolerancia al

estrés osmótico en semillas y plántulas; aún así una correlación con el rendimiento

podría ser una coincidencia, a menos que se coloque éste como factor en ensayos

de rendimiento.

Existen tratamiento de pregerminación que aumentan la velocidad de

germinación y también pueden inducir aumento en tolerancia a salinidad

(Mauromicale, 1996) (Cayuela, 1995). Estos tratamientos consisten en preincubar

las semillas en soluciones de sustancias que disminuyen el potencial agua de la

solución de preincubación (osmopriming). Las sustancias más comúnmente usadas

son el polietilenglicol, manitol, fosfato tripotásico y cloruro de sodio (Dhillon, 1995),

(Bolarin, 1996), (Bliss, 1986), (Haridi, 1985). Se ha demostrado la disminución

paulatina del potencial fisiológico de las semillas de maíz (Zea mays L.), ocasionada

por el envejecimiento natural, y misma que merma progresivamente la capacidad

germinativa, la velocidad de crecimiento inicial de la plántula y la tolerancia a

condiciones adversas (Marcos-Filho & McDonald 1998; McDonald 1999). Tales

efectos están asociados con alteraciones bioquímicas evidenciadas durante las

primeras horas de imbibición de los tejidos seminales (Cruz et al. 1995), y se

expresan primero como reducciones en el desempeño germinativo y en el vigor de

las semillas y, posteriormente, al nivel del ADN (Marcos-Filho & McDonald 1998).

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Hipótesis.

Consideramos que en la realización del proyecto, al manejar un 100 % de

semillas viables (tras análisis e inspección de semillas sin daños mecánicos

mediante tinción de “verde rápido”), los resultados obtenidos demostrarán que todas

las semillas tendrán éxito de germinación. Entonces, trabajando a temperatura

ambiente (media anual) de 24,5 °C, los resultados estarán dados fundamentalmente

por factores controlados por la concentración del soluto (manitol, sacarosa, cloruro

de sodio y agua destilada) en nuestras muestras, de las cuales:

El grupo de semillas testigo obtendrá un 100 % de éxito en la germinación

con agua destilada a tiempos relativos (respecto a las semillas bajo efectos

de concentraciones osmóticas inducidas en “muestras prueba”).

El grupo de las semillas tratadas bajo las distintas concentraciones de manitol

obtendrá mayor éxito germinativo entre más baja sea su concentración en la

solución, y viceversa.

El grupo de las semillas expuestas a solución salina (NaCl) en sus distintas

concentraciones tendrá siempre un potencial de germinación muy bajo o nulo

debido, hipotéticamente, a la inducción del 100 % del potencial osmótico en

las semillas.

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Objetivo de la Investigación.

General

Observar la velocidad y porcentaje de germinación en semillas de Zea mays

(Poaceae) y Vicia faba (Fabaceae) bajo efectos de presión osmótica en soluciones

de sacarosa, cloruro de sodio y manitol.

Particular

Cuantificar el efecto de diferentes soluciones osmóticas sobre la germinación de

semillas (Vicia faba; Zea mays) así como el vigor en las plántulas.

Metodología.

Área de estudio.

El municipio de Tuxtla

Gutiérrez está ubicado en la

Depresión Central de Chiapas, que

está compuesta por el Valle de

Tuxtla (Fig. 1), localizado casi en su

extremo noroeste, y zonas de

relieve montañoso tanto al sur

como al norte del municipio. La

altitud del valle oscila entre 520 y

600 metros sobre el nivel del mar;

en éste se encuentra gran parte de

la ciudad de Tuxtla Gutiérrez. Los

extremos del municipio se ubican

en las coordenadas 16°38' y 16°51'

de latitud norte; y en las

coordenadas 93°02' y 94°15' de

longitud oeste (INEGI, 2010).

Fig. 1. Fotografía Vía satélite de Tuxtla Gutiérrez y alrededores. Cortesía. Google Earth, 2010.

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Los climas existentes en el municipio son: A(w0), cálido subhúmedo con lluvias en el

verano, de menor humedad, que abarca el 99,71% de la superficie municipal; y A(w1), cálido

subhúmedo con lluvias en el verano, de mediana humedad, que abarca el 0,29% de la

superficie municipal. La temperatura media anual es de 25,4 °C. La temporada cálida dura

desde mediados de febrero hasta septiembre. El período más caluroso del año es desde

abril hasta la segunda semana de mayo. La temporada fresca dura desde mediados de

noviembre hasta inicios de febrero. El período más frío del año es el mes de diciembre

cuando la temperatura puede llegar a descender hasta 12 °C (SMN, 2010).

Característica de la especie.

Vicia faba, el haba, es una planta trepadora

herbácea, anual, de tallos semi-erectos que se enredan;

es cultivada en todo el globo por sus semillas, las cuales

son empleadas en gastronomía. Da su nombre a la familia

de las fabáceas, de la cual es la especie tipo. El peso de

una semilla es de uno a dos gramos. El poder germinativo

dura de 4 a 6 años.

