universidade estadual de santa cruz programa...

UNIVERSIDADE ESTADUAL DE SANTA CRUZ

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM PRODUÇÃO VEGETAL

DIVERSIDADE DE FUNGOS NO AMBIENTE DE SERINGAIS NO SUDESTE DA

BAHIA E RESISTÊNCIA DE GENÓTIPOS DE SERINGUEIRA À ANTRACNOSE

FOLIAR

TACILA RIBEIRO SANTOS

ILHÉUS – BAHIA 2018




FOLIAR

ILHÉUS – BAHIA

2018

Tese apresentada à Universidade Estadual de

Santa Cruz como parte das exigências para a

obtenção do título de doutora em Produção

Vegetal.

Área de concentração: Proteção de Plantas

Orientador: Dr. José Luiz Bezerra

Coorientadora: Dra. Edna Dora Martins

Newman Luz




FOLIAR

Ilhéus, 28 de fevereiro de 2018.

_________________________________________

Dr. José Luiz Bezerra

Biólogo – Ph.D em Fitopatologia

PPGPV – UESC

(Orientador)

_________________________________________

Dr. Marcos Vinícius Oliveira dos Santos

Engenheiro Agrônomo – Doutor em Biologia de Fungos

CEPLAC, Ilhéus, Bahia

_________________________________________

Dr. Adonias de Castro Virgens Filho

Engenheiro Agrônomo – Doutor em Agronomia-Fitotecnia

CEPLAC, Ilhéus, Bahia

_________________________________________

Dr. Cláusio Antônio Ferreira de Mello

Biólogo – Doutor em Genética e Biologia Molecular

PPGPV – UESC

_________________________________________

Dr. Álvaro Figueredo dos Santos

Engenheiro Agrônomo – Doutor em Fitopatologia

EMBRAPA FLORESTAS

Tese apresentada à Universidade Estadual

de Santa Cruz como parte das exigências

para a obtenção do título de doutora em

Produção Vegetal.

DEDICATÓRIA

A Deus, pela saúde e oportunidade que foram concedidas a mim nessa longa jornada.

Aos meus orientadores e ao meu filho.

AGRADECIMENTOS

A Deus, por estar presente em todos os momentos de minha vida.

Ao meu orientador, Dr. José Luiz Bezerra pela oportunidade, paciência e

ensinamentos.

A minha coorientadora, Dra. Edna Dora Martins Newman Luz, pelo amor fraterno,

pela amizade, confiança, orientações, respeito, fé, oportunidade e paciência.

Ao Dr. Antônio Alves Pimenta Neto, Dr. Marcos Vinícius Oliveira dos Santos, Dr.

Adonias de Castro Virgens Filho pela amizade, carinho, colaboração, apoio e por estarem

sempre presentes nos momentos mais difíceis dessa caminhada.

Ao Dr. Cláusio Antônio Ferreira de Melo, pela dedicação, ensinamentos, amizade e

colaboração nas análises moleculares.

Ao Dr. Ronan Xavier, pela oportunidade.

Ao Dr. José Luiz Pires, pelas orientações nas análises estatísticas.

As Plantações Michelin da Bahia e a engenheira agrônoma Lívia Fernanda Lavrador

Toniasso, pela colaboração, disponibilizando todo material vegetal utilizado para a realização

deste trabalho.

A todos os funcionários da CEPLAC, em especial aos funcionários de campo, pela

brilhante colaboração e pela amizade cultivada.

A CAPES, pelo apoio financeiro, pela concessão da bolsa de doutorado, possibilitando

o desenvolvimento da tese.

Aos meus companheiros e amigos, Magui, Catarino, Gisele, Francis, Irina, Lurdinha,

Tita, Cenilda, Deny, Dilze, Elisangela, Ohana, também ao Leonardo pela cooperação,

amizade, paciência, amor e carinho demonstrado.

A minha família amada, pela paciência e apoio.

A meu FILHO querido e amado Davi Vinício, ser único e gracioso, apenas por

EXISTIR.

vi



FOLIAR

EXTRATO

É vasta a diversidade de fungos relatados no ambiente dos seringais, alguns deles patogênicos

outros decompositores e/ou antagonistas. O estudo dessas espécies é de grande importância no

sentido de subsidiar o manejo de doenças que acometem a seringueira. A heveicultura brasileira

tem enfrentado diversos problemas fitossanitários nos quais se destacam a alta incidência da

Antracnose, causada por Colletotrichum spp. É comum encontrar várias espécies de

Colletotrichum patogênicas a um mesmo hospedeiro, assim como é comum uma mesma

espécie causar sintomas da doença em diversas plantas hospedeiras, destacando assim a

dificuldade em se elaborar estratégias de manejo para a doença. A correta identificação do

agente causal, o conhecimento da etiologia da doença, a diversidade genética e estrutura da

população do patógeno, bem como avaliação de genótipos para resistência são de grande

importância. Este trabalho foi desenvolvido com os seguintes objetivos: i) conhecer a

diversidade fúngica presente no folhedo de seringueiras adultas através de coletas e

identificação morfométrica das espécies; ii) Coletar e identificar os complexos de

Colletotrichum encontrados nos seringais em estudo, e iii) testar genótipos desenvolvidos no

programa de melhoramento genético das Plantações Michelin da Bahia, no município de

Igrapiúna, quanto à reação a isolados dos principais complexos de espécies do patógeno

presentes na região Sudeste da Bahia. No estudo da diversidade fúngica em alguns seringais da

região, foram identificados 29 gêneros, dentre eles, uma nova espécie do gênero

Spermosporella. Vinte e nove isolados de Colletotrichum spp. foram coletados e identificados

em nível de espécie por caracterização morfocultural, amplificação e sequenciamento,

comparando sequencias genômicas das regiões ITS1/4 e do gene GAPDH. A análise da

diversidade genética foi avaliada pela obtenção dos marcadores moleculares ISSR. Constatou-

se a presença de três complexos de espécies C. gloeosporioides, C. acutatum e C. boninense¸

distantes entre si. Trinta e nove genótipos de seringueira foram avaliados quanto a sensibilidade

a quatro isolados pertencentes aos três complexos de espécies (C. gloeosporioides, C.

boninense e C. acutatum) através do método de inoculação em folíolos destacados com

suspensão de conídios (3x105), porém, nem todos os genótipos foram testados com os quatro

isolados. As reações dos genótipos variaram com o isolado inoculado, demostrando haver

variabilidade entre eles. Em todos os genótipos houve a formação de lesões em algum

momento após a inoculação. O clone FDR 5788 se destacou por apresentar isoladamente ou

como parental de progênies os melhores resultados para resistência a Colletotrichum spp. Este

trabalho é pioneiro para o patossistema Colletotrichum x seringueira por apresentar uma

metodologia de inoculação prática, reprodutível e eficiente na diferenciação de genótipos

resistentes e suscetíveis ao patógeno, além de demostrar que a variabilidade do complexo de

espécies de Colletotrichum interfere na busca da resistência.

Palavras-chave: Diversidade, Colletotrichum, caracterização, resistência.

vii

DIVERSITY OF FUNGI IN THE RUBBER TREE FROM SOUTHEAST BAHIA AND

AND GENOTYPE RESISTANCE TO FOLIAR ANTHRACNOSIS

ABSTRACT

The diversity of fungi reported in environments of rubber tree plantations is wide some of their

wich are pathogenic while others are decomposers and/or antagonists. The study of these

species has a huge importance to support the management of diseases that affect the rubber

tree. Brazilian rubber tree cultivation has faced several phytosanitary problems, especially high

incidence of Anthracnosis caused by Colletotrichum spp. It is common to find several

Colletotrichum species pathogenic to the same host, and also the same species causing

symptoms of the disease in different host plants, thus highlighting the difficulty to establish

management strategies for this disease. Correct identification of causal agent, knowledge on

disease etiology, genetic diversity and pathogen population structure, as well as evaluation of

genotypes for resistance, are of great importance. This study aimed at: i) to know the fungal

diversity present in the leaves of adult rubber trees, based on collections and morphometric

identification of the species; ii) collect and identify the Colletotrichum complexes found in the

rubber tree plantations studied, and iii) test accessions developed in the genetic improvement

program of the Plantações Michelin da Bahia, in the city of Igrapiúna, for the reaction to

isolates of the main complexes of the pathogen species present in the Southeastern region of

Bahia. The study on fungal diversity in some rubber tree plantations of the region identified 29

genera, including a new species of the genus Spermosporella. Twenty-nine isolates of

Colletotrichum spp. were collected and identified at species level by morpho-cultural

characterization, amplification and sequencing by comparing genomic sequences of the ITS1/4

regions and GAPDH gene. Genetic diversity analysis was evaluated by obtaining the ISSR

molecular markers. Three species complexes were found distant from one another: C.

gloeosporioides, C. acutatum and C. boninense. Thirty-nine rubber tree accessions were

evaluated for the sensitivity to four isolates belonging to the three species complexes (C.

gloeosporioides, C. boninense and C. acutatum) by the method of inoculation in detached

leaflets with conidia suspension (3x105), but not all accessions were tested with the four

isolates. Reactions of the accessions varied according to the isolate inoculated, demonstrating

that there is variability between them. In all accessions, lesions were formed at some time after

inoculation. The clone FDR 5788 stood out for showing, individually or as parent of progenies,

the best results for resistance to Colletotrichum spp. This study is precursor in the

Colletotrichum x rubber tree pathosystem, and presents an inoculation methodology that is

practical, reproducible and able to distinguish resistant and susceptible accessions to the

pathogen, besides demonstrating that the variability in the Colletotrichum species complex

interferes with the search for resistance.

Key words: Diversity, Colletotrichum, characterization, resistance.

viii

LISTA DE FIGURAS

CAPÍTULO I

Figura 1. Arthrobotrys arthrobotryoides (A-B). A. conídios e conidióforos; B.

conídios. Aschersonia cubensis (C-D) C. conídios (seta) e conidióforos; D.

estroma. Cladosporium cladosporioides. E. conídio e conidióforo.

Curvularia eragrostidis. F. conídios e conidióforo. Curvularia lunata var.

aeria. G. conídios. Dimerosporiella cf. paulistana. H. ascósporos expulsos

através do ostíolo. Gliocladiopsis tenuis. I. conidióforo ramificado e

conídios. Irenopsis vincensii. J. primórdio peritecial, hifas, hifopódios,

ascósporo germinando (seta). Leptomeliola uvariae. L. setas periteciais,

ascos e ascósporos. Barras: A = 37 µm; B = 20 µm; C = 15 µm; D = 20

µm; E = 3,5 µm; F = 20 µm; G = 20 µm; H = 15 µm; I = 43 µm; J = 12

µm; L = 40 µm................................................................................................

43

Figura 2. Nodulisporium ochraceum (A-B) A. conídios; B. conidióforos. Nigrospora

sphaerica (C-D) C. conídios; D. célula conidiogênica. Cylindrocarpon cf.

candidulum. E. conídios e células conidiogênicas. Dimerina mindanaensis.

F. peritécio rompido, ascos e ascósporos. Pestalotiopsis suffocata. G.

conídio. Trichoderma atroviride. H. conidióforo e conídios. Lasiodiplodia

theobromae. I. conídios uniseptados. Spiropes helleri. J. conídio. Fusarium

decemcellulare. L. conídios. Barras: A = 12 µm, inset = 14 µm; C = 20 µm;

E = 50 µm; F = 25 µm; G = 5 µm; H = 10 µm; I = 25 µm; J = 14 µm; L = 23

µm...................................................................................................................... 44

Figura 3. Atractilina parasitica. A. Hifas de A. parasitica associadas com hifas de

Irenopsis vincensii. B. Conídio com extremidade capitada. C. Sinêmios.

Barra: B = 10 µm; C = 70 µm........................................................................... 45

CAPÍTULO II

Figure 1. Spermosporella irenopsidis. A. Conidia. B. Conidiogenous cells formed in

the hyphae. C. Conidiogenous cells. Bar = 12.7μm ......................................... 53

Figure 2. Spermosporella irenopsidis A. Conidiogenous cells formed in the hyphae.

B. Conidia. Bar = 10.6 μm................................................................................ 53

Figure 3. Spermatoloncha maticola. A. Conidia. B. Hyphal aggregates and

conidiogenous cells. C. Hyphae of S. maticola contact hyphae of Irenopsis

vincensii. Bar = 13 μm...................................................................................... 54

Figure 4. Spermatoloncha maticola. A, B and C. Conidia and hyphal aggregates. Bar

A = 38 μm, B and C =12 μm……………………….………………….….. 54

CAPÍTULO III

Figura 1. Colônias de Colletotrichum spp. apresentando alta variabilidade

morfocultural em meio BDA............................................................................ 67

Figura 2. Diferentes formas de conídios de Colletotrichum spp. isolados de folíolos

de seringueira (Hevea brasiliensis) em meio BDA. (a) cilíndrico, (b)

oblongo (c) clavado (d) oblongo (e) oblongo-cilindráceo (f) oblongo (g)

oblongo-cilindráceo (h) fusoide (i) oblongo................................................... 68

http://www.indexfungorum.org/names/Names.asp?strGenus=Cladosporium

http://www.indexfungorum.org/names/Names.asp?strGenus=Pestalotiopsis

ix

Figura 3. Análise filogenética dos isolados com base nas sequências ITS1/4 e

GAPDH.............................................................................................................

72

Figura 4. Produto da amplificação do primer UBC- 835 separados por eletroforese em

gel de agarose 1,8% corados com SYBR .................................................... 73

Figura 5. Dendrograma baseado no polimorfismo associados aos loci ISSR de

isolados de Colletotrichum spp. Coeficiente de similaridade de Simple

Matching e agrupamento pelo método UPGMA............................................. 74

Figura 6. Análise de coordenadas de componentes principais geradas pela distribuição

dos isolados baseadas em uma matriz de similaridade genética de Simple

Matching............................................................................................................ 75

CAPÍTULO IV

Figura 1. Folíolo do clone PMB 1 com lesões circulares, concêntricas de coloração

amarronzadas, proveniente de inoculação com gotas de 20 µL da suspensão

de esporos de Colletotrichum gloeosporioides................................................. 96

Figura 2. Dendrograma da análise de agrupamento obtido pelo método de UPGMA

(distância Euclidiana), a partir das medidas de dissimilaridade entre 38

genótipos de seringueira (Hevea sp.) avaliados quanto a severidade da

Antracnose na superfície abaxial de folíolos, quando inoculados com o

isolado 19 de Colletotrichum acutatum. Grupos formados após corte na

altura de θ = 10: I, II, III, IV, V......................................................................... 103


(distância Euclidiana), a partir das medidas de dissimilaridade entre 12 gen

ótipos de seringueira (Hevea sp.) avaliados quanto a severidade da


isolado 13 de Colletotrichum gloeosporiiodes. Grupos formados após corte

na altura de θ = 6: I, II, III, IV,

V........................................................................................................................ 104





isolado 14 de Colletotrichum acutatum. Grupos formados após corte na

altura de θ = 10: I, II, III................................................................................. 105





isolado 06 de Colletotrichum boninense. Grupos formados após corte na

altura de θ = 20: I, II, III, IV,

V........................................................................................................................ 106

APÊNDICE A

Figura 1. Oidium heveae. A. Muda de seringueira com sintomas da doença. B. Folíolo

com micélio de oídio. C, D. Conidióforo e conídios. E. Conídios em

cadeia. Barra = 37 μm..................................................................................... 130

x

LISTA DE TABELAS

CAPÍTULO II

Table 1. Comparative morphology of species of Spermosporella, including the new

species, S. irenopsidis…….…………………………………………..……… 52

CAPÍTULO III

Tabela 1. Designação, origem, órgão de isolamento e ano de coleta de isolados de

Colletotrichum spp. utilizados neste estudo........................................................ 62

Tabela 2. Características morfoculturais de 29 isolados de Colletotrichum spp. obtidos

de folíolos de seringueira (Hevea brasiliensis) em meio BDA........................... 69

Tabela 3. Primers com suas sequências amplificadas para a obtenção dos marcadores

moleculares ISSR. Temperatura de anelamento e número de bancas que

representam os alelos polimórficos obtidos e utilizados em análise................... 73

CAPÍTULO IV

Tabela 1. Descrição dos 39 genótipos de Hevea spp. testados para resistência à

Antracnose foliar da seringueira.......................................................................... 94

Tabela 2. Diâmetro médio da lesão (DML) em mm, em folíolos destacados de 38

genótipos de seringueira (Hevea brasiliensis) inoculados com suspensão de

3x105 conídios/mL do isolado 19 de Colletotrichum

acutatum............................................................................................................. 98




boninense............................................................................................................ 99




gloeosporioides.................................................................................................. 100



3x105 conídios/mL do isolado 14 de Colletotrichum acutatum.......................... 100

xi

SUMÁRIO

EXTRATO..................................................................................................................... VI

ABSTRACT................................................................................................................... VII

LISTA DE FIGURAS................................................................................................... IX

LISTA DE TABELAS................................................................................................... X

1. INTRODUÇÃO...................................................................................................... 13

2. REVISÃO DE LITERATURA............................................................................. 15

2.1 Diversidade de fungos em seringais....................................................................... 15

2.2 A cultura da seringueira......................................................................................... 16

2.3 Antracnose foliar da seringueira........................................................................... 18

2.4 Características do gênero Colletotrichum............................................................. 20

2.5 Epidemiologia e sintomas....................................................................................... 21

2.6 Controle da Antracnose.......................................................................................... 22

2.7 Identificação de Colletotrichum spp....................................................................... 25

2.8 Diversidade genética............................................................................................... 26

CAPITULO I

3. TAXONOMIA DE FUNGOS EM SERINGAIS DO SUDESTE DA

BAHIA............................................................................................................................ 28

RESUMO....................................................................................................................... 28

ABSTRACT.................................................................................................................. 29

3.1 INTRODUÇÃO....................................................................................................... 30

3.2 MATERIAL E MÉTODOS.................................................................................... 32

3.2.1 Locais de coletas.................................................................................................... 32

3.2.2 Isolamento dos fungos............................................................................................ 32

3.2.2.1 Isolamento direto................................................................................................. 32

3.2.2.2 Isolamento indireto.............................................................................................. 32

3.2.2.3 Isolamento de amostras de solo........................................................................... 33

3.3 RESULTADOS E DISCUSSÃO............................................................................ 34

3.3.1 Isolamento e identificação de fungos..................................................................... 34

3.3.2 Taxonomia.............................................................................................................. 34

3.4 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS................................................................. 46

M

CAPITULO II

4. Spermosporella irenopsidis sp. nov. and Spermatoloncha maticola, parasitic

on black mildew (Irenopsis vincensii) of rubber in Bahia, Brazil……...…..….… 49

ABSTRACT………………………….………………………………………………. 49

4.1 INTRODUCTION……………………………………………………………… 49

4.2 MATERIALS AND METHODS………………………………………………. 50

4.3 RESULTS…………………………...…………………………….……............ 51

4.3.1 Taxonomy 51

4.4 DISCUSSION…………………………………………………………………… 55

4.5 ACKNOWLEDGEMENTS……………………………………………...…….. 55

4.6 REFERENCES…………………………………………………………………. 55

M

CAPITULO III

5. CARACTERIZAÇÃO MORFOCULTURAL, MOLECULAR E DIVERSIDADE

GENÉTICA DE Colletotrichum spp. AGENTE CAUSAL DA ANTRACNOSE

xii

FOLIAR EM SERINGUEIRA (Hevea brasiliensis)...............................................57

RESUMO....................................................................................................................... 57

ABSTRACT................................................................................................................... 58

5.1 INTRODUÇÃO....................................................................................................... 59


5.2.1 Coleta e isolamento de Colletotrichum spp............................................................ 61

5.2.2 Caracterização morfocultural dos isolados de Colletotrichum.............................. 61

5.2.3 Teste de esporulação das espécies de Colletotrichum............................................ 63

5.2.4 Teste de patogenicidade......................................................................................... 63

5.2.5 Identificação molecular por sequenciamento......................................................... 63

5.2.6 Diversidade genética em regiões ISSR.................................................................. 65

5.3 RESULTADOS........................................................................................................ 66

5.3.1 Caracterização morfocultural................................................................................. 66

5.3.2 Sequenciamento e identificação dos níveis taxonômicos dos isolados.................. 71

5.3.3 Análise da diversidade genética em loci ISSR................................................................... 72

5.4 DISCUSSÃO............................................................................................................ 76

5.5 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS.................................................................. 83

CAPÍTULO IV

6. RESISTÊNCIA DE GENÓTIPOS À ANTRACNOSE FOLIAR........................ 89

RESUMO....................................................................................................................... 89

ABSTRACT................................................................................................................... 90

6.1 INTRODUÇÃO....................................................................................................... 91


6.2.1Organismos e condições de cultivo......................................................................... 93

6.2.2 Inoculação e avaliação de sintomas........................................................................ 93

6.2.3 Análise dos dados..................................................................................................... 94

6.3 RESULTADOS........................................................................................................ 96

6.4 DISCUSSÃO............................................................................................................ 107

6.5 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS.................................................................. 112

M

7. CONSIDERAÇÕES FINAIS................................................................................... 116

M

8. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS.................................................................... 117

M

APÊNDICE A

9. OCORRÊNCIA DE OÍDIO EM MUDAS DE SERINGUEIRA NO ESTADO

DA BAHIA, BRASIL.............................................................................................. 127

RESUMO....................................................................................................................... 128

ABSTRACT................................................................................................................... 128

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS........................................................................ 130

13

1. INTRODUÇÃO

A seringueira é uma planta natural da Bacia Amazônica, pertencente ao gênero Hevea

Aubl,, família Euphorbiaceae, e compreende onze espécies, entre as quais a Hevea

brasiliensis (Wild. ex. A. Juss) Muell. Arg. é a mais plantada comercialmente, por apresentar

a mais alta produtividade, produzir borracha natural de superior qualidade, além de possuir

uma ampla base genética (GONÇALVES et al., 1997; COSTA et al., 2001).

No Brasil, a heveicultura é uma atividade de importância no agronegócio, pelo fato de

o país possuir uma moderna indústria de pneumáticos e artefatos, ser um importante

consumidor de elastômeros e apresentar condições favoráveis para ampliar a oferta de

borracha natural (VIRGENS FILHO, 2013).

No mercado mundial, cerca de 75 % do consumo de borracha natural é realizado pela

indústria de pneumáticos, sendo o restante demandado pelos diferentes segmentos das

indústrias de artefatos de borracha. Em 2017, a produção mundial de borracha natural foi

correspondente a 12.081 milhões de toneladas, enquanto o consumo foi de 12.596 milhões de

toneladas. O Brasil produziu 184 mil toneladas de borracha natural em 2015, em uma área

explorada de 163.000 hectares e consumiu 403 mil toneladas, sendo as importações

correspondentes a 208 mil toneladas (ESPERANTE, 2017). Neste mercado, de acordo com

dados do IBGE (2017), a Bahia participou com uma produção de 28.590 toneladas em uma

área colhida de 33.595 hectares, mantendo a sua participação como segundo estado maior

produtor de borracha natural do país e o segundo em área plantada.

A introdução da seringueira no Estado da Bahia data de 1908, mas a expansão do

cultivo em grande escala só teve início no final dos anos 1950 e início dos anos 1960, quando

o Governo do Estado fomentou o plantio de mais de 10.000 hectares. A partir desta fase, o

setor privado empreendeu grandes projetos, estimulado pelos incentivos fiscais concedidos

pelo governo. Mais tarde, o Governo Federal promoveu o fomento da heveicultura através do

Programa de Incentivo a Produção de Borracha Vegetal – Probor, sendo a seringueira

expandida em toda a região Litoral Sul da Bahia (VIRGENS FILHO, 2003).

Mais de dois terços dos seringais baianos são explorados em sistemas agroflorestais

com o cacaueiro, modelo que tem a vantagem de aumentar as receitas por unidade de área, ao

ofertar produtos de fácil comercialização como a borracha e o cacau (MARQUES, 2000;

VIRGENS FILHO, 2007), além de formar um ambiente ecologicamente favorável à

sobrevivência de pequenos animais, pássaros, insetos e fungos.

14

Nos seringais da Bahia, as preocupações foram sempre com o manejo fitossanitário

dirigido ao controle das doenças fúngicas, especialmente o Mal das Folhas causado por

Microcyclus ulei P. Henn, a Requeima e a queda anormal das folhas (Phytophthora spp.),

além do cancro do tronco (Phytophthora capsici Leonian) e do mofo cinzento (Ceratocystis

fimbriata) (CANDEIAS et al., 2014; CERQUEIRA et al., 2011). A partir de meados da

década 2000, a Antracnose causada por Colletotrichum spp., passou a constituir um dos

principais problemas pelos danos de importância econômica que as plantações sofriam em

função dos ataques de patógeno. Este fato passou a merecer atenção especial no manejo da

seringueira, principalmente por causar a morte descendente dieback em plantas jovens,

promover o desfolhamento em seringais adultos e causar lesões nos ramos. Mesmo nos anos

de baixa incidência de outras doenças fúngicas, a Antracnose vem se manifestando de

maneira epidêmica, prejudicando a atividade fotossintética na copa da seringueira.

Os seringais constituem um sistema que simula algumas funções ecológicas da floresta

tropical (IAC, 2017), sendo um ambiente bastante propício ao crescimento e sobrevivência de

fungos, embora seja um agrossistema pouco explorado quanto à sua micodiversidade. Os

fungos que habitam a filosfera das plantas desempenham papéis diversos atuando

beneficamente como decompositores da matéria orgânica, promotores da ciclagem de

nutrientes, hiperparasitas ou biocontroladores de patógenos (ALEXOPOULOS et al., 1996;

KENDRICK, 2000).

Diante da nova preocupação, com o aumento da incidência da Antracnose, torna-se

necessário identificar corretamente as espécies de Colletotrichum (Corda) ou os complexos de

espécies existentes nos seringais da região, estudar a sua distribuição e testar a reação de

resistência dos materiais genéticos mais promissores, em relação a esta enfermidade,

principalmente aqueles já avaliados quanto à resistência a M. ulei. A correta identificação do

patógeno é de suma importância para a seleção de genótipos resistentes, sendo necessário o

uso de ferramentas moleculares no caso do gênero Colletotrichum onde existem espécies

crípticas impossíveis de serem distinguidas morfologicamente (WEIR et al., 2012; SUTTON,

1992).

