miko patogen

LAPORAN PRAKTIKUM

MIKOLOGI

PATOGEN TANAMAN Colletotrichum capsici dan Gloeosporium sp.

Disusun oleh :

Nama : Yekti Agus S

NIM : 125040200111017

Kelompok : Rabu, 13.20

Asisten : Tadzkiroh

JURUSAN HAMA DAN PENYAKIT TUMBUHAN

PROGRAM STUDI AGROEKOTEKNOLOGI

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS BRAWIJAYA

MALANG

2015

I. PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Jamur merupakan organisme tak berklorofil, dimana membutuhkan inang

untuk memperoleh sejumlah nutrisi untuk perkembangbiakannya. Dimana

memiliki dinding sel yang tersusun atas khitin, yang terdiri dari rangkaian

molekul N-acetylglocosamina. Bentuk vegetatif dari jamur yaitu berupa thallus,

yaitu suatu sistem berupa benang yang disebut hifa. Dan kumpulan hifa disebut

miselium yang dapat tanpa septa (coenocytis) berupa sel panjang dengan banyak

inti, misal pada Oomycetes dan Zygomycetes. Sedangkan pada kelas lain

umumnya bersepta, misalnya pada Ascomycetes, Basidiomycetes, dan

Deuteromycetes (Sastrahidayat, 2010).

Di lapang seringkali ditemukan gejala penyakit dan intensitas serangan yang

berbeda. Sehingga perlu dilakukan identifikasi terhadap gejala dan penyebab

penyakit pada suatu tanaman. Oleh karena hal tersebut, jamur patogen seringkali

harus diisolasi dan dikulturkan dari spesimen tanaman berpenyakit dalam

kebutuhannya untuk diidentifikasi. Hal tersebut dikarenakan banyaknya jenis

patogen penyebab penyakit pada tanaman dengan gejala yang hampir sama, maka

perlu adanya identifikasi patogen yang diawali dengan proses isolasi dan

purifikasi. Patogen yang tumbuh sebagai saprobik (parasit fakultatif atau

nekrotrof), umumnya dapat ditumbuhkan dalam kultur, walaupun beberapa

diantaranya memerlukan perlakuan khusus. Biasanya isolasi jamur dari dilakukan

dengan cara menaruh sepotong kecil jaringan ke dalam media agar yang cocok,

dimana diletakkan dalam cawan petri steril.

Proses purifikasi merupakan salah satu hal yang penting untuk kebutuhan

identifikasi guna mengetahui morfologi dan fisiologi patogen tanaman. Prinsip

dari purifikasi yaitu mengambil sejumlah kecil patogen pada suatu medium

tertentu dari hasil isolasi sebelumnya, dan ditumbuhkan kembali untuk mendapat

biakan murni yang mana nantinya untuk mempermudah dalam mengidentifikasi

jamur. Sehingga isolasi, purifikasi, dan identifikasi patogen tanaman menjadi

penting bagi mahasiswa, guna mengetahui struktur dari suatu patogen, sebagai

dasar dalam pengklasifikasiannya, mengingat patogen berbeda dapat

menimbulkan gejala yang hampir sama pada inang yang sama.

1.2 Tujuan

Praktikum patogen tanaman ini memiliki tujuan diantaranya:

1. Memahamkan kepada mahasiswa tentang bagaimana cara membuat media

untuk isolasi maupun perbanyakan jamur, tahap-tahap dalam isolasi

patogen, dan tahap-tahap dalam purifikasi untuk mendapatkan koloni

murni, sebelum dilakukan tahap identifikasi patogen.

2. Mengidentifikasi struktur jamur Collectotrichum capsici patogen

penyebab penyakit antraknose pada tanaman cabai dan Gloeosporium sp

patogen penyebab busuk buah apel baik secara makroskopis maupun

secara mikroskopis.

1.3 Manfaat

Praktikum patogen tanaman ini memiliki beberapa manfaat diantaranya:

1. Mahasiswa lebih memahami bagaimana cara pembuatan media, isolasi

patogen, purifikasi, dan identifikasi patogen.

2. Mahasiswa lebih memahami bagaimana struktur jamur Colletotrichum

capsici dan Gloeosporium sp.

3. Mahasiswa dapat membedakan struktur beberapa jamur, dimana pada

praktikum ini diwakili dengan jamur Collectotrichum capsici dengan

Gloeosporium sp.

II. TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Pengertian Patogen Tanaman

a. Patogen merupakan organisme yang mengakibatkan penyakit tanaman,

dimana menyebabkan perubahan proses fisiologi secara berlanjut dan

menyebabkan perubahan struktural (Jordan, 1980).

b. Patogen tanaman adalah suatu jasad saprofit yang mampu menghasilkan

suatu produk, misalnya toksin yang mampu menyebabkan penyakit pada

tumbuhan (Taruno, 1993).

c. Patogen adalah agen biologis yang dapat menyebabkan penyakit pada

inangnya, dimana sering disebut mikroorganisme parasit. Umumnya

istilah dapat mengacaukan proses fisiologi dalam tubuh hewan atau

tumbuhan multiseluler yang normal (Djauhari, 1997).