En la semilla comercial el porcentaje mínimo de germinación es del 90 por

100 y la pureza mínima del 99 por 100; prefiere un pH entre 6 y 7,5. Requiere

bastante humedad y no es particularmente fotófila, y al ser tolerante a las heladas en

su desarrollo temprano se adapta a las condiciones de las zonas de montaña. La

temperatura óptima está en torno a los 15°C.

Zea mayz, recibe también en español otros

nombres, como danza, millo, mijo, oroña, o panizo en

español europeo, y en español americano choclo, elote,

jojoto, sara o zara; es una planta monoica. El maíz es una

planta de noches largas y florece con un cierto número de

días grados > 10 °C (50 °F) en el ambiente al cual se

adaptó. Esa magnitud de la influencia de las noches

largas hace que el número de días que deben pasar antes

que florezca está genéticamente prescripto y regulado por

el sistema-fitocromo.

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Materiales y métodos.

Cantidad Artículo Cantidad Artículo

Material Soluciones / reactivos

1 Vaso de precipitados 250 mL 10 L Agua destilada

2 Vaso de precipitados 500 mL 0,25 g Verde rápido (1 %)

2 Agitador de cristal 1 L Manitol (5, 10, 15 %)

1 Probeta graduada 500 mL 1 L Sacarosa (5, 10, 15 %)

1 Espátula de porcelana 1 L NaCl (5, 10, 15 %)

1 Pipeta Pasteur con bulbo Equipo

1 Matraz aforado 250 mL 1 Estereoscopio

3 Matraz aforado 500 mL 1 Balanza analítica

Para el proceso de experimentación en la germinación de semillas bajo los

efectos de presión osmótica, utilizaremos como ejemplares de prueba semillas de

Vicia faba (Magnoliópsida) y Zea mayz (Liliópsida); Se tratarán 500 semillas por

cada especie, las cuales se dispondrán bajo los efectos osmóticos de soluciones

que contendrán Manitol, sacarosa y cloruro de sodio a concentraciones de 5, 10 y 15

% respectivamente, las cuales serán comparadas con semillas germinadas con agua

destilada (sin efecto de reactivos). Se dispondrán 50 semillas para cada solución en

su concentración correspondiente, así mismo 50 semillas germinadas con agua

destilada (muestra testigo).

Antes de la germinación procederemos a la selección de semillas viables

mediante la prueba de Fast green (Verde rápido). La Prueba de Fast Green es una

prueba rápida usada para revelar daños al pericarpio en semillas y granos. La

prueba se utiliza primariamente para identificar fuentes de daño mecánico durante el

acondicionamiento. El Fast green usado en bajas concentraciones no es tóxico para

embriones y pequeñas plántulas. Por lo tanto las semillas teñidas pueden germinar y

producir plántulas normales y/o anormales (de semillas ya seleccionadas con o sin

daños) y se puede observar la naturaleza del daño.

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Para la tinción de Fast green (Verde rápido).

1. Se prepara una solución de fast green a 0.1 %, para ello se pesa 0.1 gramo

del soluto (colorante) y se la disuelve en 100 ml de agua, o 1 gr en 1000 ml.

2. Se utilizan 2 repeticiones de 500 semillas seleccionadas al azar de la muestra

problema (con el fin de obtener el 100 % de semillas con el menor daño

posible y desechar las semillas dañadas que intervengan con los resultados

esperados).

3. Las semillas se colocan en un recipiente de 250 ml.

4. Se sumergen las semillas en suficiente cantidad de solución de fast green

para que todas las semillas queden cubiertas y agitar delicadamente durante

60 segundos.

5. Se retiran las semillas de la solución de fast green y se enjuagan con

abundante agua corriente. La solución de fast green se puede reutilizar.

6. Las semillas de cada repetición se esparcen sobre papel toalla absorbente

para permitir que se sequen al aire por ½ a 1 hora.

7. Se procede a la observación visual y a la categorización de las semillas en 3

clases de acuerdo a la intensidad de daño presente. 

8. Pondremos por separado las semillas intactas o con daños leves para obtener

el 100 % de semillas sanas y viables para la germinación.

Germinación.

Para iniciar el proceso de germinación, una vez seleccionadas nuestras

semillas, dispondremos diez apartados de 50 semillas cada uno. Nueve de los diez

apartados serán colocados en contenedores especiales de unicel sobre papel filtro

humedecido con 50 ml de solución (manitol, sacarosa, Nacl) a su concentración

correspondiente (5, 10, 15 %), y el apartado restante será sometido a germinación

con agua destilada (muestra testigo) bajo el mismo proceso que las muestras

anteriores, todas a temperatura ambiente (promedio anual 24,5 °C para la ciudad de

Tuxtla Gutiérrez) a periodos naturales de luz y oscuridad. Se harán chequeos diarios

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por diez días en los cuales se registrará el número de semillas germinadas por día

(la primera manifestación de la germinación exitosa estará definida por la

emergencia de la radícula). Así como el tipo de solución en la que fue sometida. Los

datos serán sometidos a análisis estadísticos.