Assim os objetivos desta pesquisa foram: i) conhecer a diversidade fúngica presente

em folhas da copa e da serapilheira de seringais em produção; ii) identificar os complexos de

espécies de Colletotrichum encontrados nesses seringais; e iii) testar genótipos desenvolvidos

no programa de melhoramento genético das Plantações Michelin da Bahia, (cooperação

CIRAD/Michelin) e outras instituições, quanto a reação a isolados do patógeno presentes na

região em estudo.

15

2. REVISÃO DE LITERATURA

2.1 Diversidade de fungos em seringais

Os fungos podem ser considerados os organismos mais importantes encontrados no

meio ambiente, devido ao seu papel no funcionamento do ecossistema e influência nas

atividades relacionadas aos seres humanos. Eles são essenciais na decomposição da matéria

orgânica, reciclagem e transporte de nutrientes, sendo indispensáveis para alcançar o

desenvolvimento sustentável (PALM; CHAPELA, 1998). Os fungos também possuem

importância médica e biotecnológica, como por exemplo, na produção de enzimas e

antibióticos úteis ao tratamento de enfermidades e aplicáveis em outras atividades humanas.

Estima-se que existam 1,5 milhões de espécies fúngicas no mundo (HAWKSWORTH,

1991), no entanto, menos de 5% foram descritas. A capacidade dos fungos em produzirem

enzimas permite que eles atuem em praticamente todos os tipos de substratos. As folhas estão

entre os substratos mais utilizados e relevantes para a colonização dos fungos por ser um

material mais facilmente degradável e encontrado em maior abundância nos ecossistemas

naturais (DIX; WEBSTER, 1995). Considerando a variedade de ambientes que eles ocupam,

praticamente não existem barreiras geográficas para a sua distribuição (MAIA, 2003).

No interior dos seringais existe uma condição bastante propicia ao crescimento e

sobrevivência de fungos, uma vez que há um ambiente estável, com características que

simulam algumas funções da floresta tropical (IAC, 2017). É vasta a diversidade de fungos

estudados nesses ambientes. Cerca de 323 espécies de fungos associados a Hevea brasiliensis

Muell.-Arg, foram reportados a nível mundial (FARR; ROSSMAN, 2017). Na América do

Sul, foi registrada a ocorrência de 120 táxons em H. brasiliensis, incluindo espécies

patogênicas e não patogênicas, sendo a grande maioria pertencente ao filo Ascomycota

(VIÉGAS, 1961). No Brasil, cerca de 53 espécies fúngicas foram relatadas associadas a

Hevea spp. (MENDES et al., 1998; EMBRAPA, 2017).

Esta grande diversidade de fungos no ambiente do seringal ocupa diferentes micro

habitats onde desempenham papéis ecológicos variáveis: 1) folhas vivas na copa, incluindo

espécies fitopatogênicas, hiperparasitas, biocontroladoras de patógenos, comensais e parasitas

de artrópodes; 2) troncos e galhos abrangendo sapróbios e fungos liquenizados; 3) serapilheira

realizando a decomposição da matéria orgânica e promovendo a ciclagem de nutrientes; 4)

raízes, vivendo como sapróbios ou patógenos radiculares. As espécies que habitam a filosfera,

em sua maioria são leveduras e/ou fungos leveduriformes, enquanto que as espécies da

rizosfera correspondem a fungos que se nutrem de exsudatos secretados pelas raízes. Além

16

desses grupos existem os fungos endofíticos que vivem no interior dos tecidos vegetais sem

causar danos aparentes às plantas. Merece destaque às espécies de fungos considerados como

patógenos vasculares que se desenvolvem tanto no floema como no xilema das plantas

(ALEXOPOULOS et al., 1996; KENDRICK, 2000).

Os fungos não patogênicos associados à cultura da seringueira devem ser estudados

porque, entre outros papéis, interferem na sobrevivência de espécies causadoras de doenças

como o Microcyclus ulei (P. Henn.) v. Arx, agente etiológico do Mal das Folhas e

Colletotrichum spp. (Corda) agentes da Antracnose foliar da seringueira. Além disso, é grande

a possibilidade de existirem espécies desconhecidas para a ciência cujo potencial ainda é

desconhecido.

2.2 A cultura da seringueira

A heveicultura é uma atividade de grande importância social, econômica e ambiental,

pela sua capacidade de geração de emprego e renda (VIRGENS FILHO, 2007;

NARAYANAN e MYDIN, 2011). Contribui para conservação do solo e melhoria do

ambiente; além disso, a seringueira durante seu ciclo de vida contribui para o sequestro de

carbono da atmosfera (LAKSHMAN; MUNASINGHE, 2017) e as árvores adultas podem ser

fonte de madeira constituindo um sistema de duplo propósito (CORLEY, 1983).

Pertencente ao gênero Hevea, família Euphorbiacea, ordem Malpighiales, a

seringueira, tem seu centro de origem na região Amazônica do Brasil e possui onze espécies

conhecidas: H. brasiliensis (Wild. ex. A. Juss) Muell. Arg., H. guianensis Aub., H.

benthamiana Muell. Arg., H. nitida Mart. ex. Muell. Arg., H. pauciflora (Spr. ex. Bth.) Muell.

Arg., H. rigidifolia (Spr. ex. Bth.) Muell. Arg., H. camporum Ducke, H. spruceana (Bth.)

Muell. Arg., H. microphylla Ulle, H. camargoana Pires e H. paludosa Ulle, Jhrb

(GONÇALVES et al., 1990).

A espécie H. brasiliensis produz látex de excepcional qualidade, sendo muito utilizada

em plantios em todo o mundo, pois possibilita a alta produtividade de borracha natural e

possui uma ampla base genética (GONÇALVES et al., 1990; COSTA et al., 2011). O látex é

o principal subproduto da seringueira, e atualmente é a principal fonte de borracha natural do

mundo (ALVARENGA; CARMO, 2008). A borracha natural é utilizada nas indústrias de

pneumáticos e artefatos (balões, materiais cirúrgicos, componentes da indústria

automobilística, de calçados, revestimento de cabos elétricos, isolantes e outros), sendo o

17

abastecimento feito principalmente por países do Sudeste asiático, sendo a contribuição

brasileira de apenas 1,9% do total da produção mundial (VALVERDE et al., 2014).

O Brasil possui uma área plantada estimada em 160.968 ha hectares de seringueira,

dos quais pouco menos da metade encontram-se em produção (IBGE, 2017). Os principais

Estados produtores são: São Paulo, Bahia, Mato Grosso, Espírito Santo e Paraná

(EMBRAPA, 2017). Sendo o estado da Bahia, considerado o segundo maior produtor de

borracha natural do país, possuindo a segunda maior área em exploração estimada em 33.203

ha hectares (IBGE, 2017).

A planta adulta apresenta um processo natural de desfolha, que ocorre geralmente na

estação seca, dura em torno de duas a seis semanas, e é chamado de período de senescência e

queda foliar quando a planta entra na fase de hibernação (MORAES, 1980). Após esse

período, a planta começa a se reenfolhar, merecendo bastante atenção, pois é quando há

lançamento de folíolos jovens com coloração antociânica intensa, o que torna a seringueira

mais suscetível ao ataque de fitopatógenos (MORAES, 1980; GASPAROTTO; PEREIRA,

2012).

Vários fatores afetam o desenvolvimento da heveicultura brasileira, e entre estes,

destacam-se as doenças, principalmente o Mal das Folhas, que só ocorre nas Américas,

principalmente no Brasil (FURTADO; TRINDADE, 2005), causado pelo fungo Microcyclus

ulei (HOLLIDAY, 1970), e a Antracnose causada por Colletotrichum spp., que ocorre na

maioria das regiões heveícolas do mundo (FURTADO; TRINDADE, 2005).

O Mal das Folhas, um dos principais problemas da heveicultura brasileira, é uma

doença devastadora e por isso alguns autores fazem analogias a doenças de grande impacto à

economia em outras culturas, tais como Ferrugem do Cafeeiro (Hemileia vastatrix Berk. &

Broome), a Mela da Batatinha (Phytophthora infestans (Mont.) de Bary) e a Vassoura de

Bruxa do Cacaueiro (Moniliophthora perniciosa (Stahel) Aime & Phillips-Mora) (CHEE;

HOLLIDAY, 1986; GASPAROTTO et al., 1997; RUBINI, 2003; MAKI, 2006). O agente

causal possui grande capacidade de causar danos ao hospedeiro, provocando lesões e

deformação nos folíolos e consequentemente a queda prematura levando a planta ao

desfolhamento parcial ou total (GASPAROTTO et al.,1997; VIRGENS FILHO, 2017 –

Dados não publicados).

Em busca de minimizar as perdas ocasionadas pelo Mal das Folhas, pesquisadores da

Embrapa-CPAA, IAC e CEPLAC, estabeleceram programas de melhoramento genético

visando ao desenvolvimento de clones resistentes à doença (STERLING; RODRIGUEZ,

2011; GONÇALVES; MARQUES, 2104). No entanto, ao longo do tempo, observou-se que

18

muitos genótipos produtivos e parcialmente resistentes ao Mal das Folhas passaram a ser

afetados pela Antracnose (STERLING et al., 2011).

Até o início dos anos 2.000 o gênero Colletotrichum não causava danos de

importância econômica nos seringais. Entretanto, após meados desta década passou-se a

registrar danos frequentes de Antracnose em seringais do Baixo Sul baiano, notadamente nos

anos com condições climáticas mais favoráveis. Desse modo, passou-se a atribuir importância

às espécies deste gênero nos seringais, sendo isso atribuído principalmente à ampla

diversidade e capacidade de adaptação do patógeno ao hospedeiro. Isto possivelmente causará

alterações na dinâmica da relação patógento/hospedeiro, possibilitando surtos epidêmicos de

Antracnose, que aé então, era considerada uma doença secundária para a seringueira.

2.3 Antracnose foliar da seringueira

A Antracnose foliar é uma doença fúngica de grande importância na cultura da

seringueira. É causada por um complexo de fungos pertencentes ao gênero Colletotrichum,

cuja fase teleomórfica corresponde a Glomerella spp. (Stonem.) Spalding & Screnk, fungo da

divisão Ascomycota, ordem Diaphortales (KIRK et al., 2008; HIBBETT et al., 2007).

A doença tem causado sérios prejuízos em seringais de todo o mundo. Alguns

cientistas relatam danos causados pela Antracnose na Índia, Tailândia, Sri Lanka, China,

Oeste da África, Colômbia e também no Brasil (THAMBUGALA; DESHAPPRIYA, 2009;

STERLING et al., 2011; HENZ et al., 1992; SAHA et al., 2002; SIERRA HAYER, 2010). No

continente asiático, a Antracnose é considerada uma das principais causas do declínio nos

rendimentos da borracha natural (CAI et al., 2013).

No Brasil, a Antracnose foi relatada em praticamente todas as regiões onde a

heveicultura está presente, sendo primeiramente observada com grande frequência na região

Amazônica, associada ao Mal das Folhas (FURTADO, 2008).

Virgens Filho; Nakayama (2015) constataram forte ataque da Antracnose em algumas

áreas dos novos plantios dos imóveis associados à Cooperativa Ouro Verde Bahia, localizados

em Igrapiúna, neste estado, notadamente nos clones PMB 1 e CDC 312. No Sudeste da Bahia,

desde 2010, esta enfermidade, já presente na região, vem se constituindo em um dos

principais problemas fitossanitários da heveicultura, notadamente nos novos plantios.

Nos seringais jovens do clone PMB 1 com idade de até três anos, observou-se a morte

da gema apical em algumas plantas provocando desuniformidade no estande, tendo em vista

que o corte dos ramos atacados para tratamento da doença provoca atraso no crescimento das

19

mesmas. Nos seringais adultos foi recomendado o controle da doença com fungicida, através

de pulverizações via aérea ou terrestre, em intervalos semanais nos períodos de baixa

temperatura e alta umidade relativa do ar. Entretanto, nas condições destas plantações, este

método tem custo proibitivo, devido às despesas com pulverizações e eficácia moderada em

razão da complexidade da tecnologia de aplicação, acrescendo a isso o impacto ambiental.

Desse modo conclui-se que a solução mais eficaz para o problema é o controle por meio da

resistência genética (VIRGENS FILHO; NAKAYAMA, 2015 – Dados não publicados).

A respeito dos danos causados pela Antracnose na Bahia, Virgens Filho e Nakayama

(2015), reportaram que entre os anos de 2013 e 2014, ocorreram fortes epidemias em

seringais de 12 fazendas associadas à Cooperativa Ouro Verde (Coopeverde) em Igrapiúna,

Bahia, sendo que nos seringais mais velhos, os clones suscetíveis ao ataque de Phytophthora

spp. e Microcyclus ulei foram também afetados por Colletotrichum spp. O ataque deste

patógeno, assim como as desfolhas recorrentes, causado pelo ácaro (Calacarus heveae Feres e

Tenuipalpus heveae Baker) e percevejo-de-renda (Leptopharsa heveae Drake & Poor),

provocaram sérios danos na produção, sendo agravado pelas condições ambientais locais.

Aproximadamente 6.500 ha das 12 fazendas, além da área comercial das Plantações Michelin

da Bahia, sofreram ataques severos, de maneira que os seringais permaneceram desfolhados

por até seis meses consecutivos. Estes problemas em conjunto, causaram uma redução média

de 35,18% na produção dos seringais das fazendas associadas à Coopeverde, entre os anos

2013 e 2014.

Nos estados da região Norte, a doença ocorre em viveiro, jardim clonal e plantio

definitivo, causando lesões foliares, desfolhamento e mortalidade de ramos e galhos

(FURTADO; TRINDADE, 2005). No estado de São Paulo a doença também já assumiu

proporções epidêmicas, exigindo medidas de controle para evitar danos causados,

principalmente no painel (TRINDADE; FURTADO, 1997). Na Bahia, além da ocorrência no

painel, desde 2006, a Antracnose tem sido observada na forma de surtos esporádicos na parte

aérea e no caule de plantas jovens em reboleiras, no clone PMB 1 (VIRGENS FILHO, 2007).

Desde então, a enfermidade tem avançado de forma significativa, ocasionando danos

econômicos, o que vem preocupando os heveicultores da região.

Gasparotto et al, (2012) registraram lesões foliares, desfolhamento e mortalidade de

ramos e galhos causados pela Antracnose em plantas de Hevea brasiliensis, H. pauciflora, H.

guianensis, H. benthamiana e H. camargoana. Em Hevea brasiliensis a doença ataca diversas

partes da planta como folhas, caule, ramos, pecíolo, frutos, inflorescência, hastes, placas de

20

enxerto em jardim clonal e viveiros e até painéis de sangria, podendo causar a dieback

(FURTADO; SILVEIRA, 1992; SILVEIRA; CARDOSO, 1987; SILVEIRA et al., 1992a).

2.4 Características do gênero Colletotrichum

Colletotrichum (Glomerellaceae, Glomerellales, Ascomycota) é classificado como o

oitavo gênero de fungos fitopatogênicos mais importantes no mundo, sendo de grande

interesse econômico e científico, pois atinge uma grande variedade de culturas relevantes para

o mercado ao redor do mundo (DEAN et al., 2012). Possui distribuição cosmopolita, capaz de

crescer em uma ampla variedade de plantas hospedeiras (CANNON et al., 2012). O fungo

pode atuar como endofítico (ROCHA et al., 2011; MORENO, 2016) ou saprófito associado a

outros patógenos (FURTADO; SILVEIRA, 1992). O patógeno causa uma infinidade de

doenças em frutos pós-colheita, como Antracnose, Podridão de pedúnculo, Varicela em

manga, abacate e mamão (BAILEY; JEGER, 1992), sendo, portanto, notabilizado por causar

doenças de importância econômica para a agricultura no Brasil (SERRA; SILVA, 2004). Na

seringueira, pode causar a Antracnose foliar e Antracnose do painel de sangria.

O gênero Colletotrichum pode ter vários hospedeiros, como também mais de uma

espécie pode estar presente em um único hospedeiro (ROBERTS et al., 2012). O abacate e o

maracujá, por exemplo, podem ser infectados por C. gloeosporioides (Penz.) Penz. & Sacc.,

C. acutatum J.H. Simmonds e por C. boninense Moriwaki, Toy. Sato & Tsukib. (AVILA-

QUEZADA et al., 2007; ALMEIDA; COÊLHO, 2007; TOZZE JUNIOR et al., 2010). A

manga e o pêssego são hospedeiros tanto de C. gloeosporioides como de C. acutatum

(ADASKAVEG; HARTIN, 1997; AFANADOR-KAFURI et al., 2003; BERNSTEIN et al.,

1995; FITZELL, 1979; PLOETZ, 1994). O pimentão é hospedeiro de cinco espécies distintas

de Colletotrichum (TOZZE JÚNIOR, 2006). Em Anonna muricata foram isolados C.

theobromicola, C. tropicales, C. siamense, C. gloeosporioides, C. karstii, e uma espécie

indeterminada no complexo C. boninense, bem como uma espécie indeterminada no

complexo C. acutatum (ALVAREZ et al., 2014). Em feijão lima Sousa et al. (2018)

encontraram entre nove isolados obtidos nos estados do Piauí e Alagoas três espécies: C.

truncatum, C. cliviae e C. fructicola classificadas por análises de multilocus.

Ao estudar o agente causal da Antracnose na seringueira, percebe-se haver incertezas

quanto à identidade do mesmo. Isso porque as espécies de Colletotrichum possuem uma alta

plasticidade fenotípica podendo assim ocorrer erros de identificação e classificação quando

21

baseadas em caracteres morfológicos (MENEZES, 2006). Pode também ocorrer uma variação

na virulência, decorrente da ação de complexos de espécies associados à doença (BROWN;

SOEPENA, 1994; FERNANDO et al., 2000; GUYOT et al., 2001; SAHA et al., 2002;

GUYOT et al., 2005).

Alguns autores relatam que os isolados provenientes de Hevea sp. são pertencentes aos

complexos C. acutatum, C. gloeosporioides e C. boninense, descritos como os agentes causais

da doença na seringueira (PETCH, 1921; CARPENTER; STEVENSON, 1954;

JAYASINGHE et al., 1997; SAHA et al., 2002; GAZIS; CHAVERRI 2010; GAZIS et al.,

2011; DAMM et al., 2012a). O complexo C. acutatum contém mais de 29 espécies

estreitamente relacionadas, o complexo C. gloeosporioides compreende mais de 22 espécies e

o complexo C. boninense tem mais 18 espécies relatadas (DAM et al., 2012; WEIR et al.,

2012).

No Brasil, o estudo relacionado à identificação de espécies de Colletotrichum

associadas à Antracnose foliar da seringueira foi realizado com o uso de ferramentas

moleculares corroborando com a presença dos três complexos anteriormente relatados. Isso

permitiu concluir que os indivíduos do complexo de C. acutatum foram encontrados mais

frequentemente associados à doença (SARMIENTO, 2013).

2.5 Epidemiologia e sintomas

A seringueira está propicia ao ataque de Colletotrichum praticamente em todas as

fases de seu desenvolvimento; no entanto, Gasparotto e Pereira (2012) afirmam que o

patógeno afeta folíolos com até aproximadamente 15 dias de idade, ou seja, a planta está mais

suscetível nos estádios ontogênicos B (duração média são de dez dias), fase correspondente ao

alongamento celular, a qual apresenta dois sub-estádios; o B1, quando os folíolos estão

posicionados verticalmente com o ápice voltado para cima, fortemente carregados com

antocianina; e o B2, quando os ápices dos folíolos são voltados para baixo, de coloração

antociânica menos intensa, esta é a fase de maior velocidade de alongamento do eixo caulinar;

e estádio C (duração média de oito dias), quando os folíolos estão pendentes, flácidos e de cor

verde (HALLÉ et al., 1978).

As infecções são geralmente causadas pela dispersão intensa de conídios, embora

ascósporos também possam causar infecções. A disseminação é feita principalmente por

22

respingos de chuva, ventos e sementes infectadas, que ao serem semeadas, poderão induzir os

sintomas de damping–off.

Uma vez disseminados, os esporos do fungo entram em contato com o tecido do

hospedeiro germinam (4 a 6 horas), penetram nas células do hospedeiro através dos

apressórios, colonizam os tecidos da planta, e posteriormente surgem os primeiros sintomas

visíveis em folhas, inflorescências e frutos (MENEZES, 2002).

O complexo de espécies de Colletotrichum que ataca a seringueira induz diferentes

sintomas. Os sintomas iniciais da Antracnose foliar manifestam-se nas folhas novas,

brotações e frutos. Nas folhas, as lesões são arredondadas, diminutas com 1 a 3 mm de

diâmetro, geralmente numerosas e dispersas no limbo. Estas lesões apresentam a porção

central escura e margem estreita de coloração marrom-avermelhada. Quando o ataque é

intenso, as lesões podem interligar-se acarretando enrugamento do folíolo e consequente

queda.

As lesões podem ocorrer também nos pecíolos e frutos, causando rachaduras e

apodrecimento na casca. Nos ramos verdes, as infecções geralmente ocorrem nas suas

inserções com o galho, podendo causar quebra de ramos na base. Pode ocorrer desfolhamento,

morte da gema apical e seca descendente dos ramos, provocando desuniformidade no estande,

tendo em vista que o corte dos ramos atacados para tratamento da doença provoca atraso no

crescimento das mesmas (VIRGENS FILHO, 2017 – Dados não publicados). Uma

característica bastante peculiar da doença é a abundante esporulação conidial do patógeno

envolta por uma massa alaranjada que sai dos acérvulos (GASPAROTTO, 1997). Como o

patógeno é comum a diversos hospedeiros, isso favorece sua sobrevivência e dificulta seu

controle.

2.6 Controle da Antracnose

No controle da Antracnose, fungicidas a base de chlorothalonil, ou oxicloreto de cobre

têm sido utilizados de forma preventiva em viveiros e jardim clonal. No painel de sangria, o

controle pode ser efetuado através do pincelamento, ou pulverizações com fungicidas a base

de chlorothalonil, chlorothalonil + tiofanato metílico, zineb + óleo vegetal, propiconazele e

tebuconazole (FURTADO; TRINDADE, 2005). Em seringais adultos, devido ao porte

elevado das plantas, o uso de fungicidas é limitado pela complexidade de emprego da

tecnologia de aplicação e custo elevado notadamente nas áreas com topografia declivosa

(GASPAROTTO et al.,1985).

23

Apesar de utilizado, o controle químico além de caro e dispendioso, constitui sério

risco ao ambiente e à saúde humana, principalmente pela presença de resíduos tóxicos,

desequilíbrio biológico, eliminação de organismos benéficos e redução da biodiversidade

(BETTIOL et al., 2014).

Algumas tentativas utilizando o controle biológico em doenças da seringueira foram

feitas. No entanto, todos os trabalhos relacionados ao controle biológico de patógenos

altamente destrutivos, não conseguiram desenvolver uma tecnologia eficiente

(GASPAROTTO; PEREIRA, 2012). Pesquisas com o fungo Dicyma pulvinata (Berk & Curt),

no controle biológico do Mal das Folhas, não apresentaram resultados satisfatórios quando

realizadas em seringais monoclonais altamente suscetíveis (JUNQUEIRA; GASPAROTTO,

1991; TRINDADE; FURTADO, 1997; GASPAROTTO; PEREIRA, 2012).

São poucos os trabalhos envolvendo o controle biológico da Antracnose na

seringueira. Ogbebor e Adekunle (2005) estudaram o efeito de extratos vegetais na inibição

da germinação de esporos e no crescimento micelial de Corynespora cassiicola da

seringueira. Evueh e Ogbebor (2008) estudaram o efeito antagônico in vitro de fungos do

filoplano da seringueira no controle biológico de Colletotrichum spp. e observaram que os

fungos Trichoderma sp., Aspergillus sp., Gliocladium sp., Pleurothecium sp., Botrytis sp.,

Staphylotrichum sp., Trichocladium sp., Gonatorrhodiella sp., Trichophyton sp. e

Syncephalastrum sp. mostraram níveis diferentes de zonas de inibição do patógeno.

Uma das alternativas mais viáveis, práticas e econômicas para o controle de doenças

em culturas perenes de árvores altas é o controle genético (GASPAROTTO et al., 2012). Os

estudos genéticos relacionados à cultura da seringueira iniciaram no final da década de 1930

com a seleção de plantas resistentes ao Mal das Folhas, na cidade de Fordlândia, onde foram

desenvolvidos trabalhos voltados à melhoria de caracteres econômicos importantes como

rendimento e vigor da planta (GONÇALVES et al., 1996). No entanto, nenhuma ênfase foi

dada à Antracnose foliar, relacionado aos aspectos genéticos da resistência à doença naquele

momento pelo fato desta doença não apresentar importância econômica. Somente quando a

Antracnose do painel, causada por Colletotrichum spp., foi detectada em painéis de corte do

clone RRIM 600 por Silveira et al. (1992), foram iniciados estudos genéticos.

No Brasil, ainda são escassos os trabalhos relacionados à seleção de clones resistentes

à Antracnose. Furtado et al. (1994) avaliaram a queda foliar decorrente do ataque de

Colletotrichum no estado de São Paulo, e constataram que os clones GT1, PR 225 e IAN 873,

GT1, IAN 873, RRIM 600 e PR 107 sofreram menores perdas foliares e os clones RRIM 701,

PR 261, PB 217 e PB 235 sofreram maior desfolhamento. Gonçalves et al. (2002) objetivando

24

selecionar clones de seringueira promissores para a região do planalto do estado de São Paulo,

estudaram 16 clones da série IAC 300. Os autores concluíram que os clones IAC 330, IAC

331, IAC 333, IAC 336, IAC 338, IAC 339 e IAC 343 apresentaram alta resistência à

Antracnose do painel, já os clones IAC 340 e RRIM 600 foram suscetíveis.

O conhecimento do comportamento dos clones locais quanto à resistência ou

suscetibilidade ao patógeno é de extrema importância, sendo isto primordial para o sucesso de

um programa de melhoramento.

Clones de seringueira estão sendo desenvolvidos para a resistência a M. ulei, porém

não se sabe a reação dos mesmos a Colletotrichum spp. e nem se conhece ao certo as espécies

do gênero que podem estar envolvidas no patossistema local.

Programas de melhoramento genético da seringueira têm sido desenvolvidos no IAC

no estado de São Paulo e Ceplac em Ilhéus na Bahia, onde visam ganhos em produção, vigor

e resistência principalmente ao Mal das Folhas (GONÇALVES; MARQUES, 2014).