2.2 Deskripsi Kelas Jamur yang Berpotensi sebagai Patogen Tanaman

Dalam sistem klasifikasi jamur, terdapat kelas-kelas utama yang anggotanya

seringkali menjadi permasalahan karena dapat menimbulkan suatu penyakit pada

tanaman, Kelas-kelas tersebut menurut Sastrahidayat (2010) antara lain:

1. Kelas Plasmodiophoromycetes

Anggota dari kelas ini merupakan parasit pada tanaman hijau dan jamur

lainnya, berbiak dalam jaringan inangnya, dan dengan beberapa pengecualian

menyebabkan hypertrophy dan hyperplasia pada tanaman inang dan

menghasilkan bentuk-bentuk seperti tumor. Struktur somatis dari

Plasmodiophoromycetes adalah plasmodium yang berkembang didalam sel-sel

tanaman inang. Plasmodium kemudian membentuk zoosporangia yang berisi

zoospora, atau langsung membentuk spora istirahat dengan jalan membagi

plasmodium menjadi beberapa bagian yang berinti satu. Tidak terdapat badan

buah, tetapi pada beberapa genus spora-spora bersatu membentuk bola spora

atau cakram. Pada perkecambahan tiap-tiap spora istirahat membebaskan satu

sel kembara. Baik sel kembara maupun zoospora mempunyai dua flagellum

yang tidak sama panjang dibagian belakangnya. Salah satu contoh jamur dari

kelas ini yaitu Spongospora subterranea penyebab penyakit garis bertepung

pada kentang.

2. Kelas Chytridiomycetes

Salah satu sifat khusus yang membedakan jamur ini dengan jamur yang

lain yaitu pembentukan sel-selnya yang dapat bergerak (zoospora atau

planogamet), masing-masing dengan flagellum tipe cambuk yang letaknya

posterior. Selain itu, thallusnya coenocytic, kadang zygota membentuk spora

istirahat, dinding selnya tersusun atas khitin dan beberapa diantaranya

tersusun atas selulose.

Anggota kelas ini merupakan jamur yang hidup dalam air akan tetapi

banyak juga yang hidup ditanah. Beberapa diantaranya menjadi parasit dan

merusak ganggang yang membentuk mata rantai makanan pada binatang air,

sehingga secara tidak langsung dapat merugikan manusia. Cara

perkembangbiakannya dapat dilakukan secara seksual dan aseksual. Secara

aseksual dilakukan melalui sporangium. Sedangkan secara seksual dapat

dilakukan melalui kopulasi planogamet yang terbagi menjadi tiga yaitu

konjugasi dari planogamet yang isogenis, konjugasi dari planogamet yang

anisoganis, dan pembuahan gamet betina yang tak dapat bergerak (sel telur)

oleh gamet jantan yang dapat bergerak (anterozoid). Cara seksual lain yaitu

dengan kopulasi gametangia dan somatogami. Contoh jamur dari kelas ini

yaitu Synchytrium endobioticum.

3. Kelas Oomycetes

Jamur-jamur yang termasuk dalam kelas Oomycetes berkembang biak

dengan secara aseksual dengan perantara zoozspora yang mempunyai dua

flagellum. Zoospora tersebut terbentuk didalam sporangia dengan bentuk

seperti buah pear atau bentuk ginjal. Anggota yang paling tinggi anggotanya

merupakan parasit obligat bagi tanaman inangnya, infeksi dari suatu tanaman

lain atau dari satu daerah ke daerah lain banyak dilakukan oleh spora dengan

perantara angin. Zoospora dibentuk pada semua nggota dalam kelas ini,

kecuali pada spesies tertinggi dimana sporangiumnya sendiri berfungsi

sebagai spora yang akan berkecambah menjadi miselium. Perkembangbiakan

secara seksualnya bersifat heterogametangia. Oospora dibentuk didalam

oogonia dan masuk didalamnya. Bagian tengah dalam oogonium semngalami

diferensiasi menjadi satu atau lebih oosit, yang bila masak beriti satu. Salah

satu jamur yang termasuk dalam kelas ini yaitu Albugo candida yang

menyerang cricifera.

4. Kelas Zygomycetes

Zygomycetes merupakan kelas jamur yang hidup di darat dan daerah

lembab, memiliki hifa bersifat cenocytic (berinti banyak) dan bersekat. Sifat

khusus dari kelas zygomycetes yaitu perkembangbiakan secara seksual

berlangsung dengan kopulasi gametangia dan menghasilkan zygospora, serta

perkembangbiakan aseksual berlangsung dengan perantaraan spora yang tidak

dapat bergerak dalam bentuk sporangiospora atau konidium. Contoh Rhizopus

stolonifer (Jamur roti), Rhizopus oryzae (jamur tempe), Rizopus nigricans

(jamur pada tomat), Mucor javanicus (untuk membuat tape).

5. Kelas Ascomycetes

Jamur kelas Ascomycetes mempunyai ciri antara lain hifa bersekat,

berkembang biak secara aseksual dengan fragmentasi miselium atau

membentuk spora aseksual (konidium), atau bisa juga secara seksual dengan

membentuk askospora. Beberapa patogen tumbuhan yang termasuk dalam

kelas Ascomycetes ini antara lain Ceratocystis fimbriata penyebab penyakit

Mouldy Rot pada bidang sadapat karet, Istulina deusta penyebab penyakit

leher akar pada teh, Elsinoe iwata penyebab penyakit kudis pada kacang hijau,

Microcyclus ulei penyebab penyakit hawar daun amerika selatan pada karet

yang sampai saat ini keberadaanya masih terbatas pada pertanaman karet di

Amerika Selatan.