16Germinación en semillas de Zea mayz y Phaseolus vulgaris bajo efectos de presión osmótica.

Las actividades se desarrollarán en el periodo comprendido entre la tercera semana del mes de octubre y la segunda semana del mes de noviembre del año en curso. Culminando en la presentación y exposición del presente el día 15 de noviembre del 2010.

CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES

ACTIVIDADES A REALIZAR

OCTUBRE 2010 NOVIEMBRE 2010

3a SEMANA 4ª SEMANA 1ª SEMANA 2ª SEMANA

D L M M J V D L M M J V D L M M J V D L M M J V

1.-Diseño del proyecto. X X X X2.-Adquisición y selección de semillas. X X X3.-Revisión del protocolo. X X4.-Planeación de actividades a desarrollar. X X5.-Desarrollo de actividades (Preparación de

soluciones).X

6.-Desarrollo de las actividades en laboratorio (Proceso de germinación de semillas bajo efecto de soluciones). Revisión y observación periódica de muestras.

X X X X X X X

7.-Germinación. Determinación y obtención de datos observados.

X X

8.-Elaboración de informe y resultados del proyecto. (% Germinación bajo presión osmótica).

X X X X

9.-Exposición y Evaluación del proyecto. X

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Literatura citada.

Blum, A. 1979. Genetic improvement of drought resistance in crop plants: a case for sorghum. pp. 429-445. In: Mussel, H. (ed.). Stress physiology in crop plants. John Wiley. New York, NY, USA.

Bolarín, M. C. 1996. Priming of seeds with NaCl induces physiological changes in tomato plants grown under salt stress. Physiologia Plantarum 96: 231-236.

Cayuela, E., Pérez-Alfocea, F., Caro, M. and Bolarín, M. C. 1995. Priming of seeds with NaCl induces physiological changes in tomato plants grown under salt stress. Physiologia Plantarum 96: 231-236.

Cruz, G. F.; González-H, V. A.: Molina-M.,J.; Vásquez-R., J.M. 1995. Seed deterioration and respiration as related to DNA metabolism in germinating maize. Seed Science and Technology 23:477-486.

Dhillon, N.P.S. 1995. Seed priming of male sterile muskmelon (Cucumis melo L.) for low temperature germination. Seed Sci.& Technol. 23, 881-884.

Eichhorn Susan E., Ray F. Evert y Peter Hamilton Raven. 1992. Biología de las plantas (Traducido por Sergi Santamaría del Campo, Francisco Lloret Maya, María Ángeles Cardona Florit). Edit. Reverte. Madrid, España. Pág. 398 y 399.

Espinosa P., N. y S. Solano H. 1992. Selección por tolerancia a presión osmótica en semillas de trigo y maíz. Colegio de postgrados. Práctica de laboratorio. Centro de genética. Montecillo, Edo. De México.

Espinoza, Z. R. y S. Kuruvadi. 1985. Clasificación de colecciones de zacate gigante (Leptochloa dubia HBK, Ness) por su grado de resistencia a sequía en manitol. Agraria Revista Científica UAAAN 1(2): 142-152.

Fuentes Yagüe José Luis. 2001. Iniciación a la botánica. Edit. Illustrated. Madrid, España. Pag. 32 y 33.

García Breijo Francisco José, Roselló Caselles Josefa, Santamarina María Pilar Siurana. 2006. Introducción al funcionamiento de las plantas. Ed. Univ. Politéc. Valencia. Pág. 69.

Haridi, M.B. 1985. Effect of osmotic priming with polyethylene glycol on germination of Pinus elliotti seeds. Seed Sci. & Tecnol., 13, 669-674.

Jackson, W. T. 1962. Use of carbowaxes (polyethylene glycol) as osmotic agents. Plant Physiol. 37: 513-518.

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18Germinación en semillas de Zea mayz y Phaseolus vulgaris bajo efectos de presión osmótica.

Marcos-Filho, J.; McDonald, M. B. 1998. Sensitivity of RAPD analysis, germination and vigour test to detect the intensity of deterioration of naturally and artificially aged soybean seeds. Seed Science and Technology 26:141-157.

Mauromicale, G. 1995. Effects of seed osmopriming on germination of tomato at different water potential. Seed Sci. & Technol., 23, 393-403.

McDonald, M. B. 1998. Seed quality assessment. Seed Science and Technology 8:265-275.

McDonald, M. B. 1999. Seed deterioration: physiology, repair, and assessment. Seed Science and Technology 27:177-237.

Parmar, M. T. y R. P. Moore. 1968. Carbowax 6000, mannitol and sodiumchloride for simulating drought conditions in germination studies of corn (Zea mays L.) of strong and weak vigor. Agron. J. 60: 192-195.

SMN. 2010. Servicio Meteorológico Nacional. «Servicio Meteorológico Nacional». http://smn.cna.gob.mx

Wiggins, S. C. y F. P. Gardner. 1959. Effectiveness of various solutions for simulating drought conditions as measured by germination and seedling growth. Agron. J. 51: 315-318.

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