Segundo alguns estudiosos, os esforços no melhoramento para resistência ao M. ulei

falharam devido ao emprego da resistência vertical (monogênica), que se expressa contra

algumas raças do patógeno (HO, 1986; RIVANO et al., 2013). Este tipo de resitência propicia

o aparecimento de novos patótipos do patógeno, virulentos ao germoplasma melhorado

(CHEE et al., 1986; GASPAROTTO et al., 1990; KALIL FILHO; JUNQUEIRA, 1989;

MILLER, 1986).

Para Rivano et al. (2013) o mais preconizado é a obtenção da resistência horizontal

(poligênica), que é uniformemente eficiente contra todas as raças do patógeno (BERGAMIN

FILHO; AMORIM, 1996).

Alguns trabalhos conduzidos para a resistência ao Mal das Folhas, por exemplo,

inferiram que o clone MDF 180 expressa resistência horizontal. Oito clones foram

selecionados como possuidores de resistência ao M. ulei em experimentos conduzidos na

Bahia por Garcia et al. (2004). Tentativas para o uso dessas resistências por meio de

cruzamento com H. brasiliensis tem produzido numerosos clones resistentes com pouca

permanência, ou seja, resistência não durável (PINHEIRO; LIBONATI, 1971)

Devido ao intenso ataque de Colletotrichum spp., a seleção de materiais genéticos de

Hevea sp. para plantio em larga escala deve ser acompanhada de avaliações também quanto à

resistência à Antracnose. No entanto, pode ser que haja resposta diferenciada dos genótipos

do hospedeiro às distintas espécies do patógeno (SAHA et al., 2002; THAMBUGALA;

DESHAPPRIYA, 2009). Segundo Ho (1986), um dos exemplos pode ser obtido do

25

melhoramento para a resistência à Antracnose na Malásia, onde observou-se níveis variantes

de resistência aos diferentes ambientes experimentais.

2.7 Identificação de Colletotrichum spp.

Para se montar estratégias de manejo de uma determinada doença, é importante o

conhecimento prévio de funcionamento do patossistema envolvido. Para isso, o estudo da

caracterização e identificação do agente etiológico, constitui uma das principais etapas.

Na identificação de fungos fitopatogênicos em geral, algumas pesquisas utilizam

técnicas tradicionais de morfologia, como tamanho e formato de conídios. O gênero

Colletotrichum, especificamente, foi caracterizado por vários autores utilizando basicamente

as ferramentas da taxonomia clássica e aspectos culturais como a morfologia da colônia,

forma dos conídios, presença e forma de setas, hospedeiros (CANNON et al., 2012; LENNÉ

et al., 1984; SMITH; BLACK, 1990; MILLS, 1992; MENEZES, 2002). Jayasinghe (1998)

estudou os caracteres fisiológicos na identificação das espécies C. acutatum e C.

gloeosporioides, relacionados ao crescimento micelial, diferentes temperaturas de

crescimento, fontes de carbono e sensibilidade a fungicidas.

Devido à alta plasticidade fenotípica do gênero, suposta existência de formas

intermediárias entre espécies e alta variabilidade das espécies envolvidas, é muito difícil a

identificação baseada unicamente em caracteres morfológicos e culturais, os quais são

considerados insuficientes para a definição das espécies de Colletotrichum (WEIR et al.,

2012; SIERRA-HAYER, 2010; CANNON et al., 2000).

Existem limitações para a identificação de espécies muito próximas como C. acutatum

e C. gloeosporioides, principalmente, porque isolados destas espécies apresentam uma ampla

variação genética e morfológica (SUTTON, 1992). Weir et al. (2012) relataram uma variação

intrínseca de isolados, ao observarem que um isolado monospórico de C. kahawae subsp.

cigarro apresentou dois tipos de colônias. Os autores discutem também que um único isolado

pode apresentar setores na colônia e variar a aparência em resposta ao tempo e método de

preservação. Sendo assim, a utilização de ferramentas moleculares tem sido cada vez mais

utilizada no processo de identificação e caracterização de espécies pertencentes ao gênero

Colletotrichum (BUENO, 2005; NGUYEN et al., 2010).

O uso de marcadores moleculares tem sido bastante estudado, principalmente os

marcadores baseados nas reações de PCR devido à praticidade e à necessidade de pequenas

26

quantidades de DNA da amostra. O uso desses marcadores tem auxiliado na taxonomia

clássica de fungos (Williams et al., 1990).

Reação em cadeia de polimerase (PCR) permite a amplificação de regiões específicas

do genoma, como o Espaço Interno Transcrito (ITS), localizado entre regiões altamente

conservadas. Dentre as regiões do genoma estudadas para Colletotrichum, a ITS é a que

possui maior número de sequências depositadas, sendo considerada útil para a identificação

preliminar de espécie ou para colocá-lo em um complexo de espécie (CAI et al., 2009).

Vários estudiosos utilizaram a técnica de PCR na identificação de espécies de

Colletotrichum em várias culturas. Sreenivasaprasad et al., (1996) utilizaram a PCR para

detectar C. acutatum em frutos de morango. Sarmiento, (2013) baseou-se no PCR

convencional, para o estudo de espécies de Colletotrichum associados à Antracnose foliar da

seringueira. Freemam et al., (1998); Tozze, (2007) utilizaram essa técnica para diferenciar

populações de C. gloeosporioides, C. coccodes, C. kahawae, C. magna e C. orbiculare.

Regiões do genoma de fungos do gênero Colletotrichum têm sido analisadas

juntamente com o ITS utilizando múltiplos marcadores genéticos que levem a uma

identificação mais confiável das espécies, tais como as sequências dos genes que codificam

actina (ACT), quitina sintetase (CHS1), β-tubulina (TUB2), calmodulina (CAL),

gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase (GADPH), histona 3 (HIS3), glutamina-sintetase (GS) e

manganês-superóxido desmutase (SOD2) (Cannon et al. 2012; Damm et al., 2012a; Damm et

al., 2012b; Weir et al., 2012). As análises utilizando estes marcadores revelaram que

Colletotrichum compreende 10 complexos de espécies principais, bem como uma série de

pequenos grupos e espécies únicas.

A obtenção de segmentos amplificados em geral obedece as seguintes etapas; a)

extração de DNA molde, b) escolha do seguimento a ser amplificado e obtenção de primers

específicos para o reconhecimento desse seguimento, c) amplificação com a utilização de um

termociclador e d) leitura do produto amplificado após eletroforese e coloração.

2.8 Diversidade genética

O conhecimento prévio da diversidade genética dentro e entre populações de uma

espécie obtida por meio da aplicação de marcadores moleculares é uma etapa inicial

importante para o desenvolvimento de programas de melhoramento genético, uma vez que a

ausência da variabilidade genética inviabiliza sua execução (GEPST, 1993).

27

Técnicas moleculares têm sido utilizadas para estudar a diversidade de espécies de

Colletotrichum, dentre elas o uso do marcador molecular do tipo sequências simples repetidas

internas (ISSR) (SILVEIRA et al., 2016). Os marcadores ISSR tem-se mostrado muito

eficiente em estudos de diversidade e variabilidade genética de microrganismos,

principalmente com o gênero Colletotrichum spp. (RAMPERSAD, 2013; SHARMA;

KATOCH, 2014; MAHMODI et al., 2014), pois não necessitam de conhecimento prévio do

DNA a ser avaliado (BARTH et al., 2002) além de ser uma técnica de baixo custo, fácil uso e

de grande reprodutibilidade (MATTHEWS et al., 1999). Os marcadores ISSR são

amplificados via PCR e não necessitam do sequenciamento da região, resultando ainda na

obtenção de padrões altamente polimórficos (NAGAOKA; OGIHARA, 1997).

Nghia et al. (2008), utilizaram o marcador ISSR para estudar isolados de Corynespora

cassiicola provenientes de folhas de seringueira na Malásia. Guozhong et al. (2004)

estudaram a diversidade de isolados endofíticos obtidos de folhas de árvores na Guiana,

através do marcador ISSR e relataram que as populações de Colletotrichum spp. foram

altamente variáveis, observando diferenças genéticas inclusive entre isolados obtidos da

mesma porção da folha da qual foram obtidos.

Marques, (2008) estudaram a diversidade genética entre isolados de Colletotrichum

spp. obtidos de cafeeiro no estado do Paraná por meio de marcadores ISSR e concluíram que

a técnica foi capaz de mostrar diversidade genética entre os isolados. Ratanacherdchai et al.

(2010) observaram alta variabilidade de C. gloeosporioides e C. capsici em três genótipos de

pimenta utilizando marcadores ISSR. Parreira et al. (2016) também utilizaram o marcador

ISSR e enfatizaram a grande variabilidade genética entre isolados de C. graminicolla isolados

de milho. Silveira (2015), concluiu em seu estudo, que os marcadores ISSR foram eficientes

na caracterização taxonômica de isolados de C. acutatum e C. gloeosporioides associados a

flores de plantas cítricas com sintomas de Podridão Floral dos Citros e que existe alta

diversidade genética entre os isolados.

28

CAPÍTULO 1

TAXONOMIA DE FUNGOS EM SERINGAIS DO SUDESTE DA BAHIA

RESUMO

Muitas espécies de fungos têm sido relatadas no ambiente dos seringais cujos papéis ecológicos

são importantes como decompositoras e antagonistas, além daquelas comprovadamente

patogênicas à seringueira, tais como: Microcyclus ulei, agente etiológico do Mal das Folhas e

Colletotrichum spp. causadoras da Antracnose. As espécies não patogênicas à seringueira

merecem ser estudadas, pois, contribuem para a reciclagem de nutrientes e afetam a

sobrevivência de patógenos, além de haver a possibilidade da existência de espécies ainda

desconhecidas para ciência e/ou ainda não relatadas em seringueira. Foram realizadas coletas

de folíolos da copa e da serapilheira, onde procedeu-se ao isolameto direto e indireto dos

fungos, com objetivo de identificar mediante a taxonomia clássica, fungos presentes em

seringais no Sudeste da Bahia. As pesquisas revelaram a ocorrência de 29 gêneros de fungos,

dentre estes, alguns patógenos da seringueira e agentes biocontroladores. Os espécimes

fúngicos coletados encontram-se depositados no herbário Cepec-Fungi da Ceplac, Bahia.

Palavras-chaves: Diversidade de fungos, Hevea brasiliensis, Ascomycota

29

ABSTRACT

Many species of fungi have been reported in the environment of the rubber plantations where

they act as decomposers and antagonists, in addition to those proven to be pathogenic to

rubber trees, such as Microcyclus ulei, that causes SALB (South American Leaf Bligth) and

Colletotrichum spp. agent of Anthracnose. The species that are not pathogenic to rubber trees

deserve to be studied because they contribute to the recycling of nutrients and affect the

survival of pathogens, besides the possibility of the existence of species still unknown for

science and / or not yet reported in rubber tree. Collection of leaf of the tree top and leaf litter

were carried out, where direct and indirect fungal isolamets were carried out, aiming to

identify, through classical taxonomy, fungi present in rubber plantations in the Southeast of

Bahia. The researches revealed the occurrence of 29 genera of fungi, among them, some

rubber pathogens and biocontrol agents. The collected fungal specimens are deposited in

Cepec-Fungi Herbarium in Ceplac, Ilhéus, Bahia.

Key words: Fungal diversity, Hevea brasiliensis, Ascomycota

30

3.1 INTRODUÇÃO

A seringueira [Hevea brasiliensis (Wild. ex Adr. de Juss.) Muell-Arg] pertencente à

família Euphorbiaceae, é a principal fonte de borracha natural do mundo (SECCO, 2008).

Nativa da bacia amazônica, bioma de clima tropical úmido, é hospedeira de uma grande

diversidade de fungos, patogênicos e não patogénicos.

A seringueira adaptou-se muito bem as condições edafoclimáticas da região Sudeste

da Bahia, onde predomina clima quente e úmido, ambiente bastante propício ao crescimento e

sobrevivência dos fungos, pois constitui-se um sistema estável apresentando características de

floresta tropical (IAC, 2017).

Estima-se que existam cerca de 1,5 milhões de espécies fúngicas no mundo

(HAWKSWORTH, 2012), no entanto, menos de 5% foram descritas. A capacidade que os

fungos têm de produzir enzimas permite que eles atuem em praticamente todos os tipos de

substratos. Dentre estes, as folhas estão entre os mais relevantes para a colonização dos fungos,

por ser um material mais facilmente degradável e encontrado em maior abundância nos

ecossistemas naturais (DIX; WEBSTER, 1995).

O estudo da diversidade de fungos nos ambientes de seringais tem crescido

significativamente. Na Tailândia, foram identificados 447 espécies de fungos, provenientes da

serapilheira e troncos de seringueiras naquela região (SEEPHUEAK et al., 2010, 2011). Cerca

de 323 espécies de fungos foram reportados em plantas de Hevea brasiliensis, a nível mundial

(FARR; ROSSMAN, 2017). Na América do Sul, foi registrada a ocorrência de 120 táxons em

H. brasiliensis, incluindo espécies patogênicas e não patogênicas, sendo a grande maioria

pertencente ao filo Ascomycota (VIÉGAS, 1961). No Brasil, cerca de 53 espécies fúngicas

foram relatadas associadas a Hevea spp. (MENDES; URBEN, 2017; EMBRAPA, 2017).

Muitos destes fungos têm papéis ecológicos importantes dentro do seringal, alguns deles

são espécies hiperparasitas, comensais, biocontroladoras de patógenos e endófitos. Outros são

comprovadamente patogênicos à seringueira, como o Microcyclus ulei (P. Henn.) v. Arx, agente

etiológico do Mal das Folhas e Colletotrichum spp. (Corda) agentes da Antracnose. Os fungos

não patogênicos associados à cultura da seringueira são estudados porque, entre outros papéis,

interferem na sobrevivência de espécies causadoras de doenças na seringueira e atuam na

ciclagem de nutrientes. Além disso, é grande a possibilidade de existirem espécies desconhecidas

para a ciência cujo potencial ainda é desconhecido.

À medida que novas áreas estão sendo exploradas para o cultivo de seringueiras, a

obtenção de informações científicas sobre a micobiota associadas a este cultivo, torna-se de

31

grande importância. Diante do incipiente conhecimento a cerca da diversidade de fungos em

seringais no Sudeste da Bahia, o presente trabalho teve como principal objetivo isolar e

identificar fungos presentes em seringais desta região.

32

3.2 MATERIAL E MÉTODOS

3.2.1 Locais de coletas

As coletas foram realizadas nos períodos de abril de 2015 a julho de 2107, em seringais

adultos das Plantações Michelin da Bahia, Estação Experimental Djalma Bahia e Área

Experimental do CEPEC, localizados nos municípios de Igrapiúna, Una e Ilhéus,

respectivamente.

Foram coletadas, aleatoriamente, amostras de folíolos maduros da serapilheira (em

decomposição), da copa e amostras de solos. O material coletado foi etiquetado, armazenado

em sacos de papel, transportados ao Laboratório de Diversidade de Fungos do Centro de

Pesquisas do Cacau (CEPEC), localizado na Comissão Executiva do Plano da Lavoura

Cacaueira (CEPLAC), município de Ilhéus-BA, onde foram feitos os isolamentos dos fungos

associados às lesões e também a sinais típicos de fungos. As amostras foram fotografadas,

secadas em uma prensa de plantas e posteriormente examinadas. Amostras representativas

foram depositadas no herbário do CEPEC/CEPLAC.

3.2.2 Isolamento dos fungos

3.2.2.1 Isolamentos direto

Os microfungos foram retirados com o auxílio de uma agulha histológica e colocados

em meio de montagem permanente contendo resina PVLG (SILVA; GRANDI, 2011) para a

caracterização morfológica, mediante a consulta de literatura especializada. As espécies

encontradas nas regiões do folíolo também foram inoculadas em placas de Petri contendo meio

de cultura Batata-Dextrose-Ágar (BDA Difco®) para obtenção de culturas axênicas. Todos os

isolados identificados foram mantidos em Castellani (1967) e incorporados à coleção de fungos

do Laboratório de Diversidade de Fungos.

3.2.2.2 Isolamento indireto

Procedeu-se a desinfestação superficial das folhas pelo método de Pereira et al. (1993).

Primeiramente, as folhas foram imersas em álcool a 70 % por 30 segundos, em seguida em

hipoclorito de sódio a 2,5% por 1 minuto e posteriormente imersas em água destilada estéril por

33

duas vezes. Logo, os fragmentos foram secos em papel toalha e depositados em placas de Petri

contendo o meio de cultura Batata-Dextrose-Ágar (BDA) juntamente com o ácido tartárico a

0,1 % para a eliminação de bactérias e isolamento somente de fungos. As placas foram

mantidas em câmara BOD com temperatura de 24±1 °C, durante 8 dias.

3.2.2.3 Isolamento de amostras de solo

Para esse procedimento utilizou-se o método de diluição seriada. Amostras de solo

obtidas da rizosfera de seringais adultos foram coletadas em quatro pontos equidistantes,

formando desse modo uma amostra composta. Em um erlemeyer adicionou-se 1 g da amostra

de solo e 9 mL de água destilada, homogeneizou (diluição 10-1

). Em seguida com uma pipeta

retirou 1 mL da solução e adicionou em 9 mL de água contida em um tubo de ensaio, diluição

de 10-2

, e a partir da diluição 10-2

retirou-se novamente 1 mL e adicionou em 9 mL de água

contida em um outro tubo de ensaio, desta forma obteve a diluição 10-3

, até a diluição 10 -8

.

Para cada amostra, foram espalhados em placas de Petri contendo BDA acidificado, 100

µL da solução. As placas foram incubadas a 24 ºC e observadas diariamente até o aparecimento

dos primeiros sinais de fungos. Logo, foram repicadas e após o crescimento da cultura pura,

feitas lâminas para posterior identificação do fungo.

34

3.3 RESULTADOS E DISCUSSÃO

3.3.1. Isolamento e identificação de fungos

Foram identificados com base nas caracterizações morfológicas 29 táxons, sendo vinte e

seis determinados em nível de espécie (Arthrobotrys arthrobotryoides, Aschersonia cubensis,

Atractilina parasitica, Cladosporium cladosporioides, Cylindrocarpon cf. candidulum,

Corynespora cassiicola, Curvularia eragrostidis, Curvularia lunata var. aeria, Dimerina

mindanaensis, Dimerosporiella cf. paulistana, Fusarium decemcellulare, Gliocladiopsis tenuis,

Hansfordia pulvinata, Irenopsis vincensii, Lasiodiplodia theobromae, Leptomeliola uvariae,

Nigrospora sphaerica, Nodulisporium ochraceum, Oidium heveae, Periconia cookei,

Pestalotiopsis suffocata, Phyllachora huberi, Spermatoloncha maticola, Spermosporella

irenopsidis sp. nov., Spiropes helleri e Trichoderma atroviride).

3.3.2. Taxonomia

1. Arthrobotrys arthrobotryoides (Berl.) Lindau (1906). Figura 1A-B.

Colônias de crescimento lento, hialinas. Conidióforos elevados sobre o substrato, não

ramificados ou ramificados ocasionalmente, 300–450 μm. Conídios elipsoides, hialinos, lisos,

com 1 septo central, 20–30 x 10,5–16 μm, clamidósporos presentes.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Ilhéus, Bahia, CEPLAC/CEPEC, sobre folhas em

decomposição de Hevea brasiliensis (clone SIAL 1005). 10/05/2015, T.R.Santos / J.L.Bezerra

(CEPEC 2503).

Comentários: Espécie cosmopolita comum em solos tropicais, bastante estudada no controle

biológico de fitonematoides (KENDRICK, 2000; ALEXOPOULOS et al., 1996).

2. Aschersonia cubensis Berk. & M.A. Curtis 1868, J. Linn. Soc., Bot. 10 (nº 46): 351. Figura

1C-D.

Estromas circulares, alaranjados, carnosos, pluriloculares, formados por hifas densamente

entrelaçadas, hialinas, lisas, de paredes grossas. Lóculos periféricos, subglobosos. Conidióforos

hialinos, simples ou ramificados, alongados. Fiálides delgadas, 10–20 × 1,5–2,0 μm. Paráfises

ausentes. Conídios unicelulares, hialinos, fusoides, de paredes lisas, 9–12, 5 x 3–5 μm.



35

Material examinado: BRAZIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin da Bahia, sobre

folhas de Hevea brasiliensis, 29/07/17, T.R. Santos e J.L. Bezerra (CEPEC 2493).

Distribuição geográfica: Taiwan, USA, Brasil.

Comentários: Espécie comum no Brasil, exercendo controle biológico natural principalmente

sobre cochonilhas em várias plantas.

3. Atractilina parasitica (G.Winter) Deighton & Piroz., Mycol. Pap. 128: 34 (1972). (Fig. 3).

Hifas hialinas a oliváceas, cilíndricas, 10–15 x 1,5–3,0 µm associadas às colônias de Irenopsis

vincensii, ramificadas, septadas, aderidas às hifas hospedeiras. Sinêmios cilindráceos, pouco

fasciculados, não ramificados, 100–584 µm de altura, de textura porrecta, 24–48 µm diâm. na

parte mediana, formados por hifas paralelas, anastomosadas, castanhas claras 1–4 µm de diâm;

Conidióforos não ramificados, 2,5–4 µm de diâmetro. Células conidiógenas poliblásticas,

simpodiais, 2–3 µm de diâmetro, retas, cilíndricas, de paredes uniformemente delgadas, com 2–

3 cicatrizes pouco conspícuas por célula, não pigmentadas. Conídios oliváceos a castanhos

claros, 26–40 x 4–6 µm, de paredes levemente rugosas na parte mediana, fusoides a levemente

obclavados, rostrados, retos ou ligeiramente recurvados, com três septos transversais; célula

distal atenuada, 10–16 µm de comprimento, capitada, até 2 µm de diâm. na parte dilatada; base

atenuada, obtusa.

Material examinado: BRAZIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin da Bahia, sobre

Irenopsis vincensii em jardim clonal Hevea brasiliensis, 06/08/16, T.R. Santos e J.L. Bezerra

(CEPEC 2487).

Distribuição geográfica: Panamá, Trópicos e subtropicos.

Comentário: Os caracteres do espécime estudado são típicos de A. parasitica com algumas

variações quanto às dimensões dos conídios que apresentaram dimensões menores do que as

registradas em Ellis (1971) que foi de (35–65 x 5–8 µm). Trata-se de uma espécie comumente

associada a colônias de Asterinella, Balladyna, Irenopsis e Meliola na Amazônia (ELLIS,

1971).

4. Cladosporium cladosporioides (Fresen.) G.A. de Vries, Contrib. Knowledge of the Genus

Cladosporium Link ex Fries: 57 (1952). Figura 1E.

Colônias efusas, verdes-olivas a marrons oliváceas. Conidióforos macronematosos, marrons

oliváceos, lisos, 350 x 2–6 µm. Ramoconídios 0-1 septado, oliváceos, lisos, 30 x 2–5 µm.

Conídios não septados, elipsoides, oliváceos, lisos, 3–9 x 2,5–4 µm, em cadeias longas

ramificadas.


36

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, folhas de Hevea

brasiliensis. 05/08/2016, T.R. Santos / J.L. Bezerra (CEPEC 2504).

Distribuição geográfica: Cosmopolita.

Comentários: É uma espécie bastante comum, ocorrendo como patógeno secundário em

plantas. Espécie abundante em seringueira.

5. Corynespora cassiicola (Berk. & M.A. Curtis) C.T. Wei, Mycol. Pap. 34: 5 (1950).

Colônias efusas, marrons acinzentadas, micélio superficial e também imerso; estromas

ausentes. Conidióforos marrons claros com até nove proliferações suscessivas, 100–700 x 5–10

µm. Conídios solitários ou em cadeias, obclavados a cilíndricos, retos ou incurvados, marrons

oliváceos, lisos com até 20 pseudoseptos (40–220 x 9–22 µm).

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, Associado a

Irenopsis vincensii 11/07/2016, T.R.Santos / J.L.Bezerra (CEPEC 2505).


Comentários: Espécie cosmopolita muito comum nos trópicos, causando manchas foliares em

inúmeros hospedeiros (ELLIS, 1977). Patógeno de seringueira.

6. Curvularia eragrostidis (Henn.) J.A. Mey., Publ. Inst. nat. Étude agron. Congo belge, Sér.

sci. 75: 183 (1959). Figura 1F.

Conidióforos simpodiais, marrons, não ramificados. Conídios elipsoides, 3-septados, marrons,

lisos, com o septo central mais escuro, 19–33 x 10–16 µm.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, face adaxial de

folhas da copa de Hevea brasiliensis (clone 322). 29/07/2017, T.R.Santos / J.L.Bezerra

(CEPEC 2506).

Distribuição geográfica: Austrália, Ceilão, Congo, Gana, Guiné, Hong Kong, India, Jafa,

Malásia, Nigéria, Sabah, Serra Leona, Ilhas Salomão, Trinidade, USA, Brasil.

Comentários: É uma espécie polífaga, isolada de inúmeros hospedeiros vegetais e do solo.

Espécie com pouca variação quanto ao tamanho dos conídios relatados na literatura (ELLIS,

1976). Patógeno em pupunheira.

7. Curvularia lunata var. aeria (Bat., J.A. Lima & C.T. Vasconc.) M.B. Ellis, Mycology

Paper 106: 34 (1966). Figura 1G.

37

Conidióforos formando corêmios, negros, ramificados, conídios curvos, marrons, com uma

célula central mais desenvolvida e mais escura, 3-septados, lisos, não constrictos nos septos,

15–30 x 7,5–14 µm.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, face adaxial de

folhas da copa de Hevea brasiliensis (clone Fx 3864). 29/07/2017, T.R.Santos / J.L.Bezerra

(CEPEC 2507).

Distribuição geográfica: Países tropicais.

Comentários: Isolada do ar atmosférico, plantas e outros substratos. Segundo a descrição de

Ellis (1976), os conídios de C. lunata var. aeria apresentam dimensões de 18-32 x 8-16 µm, ou

seja, com pouca variação quando comparadas com as encontradas no presente estudo.

8. Cylindrocarpon cf. candidulum (Sacc.) Wollenw., Z. Parasitkde 1(1): 160 (1928). Figura

2E.