6. Kelas Basidiomycetes

Kelas ini ditandai dengan adanya septa dan dikaryotik miselium, sering

membentuk clamp conection, dimana mengandung (2)(-8) basidiospora.

Basidiomycetes biasanya saprofit, tetapi ada pula beberapa grup penting yang

menjadi parasit pada tanaman dan membentuk ektomycorhyza.

Siklus hidupnya yaitu suatu basidiospora haploid berkecambah dan

membentuk suatu miselium bersepta dengan sel-sel monokaryotik. Organ

seksual tidak dibentuk, sedang pembuahan terjadi dengan penggabungan dua

sel unikleat (biasanya dari dua miselium yang berbeda) dan terjadi pertukaran

inti. Inti asing akan membagi diri segera dan anak inti berpisah dari sel, maka

terjadilah miselium dikaryotik secara lengkap. Induk inti masih tetap belum

bergabung. Sedang untuk menjamin terjadinya inti baru dari pembagian

konjugasi dikaryotik pada anak-anak sel, dibentuklah clamp connection.

Basidiomycetes dinding septanya melebar kesekitar lubang, menjadi

bentuk seperti tong (dolipore) dan ditutupi oleh suatu tutup dari retikulum

endoplasma. Miselium dikayotik sel ujungnya berkembang menjadi basidium.

Sedangkan perkembangbiakan aseksual dilakukan oleh konidium. Contoh dari

kelas ini yaitu Ustilago maydis yang menyerang pad tanaman jagung.

7. Forma Kelas Deuteromycetes

Deuteromycetes atau fungi imperfecti (jamur tak sempurna) terdiri atas

sejumlah besar genus dan spesies, dimana hanya melakukan

perkembangbiakan secara aseksual yang dikenal sebagai bentuk konidium,

oidium, atau klamidospora. Ada pula kemungkinan memasukkan jamur ini

kedalam kelompok Ascomycetes bila diketahui fase perfectnya (sempurna).

Kebanyakan jamur dari kelas ini merupakan penyebab penyakit yang serius

bagi tanaman dan hewan. Klasifikasi deuteromycetes didasarkan dari

perkembangan konidiumnya. Misalnya ukuran, jumlah sel, dan warna dari

konidium, piknidium, aservuli atau sinnema. Contoh jamur ini yaitu Marsonina

fragariae penyebab penyakit hangus pada daun arbei.

2.3 Peran Jamur (jelaskan+contoh)

Beberapa peran menguntungkan menurut Kusnadi (1994) antara lain:

Berperan sangat penting dalam siklus materi terutama siklus karbon, yang

berperan bagi kelangsungan hidup seluruh organisme.

Sebagai decomposer, dimana dapat menguraikan sisa-sisa tumbuhan,

bangkai hewan dan bahan-bahan organic lainnya dan hasil penguraianya

dikembalikan ketanah sehingga dapat menyuburkan tanah.

Berperan dalam industri fermentasi tersebut adalah fungi, terutama dari

kelompok ragi. Contoh hasil fermentasi adalah: bir ,roti., asam sitrat atau

2-hidroksipropan,1,2,3, asamtrikasboksilat.

Berperan dalam industri antibiotik, antibiotik ini dihasilkan oleh fungi

Penicllium notatu.

Sumber makanan bagi manusia, contoh: Agaricus campestris, Volvariella

volvaceae,Lentinus edodes, Pleurotes, Tuber melanosporum, Boletus spp.,

Cantharellus cibaricus dan lain-lain.

Sedangkan beberapa merugikan yang dapat ditimbulkan oleh jamur

menurut Kusnadi (1994) antara lain yaitu:

Dapat menurunkan kualitas maupun kuantitas makanan maupun bahan-

bahan lain yang penting bagi manusia

Jamur dapat juga menyerang bahan-bahan lain yang bernilai ekonomi

seperti kulit, kayu, tekstil dan bahan-bahan baku pabrik lainnya.

Jamur juga dapat berperan sebagai agen penyebab penyakit. Jamur pada

umumnya lebih sering menyebabkan penyakit pada tumbuhan dibanding

pada hewan atau manusia.

Jamur dapat menghasilkan racun, racun yang dihasilkan beberapa fungi

seperti seperti Amanita phalloides, A. muscaria maupun Aspergillus flavus

(menghasilkan aflatoksin), dapat sangat berbahaya bagi manusia karena

dapat menyebabkan penyakit kronis seperti kanker dan bahkan kematian.