Peritécios não observados. Macroconídios hialinos, cilíndricos, retos ou encurvados, às vezes

falciformes, 50–82 x 5–7 µm, 1–4 septados, com extremidades obtusas. Microconídios

hialinos, elipsoides, unicelulares, abundantes. Fiálides ramificadas.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, folhas em

decomposição de Hevea brasiliensis (clone FDR 5788). 09/05/2016, T. R. Santos / J. L.

Bezerra (CEPEC 2508).

Distribuição geográfica: Estados Unidos, Caribe, Equador, Europa, Índia, Japão, Brasil

(presente trabalho).

Comentários: A fase teleomórfica Neonectria veuillotiana (Sacc. & Roum.) Samuels &

Mantiri não foi encontrada, por essa razão há necessidade da confirmação através de novas

coletas com a presença do teleomorfo ou por análise molecular. Não foi encontrada referência

deste táxon para o Brasil.

9. Dimerina mindanaensis (Henn.) Hansf., Mycological Paper 15: 56 (1946). Figura 2F.

Micélio fino, desenvolvido sobre as hifas de Irenopsis vincensii, reticulado, formado de hifas

subhialinas à oliváceas, espaçamente septadas, não hifopodiadas. Peritécios superficiais,

globosos, negros, ostiolados, não setosos, 70–126 x 60–110 µm; paredes pseudo

parenquimáricas, formados por uma camada de células escuras poligonais. Ascos numerosos,

clavados, bitunicados, sésseis a curto pedicilados, octospóricos (oito esporos), 50 x 12,5 µm.

Paráfises delgadas, filiformes, evanescentes. Ascósporos oblongos à subclavados, arredondados

38

nas extremindades, hialinos, lisos, 1–septados, levemente constrictos, 10–17,5 x 4–5 µm, com

célula superior, mais larga.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, folhas em

decomposição de Hevea brasiliensis. 15/01/2016, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2509).

Distribuição geográfica: Uganda.

10. Dimerosporiella cf. paulistana Speg., Revista Mus. La Plata 15: 10(1908). Figura 1H.

Ascomas superficial sobre micélio de Irenopsis vincensii. Subglobosos, piriformes,

alaranjados, glabros, ostiolados, 170–212 µm de diâmetro, de paredes finas, textura

epidermoidea. Ascos clavados de ápice espessado, com anel apical. Paráfises não observadas.

Ascósporos elipsoides, hialinos, bisseriados, 1–septados, lisos, 11–16 x 3–3,5 µm.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, face abaxial de

folhas de Hevea brasiliensis (clone CDC 312). 14/06/17, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC

2498).

Comentários: As duas espécies mais próximas pela chave de Rossmam et al., (1999) são

Dimerosporiella sensitiva (Rehm) Rossmam & Samuels e D. paulistana. A diagnose original

da primeira espécie descreve peritécios setosos, diminutos de até 60 µm, de ocorrência

conhecida apenas para o estado do Rio de Janeiro; a segunda espécie apresenta características

mais semelhantes ao material em estudo, embora os ascósporos sejam mais largos (12–14 x

4–4,5 µm) e o seu hospedeiro seja do gênero Schiffnerula Höhn, sendo uma espécie referida

apenas para o estado de São Paulo, Brasil.

11. Fusarium decemcellulare Brick, Jber. Vereinig. Angew. Bot. 6: 227 (1908). Figura 2L.

Colônias de pigmentação rosea, microconídios ovais, hialinos, 0-1 septados produzidos em

falsas cabeças ou longas cadeias, variando de 7,5–10 x 2,5–4 µm. Monofiálides e esporodóquis

presentes. Macroconídios curvos a cilíndricos com 6–10 septos, variando de 76 – 95 x 5–6 µm.

Célula apical arredondada e célula pé característica.


folhas de Hevea brasiliensis. 04/04/15, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2510).

Comentários: Não é conhecida como patogênica à seringueira.

12. Gliocladiopsis tenuis (Bugnic.) Crous & M.J. Wingf., Mycol. Res. 97(4): 446 (1993).

Figura 1I.

39

Colônias marrons a marrons douradas, com odor desagradável. Vesículas ausentes.

Conidióforos penicilados, com ramos primários, secundários, terciários e quaternários.

Fiálides cilíndricas à doliformes, com colaretes presentes. Eixo central do conidióforo

terminando em uma fiálide fértil alongada frequentemente ultrapassando os ramos fialídicos.

Conídios 0–1 septados, cilíndricos, hialinos, lisos, 11–22 x 2–4 µm.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, folhas de Hevea

brasiliensis (clone Fx 3864). 24/11/2016, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2501).

Distribuição geográfica: Índia, Sudeste Asiático.

Comentários: Espécie relatada em Indigofera sp., Psidium guajava, Shorea robusta, Camelia

sinensis (CROUS; WINGFIELD, 1993).

13. Hansfordia pulvinata (Berk. & M.A. Curtis) S. Hugles, Can. J. Bot. 36: 771 (1958).

Colônias acinzentadas. Conidióforos muito variáveis no tamanho 2–5 µm de espessura,

ramificados; ramos terminando em célula conidiógena apical. Células conidiogênicas

subhialinas, lisas 20 x 1,5–4 µm. Conídios esféricos ou subesféricos, marrons pálidos,

verrucosos, 6–7 µm de diâmentro.


folhas de Hevea brasiliensis. 11/08/2016, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2511).


Comentários: Espécie cosmopolita, hiperparasita, com potencial para uso como agente

biocontrolador de Microcyclus ulei, causador do Mal das Folhas da seringueira (MELLO et al,

2006).

14. Irenopsis vincensii D.B. Pinho & O.L. Pereira, in Pinho, Honorato, Firmino, Hora,

Mizubuti & Pereira, Tropical Plant Pathology 39(1): 90 (2014). Figura 1J.

Colônias anfígenas, coalescentes, negras. Hifas marrons escuras, septadas, ligeiramente

onduladas, hifopodiadas, marrons escuras, 22–36 x 3–6 µm. Hifopódios (apressórios) alternos,

antrorsos, retos ou ligeiramente curvos; célula do pedicelo marrom escura, cilíndricas a

cuneadas, 8–10 × 7–10 µm; células capitadas marrons escuras, arredondadas a angulosas,

raramente inteiras, globosas, oblongas a piriformes, 12–20 x 10–15 µm. Fiálides mucronadas,

marrons misturadas com os hifopódios, opostas ou alternas, 17–22 x 5–7 µm. Peritécios negros,

pouco agregados ou dispersos, globosos, verrucosos, 120–270 μm de diâmetro. Setas periteciais

marrons claras a marrons escuras, 2 a 8 por peritécio, lisas, retas, de ápice retorcido ou

uncinulado, 40–70 x 5–9 µm. Ascos evanescentes. Ascósporos hialinos quando imaturos,

40

castanhos a castanhos escuros quando maduros, oblongos, lisos contrictos no septo, 4–septados,

34–48 x 13–22 μm.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, faces adaxial e

abaxial de folhas de Hevea brasiliensis do clone CDC 312. 29/07/2016, T. R. Santos / J. L.


Distribuição geográfica: Peru e Brasil.

Comentários: Espécie bastante comum nas áreas coletadas, comumente hiperparasitada,

descritas sobre folhas de H. brasiliensis no estado de Espírito Santo e Pará, sem registro até o

momento para Bahia. Irenopsis vincensii foi proposto como novo nome para o mofo negro de

H. brasiliensis (PINHO et al., 2014).

15. Lasiodiplodia theobromae (Pat.) Griffon & Maubl. 1909. Figura 2I.

Colônias negras flocosas, picnídios estromáticos negros. Conidióforos cilíndricos hialinos;

paráfises filiformes presentes. Conídios marrons, 1-septado, estriados, 22,5 –31,4 x 13,8 – 16,6

μm.


abaxial de folhas de Hevea brasiliensis do clone CDC 312. 29/07/2016, T. R. Santos / J. L.



Comentários: É um patógeno comum em numerosos hospedeiros nos trópicos e subtrópicos

(ALVES et al., 2008). Patógeno de seringueira.

16. Leptomeliola uvariae (Rehm) S. Hughes, Mycological Papers 166: 203 (1993). Figura 1L.

Colônias anfígenas, superficiais, compostas por hifas subhialinas a marrons pálidas, com

espessura de 3–4 μm. Pseudotécios isolados, marrons, globosos a subglobosos, 190–230 ×

148–253 μm, ostiolados, setosos; Setas simples, retas, cilíndricas, ápice obtuso, septadas,

marrons escuras, 105–212 × 7–8 μm; Perídio composto por muitas camadas de células

angulares de paredes grossas. Ascos bitunicados, curto-estipitados, clavados, 8-esporos, 92–

115 × 35–45 μm; Paráfises ausentes. Ascósporos clavados, hialinos, tornando-se marrons

claros, 27,5–47,5 × 9–15 μm, 3–septados, fortemente constrictos septo mediano, com as duas

células superiores mais largas.


abaxial de folhas de Hevea brasiliensis. 13/12/2016, T.R.Santos / J.L.Bezerra (CEPEC 2513).

Distribuição geográfica: Filipinas, Uganda, Gana, Serra Leona, Congo, Porto Rico, Brasil.

41

Comentários: O material estudado corresponde a descrição atualizada da espécie

(SILVÉRIO et al., 2011). Este é o primeiro registro de L. uvariae parasitando Irenopsis

vincensii, e também a primeira ocorrência citada para a Bahia.

17. Nigrospora sphaerica (Sacc.) E.W. Mason, Trans. Br. mycol. Soc. 12(2-3): 158 (1927).

Figura 2C-D.

Colônias cinza negras, flocosas. Micélio aéreo bem desenvolvido. Conidióforos curtos,

cilíndricos, 4–8 µm de largura. Células conidiógenas infladas, marrons claras, 8–11 µm de

diâmetro. Conídios marrons escuros, unicelulares, elipsoides a subglobosos, lisos, 14–20 µm

de diâmetro.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, sob folhas da copa

de Hevea brasiliensis (clone FDR 5788). 18/06/17, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2502).


Comentários: É uma espécie polífaga encontrada frequentemente em países tropicais.

Espécie com grande potencial para controle biológico de patógenos de planta (KIM et al.,

2001).

18. Nodulisporium ochraceum Preuss, Klotzschii Herb. Viv. Mycol.: nº. 1272 (1849). Figura

2A-B.

Colônias efusas, marrons a negras, velutinas, micélio parcialmente superficial, estromas

ausentes, setas e hifopódios ausentes, conidióforos macronematosos, não sinematosos,

ramificados próximo ao ápice, flexuosos, marrons e lisos. Células conidiógenas poliblásticas,

íntegradas, simpodiais, denticuladas. Conídios solitários, secos, acropleurógenos, simples,

unicelular, elipsoides, hialinos, lisos, 0-septados, 3,1–9,5 x 2,3–4,5 μm.

Material examinado: Ilhéus, Bahia, CEPLAC/CEPEC, sobre folhas em decomposição de

Hevea brasiliensis (clone SIAL 1005). 12/01/17, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2500).


Comentários: Este táxon corresponde ao morfo assexuado de Xylariaceae (ELLIS, 1971; JU e

ROGERS, 1996).

19. Periconia byssoides Pers., Syn. meth. fung. (Göttingen) 1: 18 (1801).

Colônias efusas, marrons compactas, micélio parcialmente imerso e parcialmente superficial;

estromas não observados em cultura; hifopódios ausentes; conidióforos macronematosos,

estiptados com a cabeça esférica, não ramificados, 470–700 µm; células conidiogênicas

42

elipsoides, distintas; conídios catenulados, subglobosos, marrons, verrucosos, variando de 12–

16 x 12–17 µm.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, sob folhas da copa

de Hevea brasiliensis. 09/07/2017, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2514).


Comentários: Espécie extremamente comum, em diversos hospedeiros e substratos.

20. Pestalotiopsis suffocata (Ellis & Everh.) J.G. Wei & T. Xu, Wei, Xu, Guo & Pan,

Mycosystema 24(4): 488 (2005). Figura 2G.

Conídios cinco celulares, fusiformes, estreitos, Concolor, 18–28 x 5–7 µm; células

intermediárias uniformemente oliváceas; apêndices apicais em número de três, 28–30 µm.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Cepec, Ilhéus sob folhas da copa de Hevea

brasiliensis. 29/11/2016, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2515).

Distribuição geográfica: Texas e Brasil.

Comentários: Esta espécie pertence à secção Quinqueloculatae de GUBA (1961), que utiliza o

nome Pestalotia ao invés de Pestalotiopsis. Este autor separa as espécies em base

morfológicas, levando em consideração forma e tamanho de conídios e dos apêndices conidiais.

Este critério tem sido questionado em função de estudos moleculares modernos (YU et al.,

2013; LIU et al., 2017).

21. Phylachora huberi Henn., Hedwigia 39 (Beibl.): (78) 1900.

Estromas hipófilos, negros, até 1 cm de diâmetro. Peritécios elipsoides, 280–380 x 70–135

µm. Clípeo negro de 60–70 µm, intraepidérmico. Ascos clavados, unitunicados, 8 esporos,

50–65 x 15–20 µm. Paráfises filiformes. Ascósporos oblongos a elipsoides, hialinos,

unicelulares variando de 14–18 x 8–10 µm.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, sob folíolos de

Hevea brasiliensis em viveiro. 09/02/2017, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2516).

Comentários: Patógeno de seringueira.

22. Trichoderma atroviride P. Karst., Bidr. Kann. Finl. Nat. Folk 51:363 (1892). Figura 2H.

Colônias esverdeadas de crescimento rápido. Conidióforos ramificados crucialmente. Células

conidiógenas ampuliformes. Conídios verdes escuros, subglobosos, lisos, 2–3,5 x 2–3 µm, odor

característico, semelhante a coco ralado.



43

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin, solo de seringal.

17/11/2016, T. R. Santos / J. L. Bezerra (CEPEC 2518).


Comentários: Espécie característica pelo odor de coco ralado quando em cultura, com

potencial para agente bicontrolador (McLEAN et al., 2012).

Figura 1. Arthrobotrys arthrobotryoides (A-B). A. conídios e conidióforos; B. conídios. Aschersonia

cubensis (C-D) C. conídios (seta) e conidióforos; D. estroma. Cladosporium

cladosporioides. E. conídio e conidióforo. Curvularia eragrostidis. F. conídios e

conidióforo. Curvularia lunata var. aeria. G. conídios. Dimerosporiella cf. paulistana. H.

ascósporos expulsos através do ostíolo. Gliocladiopsis tenuis. I. conidióforo ramificado e

conídios. Irenopsis vincensii. J. primórdio peritecial, hifas, hifopódios, ascósporo

germinando (seta). Leptomeliola uvariae. L. setas periteciais, ascos e ascósporos. Barras: A

= 37 µm; B = 20 µm; C = 15 µm; D = 20 µm; E = 3,5 µm; F = 20 µm; G = 20 µm; H = 15

µm; I = 43 µm; J = 12 µm; L = 40 µm.

Fonte: Dados da pesquisa.

I J

L

L

A B D C E

F

G

H


44

Figura 2. Nodulisporium ochraceum (A-B) A. conídios; B. conidióforos. Nigrospora sphaerica

(C-D) C. conídios; D. célula conidiogênica. Cylindrocarpon cf. candidulum. E.

conídios e células conidiogênicas. Dimerina mindanaensis. F. peritécio rompido, ascos

e ascósporos. Pestalotiopsis suffocata. G. conídio. Trichoderma atroviride. H.

conidióforo e conídios. Lasiodiplodia theobromae. I. conídios uniseptados. Spiropes

helleri. J. conídio. Fusarium decemcellulare. L. conídios. Barras: A = 12 µm, inset = 14

µm; C = 20 µm; E = 50 µm; F = 25 µm; G = 5 µm; H = 10 µm; I = 25 µm; J = 14 µm; L

= 23 µm.


A B C ED

F G H

I J L


45

Figura 3. Atractilina parasitica. A. Hifas de A. parasitica associadas com hifas de Irenopsis

vincensii. B. Conídio com extremidade capitada. C. Sinêmios. Barra: B = 10 µm; C

= 70 µm.

Fonte: Dados da pesquisa

46

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49

CAPÍTULO II

4. Spermosporella irenopsidis sp. nov. and Spermatoloncha maticola, parasitic on black

mildew (Irenopsis vincensii) of rubber in Bahia, Brazil

Artigo submetido à revista Rodriguésia

TACILA RIBEIRO SANTOS1, EDNA DORA MARTINS NEWMAN LUZ

2, HARRY C.

EVANS3, JOSÉ LUIZ BEZERRA

1*

1 Universidade Estadual de Santa Cruz, PPGPV, Ilhéus, BA, Brasil.

2 Comissão Executiva do Plano da Lavoura Cacaueira, Ceplac/Cepec, Km 22, Rod.

Ilhéus/Itabuna Caixa Postal 7, Cep: 45.600-000, BA, Brazil.

3 CAB International, Egham, Surrey TW20 9TY, U.K.

*Corresponding author: José Luiz Bezerra, [email protected].

Abstract

A new species of the genus Spermosporella and a new record of Spermatoloncha maticola are

reported parasitizing the black mildew (Irenopsis vincensii) on leaves of Hevea brasiliensis in

the Bahia, Brazil. Both species are described and illustrated and all Spermosporella species

are compared.

Key words

Fungicolous fungi, Hevea brasiliensis, Meliolales, taxonomy.

4.1 Introduction

In Brazil, commercial rubber Hevea brasiliensis (Willd. ex A.Juss.) Müll. Arg., is

attacked by several pathogenic fungi. Among them, Irenopsis vincensii D.B. Pinho & O.L.

Pereira causes black mildew disease of rubber. Irenopsis vincensii was reported and well

documented by Pinho et al. (2014) in the Brazilian states of Espírito Santo and Pará having as

heterotypic synonyms the binomials Meliola heveae Vincens and Irenopsis heveae Hansf.

During a survey of fungi on rubber trees, conducted in August 2016 in Michelin

Plantations of Bahia, municipality of Igrapiúna, leaf samples were collected showing colonies

of the black mildew (I. vincensii).

50

In the laboratory, it was found that I. vincensii colonies were parasitized by two

fungicolous fungi, corresponding to Spermatoloncha maticola Speg. and a new species of the

genus Spermosporella Deighton.

The genus Spermosporella is a known parasite of Meliola Fr. species in Africa, Asia

and North America (Deighton 1969; Deighton & Pirozinsky 1972; Sutton 1973; Hawksworth

1981; McKenzie 1992; Hughes 1993; Matsushima & Matsushima 1995; Seifert & Gam,

2011), but has not yet been recorded on the genus Irenopsis F. Stevens. Four species of the

genus Spermosporella are known (Deighton 1969; Deighton & Pirozinsky 1972; Sutton 1973;

Matsushima & Matsushima 1995) which differ morphologically from the species studied.

The monotypic species Spermatoloncha maticola has been reported in association

with Meliola clerodendricola Henn. on leaves of IIex paraguariensis A. St.-Hil. (yerba maté)

in Argentina (Spegazzini 1908; Hawksworth 1981) and later it was found in Uganda on

Clerodendrun capitatum (Willd.) Schumcch. & Thonn. parasitizing the same species of

Meliola (IMI 102852b).

Species of the Meliolales are subject to parasitism by several genera of fungicolous

fungi. Phaeostigme Syd. & P. Syd; Eriocercospora Deighton, Ramichloridium Stahel ex de

Hoog and Spiropes Cif. have all been reported from Brazil (Batista et al. 1966; Caliman

2015). However, there are no references to Spermosporella and Spermatoloncha associated

with Meliolales in Brazil.

Here, we describe a new species of the genus Spermosporella and report a new record

of Spermatoloncha maticola associated with Irenopsis vincensii on Hevea brasiliensis leaves

in Bahia, Brazil.

4.2 Materials and Methods

Leaf samples from the rubber tree clone CDC 312, colonized by a black mildew in a

clonal garden located in Michelin Plantations of Bahia, Igrapiúna city, Bahia, Brazil, were

collected in August 2016.

In the Fungal Diversity Laboratory, at the Cocoa Research Center (Cepec),

municipality of Ilhéus, Bahia, the material was examined under a stereoscopic microscope

(MOTIC SMZ -168). Reproductive and somatic structures of the fungi associated with the

black mildew were morphologically characterized and photographed using a LeicaDM500

microscope coupled with a digital camera Sony Cyber-shot DSC-WX30. The measurements

of the structures were performed using a calibrated ocular micrometer. For observation of

51

intact mycelia, a modified Callan & Carris (2004) technique was used, with the cellulose

acetate being replaced with fast drying colorless nail enamel (Risqué Technology), and

followed by mounting in PVLG (polyvinyl alcohol + lactic acid + glycerol) (Hosagoudar &

Kapoor 1985). The micrographs were done by camera lucida drawings, copied on drawing

paper with India ink and scanned.

For taxonomic identification, keys and descriptions of genera and species of

mycoparasitic fungi on Meliolales were consulted in the literature (Deighton 1969; Deighton

& Pirozinsky 1972; Sutton 1973; McKenzie 1992; Matsushima & Matsushima 1995; Seifert

& Gam, 2011). Samples were deposited in the CEPEC-Fungi Fungarium (Ceplac, Ilhéus-

Bahia, Brazil).

4.3 Results

4.3.1 Taxonomy

1. Spermosporella irenopsidis J.L. Bezerra, T. R. Santos, E.D. Luz sp. nov. (Figs. 1 and 2a-b).

MycoBank 819220

Etymology: Referring to the host fungus Irenopsis.

Diagnosis: Colonies whitish, effuse. Mycelium of repent, hyaline, septate hyphae, 2–2.5 µm

diam. Conidiogenous cells intercalary, continuous, 1-celled, ampulliform, 8–20 x 4–8 µm.

Conidia hyaline, smooth, fusiform, straight to slightly curved, 3-septate, attenuated at both

ends, 24–32 x 2–3 µm.

Whitish colonies, effuse, thin, overgrowing colonies of I. vincensii. Superficial

mycelium composed of repent, hyaline, smooth, septate, branched hyphae, 2–2.5 µm in diam.

Conidiogenous cells produced by intercalary growth in the hyphae; hyaline, unicellular,

simple, smooth, ampulliform, measuring 8–20 x 4–8 µm with an attenuated apical beak where

the spores are formed. Scars not observed. Conidia hyaline, smooth, thin-walled, fusiform,

straight to slightly bent, 3-septate, not constricted at the septa, 24–32 x 2–3 µm, attenuated at

both ends.

Material examined: BRAZIL. BAHIA: Igrapiúna, Michelin Plantations of Bahia, on Hevea

brasiliensis leaves (clone CDC 312). 29.07.2016, Santos et al. (CEPEC, Holotype 2483).

Comments: Spermosporella aggregata Deighton (Tab. 1) is the closest species to S.

irenopsidis which is distinguished by having intercalary conidiogenous cells and not rostrate,

recurved and constricted conidia.

52

TABLE 1. Comparative morphology of species of Spermosporella, including the new species, S. irenopsidis.

Species

Conidial shape

Septation

Conidial size (µm)

Conidiogenous cells

(µm)

Host

Country

Reference

S. aggregata Deighton Fusoid-

obclavate; 2–3 17–29 x 3.5-4 6–8 x 2–4

Meliola geniculata var.

eggelingii

Sierra

Leone

Deighton,

1969

S. elegans Sutton Obclavate-

elongate 6–9 41.5–78.5 x 3.5-4 3.5–5 x 2.5–3.5 Meliola spp. Canada Sutton, 1973

S. flagelliformis Matsush. &

Matsush.

Cylindrical-

caudate 7–12 50–180 x 4–5.5 18 x 2–2.5

Pleurothecium

recurvatum Japan

Matsushima

&

Matsushima,

1995

S. pulvinata Deighton &

Piroz.

Obclavate-

narrow 2 25–40 x 2.5–3 6–12 x 2.5–3 Meliola deinbolliae

Sierra

Leone

Pirozynski,

1972

S. irenopsidis nov.sp. Fusiform 3 24–32 x 2–3 8–20 x 4–8 Irenopsis vincensii Brazil This work

53

FIGURE 1. Spermosporella irenopsidis. A. Conidia. B. Conidiogenous cells formed in the

hyphae. C. conidiogenous cells. Bar = 12.7μm.

FIGURE 2. Spermosporella irenopsidis A. Conidiogenous cells formed in the hyphae. B.

conidia. Bar = 10.6μm.

2. Spermatoloncha maticola Speg., Anal. Mus. Nac. Buenos Aires t. XVII (1908) p. 139 (Figs.

3 and 4a-c)

Colonies whitish, thin, overgrowing colonies of I. vincensii. Superficial mycelium

composed of repent, hyaline, smooth, septate, branched, hyphae, 3–5 μm diam. Hyphal

aggregates pseudo parenchymatous, irregular, 20–40 μm diam. with conidiogenous simple,

hyaline, continuous, smooth, subglobose to angular, peripheral cells, 4–6 μm diam. Conidial

54

scars not observed. Conidia hyaline, smooth, thick walled, obclavate, straight to slightly bent,

1- septate, not constricted at the septum, 26–56 x 4–6 µm, attenuated towards the apex.

Material examined: BRAZIL. BAHIA: Igrapiúna, Michelin Plantations of Bahia, on Hevea

brasiliensis leaves (clone CDC 312). 29.07.2016, Santos et al. (CEPEC 2484).

Comments: The examined material is scarce. The cylindrical conidiophores described by

Spegazzini (1908) were not observed. This is the first report of S. maticola in Brazil, and I.

vincensii is a new host of S. maticola.

FIGURE 3. Spermatoloncha maticola. A. Conidia. B. Hyphal aggregates and conidiogenous

cells. C. Hyphae of S. maticola contact hyphae of Irenopsis vincensii. Bar = 13μm.

FIGURE 4. Spermatoloncha maticola. A, B and C. Conidia and hyphal aggregates. Bar A =

38μm, B and C =12μm.

55

4.4 Discussion

Spermosporella is biologically and morphologically very similar to

Annellospermosporella P.R. Johnst. The two genera are distinguished by sympodial

conidiogenesis in Spermosporella and percurrent-anellidic conidiogenesis in

Annellospermosporella. Thus far, no molecular studies have been done with the genera

Spermosporella and Spermatoloncha and hence there are no DNA sequences available.