III. METODOLOGI

3.1 Pembuatan Media

3.1.1 Alat dan Bahan

a. Alat :

Pisau : Untuk pengupas dan pemotong kentang

Beaker glass : Untuk mengukur aquades yang akan

ditambahkan saat merebus kentang

Saringan : Sebagai penyaring sari kentang

Panci : Untuk merebus kentang

Kompor : Sebagai pemanas

Spatula : Sebagai pengaduk kentang saat direbus

b. Bahan:

Kentang 200gr : Sebagai komponen pembuatan PDA

Dextrose 20gr : Sebagai sumber nutrisi bagi jamur

Agar 20 gr : Memadatkan media (mudah dipindahkan)

Aquades 1000 ml : Sebagai pelarut sari kentang

Chloram penikol : Sebagai antibakteri

3.1.2 Cara Kerja

Kupas kentang dan cuci bersih, kemudian potong-potong menjadi kotak-

kotak kecil sebesar 2x2cm. Rebus potongan kentang tersebut dalam 1000ml

aquades hingga mendidih. Saring hasil rebusan dengan kain tipis berlapis kapas,

sehingga diperoleh cairan ekstrak kentang yang bening. Tambahkan destrosa 20

gr dan agar 25 gr ke dalam ekstrak tersebut, panaskan kembali dan aduk hingga

homogen. Kemudian lakukan sterilisasi media dalam autoclave.

3.2 Isolasi Patogen


a. Alat:

Gunting : Untuk memotong bagian tanaman yang terkena serangan

Cutter : Untuk memotong bagian tanaman yang terkena serangan

Pinset : Untuk memindahkan potongan sampel bagian yang

bergejala

Cawan Petri : Sebagai tempat media, isolasi, alkohol, khloroks dan

aquades

Bunsen : Untuk menjaga kondisi agar tetap steril

Gelas ukur : Untuk tempat alkohol (sterilisasi alat)

Wrapping : Untuk meng-cover hasil isolasi di cawan petri

Kamera : Untuk mengambil gambar patogen hasil isolasi

Korek : Untuk menyalakan api pada bunsen

b. Bahan:

Media PDA : Untuk isolasi dari tanaman sakit

Alkohol : Untuk menghilangkan pengaruh khloroks

Aquades : Untuk menghilangkan pengaruh dari alkohol

Khlorox : Untuk menghilangkan kotoran pada inokulum

Spirtus : Untuk bahan bakar bunsen

Colletotrichum capsici : sebagai bahan isolasi

Colletotrichum gloeosporioides : sebagai bahan isolasi

3.2.2 Cara kerja isolasi jamur pada media PDA

Langkah kerja dalam isolasi patogen ini yang pertama dilakukan adalah

menyiapkan alat dan bahan yang akan digunakan dalam kegiatan praktikum.

Kemudian cuci buah apel dan daun teh yang bergejala dengan air bersih (air

mengalir). Potong buah apel dan buah cabai yang bergejala dengan

menggunakan gunting atau cutter, potong bagian setengah sehat dan setengah

sakit. setelah dipotong masukkan dalam khlorox selama 1 menit untuk

mensterilkan permukaan daun dari mikroorganisme lain, kemudian masukkan

dalam alkohol selama 1 menit dengan tujuan untuk mensterilkan potongan buah

apel dan buah cabai yang bergejala. Dan sterilisasi selanjutnya adalah potongan

tadi dimasukkan dalam aquades untuk menghilangkan pengaruh dari sterilan

seelumnya. Tiriskan potongan buah apel dan buah cabai bergejala pada cawan

petri yang berisi tissu agar kering.

Selanjutnya masukkan pinset dalam alkohol dan panaskan pinset pada

api bunsen agar tetap steril. Ambil potongan buah apel dan buah cabai bergejala

dengan pinset dan letakkan dalam cawan petri yang berisi media PDA. Setelah

langkah tersebut selesai tutup cawan petri dengan didekatkan pada api bunsen,

dan kemudian lakukan wrapping cawan petri untuk mengcover hasil isolasi.

Beri label pada cawan petri dan lakukan pengamatan serta dokumentasi selama

7 hari untuk melihat perkembangan dari patogen yang diisolasi.

3.3 Purifikasi Patogen

3.3.1 Alat dan bahan

a. Alat:

Jarum Ose : Untuk mengambil/memindahkan koloni patogen.

Wrapping : Untuk membungkus media dan cawan petri.

Bunsen : Untuk sterilisasi alat

Korek : Untuk menyalakan api pada bunsen

b. Bahan:

Alkohol : Digunakan untuk sterilisasi alat dan lingkungan

Spirtus : Sebagai bahan bakar bunsen

Isolat jamur : Sebagai bahan yang akan dipurifikasi

Media PDA : Untuk membiakkan biakan murni yang telah dipurifikasi

3.3.2 Cara Kerja Purifikasi Pada Media PDA

Langkah kerja dalam purifikasi, siapkan alat dan bahan yang diguanakan

untuk purifikasi. Sterilisasi alat yang akan digunakan. Selanjutnya masukkan

jarum ose pada gelas ukur yang berisi alkohol. Panaskan jarum ose pada api

Bunsen. Kemudian ambil isolat Colletotrichum gloesporioides dan

Collectotrichum capsici yang sudah diisolasi dengan didekatkan pada api

Bunsen agar tidak terjadi kontaminasi. Masukkan isolat Colletotrichum

gloesporioides dan Ceollectotricum capsici pada cawan petri yang berisi media

PDA untuk dibiakkan. Tutup cawan petri dan wrapping cawan petri dengan

plastik wrap. Hasil purifikasi diinkubasi selama 7 hari dan lakukan pengamatan

untuk perkembangan isolat Colletotrichum gloesporioides dan Collectotricum

capsici serta dokumentasikan.