Because neither of these genera have been cultured in vitro, DNA extraction depends on

processing fungal fragments from fresh specimens. However, during the present study,

attempts to extract DNA were unsuccessful.

4.5 Acknowledgements

Thanks are due to Comissão Executiva do Plano da Lavoura Cacaueira (Ceplac),

Bahia, Brazil, Michelin Plantations of Bahia, Brazil and the Universidade Estadual de Santa

Cruz, Bahia, Brazil for research support; to Marília Leniuza Soares Ribeiro for the

illustrations; to the Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES)

and Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq) for financial

support/scholarships to J.L. Bezerra, T. R. Santos and E.D.M.N. Luz; and, finally, to Armínio

Santos for help with the literature search.

4.6 References

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de Meliolaceae e outros Ascomycetes. In: Instituto de Micologia, Universidade do

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57

CAPÍTULO III

5. CARACTERIZAÇÃO MORFOCULTURAL, MOLECULAR E DIVERSIDADE

GENÉTICA DE Colletotrichum spp. AGENTE CAUSAL DA ANTRACNOSE FOLIAR

EM SERINGUEIRA (Hevea brasiliensis)

RESUMO

A incidência de espécies do gênero Colletotrichum tem sido amplamente relatada como um

dos principais fitopatógenos que acometem a seringueira (Hevea brasiliensis), causando

grandes perdas na cadeia produtiva da borracha. Devido à grande diversidade de espécies

presentes no patossistema Colletotrichum spp. x H. brasiliensis, os estudos da diversidade

morfológica, genética e a identificação de isolados em nível de espécies, contribuem para as

ações de manejo nas estratégias de controle e melhoramento para a resistência à Antracnose.

Neste contexto, o presente trabalho objetivou a caracterização morfocultural e molecular em

29 isolados de Colletotrichum isolados de folíolos de seringueira. Os isolados foram

identificados em nível de espécie com a amplificação e sequenciamento comparativo de suas

sequências genômicas ITS1/4 e o gene GAPDH. A análise da diversidade genética foi

avaliada pela obtenção dos marcadores moleculares Inter-Simple Sequence Repeats (ISSR).

A avaliação morfológica das colônias revelou heterogeneidade em todos os descritores

analisados, dificultando a certificação em nível de complexo e espécie. Contudo, a

identificação das espécies neste patossistema revelou a presença de cinco espécies

pertencentes a três complexos: C. gloeosporioides, C. acutatum e C. boninense. No grupo

amostral, o maior número de espécies agruparam-se no complexo C. gloeosporioides. A

análise filogenética revelou, com elevado bootstrap, que o complexo C. acutatum diverge do

complexo C. gloeosporioides, porém, com semelhanças filogenéticas com o complexo C.

boninense. A análise da diversidade genética distribuiu os isolados de dois grupos principais

pelos dois métodos de agrupamento e representação gráfica. Pelo método UPGMA

(Unweighted Pair Group Method using Arithmetic Averages) houve a formação de um

subgrupo exclusivo com os isolados referentes à espécie C. acutatum. A análise da

diversidade genética em loci ISSR demonstrou-se eficaz, sugerindo ampla diversidade,

refletindo tanto na variação morfológica, como nos eventos epidemiológicos que acometem a

cultura da seringueira.

Palavras-chave: filogenia molecular, GAPDH, marcadores moleculares, ITS, ISSR.

58

ABSTRACT

The incidence of Colletotrichum species has been widely reported as one of the main

phytopathogens that affect rubber tree (Hevea brasiliensis), causing several losses in the

rubber production chain. Due to the great species diversity in the Colletotrichum spp. x H.

brasiliensis interation, studies of morphological diversity, genetics and the identification of

isolates in the level of species, may contribute to management actions in control and breeding

strategies for resistance to Anthracnose. In this context, the present work aimed at the

morphocultural and molecular characterization of 29 isolates from Colletotrichum genera

from rubber leaves. The isolates were identified at the species level with the amplification and

comparative sequencing of their ITS1/4 genomic sequences and the GAPDH gene. The

analysis of genetic diversity was evaluated by obtaining the molecular markers Inter-Simple

Sequence Repeats (ISSR). The morphological evaluation of the colonies revealed

heterogeneity in all the analyzed descriptors, making difficult the certification at the level of

complex and species. However, the identification of the species in this pathosystem revealed

the presence of five species belonging to three complexes: C. gloeosporioides, C. acutatum

and C. boninense. In the sample group, the largest number of species were of the C.

gloeosporioides complex. The phylogenetic analysis revealed, with high bootstrap, that the C.

acutatum complex diverges from the C. gloeosporioides complex, however, with

phylogenetic similarities with the C. boninense complex. The analysis of genetic diversity

distributed the isolates of two main groups by the two methods of grouping and graphical

representation. By the UPGMA (Unweighted Pair Group Method using Arithmetic Averages)

method, the formation of an exclusive subgroup with C. acutatum isolates was performed.

The analysis of the genetic diversity in ISSR loci proved to be effective, suggesting a wide

diversity, reflecting both the morphological variation and the epidemiological events that

affect the rubber tree culture.

Key word: molecular phylogeny, GAPDH, molecular markers, ITS, ISSR.

59

5.1 INTRODUÇÃO

O gênero Colletotrichum Corda é de interesse econômico e científico, pois acomete

uma grande variedade de culturas de valor econômico a nível mundial (DEAN et al., 2012;

FARR; ROSSMAN 2017). Espécies pertencentes ao gênero estão frequentemente associadas à

seringueira (Hevea brasiliensis Mull. Arg.), causando a Antracnose que acarreta sérios danos

e redução da produtividade, tornando-se uma das mais importantes doenças foliares da

cultura. A Antracnose é constatada praticamente em todos os países onde a seringueira é

cultivada, e no estado da Bahia tem se destacado por atingir plantas de todas as idades. Em

Hevea brasiliensis o fungo ataca folhas, formando pequenas lesões arredondadas de coloração

marrom-avermelhada, ramos, inflorescência, hastes, placas de enxerto em jardins clonais,

viveiros e painéis de sangria (FURTADO; SILVEIRA, 1992; SILVEIRA; CARDOSO, 1987;

SILVEIRA et al., 1992a).

O estudo de identificação das espécies de Colletotrichum de um determinado

hospedeiro, bem como a determinação de sua variabilidade, é de fundamental importância

para o desenvolvimento de estratégias mais eficientes de controle, além de propiciar um

melhor entendimento da epidemiologia da doença e utilização em programas de

melhoramento visando à caracterização da resistência ao patógeno.

A caracterização das espécies do gênero Colletotrichum foi por muito tempo

baseada principalmente em descritores morfológicos associados à taxonomia, e também a

aspectos culturais como a ontogênese, forma dos conídios, presença e forma de setas e

apressórios, pigmentação e textura das colônias, relação com seus hospedeiros,

patogenicidade e taxa de crescimento micelial (CANNON et al., 2012; THAUNG, 2008).

Essas características foram utilizadas principalmente, para diferenciar espécies

morfologicamente próximas, como C. gloeosporioides (Penz.) Penz. & Sacc. e C. acutatum

J.H. Simmonds (SUTTON, 1992; FREEMAN et al., 1998). No entanto, existe uma grande

dificuldade na identificação dessas espécies, principalmente, pela grande diversidade

fenotípica, influência de fatores ambientais na estabilidade dos caracteres morfoculturais e

alta variabilidade das espécies envolvidas (FREEMAN et al., 1998; LOPEZ, 2001). Uma

abordagem polifásica, combinando técnicas moleculares e morfológicas, é recomendada para

identificação mais precisa das espécies do gênero (CAI et al., 2011).

As técnicas de biologia molecular permitem a resolução de problemas de identificação

fúngica, tendo em vista a análise comparativa em sequências de DNA conservadas (MACLEAN

et al., 1993). Contudo, diversas abordagens moleculares têm sido utilizadas para caracterizar

60

espécies de Colletotrichum e complementar estudo de diferenciação de populações do gênero

(BUENO, 2005; LOPEZ, 2001; NGUYEN et al., 2010). A utilização de primers específicos para

espécies de Colletotrichum obtidos a partir da análise de sequência da região ITS são utilizados

para complementar e resultados de morfologia e patogenicidade (FREEMAM et al., 2001). A

comparação de sequências da região ITS 1 do DNA entre C. gloeosporioides e outras espécies

do gênero levaram ao desenvolvimento de primers específicos para a diferenciação entre C.

gloeosporioides e C. acutatum via PCR (MILLS et al., 1992). Regiões do genoma de fungos do

gênero Colletotrichum têm sido analisadas juntamente com o ITS, utilizando múltiplos

marcadores genéticos que aumentam o grau de confiabilidade na classificação das espécies, tais

como as sequências dos genes que codificam actina (ACT), quitina sintetase (CHS1), β-tubulina

(TUB2), calmodulina (CAL) e gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase (GADPH) (CANNON et al.

2012; DAMM et al., 2012a; DAMM et al., 2012b; WEIR et al., 2012).

Técnicas moleculares também têm sido utilizadas para estudar a diversidade e

variabilidade genética entre espécies de Colletotrichum (SILVEIRA et al., 2016; ANDERSON et

al., 2013; RAMPERSAD, 2013; SHARMA et al., 2014; MAHMODI et al., 2014). Dentre elas, o

uso do marcador molecular do tipo sequências simples repetidas internas (ISSR) tem-se

mostrado bastante eficiente, pois não necessitam de conhecimento prévio do DNA a ser avaliado

(BARTH et al., 2002) além de ser uma técnica de baixo custo, fácil uso e de grande

reprodutibilidade (MATTHEWS et al., 1999). Os marcadores ISSR são amplificados via PCR e

não necessitam do sequenciamento da região, resultando ainda na obtenção de padrões altamente

polimórficos (NAGAOKA; OGIHARA, 1997).

Estudos revelam que a Antracnose foliar da seringueira é atribuída às espécies

pertencentes aos complexos Colletotrichum gloeosporioides, C. acutatum e C. boninense

(PETCH, 1921; CARPENTER; STEVENSON, 1954; JAYASINGHE et al., 1997, SAHA et al.,

2002, GAZIS; CHAVERRI, 2010, GAZIS et al., 2011, DAMM et al., 2012a). No entanto, não há

estudos sobre a caracterização morfológica e molecular e a ocorrência das espécies de

Colletotrichum associadas à Antracnose foliar na região Sudeste da Bahia, importante pólo

heveícola brasileiro.

O presente trabalho objetivou a caracterização morfológica e molecular de 29 isolados de

Colletotrichum coletados na região Sudeste da Bahia em folhas de seringueira. Em paralelo, os

isolados foram identificados pelo sequenciamento comparativo de duas sequências genômicas, e

em seguida foram analisados quanto à filogenia e diversidade genética em regiões genômicas.

61


5.2.1 Coleta e isolamento de Colletotrichum spp.

Foram coletadas folhas de clones de seringueira (Tabela 1) com sintomas da

Antracnose, em áreas distintas de seringais nas Plantações Michelin da Bahia (PMB),

localizada no município de Igrapiúna (9º13’ S, 2º39’ W), Estação Experimental Djalma Bahia

(EDJAB), em Una (14º47’ S, 39º03’ W) e Centro de Pesquisa do Cacau (Ceplac/Cepec),

Ilhéus, Bahia (14º47’ S, 39º02’ W). Os materiais coletados foram acondicionados em sacos de

papel e levados para o laboratório de Diversidade de fungos do Cepec/Ceplac em Ilhéus,

Bahia, onde foram lavados superficialmente com água corrente. Foram cortados pequenos

fragmentos compreendidos entre a área necrosada e o tecido assintomático, onde procedeu-se

a desinfestação utilizando álcool a 70% por 30 segundos, solução de hipoclorito de sódio a

2% por um minuto, água destilada estéril por duas vezes e secagem em papel toalha.

Os fragmentos foram colocados em placas de Petri de 8 cm de diâmetro contendo

meio Batata-Dextrose-Ágar (BDA Difco®), suplementados com ácido tartárico a 0,1 %. Todo

o procedimento foi realizado sob condições assépticas, em câmara de fluxo laminar, e as

placas foram mantidas em bancada sob temperatura de 24±1 °C, durante 3 dias. Após esse

período, selecionaram-se as colônias típicas de Colletotrichum spp., seguida de repicagem e

obtenção de culturas puras. No total foram obtidos 29 isolados de Colletotrichum spp., que

foram preservados em óleo mineral e pelo método de Castellani (1967).

5.2.2 Caracterização morfocultural dos isolados de Colletotrichum.

Foram caracterizados morfologicamente 29 isolados de Colletotrichum spp. pela

forma e tamanho de 40 conídios visualizados aleatoriamente ao microscópio óptico no

aumento de 40x. Os isolados foram classificados de acordo com os seguintes formatos:

oblongos, oblongo cilindráceos, cilindráceos, clavados e fusoides.

A caracterização cultural baseou-se na coloração e textura das colônias, sendo

consideradas colônias com crescimento micelial flocoso, feltroso, velutino e liso e coloração

em tons acinzentados, esbranquiçados, alaranjados, rosados e creme amarelado (KIRK et al.,

2008).

62

Tabela 1. Designação, origem, órgão de isolamento e ano de coleta de isolados de

Colletotrichum spp. utilizados neste estudo.

Isolado Local de origem Órgão de isolamento Ano de coleta

01 PMB1 Folíolos da copa/clone SIAL 1005 2016

02 EDJAB2 Folíolos da copa 2016

03 PMB1 Folíolos da copa 2016


05 PMB1 Folíolos da copa/clone CMB 197 2016

06 PMB1 Folíolos da copa/clone CDC 56 2016

07 PMB1 Folíolos da copa/acesso 1049 2016

08 EDJAB2 Folíolos da copa/clone PMB1 2016

09 PMB1 Folíolos da copa/clone FDR 4575 2016


11 EDJAB2 Folíolos da copa/clone FDR 5788 2016

12 PMB1 Folíolos da copa/clone CDC 312 2016


14 PMB1 Folhas da serapilheira/clone CLAV 8 2016

15 PMB1 Folhas da serrapilheira/clone CDC 318 2016

16 PMB1 Folíolos da copa/clone SIAL 893 2016

17 PMB1 Folíolos da copa/acesso 1061 2016

18 PMB1 Folíolos da copa/clone CMB 174 2016

19 Cepec3

Folíolos da copa/Clone SIAL 893 2015

20 PMB1 Folhas da serapilheira 2016

21 PMB1 Folíolos da copa/clone FDR 5788 2016


23 PMB1 Folhas da serrapilheira/clone PMB 1 2016

24 PMB1 Folhas da serapilheira 2017

25 Cepec3 Folhas da serapilheira 2017

26 Cepec3 Folíolos da copa/clone SIAL 893 2017


28 Cepec3 Folíolos da copa/clone SIAL 893 2017

29 Cepec3 Folíolos da copa 2017


1 Plantações Michelin da Bahia;

2 EDJAB - Estação Experimental Djalma Bahia;

3 Cepec - Centro de Pesquisa do Cacau.

O índice de velocidade de crescimento micelial (IVCM) das colônias, expresso em

milímetros por dia, também foi avaliado. Para tal, foram selecionados 29 isolados de

Colletotrichum com oito dias de crescimento em meio BDA, onde retirou-se discos de 7 mm

das bordas do micélio, que foram transferidos para o centro de novas placas contendo o

mesmo meio. As placas foram submetidas a uma temperatura de 24°C, sob luz constante e

diariamente mensurado o diâmetro perpendicular das colônias com auxílio de uma régua

milimétrica, durante cinco dias. O delineamento foi inteiramente casualizado com 29

tratamentos, cinco repetições, cada placa constituindo uma unidade experimental. O IVCM

63

foi medido segundo Nechet (1999), adaptada por Oliveira (1991): IVCM= S (D-Da)/N, em

que IVCM= Índice de velocidade de crescimento micelial, D = Diâmetro médio atual, Da =

Diâmetro médio do dia anterior, e N = Número de dias após a inoculação. Os dados obtidos

foram submetidos ao teste de F a 5% de probabilidade, e as médias comparadas

pelo teste de Scott-Knott a 5%.

5.2.3 Teste de esporulação das espécies de Colletotrichum.

Para verificação da capacidade de esporulação, os isolados foram crescidos em BDA

por oito dias a 24º C. Após esse período, depositou-se 10 mL de água destilada estéril em

cada placa, onde procedeu-se a raspagem do micélio com o auxílio de uma alça de Drigalski.

O micélio foi filtrado em uma camada dupla de gaze estéril, retirando-se uma alíquota para

quantificação em câmara de Neubauer.

5.2.4 Teste de patogenicidade

O teste de patogenicidade foi realizado com todos 29 isolados de Colletotrichum,

utilizando folíolos do clone Fx 3864, no estádio B2 de desenvolvimento (HALLÉ et al.,

1978), com nove repetições para cada isolado. O inóculo foi preparado a partir de culturas

com sete dias de crescimento em meio BDA. Uma suspensão com 105 conídios/mL foi

inoculada utilizando uma alíquota de 20 µm sobre a superfície abaxial dos folíolos. No

tratamento controle, nenhum isolado foi inoculado.

5.2.5 Identificação molecular por sequenciamento

Para caracterização molecular, foi feita a extração de DNA genômico de 29 isolados

de Colletotrichum e um isolado de Phomopsis sp. (grupo externo), com sete dias de cultivo

em meio BDA à 24°C, sob luz constante, de acordo com o método CTAB 2% (Cetiltrimetil

Brometo de Amônio) para fungos filamentosos modificado por Muller et al. (1992) e Geraldo

et al. (2004). O DNA extraído foi quantificado por eletroforese gel de agarose 1% em tampão

TBE 1X (Tris 89 mM, ácido bórico 89 mM, EDTA 2,5 mMpH 8,3), por 90 volts por 30

minutos. Como padrão de quantificação foi utilizado o DNA Lambda com 100 ng

(Fermentas®). As bandas de DNA foram visualizadas em transiluminador de luz ultravioleta e

64

fotografadas pelo uso do sistema Kodak®

Electrophoresis Documentation and Analysis

System, cuja comparação do brilho das bandas dos DNAs com o Lambda DNA padrão foi

realizada para a inferência da concentração das amostras. Os DNAs extraídos foram diluídos

para a concentração de 10ng/ μ e utilizados nas amplificações em cadeia da polimerase (PCR).

O DNA genômico anteriormente extraído foi utilizado para a identificação dos isolado

pelo sequenciamento das sequências ITS1/ITS4 e da região gênica parcial do gene

gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase (GAPDH). O isolamento das sequências foram

realizados por reação em cadeia da polimerase com o uso dos primers ITS1

(TCCGTAGGTGAACCTGCGG) e ITS4 (TCCTCCGCTTATTGATATGC) para a sequência

ITS1/ITS4 que amplificam um fragmento com cerca de 600 pb (WHITE et al., 1990;

SREENIVASAPRASAD et al., 1996). A outra região genômica isolada foi o gene parcial

GAPDH gerando fragmentos com cerca de 250 pb com o uso dos primers

(GCCGTCAACGACCCCTTCATTGA) e (GGTGGAGTCGTACTTGAGCATGT)

(GUERBER et al., 2003).

As amplificações foram realizadas utilizando um volume final de 50 µL, com mistura

de reação contendo 33,55 µL de água ultrapura, 5,0 µL de tampão de reação 10x, 3,0 µL de

MgCl2 (25mM), 3,2 µL de dNTPs (2,5 mM cada), 1 µL do primer R (10 p.mol) e 1 µL do

primer F (10 p.mol), 0,25 µL de DNA Taq-polimerase (5,0 U μl-1) e 3,0 µL de DNA diluído

em água (1:100). Utilizou-se o termociclador PTC100 (MJ Research), com a seguinte

programação: desnaturação inicial 5 min a 94°C, seguido por 35 ciclos de 45s a 94°C, 1 min a

56°C e 1 min a 72°C. A extensão final foi a 72°C por 7 min.

Os produtos da amplificação foram observados com a eletroforese em gel de agarose

1,2% contendo o corante SYBR (Invitrogen®) feito com em tampão TBE 1X (Tris 89 mM,

ácido bórico 89 mM, EDTA 2,5 mM pH 8,3). Foi utilizado o padrão de tamanho molecular

para 100 pb ―DNA Ladder Plus (Sinapse Biotecnologia®

)‖. A eletroforese foi realizada com a

constante de 90 volts por 45 minutos. As bandas de DNA foram visualizadas em

transiluminador de ultravioleta e fotografadas pelo uso do sistema Kodak®

Electrophoresis

Documentation and Analysis System.

Os fragmentos amplificados foram purificados com mistura enzimática ExoI

(Fermentas®) e SAP (Fermentas

®) utilizando 0,8 μL de cada enzima, 1,65 μL de H2O ultra

pura e 20 μL das reações de PCR com incubação a 37°C durante 30 min, seguido de

inativação enzimática a 80°C durante 15 min. Após a purificação o produto foi precipitado

com a adição de 10% do volume da reação de Acetato de Sódio 10%, mais 200% do volume

final de etanol P.A. gelado.

65

O sequenciamento foi realizado em sequenciador ABI3500 XL (AppliedBiosystems®).

utilizando-se o kit BigDye® terminator v 3.1 cycle sequencing conforme as recomendações

do fabricante. As sequências foram editadas e alinhadas usando o programa BioEdit Sequence

Alignment Editor (1997-2005). As sequências ITS e o gene GAPDH foram concatenadas com

o uso do programa Mega 5.05. A árvore filogenética foi construída na plataforma Phylogeny

pelo método ―one click‖ usando o modelo de comparação Neighbor-Joining e ―p-distance‖

(www.phylogeny.fr). A árvore filogenética gerada foi editada com o uso do software

Photoshop CS5 (Adobe®).

5.2.6 Diversidade genética em regiões ISSR

A escolha dos primers para a obtenção dos marcadores ISSR foi baseada em estudos

anteriores realizados no gênero Colletotrichum em relação à capacidade de revelar o

polimorfismo nessas regiões genômicas (GUPTA et al., 1994; RATANACHERDCHAI et al.,

2010; RAMPERSAD, 2013). As reações de PCR foram realizadas para um volume final de

20 µL, contendo 1X de tampão de reação para DNA Taq-polimerase 10X; 75 µM de MgCl2,

5 mM de dNTPs; 10 p.mol do primer; 1 U de DNA Taq-polimerase e 30 ng de DNA. As

condições de amplificação foram: desnaturação inicial 5 min a 94°C, seguido por 35 ciclos de

45s a 94°C, 1 min a temperatura específica para o anelamento do primer, e 1 min a 72°C. A

extensão final foi a 72°C por 7 min; em termociclador PTC100 (MJ®Research).

Os produtos das amplificações foram observados com a eletroforese em tampão TBE

1X (Tris 89 mM, ácido bórico 89 mM, EDTA 2,5 mMpH 8,3), utilizando gel de agarose 1,8%

contendo o corante SYBR (Invitrogen®

) com a constante de 90 volts por 50 minutos. Foi

utilizado o padrão de tamanho molecular para 100 pb ―DNA Ladder Plus (Sinapse

Biotecnologia®)‖. As bandas de DNA foram visualizadas em transiluminador de ultravioleta

e fotografadas pelo uso do sistema Kodak®

Electrophoresis Documentation and Analysis

System.

A partir dos produtos de amplificação (bandas claras e evidentes) foi construída uma

matriz binária de dados com informações de presença (1) e ausência de bandas (0). Para a

análise de similaridade entre os isolados, foi empregado o coeficiente de Simple Matching,

através do programa NTSYS-pc 2.1 software (ROHLF, 2000). O dendrograma foi construído

baseado no agrupamento estatístico UPGMA (Unweighted Pair Group Method with

Arithmetic mean) e editado no software Photoshop CS5 (Adobe®). A análise de correlação

66

cofrenética foi também realizada, juntamente com a distribuição dos isolados em um gráfico

de coordenadas principais baseando-se na diversidade avaliada pelo coeficiente de Simple

Matching. Adicionalmente, foi realizada a análise de componentes principais PCA com o uso

do software NTSYS-pc 2.1 (ROHLF, 2000)

5.3 RESULTADOS

5.3.1 Caracterização Morfocultural

Todos os 29 isolados avaliados, apresentaram padrões morfoculturais que se

enquadravam dentre aqueles descritos para o gênero Colletotrichum (SUTTON, 1992). Em

meio BDA, os isolados apresentaram hifas septadas hialinas, células conidiógenas alongadas a

ampuliformes, conídios hialinos, unicelulares, de formas variadas. Não foram observadas

setas e clamidósporos. O teleomorfo não foi observado.

As colônias de Colletotrichum spp. apresentaram-se bastante heterogêneas quanto aos

aspectos morfoculturais, sendo observados cinco tipos de coloração, quatro texturas miceliais

(Figura 1) e cinco formas predominantes de conídios (Figura 2). Culturas de coloração

acinzentadas foram visualizadas em nove isolados, esbranquiçada em oito isolados, alaranjada

em seis isolados, rosácea em apenas um isolado, e creme amarelada em cinco isolados, dentre

o total avaliado. Seis isolados apresentaram micélio com textura predominante flocosa, 12

isolados com textura feltrosa, sete isolados com textura velutina e um isolado com textura

lisa. Ao microscópio foram observados isolados com conídios predominantemente oblongos

(15), oblongo cilindráceos (5), cilindráceo (7), clavados (1) e fusoides (1) (Tabela 2).

As dimensões médias do comprimento dos conídios variaram de 11,0 µm (isolado 29)

a 16,9 µm (isolado 01); e largura de 1,9 µm (isolado 14) a 5,7 µm (isolado 02). A relação

comprimento/largura (C/L) dos conídios também foi utilizada na caracterização das espécies

do gênero, e variou de 2,5 µm (isolado 06) a 6,8 µm (isolado 14). Os resultados da capacidade

de esporulação das culturas de Colletotrichum em meio BDA variaram de 2,5 x 105

(isolado

15) a 166 x 105 conídios/mL (isolado 19). Todos os isolados testados mostraram-se

patogênicos a folíolos de seringueira. O índice da velocidade de crescimento micelial (IVCM)

apresentou variação de 0,38 (isolado 14) a 1,15 mm/dia (isolado 02) (Tabela 2).

67

Figura 1. Colônias de Colletotrichum spp. apresentando alta variabilidade morfocultural em

meio BDA.


68

Figura 2. Diferentes formas de conídios de Colletotrichum spp. isolados de folíolos de

seringueira (Hevea brasiliensis) em meio BDA. (a) cilíndrico, (b) oblongo (c)

clavado (d) oblongo (e) oblongo-cilindráceo (f) oblongo (g) oblongo-cilindráceo

(h) fusoide (i) oblongo.


i

69

Isolado Coloração da

cultura

Textura

micelial

Forma dos conídios Medidas dos conídios

(µm)

Relação

Comp./Larg. Esporulação (x 10

5) Patogenicidade

IVCM1

(mm/dia)

Comp. Larg.

01 cinza flocosa cilindráceo 16,9 3,2 5,2 28,5 + 0,91 c

02 cinza feltrosa oblongo 14,8 5,7 3,8 58,0 + 1,14 d

03 alaranjada feltroso oblongo 14 4,7 3,1 15,0 + 1,06 d

04 cinza flocosa clavado a sub-clavado 17,6 4,6 3,8 25,5 + 0,97 c

05 esbranquiçada flocosa oblongo 14,5 4,7 3,3 2,5 + 0,91 c

06 creme lisa oblongo 13,6 5,5 2,5 41,0 + 0,99 c

07 cinza feltrosa cilindráceo 16,2 3,8 4,2 76,0 + 0,90 c

08 alaranjada feltroso oblongo 15,9 4,3 3,7 10,0 + 0,90 c

09 creme flocosa oblongo 13,5 4,2 3,2 7,0 + 0,41 a

10 cinza feltrosa oblongo-cilindráceo 12,5 3,5 3,6 10,0 + 0,89 c

11 alaranjada feltrosa oblongo 13,8 4,1 3,1 18,0 + 0,99 c

12 creme feltrosa oblongo-cilindráceo 15,5 4,7 3,3 13,5 + 1,15 d

13 alaranjada flocosa oblongo 13,9 4,5 3,1 61,0 + 0,77 b

14 cinza feltrosa fusoide 11,5 1,9 6,8 14,0 + 0,38 a

15 esbranquiçada feltrosa oblongo 14,5 3,9 3,7 2,5 + 1,29 e

16 esbranquiçada velutina oblongo-cilindráceo 13,5 3,7 3,6 10,5 + 1,30 e

17 rosada feltrosa oblongo-clilindráceo 11,8 3,2 3,7 28,0 + 0,64 c

18 esbranquiçada velutina oblongo 11,1 3,1 3,6 21,0 + 0,51 b

19 esbranquiçada velutina cilindráceo 15,6 4,4 3,5 166,0 + 0,68 b

70

Tabela 2. Características morfoculturais de 29 isolados de Colletotrichum spp. obtidos de folíolos de seringueira (Hevea brasiliensis) em meio BDA.

(conclusão)

Isolado Coloração da

cultura

Textura

micelial

Forma dos conídios Medidas dos conídios

(µm)

Relação

Comp./Larg. Esporulação (x 10

5) Patogenicidade

IVCM1

(mm/dia)

Comp. Larg.


21 alaranjada flocosa cilindráceo 16,14 4,8 3,36 6,0 + 0,86 c

22 creme feltrosa oblongo-cilindráceo 17,31 4,49 3,86 88,0 + 0,61 b

23 creme velutina oblongo 13,73 4,83 3,84 44,5 + 0,70 c

24 alarajanda flocosa oblongo 15,46 4,70 3,40 12,0 + 0,89 c

25 esbranquiçada feltrosa cilindráceo 11,35 3,25 3,79 25,0 + 0,42 a

26 cinza velutina oblongo 12,87 4,10 3,55 17,5 + 1,02 d

27 cinza velutina oblongo 13,65 3,83 3,61 33,0 + 1,02 d

28 cinza feltrosa oblongo 13,01 4,35 3,34 23,0 + 0,96 c


Médias dos IVCM com as mesmas letras não diferem estatisticamente pelo agrupamento Scoot-Knott a 5% de probabilidade.

71

5.3.2 Sequenciamento e identificação dos níveis taxonômicos dos isolados

Utilizando as ferramentas morfológicas e moleculares foi possível identificar mais de

uma espécie de Colletotrichum associadas à Antracnose foliar da seringueira. O

sequenciamento das sequências ITS1/4 e do gene GAPDH, revelaram fragmentos em torno de

600 e 250 pb) respectivamente, para todos os 30 isolados analisados. As sequências obtidas

foram comparadas com as informações existentes no banco de dados de ácidos nucléico NCBI

(http:// blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) (HSIANG; GOODWIN, 2001), onde foi possível

identificar os isolados pelas semelhanças entre as respostas das sequências pelo método de

BLAST. Desta forma, foram identificados três complexos de espécies: C. gloeosporioides, C.

acutatum e C. boninense. O grupo externo formado por uma amostra do gênero Phomopsis

previamente conhecida foi identificada com elevada acurária na comparação com o banco de

dados (Figura 3).

Foi observado no complexo C. gloeosporioides, que 60% dois isolados são da espécie

C. gloeosporioides, 28% são C. siamense e apenas 9% C. theobromicola. As espécies desse

complexo foram identificadas com o query cover variando de 87 a 97%. O complexo C.

acutatum foi representado unicamente pela espécie C. acutatum, totalizando sete isolados.

Este complexo foi identificado com elevado query cover (99%). Uma única espécie do

complexo C. boninense foi encontrada, sendo o isolado ―06‖ com query cover de 89%. O

isolado ―30‖ composto pelo grupo externo foi confirmado como do gênero Phomopsis com

query cover de 85%.

A árvore com a distribuição filogenética comparativa entre os isolados (Figura 3)

demonstrou a distribuição das espécies C. acutatum (bootstrap 0.96 e 0.92) e C. boniense

distantes das demais espécies do complexo C. gloeosporioides. Contudo, apesar de C.

acutatum estar próxima de C. boniense, ambas estão em ramos filogenéticos distintos com

bootstrap 0.98. As espécies do complexo C. gloeosporioides foram distribuídas em dois

grupos principais com bootstrap de 0.80 e 0.83. O isolado 04 representando a espécies C.

theobromicola foi distribuída com grande distancia filogenética do isolado 10, sendo a mesma

espécie, contudo essa distribuição gerada com baixo bootstrap de 0.50. O grupo externo,

representado pelo acesso do gênero Phomopsis foi distribuído com elevado bootstrap de 0.93.

72

Figura 3. Análise filogenética dos isolados com base nas sequências ITS1/4 e GAPDH.


5.3.3 Análise da diversidade genética em loci ISSR

A análise da diversidade genética em regiões ISSR foi realizada pela obtenção de

marcadores com a amplificação de primers previamente selecionados. O total de 18 primers

foram utilizados, contudo oito foram selecionados (Tabela 3) pelo adequado perfil de

amplificação aliada à boa reprodutibilidade dos loci amplificados (Figura 4). Foram obtidas

informações em 56 loci polimórficos, sendo representados por bandas amplificados e

detectadas por eletroforese em gel de agarose 1,8%. Os fragmentos amplificados variaram de

73

250 a 1900 pb. Os primers para dinucleotídeos UBC-835 (AG) e o UBC-825 (AC)

amplificaram dez e quatro loci polimórficos, sendo o maior e menor número de bandas

amplificadas por primer, respectivamente. Não foram observadas bandas monomórficas entre

os isolados em estudo.

Tabela 3. Primers com suas sequências amplificadas para a obtenção dos marcadores

moleculares ISSR. Temperatura de anelamento e número de bandas que

representam os alelos polimórficos obtidos e utilizados em análise. Código Sequência (5'-3')

(1) TM (°C) Bandas polimórficas

UBC-807 (AG)8YC 55 8

UBC-826 (AC)8C 57 6

UBC-866 (CTC)6 56 8

UBC-825 (AC)8T 55 4

UBC-819 (GT)8ª 55 7

UBC-835 (AG)8YC 55 10

UBC-840 (GA)8YT 56 8

UBC-842 (GA)8YG 56 5 (1)

Y significa nucleotídeos degenerados: Y = (C, T). TM, temperatura de anelamento; número

total de bandas amplificadas por primer.

Figura 4. Produto da amplificação do primer UBC- 835 separados por eletroforese em gel de agarose

1,8% corados com SYBR safe.


A similaridade genética baseada no coeficiente de similaridade Simple Matching dos

loci ISSR foi menor entre isolados ―03‖ e ―06‖, que também apresentaram menor coeficiente

de similaridade de 0.428, representados pelas espécies C. gloeosporioides e C. boninense,

respectivamente. Por outro lado, a maior similaridade genética foi observada entre os isolados

―17‖ e ―18‖, ambos pertencentes à espécie C. acutatum, com coeficiente de similaridade total

(1.000), sendo os únicos isolados semelhantes nas regiões genômicas avaliadas.

O dendrograma construído através do método de grupamento estatístico UPGMA

(Figura 5) apresentou elevado coeficiente de correlação cofrenética de R = 0.90146. O

74

dendrograma separou os isolados de Colletotrichum em dois grandes grupos principais. O

grupo I incluiu oito isolados, subdivididos em dois subgrupos IA e IB. O grupo II também foi

subdividido em dois subgrupos: IIA e IIB. No subgrupo IA dois isolados para a espécie C.

gloeosporioides foram distribuídos juntamente com C. theobromicola (isolado 10). Já no

subgrupo IB o único isolado pertencente a C. boninense foi disposto próximo a quatro da

espécie C. gloeosporioides. No subgrupo IIA o isolado ―02‖ (C. siamense) se apresentou mais

distantes dos demais isolados do mesmo grupo, contudo os isolados que representam C.

gloeosporioides e C. siamense foram dispostos próximos entre si. No subgrupo IIB os

isolados de C. acutatum foram agrupados em um ramo exclusivo, contudo próximo a um C.

theobromicola (―04‖). Os isolados ―017‖ e ―018‖, que representam C. acutatum, foram

distribuídos no mesmo ramo com maior similaridade genética.

Figura 5. Dendrograma baseado no polimorfismo associados aos loci ISSR de isolados de

Colletotrichum spp. Coeficiente de similaridade de Simple Matching e agrupamento pelo

método UPGMA.


O coeficiente de similaridade genética de Simple Matching gerado entre os isolados

analisados foi utilizado para a distribuição dos genótipos em um gráfico de análise de

componentes principais (Figura 6). Nesta análise foram observados dois grupos principais

75

com considerável distância entre eles. O grupo PCAI foi constituído de 13 isolados

exclusivamente pertencentes às espécies do complexo C. gloeosporioides. Já o grupo PCAII

foi composto por 16 isolados abrangendo todos os isolados das espécies C. acutatum e C.

boninense, contudo oito isolados foram pertencentes ao complexo C. gloeosporioides.

Figura 6. Análise de coordenadas de componentes principais geradas pela distribuição dos isolados

baseadas em uma matriz de similaridade genética de Simple Matching.


76

5.4 DISCUSSÃO

A caracterização e análise dos descritores morfológicos revelaram a alta variabilidade

entre os isolados obtidos. Apesar da predominância das colorações acinzentadas e

esbranquiçadas, a variação observada nos isolados avaliados coaduna com resultados obtidos

que indicam alta variabilidade nas colorações culturais de Colletotrichum spp. (ANDRADE et

al., 2007; PIMENTA, 2009).

Sutton (1992) descreve colônias de coloração alaranjadas (salmão) como típicas da

espécie Colletotrichum acutatum, e alta variabilidade colorimétrica dentro com complexo C.

gloeosporioides. As variações apresentadas pelas colônias dessa espécie podem ser atribuídas

ao genótipo de cada isolado, cuja expressão fenotípica está associada ao ambiente de cultivo,

assim como à biossíntese de metabólitos secundários, fatores esses que contribuem para as

grandes variações culturais (BAILEY; JERGER, 1992; BONETT et al., 2010). Segundo essa

característica, as culturas alaranjadas (isolados 03, 08, 11, 13, 21 e 24) seriam identificadas

como C. acutatum, muito embora, segundo a análise molecular, esses isolados tenham sido

classificados como C. gloeosporioides, comprovando que os métodos baseados em análises

culturais têm se mostrado insuficientes para a classificação da espécie de Colletotrichum,

conforme ressaltado por Freeman et al. (1998) e Stracier (2015).

A heterogeneidade morfocultural e a presença de características comuns a mais de

uma espécie ou complexo de espécies de Colletotrichum descritas neste trabalho, corroboram

com os resultados encontrados nos diversos trabalhos referentes à caracterização

morfocultural do gênero Colletotrichum (ANDRADE, 2007; PERES, 2002; ALAM et al.,

2017). A ausência de setas reportadas neste estudo pode estar associada à composição do

meio de cultura além de fatores ambientais, tais como aeração, umidade do ar, temperatura e

fotoperíodo (CARVALHO, 1997).

O isolado 14 foi o único que apresentou a forma dos conídios fusiformes, sendo esta,

uma característica predominante da espécie C. acutatum (SUTTON, 1992), sendo confirmada

a identificação desse isolado segundo a caracterização molecular. No entanto, os demais

isolados identificados via análise comparativa de sequências, como sendo pertencentes ao

complexo C. acutatum (17, 18, 19, 20, 25 e 29) apresentaram formatos variados, com

predominância de conídios cilindráceos, formato descrito como sendo predominante nas

espécies do complexo C. gloeosporioides (SUTTON, 1992; CANNON et al., 2008).

77

Os isolados apresentaram dimensões dentro da faixa de variação descritas por Sutton

(1992), para as espécies de C. acutatum e C. gloeosporiodes. No entanto, a diferenciação com

bases nas dimensões dos conídios, não foi possível devido às proximidades entre os valores, o

que também foram observadas por Afanador-Kafuri et al. (2003), Andrade (2007) e Stracieri

(2015).

O isolado 06 que apresentou a menor relação comprimento/largura (2,5 mm/dia) foi

identificado como C. boninense. Moriwaki et al. (2003) também relataram baixos valores

médios na relação comprimento/largura quando estudaram a espécie C. boninense em

anonáceas no estado de Alagoas. Uma característica útil na distinção desta espécie, é que

alguns conídios apresentam uma pequena cicatriz ou protuberância na base, o que não foi

observado no presente trabalho.

Em BDA, os isolados que mais cresceram foram 02, 03, 12, 15, 16, 26 e 27, com

índice de crescimento micelial acima de 1 mm/dia, todos esses confirmados pela análise

molecular com sendo pertencentes ao complexo C. gloeosporioides. Foram formados cinco

grupos distintos com relação a variável IVCM, os isolados que apresentaram as menores

médias foram identificados como do complexo C. acutatum. Colletotrichum gloeosporioides

é descrito como tendo o crescimento micelial mais rápido, quando comparado à C. acutatum

(GUNNEL; GUBLER, 1992; SMITH; BLACK, 1990; ANDRADE, 2007), o que foi

confirmado em nosso estudo.

Todos os isolados testados mostraram-se patogênicos a folíolos da seringueira, e

apresentaram padrões diferenciados com relação à esporulação. Diferenças tanto na

patogenicidade quanto na virulência têm sido relatadas em espécies do gênero Colletotrichum

nos complexos C. gloeosporioides e C. acutatum (SAXENA et al., 2014).

As espécies de ocorrência mais comum deste gênero formam complexos de espécies

filogenéticas que pela análise morfológica são indistinguíveis ou de difícil distinção umas das

outras (DU et al., 2005; CROUCH et al., 2009). A alta variabilidade cultural e a presença de

características comuns a mais de uma espécie ou complexo de espécies de Colletotrichum

descritas na literatura (MENEZES, 2006; SUTTON, 1992), como coloração, forma e tamanho

de conídios, impossibilitou a clara identificação específica dos isolados com base

exclusivamente nas características avaliadas.

A identificação molecular dos isolados de Colletotrichum foi realizada pela

comparação de sequências depositadas no banco de dados NCBI. Uma porção parcial da

sequencia ITS (Internal Transcribed Spacer) e do gene gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase

(GAPDH) foram utilizadas para a comparação e análise. A sequência ITS1/4 é uma região

78

interna entre transcritos do DNA nuclear constituindo parte do DNA ribossomal. Essa região

possui grande conservação em sequência, sendo amplamente utilizada na identificação de

táxons e análise filogenética nos complexos de Colletotrichum (SANGPUEAK et al., 2017).

O gene GAPDH é responsável pela produção de uma enzima que catalisa a oxidação de

glicerol-3-fosfato em diidroxiacetona fosfato (GOUVEIA et al., 2011), a região parcial deste

gene também tem sido amplificada e utilizada na identificação de espécies do complexo

Colletotrichum (FREEMAN et al., 2001; TALHINHAS et al., 2002; NELSON et al., 2013).

As amplificações dos fragmentos utilizados na identificação dos isolados neste estudo

apresentaram tamanhos esperados em pares de base com relação a trabalhos anteriores com o

isolamento destas sequências em espécies do gênero (FREEMAN et al., 2001; TALHINHAS

et al., 2002; NELSON et al., 2013; SANGPUEAK et al., 2017).

A identificação de isolados em nível de espécies utilizando sequências gênicas e

regiões conservadas não expressas pode ser realizada pela simples comparação do produto de

sequenciamento com a homologia nas sequências depositadas em bancos de dados de

informação genética, como por exemplo, o NCBI GenBank data library (http://

blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) (HSIANG; GOODWIN, 2001). Este método de identificação

pela comparação com informações prévias das sequências é altamente recomendado para a

visão preliminar da distribuição de espécies em um grupo amostral, contudo quando a

comparação com os bancos de dados atingem similaridade em sequências altas (querry cover

>98) a identificação de espécies possui uma maior confiabilidade (SANGPUEAK et al.,

2017). A identificação de espécies também pode ser realizada com a amplificação diagnóstica

de espécies com o uso de primers específicos (XIE et al., 2010; SARMIENTO, 2013). Esse

método utiliza primers que apenas amplificam uma espécie em particular, se o fragmento for

amplificado significa que o isolado pertence à espécie em questão. O uso de primers

específicos para a identificação diagnóstica não foi utilizado neste estudo, pois é recomendado

no caso de suposições que respondam quais são as possíveis espécies que ocorrem no

patossistema (SARMIENTO, 2013; ANDRADE et al., 2007).

No presente trabalho a análise de sequências indicou a ocorrência de espécies

pertencentes aos três complexos: C. gloeosporioides, C. acutatum e C. boninense. Estudos

relacionados ao patossistema seringueira x Colletotrichum têm demonstrado a interação entre

os três complexos com o citado hospedeiro (SARMIENTO, 2013; SIERRA HAYER, 2014).

Maior predominância de espécies do complexo C. gloeosporioides foi relatada, sendo a mais

predominante, o que difere do observado por Sarmiento (2013) que relatou maior ocorrência

de espécies do complexo C. acutatum ocorrendo com maior frequência em seringueira.

79

Estudando espécies exclusivas do complexo C. acutatum observou-se que esse complexo

possui grande distribuição neste patossistema (HUNUPOLAGAMA, et al., 2017). Apenas

uma espécie foi encontrada como sendo do complexo C. boninense, sendo representada por

um único isolado. Em seringueira, este complexo foi primeiramente identificado em H.

guainensis (GAZIS et al., 2011). Em estudos conduzidos com esse patossistema, C. boninense

têm sido observado com menor frequência quando comparados com os complexos C.

gloeosporiodes e C. acutatum (SARMIENTO, 2013; CAI et al., 2016).

Colletotrichum siamense e C. theobromicola, espécies pertencentes ao complexo C.

gloeosporioides, também foram identificadas, porém, com baixa frequência. Neste contexto,

pode-se indicar que o aumento do grupo amostral demonstra o real perfil populacional tanto

da ocorrência de espécies dos complexos como a diversidade associada a essa ocorrência,

para diferentes patossistemas (SIERRA HAYER, 2014).

Neste estudo, a distribuição filogenética demonstrou que o complexo C. acutatum é

filogeneticamente próximo do complexo C. boninense. Similaridades entre esses complexos

foram indicadas, do ponto de vista morfológico, quando estudou-se um isolado de

Colletotrichum coletado de amêndoas na Austrália (MCKAY et al., 2009). Os autores

identificaram por morfologia, uma espécie de C. acutatum, contudo investigações moleculares

afirmaram que se tratava da espécie C. boninense. Essa incongruência sugere que as

semelhanças morfológicas entre esses complexos refletem também nas proximidades

genômicas. Em contra partida, as espécies do complexo C. gloeosporioides apresentaram

maior distância filogenética entre os demais complexos analisados. A identificação de

espécies desse complexo tem sido dificultada em função das similaridades morfológicas e

variações atribuídas a fatores ambientais (DAMM et al., 2012). Contudo, a identificação

molecular e análise filogenética têm revelado que o perfil de distribuição das espécies de C.

gloeosporioides são os mais diversificado em termos de distância genética, mas também

formam um clado fortemente suportado na análise da diversidade filogenética (WEIR et al.,

2012).

A análise filogenética revelou a distribuição dos dois isolados referentes a espécies C.

theobromicola em ramos distintos. Apesar de identificados como a mesma espécie, segundo a

identificação molecular com base na comparação entre as sequências, erros de identificação

podem estar incluídos em análises das informações contidas nos bancos de dados,

favorecendo consequentemente erros de identificação. Trabalhos anteriores indicam que a

espécie C. theobromicola é filogeneticamente distante das outras espécies do complexo C.

gloeosporioides, informação confirmada no resultado deste estudo, onde é possível observar

80

que C. theobromicola apresenta-se distribuída em um ramo distinto de C. siamense e C.

gloeosporioides (NELSON et al., 2013). Apesar das incoerências em agrupamentos

observados em árvores filogenéticas em relação à identificação de espécies, a análise

filogenética pela distribuição dos isolados e realizada pela inclusão de dados de sequência

sem informações da identificação de espécies, gerando a distribuição da informação de modo

imparcial. Adicionalmente, a confiabilidade nas distribuições dos isolados é dada pelo

elevado bootstrap aliado ao perfil esperado na distribuição do grupo externo, o qual deve ser

filogeneticamente distante dos demais isolados em análise. Neste caso, tanto a identificação

de espécies como a análise filogenética deve ser preferencialmente realizada pela

concatenação de diversos genes (SANGPUEAK et al., 2017).

A análise da diversidade genética com a amplificação de marcadores moleculares,

além de permitir a visualização da variação e de sua distribuição intra e interespecífica,

contribui também nas inferências acerca da variação epidemiológica (patogenicidade e

virulência) de isolados de Colletotrichum em populações de culturas importantes, como por

exemplo, cana-de açúcar, sorgo, pimenta e leguminosas (SSERUMAGA et al., 2013;

MAHMODI et al., 2014; SEXENA et al, 2014; SILVEIRA, 2015; PATEL et al., 2017). Neste

âmbito, as informações obtidas pela análise da diversidade são úteis para as definições de

manejo e melhoramento visando à resistência a fitopatógenos.

Os marcadores moleculares ISSR forneceram informações sobre a variabilidade

multiloci para a verificação da diversidade genética entre os isolados de Colletotrichum

amplamente coletados em seringueiras. Este marcador tem se mostrado eficiente na detecção

da variação genômica em regiões entre sequências microssatélites em isolados deste gênero,

sendo superior a outros marcadores dominantes como o RAPD (Random Amplified

Polymorphic DNA) em relação à capacidade de detecção do polimorfismo em análises

interespecíficas (MAHMODI et al., 2014). Em cana-de-açucar a utilização combinada de dois

marcadores moleculares foi altamente eficiente para a análise da variabilidade intra-específica

entre isolados da espécie C. falcutum (PATEL et al., 2017).

De modo geral, a presença e distribuição de dinucleotídeos microssatélites no genoma

de eucariotos são maiores em relação a monômeros com três, quatro, cinco ou mais bases.

Neste sentido, os primers para motivos microssatélites com monômeros dinucleotídicos

amplificam mais loci revelando níveis de polimorfismo a depender da estrutura genética da

população. O estudo demonstrou que sete dos oito primers utilizados, amplificaram com bom

perfil loci baseados em dinucleotídeos reforçando hipótese da maior ocorrência destes

microssatélites no genoma. Maior polimorfismo é observado na análise inter-específica,

81

principalmente quando os isolados que formam o grupo amostral em análise são provenientes

de hospedeiros distintos (MAHMOD et al., 2014). Neste caso, as variações na resistência das

culturas a patógenos ampliam a diversidade genômica deste último pelo fato dos eventos

evolutivos e de seleção. Contudo, as variações ambientais também possuem efeito nas

modificações genômicas ao longo do tempo, contribuindo com o aumento da variabilidade e

diminuição de monomorfismos observados em populações intraespecíficas

(RATANACHERDCHAI et al., 2010).

O número de loci polimórficos mesmo com a utilização de poucos primers tem sido

suficiente para analisar as distâncias genéticas entre os isolados de Colletotrichum

previamente identificados. A utilização de apenas sete iniciadores ISSR da série UBC foram

utilizados por Mahmor et al. (2014) revelando polimorfismo suficientemente discriminatório

para três espécies distintas: C. gloeosporioides, C. dematium e C. truncatum. Contudo, o

aumento do número de primers e o número de loci polimórficos avaliados geram grupos mais

fidedignos a variação genética entre espécies e também entre variantes inter-específicos

(PATEL et al., 2017).

A distribuição dos isolados no dendrograma revelou a formação de dois grandes

grupos, sendo as espécies de C. acutatum distribuídas em um subgrupo específico. A

formação de grupos e subgrupos específicos a espécies é relatado em trabalhos com

marcadores dominantes (SAXENA et al., 2014; SILVEIRA et al., 2016; MAHMOD et al.,

2017). O elevado coeficiente de correlação cofrenética certifica a distribuição correta dos

isolados na representação gráfica, uma vez que o compara com os dados da matriz de

presença e ausência de loci na análise (SOUSA et al., 2015). Contudo, a distribuição do

isolado ―04‖ (C. theobromicola) no grupo de específico do complexo C. acutatum,

juntamente com a distribuição em ramos distintos dos isolados de C. theobromicola na árvore

filogenética (isolado ―10‖ e ―04‖), pode indicar erros de identificação do isolado ―04‖. A

identificação dos isolados na denominação de espécies é realizada pela identificação

molecular via comparação de muitas sequências gênicas (MAHMOD et al., 2017). Por outro

lado, o diagnóstico de espécies com primers específicos é o método de identificação mais

efetivo (SAXENA et al., 2014; SILVEIRA et al., 2016). Dificuldades e erros de identificação

de isolados são comuns quando poucas sequências conservadas são analisadas, principalmente

quando diversas espécies são sugeridas pela análise comparativa com dados depositados em

banco de dados. Apesar desses erros na identificação a análise da diversidade genética de

isolados revelam o perfil da variação no patossistema.