3.4 Pembuatan Preparat dan Identifikasi Patogen


a. Alat

Mikroskop : Untuk melihat penampakan mikroskopis spesimen

Preparat : Sebagai tempat spesimen melekat pada

pengamatan

Cover glass : Menutup spesimen pada preparat

Pipet : Sebaga alat untuk meneteskan air

Botol : Sebagai wadah air

Jarum ose : Untuk mengambil koloni jamur

Bunsen : Sterilisasi alat

Korek : Menyalakan api pada bunsen

b. Bahan

Aquades : Untuk merekatkan koloni jamur anatar preparat

dan cover glass

Tissue : Membersihkan preparat dan cover glass

Alkohol 70% : Sterilisasi alat

Spirtus : Bahan bakar bunsen

Biakan murni patogen : spesimen yang diamati

3.4.2 Cara kerja Identifikasi Jamur Patogen

Siapkan alat dan bahan, preparat dan cover glass disterilkan dengan

alkhohol 70% untuk menghindari kontaminasi dari mikroba lain saat pengamatan.

Setelah disemprot dengan alkhohol 70% dibersihkan dengan tissue kering.Koloni

jamur yang telah murni berada pada petri diambil dengan jarum ose. Jarum ose

terlebih dahulu disterilkan dengan memasukkan dalam alkhohol 70% dan

membakar dengan bunsen. Pengambilan koloni harus dilakukan scara teliti, koloni

jamur yang akan diletakkan pada preparat harus tipis sehingga mudah dalam

pengamatan. Tetesi preparat dengan aquades mengguankan pipet di bagian tengah

preparat.

Letakkan koloni jamur pada tetesan air tepat di tengah preparat dan tutup

dengan cover glass. Penutupan dengan cover glass harus dilakukan dengan rapat

untuk menghindari banyaknya gelembung udara masuk. Preparat basah yang telah

dibuat diamati dengan mikroskop dengan lensa perbesaran 400x atau 1000x.

Dokumentasikan penampakan mikroskopis jamur namapak pada mikroskop.

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Deskripsi Spesimen

Pengamatan yang dilakukan saat praktikum pada cabai yang didiagnosis

terserang Collectitruchum capsici menunjukkan gejala berupa adanya bercak

konsentris berbentuk melingkar berwarna hitam, dan menjorong ke dalam.

Menurut Semangun dalam Sulastri, dkk (2013) jamur Colletotrichum capsici

mula-mula membentuk bercak coklat kehitaman, lalu meluas menjadi busuk

lunak. Pada bagian tengah bercak terdapat kumpulan titik-titik hitam yang terdiri

atas kelompok serta dan konidium jamur. Serangan yang berat dapat

menyebabkan seluruh buah mengering dan mengerut. Menurut Martoredjo (2010)

dalam Sulastri, dkk (2013) menjelaskan bahwa gejala antraknosa mula-mula

berupa bercak kecil yang selanjutnya dapat berkembang menjadi lebih besar.

Gejala tunggal cenderung berbentuk bulat, tetapi karena banyaknya titik awal

gejala maka gejala yang satu dengan yang lain sering bersatu hingga membentuk

bercak yang besar dengan bentuk tidak bulat. Pada gejala yang sudah cukup

besar, sering di bagian tepinya coklat dan di bagian tengahnya putih. Bercak yang

terbentuk umumnya agak cekung atau berlekuk dan dimulai dari bagian

tengahnya mulai terbentuk aservulus jamur yang berwarna hitam, yang biasanya

membentuk lingkaran yang berlapis. Dari literatur tersebut, maka dapat dipastikan

bahwa bahan yang digunakan untuk praktikum sesuai dengan gejala yang

diharapkan. Hal ini bertujuan untuk mendapatkan jamur Collectotrichum capsici

yang diharapkan. Klasifikasi jamur Colletotrichum capsici menurut Singh, 1998

dalam Funder, 1953 adalah: Divisi: Ascomycotina, Sub divisi: Eumycota, Kelas:

Pyrenomycetes, Ordo: Sphaeriales, family: Polystigmataceace, Genus:

Colletotrichum dan Spesies: capsici.

Gambar1. Gejala penyakit Collectotrichum capsici

Berdasarkan dari hasil praktikum yang sudah dilakukan pada buah apel

yang terserang jamur Colletotrichum gloesporioides yaitu terdapat bercak coklat

kehitaman yang membusuk pada buah apel. Menurut Afriyeni, dkk (2013) Tipe

gejala penyakit dari Colletotrichum gloesporioides adalah adanya gejala nekrotik.