82

Nesse trabalho a separação entre os isolados pertencentes ao complexo C.

gloeosporioides e C. acutatum demonstram a grande dissimilaridade genética entre os dois

complexos. Dissimilaridades entre esses complexos foram observadas com o uso de

marcadores moleculares dominantes (SILVEIRA et al., 2016). Observou-se que a única

espécie do complexo C. boninense foi distribuída juntamente com isolados pertencentes ao

complexo C. gloeosporioides, sugerindo maior relação entre os loci ISSR entre os complexos

de C. gloeosporioides e C. boninense em relação ao complexo C. acutatum.

A análise de componentes principais (PCA) fornece uma visão distinta da distribuição

dos dados de distância genética em relação ao observado por outros métodos de distribuição e

agrupamento, como o método UPGMA (SOUSA et al., 2015; PATEL et al., 2017). O gráfico

de PCA distinguiu os isolados em dois grandes grupos, separando C. acutatum do grupo de C.

gloeosporioides, sugerindo que a estrutura genética em regiões ISSR é variável entre os

genótipos, com dois domínios de diversidade entre o grupo amostral de isolados aqui

analisados. A distribuição da variação em loci ISSR pelo gráfico PCA tem sido considerada

um suporte adicional ao estudo da variação, reforçando a variabilidade demonstrada por

outros métodos de agrupamento (PATEL et al., 2017).

83

5.5 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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89

CAPÍTULO IV

6. RESISTÊNCIA DE GENÓTIPOS DE SERINGUEIRA À ANTRACNOSE FOLIAR

RESUMO

Trinta e nove genótipos de seringueira (Hevea brasiliensis) foram avaliados quanto à

sensibilidade a quatro isolados de Colletotrichum, pertencentes a três complexos de espécies

(C. gloeosporioides, C. boninense e C. acutatum). As inoculações foram realizadas depositando

gotas da suspensão de 3x105 conídios/mL em folíolos destacados dos genótipos, e estes

mantidos em condições controladas durante todo o experimento. As avaliações foram

realizadas diariamente de quatro a sete dias após a inoculação, através da mensuração ortogonal

do diâmetro das lesões para obtenção do diâmetro médio da lesão (DML). As reações de cada

acesso variaram com o isolado, demostrando haver variabilidade entre eles. Nenhum clone

apresentou resistência total, visto que, em algum momento após a inoculação, houve formação

de lesões, que variaram de tamanho. Os resultados permitiram inferir que existe variabilidade

na virulência entre os isolados de Colletotrichum, e também no comportamento dos genótipos

estudados, quanto aos isolados testados. O clone FDR 5788 se destacou por apresentar

isoladamente ou como parental de progênies os melhores resultados para resistência a

Colletotrichum. Este trabalho é pioneiro para o patossistema Colletotrichum x seringueira por

apresentar uma metodologia de inoculação prática, reproduzível e possível de diferenciar

genótipos resistentes e suscetíveis ao patógeno, além de demostrar que a variabilidade do

complexo de espécies de Colletotrichum interfere na busca da resistência.

Palavras-chave: Hevea brasiliensis, Colletotrichum spp., metodologia de inoculação,

patossistema.

90

ABSTRACT

Thirty-nine accessions of rubber tree (Hevea brasiliensis) were evaluated for sensitivity to four

isolates of Colletotrichum, belonging to three species complexes (C. gloeosporioides, C.

boninense and C. acutatum). The inoculations were performed by depositing drops of the

suspension of 3x105 conidia/mL on leaflets detached from the accessions, and kept under

controlled conditions throughout the experiment. The evaluations were performed daily from

four to seven days after inoculation, by orthogonal measurement of the lesion diameter to

obtain the mean diameter of the lesion (DML). The reactions of each access varied with the

isolate, demonstrating that there was variability between them. No clone showed complete

resistance, since at some time after inoculation, lesions formed, which varied in size. The

results allowed inferring that there is variability in the virulence between Colletotrichum

isolates, and also in the behavior of the studied accessions, regarding the tested isolates. FDR

5788 clone was distinguished by presenting the best results for Colletotrichum resistance alone

or as parent of progenies. This work is a pioneer for the Colletotrichum x rubber tree

pathosystem because it presents a methodology of practical, reproducible and possible

inoculation to differentiate resistant and susceptible accessions to the pathogen, besides

showing that the variability of Colletotrichum species complex interferes in the search for

resistance.

Key words: Hevea brasiliensis, Colletotrichum spp., methodology of inoculation, pathosystem.

91

6.1 INTRODUÇÃO

A heveicultura é uma atividade de grande importância econômica, social e ambiental,

pela sua capacidade de geração de emprego e renda e por contribuir para conservação do solo e

melhoria do ambiente, pois possui características típicas de uma floresta tropical (VIRGENS

FILHO, 2007; NARAYANAN e MYDIN, 2011). Além disso, a seringueira durante seu ciclo

de vida tem grande potencial para sequestro de carbono dentro da agroindústria e a madeira das

plantas adultas pode ser utilizada, constituindo assim um sistema de duplo propósito

(LAKSHMAN; MUNASINGHE, 2017; CORLEY, 1983).

O Brasil possui uma área plantada estimada em 160.968 ha hectares de seringueira,

dos quais pouco menos da metade encontra em produção (IBGE, 2017). Os principais Estados

produtores são: São Paulo, Bahia, Mato Grosso, Espírito Santo e Paraná (EMBRAPA, 2017).

Sendo o estado da Bahia, considerado o segundo maior produtor de borracha natural do país,

possuindo a segunda maior área plantada com aproximadamente 33.203 hectares (IBGE,

2017).

Entre os fatores que afetam o desenvolvimento da heveicultura no Brasil, merecem

destaque os danos causados pelas doenças fungicas, entre as quais, menciona-se a Antracnose

que é causada pelo complexo de espécies Colletotrichum, que ocorrem na maioria das regiões

heveícolas do mundo (GAPAROTTO et al., 1990; SANTOS et al., 1989; SILVEIRA et al.,

1986). A Antracnose nos últimos anos, tem se alastrado nos seringais das diversas regiões do

país causando grande prejuizos na produção (FURTADO, 2008), especialmente no Sudeste da

Bahia e no Espírito Santo onde a enfermidade vem aumentando gradativamente sua

importância econômica. O patógeno ataca plantas nas diversas fases de desenvolvimento, desde

mudas no viveiro até seringueiras adultas causando lesões necróticas, enrrugamento e queda

foliar (GASPAROTTO et al., 2012).

As principais formas de controle para esta enfermidade é o controle químico, com

utilização de fungicidas, sendo seu uso dificultado pelo porte elevado das plantas

(GASPAROTTO et al.,1985). O controle genético é uma das alternativas mais práticas e

econômicas para o manejo desta doença (GASPAROTTO et al., 2012). A primeira medida é

evitar o plantio comercial de materiais suscetíveis, e para isso é muito importante o

conhecimento do comportamento de clones comerciais quanto à resistência ou suscetibilidade

aos principais patógenos, sendo, portanto, primordial para o sucesso de um programa de

melhoramento. Na avaliação de resistência contra os patógenos, de modo geral, as variáveis

92

analisadas são diâmetro das lesões, análise do período de incubação e período latente do

patógeno nas folhas (JUNQUEIRA, 1985; BERGAMIN FILHO et al., 2011).

No Brasil, ainda são escassos os trabalhos relacionados à seleção de clones resistentes à

Antracnose. No estado de São Paulo, Furtado et al. (1994) avaliaram a queda foliar decorrente do

ataque de Colletotrichum e constataram que os clones GT1, PR 225 e IAN 873, GT1, IAN 873,

RRIM 600 e PR 107 sofreram menores perdas foliares que os clones RRIM 701, PR 261, PB 217

e PB 235 que foram mais desfolhados.

Gonçalves et al. (2002) objetivando selecionar clones de seringueira promissores para a

região do planalto do estado de São Paulo, avaliaram dentre os principais caracteres

secundários, a incidência da Antracnose do painel em 16 clones da série IAC 300, e observaram

que os clones IAC 330, IAC 331, IAC 333, IAC 336, IAC 338, IAC 339 e IAC 343 apresentaram

alta resistência à doença, ao contrário dos clones IAC 340 e RRIM 600 que foram suscetíveis.

Programas de melhoramento genético da seringueira no Brasil vêm sendo conduzidos no

estado de São Paulo pelo Instituto Agronômico (IAC) e na Bahia pelo Centro de Pesquisa do

Cacau (Cepec) (GONÇALVES; MARQUES, 2014). Em 1992, a Michelin, em colaboração com

o Centre de Coopération Internationale em Recherche Agronomique pour le Développement –

CIRAD, iniciou um programa de melhoramento genético da seringueira com o objetivo de

selecionar clones com bons níveis de resistência a Microcyclus ulei (Henn.) Arx atrelado a uma

elevada produção. Clones de seringueira estão sendo desenvolvidos para a resistência a M. ulei,

no entanto, ao longo do tempo, observou-se que muitos genótipos produtivos e parcialmente

resistentes a esta enfermidade, passaram a ser afetados pela Antracnose (STERLING et al.,

2011).

Considerando o aumento da intensidade da Antracnose nos seringais e a pouca

disponibilidade de informações envolvendo esse patossistema na região Sudeste da Bahia,

importante pólo heveícola, este trabalho foi desenvolvido com o objetivo de analisar as reações

de genótipos de seringueira, oriundos do banco de germoplasma das Plantações Michelin da

Bahia, à infecção por diferentes isolados de Colletotrichum spp., visando a seleção de materiais

resistentes para serem incorporados aos futuros trabalhos de melhoramento genético.

93


Os ensaios foram realizados no laboratório de Diversidade de fungos na Seção de

Fitopatologia do Centro de Pesquisa do Cacau (Cepec) na sede da Comissão Executiva do

Plano da Lavoura Cacaueira (Ceplac), situada em Ilhéus, BA.

6.2.1 Organismos e condições de cultivo

Trinta e nove genótipos de seringueira (Tabela 1), cultivados em condições controladas,

foram obtidos do banco de germoplasma das Plantações Michelin da Bahia (PMB), localizada

no município de Igrapiúna (Latitude13º 49' 35" S/Longitude: 39º 08' 32" W), região Sudeste da

Bahia.

Quatro isolados de Colletotrichum (C. acutatum, C. gloeosporioides e C. boninense)

obtidos de folíolos da copa de seringueira com sintomas de Antracnose, e mantidos em coleção

do Laboratório de Diversidade de Fungos do Cepec/Ceplac, foram utilizados como patógenos

nos ensaios de avaliação de resistência. Os isolados foram cultivados em meio Batata-

Dextrose-Ágar (BDA), à 24º C, sob luminosidade constante.

Devido à variação na disponibilidade de material vegetal (lançamento foliar no estádio

C) para as inoculações, foram analisados a reação de 38 genótipos para o isolado 19 (C.

acutatum), 12 para o isolado 13 (C. gloeosporioides), 18 para o isolado 06 (C. boninense), e

apenas 10 genótipos para o isolado 14 (C. acutatum).

6.2.2 Inoculação e avaliação de sintomas

Folíolos no estádio C de desenvolvimento foliar (HALLÉ et al., 1978), foram coletados

e armazenados em sacos plásticos, devidamente etiquetados, contendo papel toalha umedecidos

com água destilada e acondicionados em caixas de isopor contendo gelo. No laboratório de

Diversidade de Fungos do Cepec, procedeu-se a lavagem dos folíolos com água corrente e

desinfestação com hipoclorito de sódio a 2%. Os experimentos foram conduzidos em caixas

plásticas (40 x 25 x 10 cm) contendo espumas autoclavadas, umedecidas com água destilada

esterilizada. O desenho experimental foi em blocos casualizados, com 39 tratamentos, quatro

repetições e quatro folíolos destacados por repetição, com dois pontos de inoculação por

folíolo, totalizando 32 unidades experimentais por genótipo.

Procedeu-se a inoculação de cada um dos isolados de Colletotrichum com uma alíquota

de 20 μL da suspensão do inóculo, ajustada para 3x105conídios/ mL e acrescida de Tween 80%.

94

Cada folíolo foi inoculado na face abaxial, no ápice e na base. As caixas contendo os folíolos

foram mantidas a uma temperatura de 24º C ±2, sob luz constante.

As avaliações foram realizadas a partir do quarto dia após a inoculação, até o sétimo

dia, onde foram mensurados diariamente o comprimento e largura das lesões, em milímetro,

com o auxílio de um paquímetro digital. Como testemunha foram utilizados folíolos destacados

inoculados com água destilada estéril.

6.2.3 Análise dos dados

Foram avaliados os parâmetros: período de incubação (PI) e diâmetro médio da lesão

(DML) ao longo de sete dias da incubação (DAI). Os primeiros sintomas considerados foram

às lesões necróticas observadas na superfície foliar.

Os dados da morfometria foram submetidos à análise de variância pelo teste F e as

médias do diâmetro das lesões comparadas pelo teste de Tukey a 5% de probabilidade,

utilizando-se a versão 9 do software SAS®

(Statistical Analysis System). Analisou-se

separadamente o comportamento dos clones para cada isolado utilizado.

Tabela 1. Descrição dos 39 genótipos de Hevea spp. testados para resistência à Antracnose

foliar da seringueira.

(continua)...

Genótipos Parentais Origem

PB 314 RRIM 600 x PB 235 Malásia

MDX 624 AVROS 1581 x MDF? Guatemala - Libéria

SIAL 1005 AVROS 255 x Fx 25 Brasil

SIAL 893 Família de meio-irmão do PB 86 Brasil

PMB 1 Desconhecido Brasil

Fx 2784 F 4542 X AVROS 363 Brasil

Fx 3899 F 4542 X AVROS 363 Brasil

Fx 3864 PB 86 x PB 38 Brasil

Fx 2261 F 1619 x AVROS 183 Brasil

FDR 5788 Harbel8 x MDF 180 Guatemala – Libéria

FDR 5240 Harbel 68 x TU 42-525 Guatemala – Libéria

FDR 4575 Harbel8 x FDR 18 Guatemala – Libéria

IAN 6590 Fx 43- 651 x PB 86 -

PFB 5 PRIMÁRIO Brasil

CDC 312 AVROS 308 x MDX 40 Guatemala – Libéria

CDC 308 AVROS 308 x MDX 40 Guatemala – Libéria

RRIM 600 Tjir1 x PB 86 Malásia

TP 875 IAN 873 x ? Brasil

CMB 197 MDX 608 - 04 Brasil

1711 IRCA 109 x MDX 50 Brasil

95

Tabela 1. Descrição dos 39 genótipos de Hevea spp. testados para resistência à Antracnose

foliar da seringueira.

(conclusão)

Genótipos Parentais Origem

807 RRIM 600 x FDR 5788 Brasil









1601 MDX 50 x CDC 312 Brasil

1634 RRIM 600 x PFB 5 Brasil


1640 IRCA 109 x MDX 624 Brasil

1609 FDR 5788 x PFB 5 Brasil


1666 FDR 5788 x PMB 1 Brasil


1741 MDX 607 x PMB 1 Brasil

MDX 607 AVROS 1581 x MDF ? -

RRIM: Rubber Research Institute of Malaysia; PB: Prang Besar, Malásia; AVROS: Algemene Vereniging Rubber

planters Oostkust Sumatra, Indonésia; Fx: Ford Cruzamento, Brasil; MDX: Madre de Dios Cruzamento, Guatemala;

Tjir1: Tjirandji; IAN: Instituto de Pesquisas Agropecuárias do Norte, Brasil; IRCA: Institute de Recherches sur le

Caoutchou, Costa do Marfim; FDR: Firestone Dothiella Resistant; PFB: Pé franco de Belterra, Brasil; PMB:

Plantações Michelin da Bahia, Brasil; CDC: Clavellina Dothidella Resistent; Tu: Turrialba.

96

6.3 RESULTADOS

Em todos os genótipos avaliados, observou-se a formação de lesões circulares,

concêntricas de coloração amarronzadas, típicas de Colletotrichum gloeosporioides (Figura 1).

A metodologia utilizada com folíolos destacados possibilitou analisar o comportamento dos

clones em relação à infecção do patógeno ao longo de sete dias.

Houve diferença significativa (p<0,01) para a variável analisada (diâmetro médio da

lesão - DML), demonstrando a existência de variabilidade no comportamento dos genótipos

inoculados com cada um dos isolados testados.

Figura 1. Folíolo do clone PMB 1 com lesões circulares, concêntricas

de coloração amarronzadas, proveniente de inoculação com gotas de

20 µl da suspensão de esporos de Colletotrichum gloeosporioides.


O período de incubação variou de dois a cinco dias, tendo os genótipos 1601, MDX

607, 1711, SIAL 893, TP 875, PMB1, Fx 2784 e 1634, apresentado o menor período de

incubação. Em contrapartida, o maior número de genótipos, dentre os 39 avaliados, apresentou

lesões pontuais ao 3º DAI. Os genótipos que apresentaram sintomas mais tardios foram 1645,

960, 1666, 1688, 1609, FDR4575, 807, 1014 e 1023.

Houve diferença em relação ao comportamento dos genótipos quando inoculados com o

isolado 19 (Colletotrichum acutatum). A tabela 2 refere-se à avaliação de 38 genótipos de

seringueira quanto à evolução temporal da doença. As variações ocorreram em todas as leituras

97

(4 DAI à 7 DAI), no entanto, para a discussão dos dados será levada em consideração apenas a

variável diâmetro médio das lesões no quarto dia de avaliação, correspondendo ao sétimo DAI.

Os clones Fx 3864, TP 875 e PMB 1 foram os mais suscetíveis ao isolado 19, por

apresentarem respectivamente as maiores médias referentes ao diâmetro médio da lesão (26,61;

26,00; 25,77 mm). Os genótipos 1711, 1601, 1640 e os clones, já considerados comerciais, Fx

2784, SIAL 893 e RRIM 600, foram estatisticamente similares aos três primeiros e tiveram

DML variando de 25,43 a 21,62 mm. A grande maioria dos genótipos testados diferiu

estatisticamente dos mais suscetíveis, apresentando médias variando entre 8,49 mm (1609) e

21,28 (IAN 6590). Neste grupo estão clones comerciais como PFB 5, CDC 308, SIAL 1005,

FDR 5240, Fx 3899, FDR 5788 e CDC 312. Dentre os genótipos mencionados deve ser

destacado o 1609 cuja média não diferiu estatisticamente do grupo mais resistente.

Os genótipos FDR 4575, 1688, 1030, 1645 e 960 apresentaram as menores lesões com

variação de 1,00 a 7,29 mm e retardamento na evolução da doença, como pode ser observado

para as variáveis 4 DAI e 6 DAI, sendo considerados dentre os genótipos testados, os mais

promissores ao caráter resistência. Destaca-se o genótipo 960 que apresentou o menor DML

(1,00 mm).

Na tabela 3 estão expostos os resultados do DML de 18 genótipos quando inoculados

com o isolado 06 de C. boninense. A diferença mínima significativa no último dia de avaliação

foi de 8,08, quando foi possível visualizar pela diferença entre as médias apresentadas, que o

clone TP 875 foi o mais suscetível ao ataque do patógeno, com um valor médio de 24,26 mm,

não diferindo estatisticamente dos genótipos SIAL 1005, 1030 e IAN 6590, que também

apresentaram alta suscetibilidade. Um grupo intermediário foi formado pelos clones já

considerados comercias, PMB 1, Fx 3864, CDC 312, FDR 5788, RRIM 600, todos

estatisticamente semelhantes entre si, porém diferentes dos considerados mais suscetíveis e

resistentes. Para esse isolado, os genótipos mais resistentes ao patógeno, obtiveram médias

entre 1,84 mm (819) e 5,55 (1014), com destaque para os genótipos 819 e 807, que

apresentaram as menores lesões. Além disso, o crescimento das lesões foi lento e bem uniforme

nesse grupo de genótipos.

98

Tabela 2. Diâmetro médio da lesão (DML) em mm, em folíolos destacados de 38 genótipos de

seringueira (Hevea brasiliensis) inoculados com suspensão de 3 x 105 conídios/mL

do isolado 19 de Colletotrichum acutatum. DML

GENÓTIPO 4 DAI1 5 DAI1 6 DAI1 7 DAI1

Fx 3864 9.06 12.98 17.37 26.61

TP 875 14.72 18.55 20.97 26.00

PMB 1 10.83 14.65 18.94 25.77

1711 11.46 15.24 19.63 25.43

1601 12.73 15.84 19.25 24.83

Fx2784 8.77 13.07 16.03 22.79

RRIM 600 11.37 15.00 18.34 22.34

1640 8.81 15.14 19.15 22.25

SIAL 893 9.99 13.94 17.88 21.62

IAN 6590 8.64 12.92 16.55 21.28

1023 2.04 12.08 16.65 21.19

1634 8.61 14.96 18.01 21.11

PFB 5 8.19 11.47 15.15 20.14

CDC 308 5.62 13.56 17.91 19.79

CMB 197 6.38 12.25 16.01 19.21

SIAL 1005 8.83 13.07 16.05 19.05

1013 8.35 11.06 15.61 19.02

Fx 2261 6.82 11.19 14.58 18.63

PB 314 6.19 11.08 15.64 18.63

FDR 5240 8.26 12.04 14.90 18.15

840 5.03 9.46 13.08 17.97

959 6.00 9.99 13.82 16.85

Fx 3899 1.71 6.99 10.41 16.07

MDX 624 5.88 9.03 12.30 15.87

819 6.74 9.17 12.71 14.97

FDR 5788 3.96 7.30 10.93 14.94

1666 0.46 8.91 11.69 14.06

1741 4.46 11.71 12.65 14.00

807 1.38 3.63 10.61 13.78

1031 3.46 6.35 11.33 13.75

CDC 312 0.0 1.86 9.55 13.60

1014 2.29 6.58 10.32 13.03

1609 0.98 5.08 7.15 8.49

FDR 4575 1.08 2.78 4.71 7.29

1688 0.47 3.24 5.01 6.42

1030 0.99 1.37 3.75 4.75

1645 0.35 0.82 1.90 2.53

960 0.0 0.0 0.51 1.00

DMS 3.72 4.04 4.32 5.15 1 DAI - Dias após a inoculação

99



do isolado 06 de Colletotrichum boninense.

DML

GENÓTIPO 4 DAI1 5 DAI1 6 DAI1 7 DAI1 TP 875 12.01 16.33 19.99 24.26

SIAL 1005 7.58 14.05 17.95 21.14

1030 9.49 13.69 16.14 17.97

IAN 6590 3.45 4.99 10.38 16.36

PMB 1 7.49 10.59 12.52 15.25

Fx 3864 4.86 8.56 11.57 14.74

CDC 312 3.96 7.35 10.24 13.25

FDR 5788 3.13 6.13 8.16 10.95

RRIM 600 0.96 2.28 4.49 7.05

1014 0.74 1.63 4.23 5.55

1013 1.52 3.09 4.30 5.06

1031 1.08 2.37 4.06 4.71

959 1.54 2.79 3.71 4.33

960 0.80 1.28 2.32 4.24

840 0.23 1.01 3.13 3.88

CMB 197 1.13 1.78 3.08 3.75

807 0.75 1.26 2.07 2.52

819 0.22 0.37 1.44 1.84


Também foi possível observar diferenças na reação dos 12 genótipos de seringueira

quando inoculados com o isolado 13 (C. gloeosporioides) (Tabela 4). Observou-se que o clone

MDX 607, com um DML de 28,33 mm, diferiu estatisticamente de todos os outros genótipos,

sendo considerado o mais suscetível ao ataque do isolado 13. Os clones CMB 197 (25,17 mm),

CDC 312 (24,44 mm), RRIM 600 (23,59 mm), IAN 6590 (22,47 mm) e PMB 1 (22,25 mm)

foram considerados neste estudo, moderadamente suscetíveis, por apresentarem altos valores de

DML. Porém, diferiram estatisticamente do mais suscetível. O clone Fx 3864 para esta

avaliação, se comportou como o menos suscetível ao isolado 13 juntamente com os clones FDR

5240 e FDR 5788 que foram semelhantes estatisticamente entre si e que também apresentaram

valores relativamente baixos para a variável. Observou-se que as médias de lesões para este

isolado foram relativamente altas principalmente a partir do 5º DAI, se forem levadas em

consideração aquelas obtidas para os isolados 19 e 06.

100



do isolado 13 de Colletotrichum gloeosporioides.

DML


MDX 607 11.86 16.64 20.60 28.33

CMB 197 11.18 15.73 19.61 25.17

CDC 312 10.26 14.71 18.83 24.44

RRIM 600 8.17 13.54 17.89 23.59

IAN 6590 11.30 15.15 19.72 22.47

PMB 1 8.27 13.60 17.39 22.25

TP 875 7.47 11.65 15.96 21.66

PFB5 6.88 11.68 15.95 21.47

1640 4.56 10.81 14.80 21.15

FDR 5240 7.47 12.96 17.42 20.98

FDR 5788 7.57 12.43 15.84 19.68

Fx 3864 6.25 10.32 13.76 17.80


Os clones CDC 312 (21,14 mm) e PMB 1 (18,47 mm) quando inoculados com o

isolado 14 (C. acutatum), se comportaram de forma semelhante, apresentando os maiores

valores de DML e, portanto, sendo considerados os genótipos mais suscetíveis ao patógeno

entre os testados (Tabela 5). Um grupo intermediário foi formado pelos genótipos SIAL 1005,

Fx 2261, IAN 6590, TP 875 e FDR 5788, com DML variando de 14,25 a 17,21 mm. O clone

PFB 5, com DML de 8,47 mm foi o mais resitente a este isolado, mas não diferiu dos clones

RRIM 600 (10,51 mm) e Fx 3864 (10,66 mm). Vale ressaltar que no clone PFB 5 os sintomas

só foram observados a partir do 5º DAI.

Tabela 5. Diâmetro médio da lesão (DML) em mm, em folíolos destacados de 10 genótipos

de seringueira (Hevea brasiliensis) inoculados com suspensão de 3 x 105

conídios/mL do isolado 14 de Colletotrichum acutatum. DML


CDC 312 9.86 13.46 16.78 21.14

PMB 1 8.37 13.97 15.99 18.47

SIAL 1005 5.00 10.48 13.83 17.21

Fx 2261 4.26 9.65 13.17 16.33

IAN 6590 4.07 9.68 12.78 14.88

TP 875 5.40 8.44 10.93 14.29

FDR 5788 3.04 8.75 11.79 14.25

Fx 3864 4.00 6.93 7.90 10.66

RRIM 600 1.66 4.40 6.17 10.51

PFB 5 0.0 5.01 5.97 8.47


101

Uma análise de agrupamento feita pelo método UPGMA, analisou a reação dos

genótipos com relação aos quatro isolados de Colletotrichum spp. considerando o DML nos

quatro dias de avaliação. A figura 2 refere-se ao dendrograma que representa a dissimilaridade

entre 38 genótipos de seringueira quanto à evolução temporal da doença, quando inoculados

com o isolado 19 (Colletotrichum acutatum).

A linha vermelha vertical no dendrograma determina o ponto de corte estabelecido (10),

que equivale a 10 % de distância total determinada pelo método de Mojema (1977).

Foram estabelecidos três grupos distintos A, B e C separando os genótipos em

resistentes, altamente suscetíveis e suscetíveis, respectivamente. Após o corte, evidenciou-se a

divisão dos grupos, em cinco subgrupos (A-I, A-II, B-III, B-IV e C-V) compostos por 3, 5, 7,

14 e 9 genótipos respectivamente. O subgrupo A-II está representado pelo ramo onde estão

presentes os genótipos mais resistentes ao isolado 19, apresentando uma alta similaridade entre

os genótipos 960 e 1645; 1688 e FDR4575. Os genótipos 1609, CDC312 e 807 compõem o

subgrupo A-I, e também fazem parte de um ramo composto por genótipos que apresentaram

resistência ao isolado 19. Os genótipos mais suscetíveis (1601, 1711, PMB1, 1640, RRIM 600,

Fx 3864 e TP875), estão no subgrupo B-III, sendo o TP875 o que se apresentou mais distante

dos demais genótipos do mesmo grupo, em função de ter causado as maiores lesões nas

primeiras avaliações. O grupo B-III é um grupo intermediário, formado pela maioria dos

genótipos avaliados, e o 1023 foi o genótipo que mais distanciou-se dos demais, por apresentar

as menores lesões no 4 DAI.

O dendrograma da dissimilaridade entre 12 genótipos de seringueira quanto à reação ao

isolado 13 de C. gloeosporiodes (Figura 3) é composto por dois grupos A e B, subdivididos em

cinco subgrupos. Os genótipos Fx 3864 e 1640, pertencentes ao grupo B-V, apresentaram um

comportamento resistente para quatro variáveis estudadas, em oposição ao grupo A-I e A-II,

que apresentaram padrões mais altos de suscetibilidade ao isolado, com destaque para o

genótipo MDX 607 que foi o mais suscetível, distanciando-se dos demais genótipos

pertencentes ao grupo. Os clones FDR 5240 e FDR 5788 fazem parte de dois subgrupos (B-III

e B-IV) que apresentaram sensibilidade média ao isolado, sendo que dentro de seus respectivos

subgrupos, estes foram os que mais se distanciaram dos demais genótipos agrupados.

O isolado 14 de C. acutatum (Figura 4) gerou um dendrograma composto por dois

grupos distintos subdivididos em três subgrupos. O grupo B-III separa os genótipos com menor

sensibilidade ao patógeno (Fx 3864, RRIM 600 e PFB 5). Dentro do subgrupo dos genótipos

mais sensíveis (A-I), estão o PMB1 e CDC 312. Um grupo intermediário definido (A-II) foi

102

formado por genótipos que apresentaram sensibilidade média ao isolado, dentre eles, o SIAL

1005 foi o que se mostrou mais distante dos demais genótipos pertencentes ao mesmo grupo.

O dendrograma da análise de agrupamento, a partir das medidas de dissimilaridade

entre 18 genótipos inoculados com o isolado 06 de C. boninense (Figura 5) permitiu a

visualização de dois grupos principais A e B suscetíveis e resistentes respectivamente, que

foram subdivididos em três subgrupos A-I, A-II e B-III. O subgrupo A-I composto por cinco

genótipos (CDC 312, IAN 6590, Fx 3864, FDR 5788 e PMB1), comporta os de menor

suscetibilidade ao patógeno, em oposição ao grupo B-III que contêm os genótipos mais

suscetíveis (1030, SIAL 1005, TP 875). Embora os clones Fx 3864 e PMB1 sejam

considerados suscetíveis ao ataque de Colletotrichum, para esta avaliação eles foram

enquadrados no subgrupo dos mais resistentes, sendo o PMB 1 que mais distanciou-se dos

demais genótipos testados. Um grupo intermediário A-II composto por 10 genótipos apresentou

distância muito curta entre os genótipos testados, como por exemplo, 1013 e 1031, com

destaque para o genótipo 819 que mais se distanciou dos demais testados.

103

Figura 2. Dendrograma da análise de agrupamento obtido pelo método de UPGMA (distância Euclidiana), a partir das medidas de dissimilaridade

entre 38 genótipos de seringueira (Hevea sp.) avaliados quanto a severidade da Antracnose na superfície abaxial de folíolos, quando

inoculados com o isolado 19 de Colletotrichum acutatum. Grupos formados após corte na altura de θ = 10: I, II, III, IV, V.


104

Figura 3. Dendrograma da análise de agrupamento obtido pelo método de UPGMA (distância Euclidiana), a partir das medidas de dissimilaridade

entre 12 genótipos de seringueira (Hevea sp.) avaliados quanto a severidade da Antracnose na superfície abaxial de folíolos, quando

inoculados com o isolado 13 de Colletotrichum gloeosporioides. Grupos formados após corte na altura de θ = 6: I, II, III, IV, V.


105

Figura 4. Dendrograma da análise de agrupamento obtido pelo método de UPGMA (distância Euclidiana), a partir das medidas de

dissimilaridade entre 10 genótipos de seringueira (Hevea sp.) avaliados quanto a severidade da Antracnose na superfície abaxial

de folíolos, quando inoculados com o isolado 14 de Colletotrichum acutatum. Grupos formados após corte na altura de θ = 10: I,

II, III


106

Figura 5. Dendrograma da análise de agrupamento obtido pelo método de UPGMA (distância Euclidiana), a partir das medidas de dissimilaridade entre 18

genótipos de seringueira (Hevea sp.) avaliados quanto a severidade da Antracnose na superfície abaxial de folíolos, quando inoculados com o

isolado 06 de Colletotrichum boninense. Grupos formados após corte na altura de θ = 20: I, II, III, IV, V.


107

6.4 DISCUSSÃO

A metodologia de inoculação com isolados de Colletotrichum spp. utilizando folíolos

destacados foi eficiente na diferenciação dos genótipos testados, quanto à resistência e

suscetibilidade ao patógeno. Até o momento, os trabalhos relacionados à seleção de clones

para resistência à Colletotrichum spp. têm sido feitos por observações visuais no campo em

plantas adultas (GONÇALVES et al., 1999; GONÇALVES, 2002; VIRGENS FILHO, 2017-

dados não publicados). No presente trabalho, os experimentos de seleção de clones para

resistência a esta enfermidade foram realizados através de inoculações do patógeno,

utilizando folíolos destacados no estádio C sob condições controladas, em função de ser um

estádio fenológico intermediário entre o B e D (HALLÉ et al., 1978). No estádio B, os

folíolos apresentam-se com coloração antociânica intensa, e são os mais suscetíveis ao ataque

das doenças foliares (GASPAROTTO et al., 1997), porém nesse período, os folíolos estão

muito frágeis, sendo facilmente degradados, dificultando a avaliação dos sintomas. No estádio

D, os folíolos apresentam-se resistentes à penetração de fungos em geral, dificultando o

aparecimento de sintomas (GASPAROTTO et al., 2012). Os estádios foliares são importantes

para o ciclo das relações patógeno-hospedeiro, pois estes têm correlação direta com as fases

de desenvolvimento do patógeno, suscetibilidade e resistência dos folíolos à infecção

(SAMBUGARO, 2007).

A metodologia de avaliação de clones de seringueira em folíolos destacados, mesmo

quando utilizada em outro patossistema, se mostrou eficiente e consonante com sintomas

encontrados em folíolos presos na planta, independente da idade dos folíolos e do clone. Esta

metodologia foi utilizada para avaliar a resistência da seringueira à Phytophthora capsici

(SANTOS et al., 1993), demonstrando ser um método rápido, reproduzível e não destrutivo,

que se adequa à ensaios em etapas iniciais de seleção, com possibilidade de verificação de

resistência à vários patógenos (TEDFORD et al., 1990; TU, 1986).

As medidas do diâmetro médio das lesões formadas nos genótipos inoculados com os

quatro isolados de Colletotrichum foram realizadas somente a partir do quarto dia após a

inoculação, quando da coalescência de pontos necróticos para a maioria dos genótipos, devido

à possibilidade da reação de hipersensibilidade e consequente formação de pontos necróticos

sem o desenvolvimento de lesão (PASCHOLATI, 1994). No entanto, observações foram feitas

desde 24 horas após a inoculação para a visualização do aparecimento de pontos necróticos nas

folhas inoculadas. Para alguns genótipos isto se deu dois dias após a inoculação (DAI),

corroborando com as informações disponibilizadas na literatura (GASPAROTTO et al., 2012).

108

Utilizou-se neste trabalho a palavra genótipo para designar todo material botânico

testado do Banco de Germoplasma da PMB, por haverem entre eles cruzamentos, clones

comerciais, híbridos e seleções.

Os diâmetros médios das lesões (DML) apresentados nas Tabelas 2 a 5 permitiram

verificar que há variação no comportamento dos genótipos com relação aos diferentes

isolados de Colletotrichum testados. Tal fato é explicado pela grande variabilidade genética

que o gênero Colletotrichum apresenta, conforme dados disponibilizados na literatura (WEIR

et al., 2012; SHARMA et al., 2015) refletindo diretamente no comportamento dos genótipos.

Na tabela 4, observou-se que o tamanho médio das lesões causadas pelo isolado 13,

desde o primeiro dia de avaliação (DML1), foi maior em comparação aos outros três isolados

de Colletotrichum testados, consequentemente refletindo nos valores do DML4, onde foi

possível observar lesões acima de 17,8 mm. O clone Fx 3864, que diferiu estatisticamente dos

demais, sendo considerado o mais resistente para o isolado 13 (C. gloeosporioides),

apresentou lesões maiores em relação aos isolados 14 (C. acutatum) e 06 (C. boninense).

Esses resultados podem ser explicados pela alta variabilidade genética existente dentro do

complexo C. gloeosporioides quando comparado a C. acutatum. Sierra Hayer (2014)

comprovou essa variabilidade quando analisou 79 isolados de C. gloeosporioides e C.

acutatum associados à seringueira, e observou uma grande variabilidade genética entre

isolados de C. gloeosporioides, superando a existente dentro de C. acutatum, como observado

por Freemam (2000). Sierra Hayer (2010) relatou que o complexo C. gloeosporioides, é mais

agressivo quando comparado com as outras espécies de Colletotrichum em seringueira. Gazis

e Chaverri (2010), também comprovaram a alta diversidade genética de C. gloeosporioides

quando comparado com C. boninense.

Para os isolados de C. boninense (06) e C. acutatum (14 e 19) foi possível observar

que o padrão de resistência e suscetibilidade dos genótipos foi evidenciado desde a primeira

avaliação, havendo desde a inexistência de lesões, no DML1, a lesões de 14,72 mm de

diâmetro.

Todos os genótipos foram infectados, embora com níveis de infecção diferenciados o

que indica que o tipo de resistência existente na seringueira em relação à Colletotrichum spp. é

horizontal, podendo ser indicada pela variação de reação dos genótipos (RIBEIRO et al., 1981).

Não foi observada resistência total para Colletotrichum em nenhum dos genótipos de

seringueira avaliados, em contrapartida verificou-se uma variabilidade no progresso da doença,

demonstrando haver mecanismos de defesa que possibilitam o bloqueio ou diminuição do

avanço do patógeno no tecido vegetal. Koop et al. (2016) estudando o patossistema

109

Microcyclus ulei x seringueira, constatou níveis diferenciais da expressão gênica em genótipos

considerados totalmente resistentes, parcialmente resistentes e suscetíveis, bem como

diferenciação em genótipos inoculados e não inoculados com o patógeno. Para os autores,

alguns genes presentes e/ou ativados, de maneira diferencial nestes genótipos, estão envolvidos

na produção de espécies reativas de oxigênio (ERO), sistema de resposta anti-oxidante e

senescência foliar. É possível que no patossistema seringueira x Colletotrichum spp., isto

também ocorra, ou algum outro mecanismo semelhante.

Existem outros mecanismos de defesa envolvidos no processo de resistência das plantas

ao ataque de patógenos. Esses mecanismos podem ser constitutivos ou pré-formados (cutícula

espessada, tecidos lignificados, compostos fenólicos e outros) ou induzidos pela infeção

(proteínas relacionadas à patogênese – PR, fitoalexinas, ligninas, caloses, entre outros)

(GWINN et al., 2010; CHINNAPUN, 2009). Foi verificado por Garcia et al. (1999) que o

maior acúmulo de escopoletina (filtoalexina da seringueira) e de lignina nos sítios de infecção

da doença estavam presentes nos clones mais resistentes ao patógeno. Churngchow e

Rattarasarn (2001) também observaram teores altos de escopoletina em genótipos de

seringueira resistentes à Phytophthora palmivora como também, o aumento da concentração de

escapoletina, proporcional à concentração de esporos no sítio de infecção. Também foi

observado o acúmulo de espécies reativas de oxigênio (ERO) em genótipos resistentes a

Colletotrichum (FIORI, 2011). Esquerré-Tugayé et al. (1992) também sugerem que as

fitoalexinas têm papel fundamental na resistência à Colletotrichum, ao estudarem a resistência

no patossistema C. lindemuthianum x feijão.

Mesmo para os genótipos que não apresentaram lesões nos primeiros dias de avaliação,

após determinado tempo, estas foram observadas. Havendo desta forma, uma suplantação das

defesas do hospedeiro a exemplo da possibilidade de desintoxicação do patógeno frente à

fitoalexinas liberadas pelo hospedeiro, ou inibição de outras moléculas (proteases) liberadas

pelo hospedeiro (GWINN et al., 2010).

Neste estudo, foram observados diferentes níveis de resistência entre os genótipos

testados. Esses resultados eram esperados, principiante pelo fato de serem provenientes de

cruzamentos entre clones interespecíficos, utilizando diferentes materiais como progenitores,

o que indica uma ampla diversidade genética entre eles. Marques et al. (2002) estudaram a

variabilidade genética de clones de seringueira, pertencentes à série SIAL e as variedades

comerciais da série Fx, e observaram a alta variabilidade genética entre os clones da serie

SIAL em relação à série Fx, sendo que os clones da série SIAL apresentaram maiores

distâncias genéticas entre si. Os resultados sugerem que a alta diversidade genética observada

110

entre os clones da série SIAL evidencia que essa ampla base genética pode ser explorada em

programas de melhoramento genético da seringueira. Embora Marques (2010), recomende o

plantio dos clones SIAL 893 e SIAL 1005 por serem clones produtivos, precoces e tolerantes

às principais doenças foliares como Mal das Folhas, no presente estudo esses clones

apresentaram-se como medianamente suscetíveis ao ataque de Colletotrichum. Porém, estes

clones da série SIAL devem continuar sendo explorados em programas de melhoramento

genética da seringueira por apresentarem alta diversidade genética.

Dentre os genótipos avaliados, dez (807, 1031, 819, 1013, 959, 840, 1014, 1030,

960, 1023) são provenientes de um mesmo cruzamento entre um clone oriental altamente

produtivo (RRIM 600) (GONÇALVES; MARQUES, 2008) e um clone que apresenta

resitência ao M. ulei (FDR 5788) (SANDOVAL et al., 2017) (Tabela 1). Mesmo havendo

diferenças no comportamento destes genótipos frente à inoculação de diferentes isolados de

Colletotrichum, estes se encontram dentro do grupo que apresentou os menores diâmentro da

lesão. Segundo Virgens Filho (2017 - dados não publicados) o clone FDR 5788 quando

avaliado em condições de campo pela escala diagramática de densidade foliar, apresentou

resitência ao Colletotrichum spp. Desta forma acredita-se na possibilidade de transferência de

genes envolvidos na resistência a Colletotrichum para suas progênies, na tentativa de conciliar

produtividade com resistência a doenças.

O clone FDR 5788, utilizado como base de resistência a M. ulei em Programas de

Melhoramento Genético (SUAREZ et al., 2015) foi também parental de cruzamentos que

originaram genótipos que apresentaram resistência aos isolados de Colletotrichum, a exemplo

do genótipo 1609 (FDR 5788 x PFB5) e 1666 (FDR 5788 x PMB 1). Originário da Amazônia

Brasileira, o clone PFB 5, mesmo não apresentando um bom potencial produtivo (RIBEIRO,

1988), tem sido utilizado como fonte de resitência ao M. ulei em diversos cruzamentos

(JUNQUEIRA et al., 1988). A característica de resistência a outros patógenos também pode

ser transferida para suas progênies, o que foi evidenciado neste trabalho, nos genótipos 1609,

1645 (RRIM 600 x PFB 5) e 1688 (RRIM600 x PFB 5) para o patossitema Colletotrichum x

seringueira. O clone PMB1 tem sido estudado em campos de clones de grande escala (CCGE)

por apresentar bons potenciais de produção em teste precoce, além de outras características

como vigor, arquitetura da copa, formato do tronco, e uma boa estrutura do sistema laticífero,

no entanto, ao avaliar resistência a Colletotrichum spp. este material apresentou altos índices

de infecção ao patógeno em condições de campo (VIRGENS FILHO, 2017 - dados não

publicados) e também em condições controladas como demonstram os resultados neste

estudo. Apesar do PMB1 apresentar suscetibilidade ao patógeno, quando este é utilizado

111

como progenitor em cruzamentos com outros materiais que possuam genes de resistência a

determinado patógeno, este material poderá gerar progênies com características desejáveis, a

exemplo do resultado obtido pelo genótipo1666.

Outros representantes da série FDR, originários da Guatemala, como o FDR 5240 e

FDR 4575 também foram avaliados e possuem como progenitor comum o clone Harbel 8.

Cubry e colaboradores (2014), ao avaliarem genes candidatos que foram utilizados em estudo

de resistência à M. ulei, identificaram similaridade genética entre clones das series FDR e Fx,

demonstrando haver possibilidade de estarem utilizando recursos genéticos semelhantes para

o combate ao patógeno.

Como representantes de clones amazônicos também se encontram nesse trabalho, o

clone IAN 6590, desenvolvido pelo Instituto Agronômico do Norte (IAN) e integrantes da

série Fx (Fx 2784, Fx 3899, Fx 3864 e Fx 2261), a qual é composta pela maioria de clones

desenvolvidos pela Compahia Ford com base em características agronômicas desejáveis e

resistência moderada a suscetível ao Mal das Folhas (M. ulei) e cancro do painel

(Phytophthora spp.) de acordo com Gonçalves e Marques (2008), mas que vêm se

comportando como altamente suscetíveis a estas enfermidadaes no Sudeste da Bahia. Esses

genótipos quando avaliados em condições de campo apresentaram baixo índice de infecção

em torno de 25%, não diferindo de representantes da série FDR (VIRGENS FILHO, 2017-

Dados não publicados).

O presente trabalho destaca a possibilidade de complementariedade da resistência ao

Mal das Folhas e a Antracnose. É possível que os mecanismos de resistência entre a

seringueira e os patógenos M. ulei e Colletotrichum spp. sejam diferentes do ponto de vista

bioquímico, entretanto o genótipo poderá reunir diferentes populações de genes que estejam

relacionados à resistência a mais de um patógeno. Como evidenciado pelo clone FDR 5788

que se destacou dentre todos os genótipos estudados, por apresentar isoladamente ou como

parental de progênies os melhores resultados para resistência a Colletotrichum.

A metodologia empregada na presente pesquisa é de fácil reprodução, permite

diferenciar genótipos, e também pontua a dificuldade existente em avaliar genótipos de

seringueira em relação aos complexos de espécies de Colletotrichum. Além disso, trata-se de

um trabalho pioneiro que demostra o quanto a variação do complexo do patógeno interfere na

avaliação para resistência à Antracnose.

112

6.5 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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116

7. CONSIDERAÇÕES FINAIS

Os dados obtidos neste estudo contribuíram para aumentar o conhecimento na

micobiota associada à Hevea brasiliensis mediante a descoberta de um novo táxon

para a ciência e de novos registros fúngicos;

A utilização das duas sequencias ITS1/4 e a sequência parcial do gene GAPDH

permitiram identificar três complexos de espécies de Colletotrichum associados à

Antracnose foliar da seringueira;

Estudos adicionais com um grupo amostral amplo e a inclusão de novas tecnologias de

análise são recomendáveis para maior detalhamento da população fúngica existente;

Foi possível verificar alta variabilidade na virulência entre os isolados de

Colletotrichum, e também no comportamento dos genótipos estudados, quanto aos

isolados testados;

A metodologia utilizada permitiu diferenciar genótipos resistentes e suscetíveis ao

patógeno, além de demostrar que a variabilidade do complexo de espécies de

Colletotrichum interfere na busca da resistência.

Este trabalho proporcionou uma contribuição relevante para a heveicultura brasileira,

por apresentar resultados que poderão ser explorados em programas de melhoramento

genético da seringueira, destacando-se o clone FDR 5788 para recomendação de uso.

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127

APÊNDICE A - OCORRÊNCIA DE OÍDIO EM MUDAS DE SERINGUEIRA NO

ESTADO DA BAHIA, BRASIL

128

9. OCORRÊNCIA DE OÍDIO EM MUDAS DE SERINGUEIRA NO ESTADO DA

BAHIA, BRASIL

Nota científica submetida à revista Agrotrópica

Tacila Ribeiro Santos1, José Luiz Bezerra

1, Adonias de Castro Virgens Filho

2, Lívia Fernanda

Lavrador Toniasso3

¹Universidade Estadual de Santa Cruz (UESC) - Programa de Pós-Graduação em Produção

Vegetal – PPGPV. Rod. Jorge Amado Km 16, 45662-900, Ilhéus, Bahia, Brasil;

²CEPLAC/CEPEC - Seção de Diversificação, km 22, Rod. Ilhéus/Itabuna. Caixa postal 07,

45600-970, Itabuna, Bahia, Brasil; 3Plantações Michelin da Bahia Ltda – Departamento de

Pesquisa e Desenvolvimento (P&D) Rod. Ituberá-Camamu, Km 05, Igrapiúna, Bahia, Brasil.

[email protected]; [email protected]

RESUMO

Oidium heveae é relatado infectando mudas de seringueira coletadas nas Plantações Michelin

da Bahia, município de Igrapiúna, Bahia. Este é o primeiro relato do patógeno sobre folhas de

Hevea brasiliensis no Estado da Bahia.

Palavras-chave: Oidium heveae, Hevea brasiliensis, parasita biotrófico obrigatório.

ABSTRACT

Oidium heveae is reported infecting rubber tree seedlings collected at Michelin Plantations of

Bahia, Igrapiúna, Bahia. This is the first report of the pathogen on leaves of Hevea

brasiliensis in the State of Bahia.

Key words: Oidium heveae, Hevea brasiliensis, obligate biotrophic parasite.

Oídio é uma doença foliar de grande importância para a cultura da seringueira (Hevea

brasiliensis Müll.Arg.), a qual é causada por Oidium hevea Steinm., parasita biotrófico

obrigatório, reportado principalmente em países asiáticos como a Malásia, Sri Lanka e

Indonésia (BURCHILL, 1978). No Brasil, a doença tem sido relatada nos estados de São

Paulo, e também no Espírito Santo (FURTADO; SILVEIRA, 1993).

mailto:[email protected]

mailto:[email protected]

129

Os folíolos infectados com o patógeno perdem o brilho natural, apresentando um

micélio esbranquiçado nas faces abaxial e adaxial, podendo ocorrer enrugamento e posterior

queda dos mesmos. Em condições favoráveis, o fungo pode esporular e formar lesões de

coloração marrom avermelhada (GASPAROTTO et al., 2012), podendo ser observado em

diversos órgãos vegetais como meristemas, ramos jovens, flores, frutos em formação (AUER,

2001).

Em outubro de 2017, na casa telada das Plantações Michelin da Bahia Ltda, município

de Igrapiúna, Bahia, foram coletadas amostras de folhas de seringueira apresentando sintomas

e sinais de oídio.

No laboratório de Diversidade de Fungos do Centro de Pesquisas do Cacau

(Ceplac/Cepec), o material foi examinado ao microscópio estereoscópico MOTIC SMZ -168

para observação topográfica das colônias. A caracterização morfológica foi feita utilizando-se

um microscópio LEICA DM500 acoplado a uma câmara digital SONY Cyber-shot DSC-

WX30. As mensurações das estruturas foram efetuadas por meio de micrômetro ocular

devidamente calibrado. Para observação do micélio íntegro, utilizou-se a técnica de Callan e

Carris (2004), substituindo o acetato de celulose por esmalte de unha incolor de secagem

rápida (Risqué Technology), seguindo-se de montagem em PVLG (álcool polivinílico + ácido

lático + glicerol) (HOSAGOUDAR; RIJU, 2013).

O fungo estudado possui micélio esbranquiçado com hifas ramificadas, septadas, de

parede fina e conidióforos retos produzindo cadeias basípetas de dois a sete conídios.

Conídios hialinos, elípticos, lisos, medindo de 23-42 x 16-20 µm (Figura 1). As características

morfológicas descritas correspondem às da espécie Oidium heveae, cujo morfo sexual é

desconhecido.

Material examinado: BRASIL. BAHIA: Igrapiúna, Plantações Michelin da Bahia, sobre

folhas de Hevea brasiliensis 24.10.2017, T.R. Santos e J.L. Bezerra (CEPEC 2497).

Comentários: Apesar da doença ser conhecida no Brasil, não havia, até o momento, registro

oficial de O. heveae no estado da Bahia.

130

FIGURA 1. Oidium heveae. A. Muda de seringueira com sintomas da doença. B. Folíolo com

micélio de oídio. C, D. Conidióforo e conídios. E. Conídios em cadeia. Barra = 37 µm.

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