Patogen penyebab penyakit jamur Colletotrichum gloesporioides yang tergolong

dalam kelas Deutromycetes. Tanaman inang dari patogen ini yaitu pada apel

dengan ciri-ciri gejala serangan penyakit pada bagian buah apel yang terserang

penyakit berubah warna menjadi coklat gelap. Selain itu juga terdapat bercak kecil

cokelat dan bintik-bintik hitam berubah menjadi orange. Kerusakan yang

diakibatkan dari busuk buah apel adalah gejala nekrosis. Penyakit busuk buah ini

disebabkan oleh patogen Colletotrichum gloesporioides bagian yang busuk

terdapat tanda atau warna kecoklatan yang tengah-tengahnya terdapat bintik-

bintik hitam berubah menjadi orange. Berdasarkan penjelasan literatur tersebut,

maka dapat dipastikan bahwa apel yang digunakan cocok untuk dilakukan isolasi

dan purifikasi guna mengetahui truktur jamur yang diharapkan. Mekanisme

nekrotropik Colletotrichum gloesporioides tergolong pada tipe parasit fakultatif

dimana organisme tetap bisa hidup pada jaringan mati. Klasifikasi patogen jamur

Colletotrichum gloesporioides pada buah apel menurut Afriyeni, dkk, 2013 yaitu

Kingdom: Fungi, Filum: Ascomycota, Subphylum: Pezizomycotina, Kelas:

Leotiomycetes, Genus: Colletotrichum, Spesies: Colletotrichum gloesporioides

Gambar 2. Gejala penyakit Colletotrichum gloesporioides

4.2 Hasil Pengamatan

4.2.1 Tabel Hasil Pengamatan

a. Isolasi Patogen

Nama Patogen Dokumentasi 1 HSI Dokumentasi 7 HSI Keterangan

Busuk buah cabai

(Coletotrichum

capsici)

Tumbuh

miselium

berwarna putih

seperti kapas.

Selain itu,

terjadi

kontaminasi

pada saat

isolasi.

Busuk buah

apel

(Colletotrichum

gloeporioides)

Tumbuh

miselium

berwarna putih

menyerupai

kapas, dengan

pusat koloni

berwarna

kehitaman.

b. Purifikasi Patogen

Nama Patogen Dokumentasi 1 HSI Dokumentasi 7 HSI Keterangan

Busuk buah cabai

(Coletotrichum

capsici)

Tumbuh

miselium

berwarna putih

seperti kapas.

Pusat koloni

berwarna

kekuningan.

Busuk buah

apel

(Colletotrichum

gloeporioides)

Tumbuh

miselium

berwarna putih

menyerupai

kapas, dengan

pusat koloni

berwarna

kehitaman.

c. Identifikasi Patogen

No Nama Patogen Spora/konidia Hifa Keterangan

1 Busuk buah

cabai

(Coletotrichum

capsici)

Dok.pengamatan:

C. capsici memiliki

konidia bercabang

dengan ujung tumpul.

Literatur:

(Semangun, 2007

dalam Sulastri, dkk,

2013)

konidia silindris,

berwarna hialin,

ujungnya bengkok dan

tumpul menyerupai

bulan sabit.

Dok.pengamatan:

C. capsici memiliki

hifa tidak bersekat

dengan warna gelap

Literatur:

(Semangun, 2007

dalam Sulastri, dkk,

2013)

hifa tidak bersekat dan

berwarna agak gelap.

Hasil

pengamatan

sesuai

dengan

literatur.

2 Busuk buah

apel

(Colletotrichum

gloeporioides)

Dok. Pengamatan:

Konidia berbentuk basil

dengan konidiofor yang

bercabang.

Literatur:

(Afriyeni, dkk, 2013)

konidia bersekat,

berbentuk basil.

Dok. Pengamatan:

Hifa bersekat dan

bercabang.

Literatur:

(Afriyeni, dkk, 2013)

hifa hialin dan

bersekat.

Hasil

pengamatan

sesuai

dengan

literatur.

4.2.2 Pembahasan

Colletotrichum capsici

a. Hasil Isolasi Colletotrichum capsici

Jamur C. capsici diisolasi dari buah cabai yang menunjukkan gejala

penyakit antraknose. Isolasi jamur dari bagian buah cabai yang sakit dilakukan

dengan cara memotong bagian buah antara yang sehat dan yang sakit, lalu

dicuci dengan alkohol 70% dan dibilas dengan aquades steril 2 kali, kemudian

dikering anginkan pada tissue steril. Potongan-potongan buah yang telah

kering masing-masing ditanam pada media PDA, selanjutnya diinkubasikan

pada suhu kamar. Setelah koloni tumbuh dan terdapat beberapa koloni yang

berbeda, segera dilakukan purifikasi, sehingga diperoleh biakan murni (Putro,

et al., 2014). Berdasarkan hasil praktikum, hasil dari potongan buah cabai

yang dibiakkan di media PDA mulai tumbuh ditandai dengan tumbuhnya

miselium 1 hari setelah isolasi. Tumbuh miselium berwarna putih seperti

kapas. Miselium mulai berkembang hingga hari ketujuh setelah isolasi. Pada

hari ke tujuh perkembangan miselium mulai tampak lebih banyak dan

berkembang dibandingkan dengan hari sebelumnya. Koloni yang diambil

untuk purifikasi yaitu koloni yg terdapat pada bagian pinggir, yang warnanya

seragam/sama. Selain itu, terjadi kontaminasi pada saat isolasi.

b. Hasil Isolasi Colletotrichum gloesporioides

Apel yang bergejala Colletotrichum gloesporioides diisolasi dari apel yang

bergejala khas antraknosa pada medium potato dextrose agar (PDA) Jaringan

yang sakit dipotong 1x1cm dengan membawa bagian jaringan tanaman sehat.

Disterilkan dengan cairan desinfektan selama 30 detik lalu direndam lagi

dengan aquadest steril (selama 2 menit). Ditanam pada media 1/3 PDA dan

diinkubasi pada suhu ruang selama 3-6 hari (Syafnidarti, et al., 2013).

Berdasarkan hasil praktikum pada hari pertama setelah isolasi, sudah muncul

koloni miselium yang tipis berwarna putih, dan juga muncul koloni miselium

jamur lain yang berwarna hijau tua. Koloni miselium terus berkembang dan

bertambah banyak memenuhi cawan petri. Koloni miselium yang akan

diambil untuk purifikasi adalah yang berwarna putih, yang merupakan koloni

miselium Colletotrichum gloesporiedes (lingkaran putih besar), bukan yang

berwarna hijau tua.

c. Hasil Purifikasi Colletotrichum capsici

Menurut Sulastri, dkk (2013) miselium jamur Colletotrichum capsici yang

tumbuh pada medium PDA berwarna putih keabu-abuan sampai dengan hitam

pada 7 hsi, arah pertumbuhan miselium kesamping, dan struktur miselium

kasar. Pengamatan makroskopis biakan murni C. capsici berwarna putih

sampai abu-abu gelap. Jamur C. capsici mencapai luasan maksimum dalam

cawan petri yang berdiameter 9 cm setelah biakan berumur 11-12 hari sejak

inokulasi. Jika biakan jamur C. capsici dibiarkan hingga 21-30 hari maka akan

terlihat setae dipermukaan biakan yang berbentuk bintik-bintik hitam gelap.

Setae ini adalah ciri khas yang dimiliki cendawan C. capsici (Putro, et al.,

2014). Sedangkan, berdasarkan hasil praktikum purifikasi atau pemurnian

jamur C. capsici yang telah dilakukan terlihat bahwa koloni jamur yang

ditumbuhkan pada media PDA mulai berkembang pada 1 hari setelah

purifikasi hingga full plate pada hari ketiga setelah purifikasi. Pada hari

pertama setelah purifikasi, koloni mulai tumbuh ditandakan dengan adanya

miselium yang tumbuh. Bagian atas miselium berwarna putih, sedangkan

bagian bawahnya berwarna keabu-abuan. Hingga hari ketujuh setelah

purifikasi bagian permukaan atasnya miselium berwarna putih, dan bagian

bawah berwarna keabu-abuan hingga hitam. Hasil purifikasi jamur C. capsici

ini (kenampakan makroskopisnya) sesuai dengan literatur mengenai

kenampakan makroskopis C. capsici pada media PDA yang dikemukakan oleh

Sulastri, et al (2013).

C. gloesporioides

a. Hasil Purifikasi Gloeosporium sp

Berdasarkan hasil praktikum purifikasi jamur C. gloesporioides yang telah

dilakukan terlihat bahwa koloni jamur yang dimurnikan dari hasil isolasi

mulai tumbuh pada media PDA 1 hari setelah purifikasi. Jamur mulai tumbuh

ditandai dengan adanya miselium pada hari pertama setelah isolasi. Perubahan

warna miselium terjadi hingga hari ketujuh setelah isolasi. Miselium dari

isolasi jamur ini berwarna hitam dan perlu dilakukan purifikasi. Menurut

Afriyeni, et al (2013) Ciri makroskopis jamur ini berbentuk seperti lingkaran,

berwarna putih dan tepi koloni tidak rata. Apabila dilihat dari permukaan

bawahnya terdapat bintik-bintik hitam

b. Hasil Identifikasi C. capsici

Berdasarkan hasil praktikum yang telah dilakukan, didapatkan hasil

kenampakan mikroskopis jamur C. capsici. Dari hasil tersebut terlihat bahwa

hifa jamur ini tidak bersekat, konidia berbentuk bulan sabit dengan ujung

tumpul dan tidak bersekat, konidiofor tidak bercabang serta mempunyai badan

buah yang disebut aservullus dan rambut yang disebut seta. Hasil praktikum

ini sesuai dengan literartur yang dikemukakan oleh Sulastri, et al (2013)

tentang identifikasi mikroskopis C. capsici. Menurut Sulastri, et al (2013)

konidia C. capsici berbentuk bulan sabit dan tidak bersekat, hifa berwarna

agak gelap dan tidak bersekat sedangkan konidiofornya tidak bercabang.

Menurut Agrios (1997) mengatakan bahwa C. Capsici menghasilkan spora

berupa konidia yang berbentuk silindris, hialin dengan ujung-ujungnya yang

tumpul dan bengkok seperti bulan sabit. Jamur ini mempunyai miselium yang

terdiri dari beberapa septa, inter dan intraseluler hifa. Aservulus dan stroma

pada batang berbentuk hemispirakel dan ukuran 70-120 m. Seta menyebar,

berwarna coklat gelap sampai coklat muda, seta terdiri dari beberapa septa dan

ukuran 150m. Konidiofor tidak bercabang, massa konidia nampak berwarna

kemerah-merahan. Konidia berada pada ujung konidiofor. Konidia berbentuk

hialin, uniseluler, ukuran 17-18 x 3-4 m. Konidia dapat berkecambah pada

permukaan buah yang hijau atau merah tua.

c. Hasil Identifikasi Colletotrichum gloesporioide

Berdasarkan hasil praktikum yang telah dilakukan, didapatkan hasil dari

identifikasi mikroskopis jamur Colletotrichum gloesporioides. Dari hasil

praktikum didapatkan adanya konidia yang berbentuk basil di sekitar hifa.

Bahwa hifa dari jamur Colletotrichum gloesporioides bersekat dan tidak

bercabang, sedangkan konidia dan konidiofor belum ditemukan. Ciri

mikroskopisnya adalah konidia berbentuk basil dan tersebar banyak di sekitar

hifa. Konidianya bersekat antara dua sampai tiga sel, hifa hialin dan bersekat,

terbentuk tunggal pada ujung-ujung konidiofor, konidiofor pendek, tidak

berwarna, tidak bercabang, tidak bersekat (Afriyeni, et al., 2013). Berdasarkan

hasil praktikum dengan perbandingan literature yang telah dilakukan, maka

jamur ini belum dapat dipastikan merupakan jamur Gloeosporium sp karena

ada beberapa hal untuk kepentingan identifikasi yang belum tumbuh pada

jamurnya seperti konidia dan konidiofor. Sehingga diperlukan identifikasi

ulangan pada koloni jamur Colletotrichum gloesporioides yang sudah

dimurnikan untuk memastikan bahwa jamur dari busuk buah apel yang

diisolasi tersebut benar merupakan jamur Colletotrichum gloesporioides.

V. PENUTUP

5.1 Kesimpulan

Hasil identifikasi Collectotrichum capsici sesuai dengan literatur yaitu

memiliki hifa tidak bersekat dan hialin, serta bentuk konidium yang menyerupai

bulan sabit. Ini juga dapat menunjukkan bahwa isolasi dan purifikasi yang

dilakukan pada bahan yang didiagnosa terserang patogen C. capsici memang

benar, sesuai dengan gejala yang ditunjukkan secara kasat mata. Sedangkan hasil

identifikasi Colletotrichum gloesporioides berhasil, dimana sesuai dengan literatur

yang memiliki ciri-ciri mikroskopis dari jamur tersebut yaitu konidia berbentuk

basil dan tersebar banyak di sekitar hifa. Konidianya bersekat antara dua sampai

tiga sel, hifa hialin dan bersekat, terbentuk tunggal pada ujung-ujung konidiofor,

konidiofor pendek, tidak berwarna, tidak bercabang, tidak bersekat.

5.2 Saran

Untuk praktikum ke depannya, seharusnya laporan dikumpulkan per satu

materi selesai, sehingga laporan tidak menumpuk di belakang.

DAFTAR PUSTAKA

Afriyeni, Yenita, Nasril, Nasir, Periadnadi, dan Jumjunidang. 2013. Jenis-jenis

Jamur pada Pembusukan Buah Kakao (Theobroma cacao, L.) di

Sumatera Barat. Jurnal Biologi Universitas Andalas. ISSN: 2303-2162-

DRAFT.

Agrios, George N. 1997. Plant Pathology Fifth Edition. Department of Plant

Pathology University of Florida. Elsevier Academic Press.

Djauhari.S, 1997, Teknologi Pengendalian Hayati Penyakit Tepung, Bercak Daun

dan Penyakit Batang pada Cabai dengan Memanfaatkan Mikroba dan

Limbah Organik (Laporan Penelitian). UniversitasBrawijaya, Malang.

Funder, S. 1953. Practical Mycology Manual for Identification of Fungi. Hafner

Publishing. New York: Company.

Jordan, S. 1980. Mikrobiologi Pangan. Gramedia Pustaka Utama: Jakarta

Kusnadi,dkk. 1994. Buku Saku Biologi. FMIPA UPI EDU: Bandung

Putro, N.S., Aini, L.Q., dan Abadi, A. L. 2014. Pengujian Konsorsium Mikroba

Antagonis Untuk Mengendalikan Penyakit Antraknosa Pada Cabai

Merah Besar (Capsicum Annuum L.). Jurnal HPT Volume 2 Nomor 4

Desember 2014

Sastrahidayat, I.R. 2010. Fitopatologi. UB Press : Malang

Sulastri, Sri, Muhammad Ali, Fifi Puspita. 2013. Identifikasi Penyakit yang

Disebabkan oleh Jamur dan Intensitas Serangannya pada Tanaman

Cabai (Capsicum annum L) di Kebun Percobaan Fakultas Pertanian

Universitas Riau. Program Studi Agroekoteknologi, Fakultas Pertanian,

Universitas Riau, Pekanbaru. Jordan B. P. 1980. Diagnosis Penyakit

Tanaman. The University of Arizona Press. Tuskon-Arizona, USA. (Alih

bahasa: Imam Santoso).

Syafnidarti, Y., Nasir, N dan Jumjunidang. 2013. Deskripsi Gejala dan Tingkat

Serangan Penyakit Bercak pada Batang Tanaman Buah Naga Merah

(Hylocereus polyrhizus, L.) di Padang Pariaman, Sumatera Barat. Jurnal

Biologi Universitas Andalas (J. Bio. UA.) 2(4) Desember 2013: 277-283

Taruno. 1993. Ilmu Penyakit Tumbuhan. Edisi Ketiga. Gadjah Mada University

Press. Yogyakarta.

miko patogen

Documents